Name: double direct injection of blood into the cisterna magna as a model of subarachnoid hemorrhage
Uploaded: 2020-08-30T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Double Direct Injection of Blood into the Cisterna Magna as a Model of Subarachnoid Hemorrhage at JoVE.com

Agradecemos a la plataforma PRIMACEN (Universidad de Normandie Rouen, Francia) por su equipo de imagen y al Sr. Arnaud Arabo, a la Sra. Julie Maucotel y a la Sra. Martine Dubois, por su alojamiento y cuidado de los animales. Agradecemos a la señora Celeste Nicola por prestar su voz a la grabación del protocolo. Este trabajo fue apoyado por el programa de maduración seinari Normandía, La Fundación AVC bajo la égida de la FRM, la Universidad Normandie Rouen y el Inserm. La Región de Normandía y la Unión Europea (proyecto 3R). Europa participa en Normandía con el Fondo Europeo de Desarrollo Regional (FEDER).

Todos los procedimientos se llevaron a cabo bajo la supervisión de H. Castel de conformidad con el Comité ético francés y las directrices de la Directiva 2010/63/UE del Parlamento Europeo y el Consejo para la Protección de los Animales Utilizados con Fines Científicos. Este proyecto fue aprobado por el CENOMEXA local y los comités éticos nacionales de investigación y pruebas de animales. Los ratones macho c57Bl/6J Rj (Janvier), de 8 a 12 semanas, se alojaron en condiciones ambientales estándar controladas: 22 o...

A pesar de la intensidad de la investigación en el campo de la SAH y el desarrollo de estrategias terapéuticas como opciones de tratamiento endovascular y farmacológico que aumentan en los últimos veinte años, la mortalidad sigue siendo alta en la primera semana de ingreso hospitalario y alcanza alrededor del 50% durante los siguientes 6 meses24,,25.. Este modelo preclínico actual mediante doble inyección diaria de sangre arterial homólo...

La hemorragia subaracnoidea (SAH) representa hasta el 5% de todos los casos de accidente cerebrovascular y constituye una patología relativamente común con una incidencia de 7,2 a 9 pacientes por cada 100.000 por año, con una tasa de mortalidad del 20%-60% dependiendo del estudio1,,2,,3. En la fase aguda, la mortalidad es atribuible a la gravedad del sangrado, sangrado, vasoespasmo cerebral (CVS) y/o complicaciones médicas4. En los sobrevivientes, la lesión cerebral temprana (EBI) se asocia con la extensión parénquima de la hemorragia y el aumento abrupto de la presión intracraneal, que puede resultar en isquemia cerebral primaria5 y la muerte inmediata en aproximadamente 10%-15% de los casos6. Después de la etapa inicial "aguda" de la SAH, el pronóstico depende de la aparición de isquemia cerebral "secundaria" o retardada (DCI), detectada en casi el 40% de los pacientes por tomografía computarizada cerebral, y en hasta el 80% de los pacientes después de la resonancia magnética (RM)7,,8. Además del CVS que ocurre entre 4 y 21 días después de la ruptura del aneurisma en la mayoría de los pacientes con SAH, DCI9 puede ser el resultado de lesiones cerebrales difusas multifactoriales secundarias a la formación de microtrombosis, reducción de la perfusión cerebral, neuroinflamación y depresión de propagación cortical (CSD)10,11,12,13. Esto afecta al 30% de los sobrevivientes de SAH e impacta las funciones cognitivas incluyendo memoria visual, memoria verbal, tiempo de reacción, y funciones ejecutivas, visuospatiales y del lenguaje14 deteriorando la vida diaria15. Las terapias estándar actuales para prevenir el CVS y/o los malos resultados cognitivos en pacientes con SAH se basan en el bloqueo de la señalización y vasoconstricción de Ca2+ mediante el uso de inhibidores del canal Ca2+ como nimodipina. Sin embargo, ensayos clínicos más recientes dirigidos a vasoconstricción revelaron disociación entre el resultado neurológico del paciente y la prevención del CVS16,lo que sugiere mecanismos fisiopatológicos más complejos implicados en las consecuencias a largo plazo de la SAH. Por lo tanto, existe una necesidad médica de una mayor comprensión del número de eventos patológicos que acompañan a la SAH y el desarrollo de modelos animales válidos y estandarizados para probar las intervenciones terapéuticas originales.
La ruptura de un aneurisma intracraneal mayormente responsable de la SAH en humanos es probablemente difícil de imitar en modelos animales preclínicos. Actualmente, la ruptura del aneurisma y la situación de la SAH se pueden probar tentativamente mediante la perforación de la arteria cerebral media (modelo de punción endovascular) responsable de CVS y disfunciones sensitivomotoras en ratones17,,18. Debido a la falta de un posible control sobre la aparición del sangrado y la difusión de la sangre en este modelo, se han desarrollado otros métodos en roedores para generar modelos SAH sin ruptura endovascular. Más precisamente, consisten en la administración directa de sangre arterial en el espacio subaracnoideo a través de una inyección única o doble en las cisternas magna19 o una sola inyección en la cisterna prequismática20. La principal ventaja de estos modelos de ratón sin ruptura endovascular es la posibilidad de dominar reproduciblemente el procedimiento quirúrgico y la calidad y cantidad de la muestra de sangre inyectada. Otra ventaja de este modelo sobre el modelo mediante perforación endovascular en particular es la preservación del bienestar general del animal. De hecho, esta cirugía es menos invasiva y técnicamente menos difícil que la necesaria para generar una ruptura de la pared carótida. En este último modelo, el animal tiene que ser intubado y ventilado mecánicamente, mientras que un monofilamento se inserta en la arteria carótida externa, y avanza en la arteria carótida interna. Esto probablemente conduce a isquemia transitoria debido a la obstrucción del vaso por la trayectoria del alambre. En consecuencia, la comorbilidad (estado moribundo, dolor importante y muerte) asociada con la cirugía es menos importante en el modelo de doble inyección en comparación con el modelo de perforación endovascular. Además de ser un SAH más consistente, el método de inyección directa doble cumple con el bienestar animal en la investigación y las pruebas (tiempo reducido bajo anestesia, dolor por alteración del tejido en la cirugía y angustia) y conduce a un número total mínimo de animales utilizados para el estudio del protocolo y la formación del personal.
Además, esto permite la implementación del mismo protocolo a ratones transgénicos, lo que conduce a una comprensión patológica optimizada de la SAH y la posibilidad de pruebas comparativas de posibles compuestos terapéuticos. Aquí, presentamos un modelo de ratón estandarizado de hemorragia subaracnoidea (SAH) por una doble inyección diaria consecutiva de sangre arterial autóloga en la cisterna magna en ratones C57Bl/6J machos de 6-8 semanas de edad. La principal ventaja de este modelo es el control del volumen de sangrado en comparación con el modelo de perforación endovascular, y el refuerzo del evento de sangrado sin un aumento drástico de la presión intracraneal21. Recientemente, la doble inyección directa de sangre en la cisterna magna ha sido bien descrita en los problemas experimentales y fisiopatológicos en ratones. De hecho, recientemente demostramos CVS de grandes arterias cerebrales (basilar (BA), medias (MCA) y arterias cerebrales anteriores (ACA), deposición cerebrovascular de fibrina y apoptosis celular desde el día 3 (D3) hasta 10 (D10), defectos de circulación del líquido cefalorraquídeo paravascular acompañados de alteraciones de las funciones sensitivomotoras y cognitivas en ratones, 10 días después de SAH en este modelo22. Por lo tanto, hace que este modelo dominado, validado y caracterizado para eventos a corto y duradero plazo después de SAH. Debe ser ideal para la identificación prospectiva de nuevas dianas y para estudios sobre estrategias terapéuticas potentes y eficientes contra complicaciones asociadas a la SAH.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:776px;" width="775">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">absorbable hemostat</td>
			<td style="width:201px;">Ethicon</td>
			<td style="width:161px;">Surgicel</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">absorbable suturing thread</td>
			<td style="width:201px;">Ethicon</td>
			<td style="width:161px;">Vicryl 5.0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">auto-regulated electric blanket</td>
			<td style="width:201px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:161px;">50-7087-F</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">bluetack for capillary fixation</td>
			<td style="width:201px;">UHU</td>
			<td style="width:161px;">Patafix</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">electronic balance</td>
			<td style="width:201px;">Denver Instrument</td>
			<td style="width:161px;">MXX-2001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:247px;">glass capillaries</td>
			<td style="width:201px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:161px;">GC150F-15</td>
			<td style="width:167px;">inner diameter 0.86 mm 
			outer diameter 1.5 mm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">isoflurane vaporizer</td>
			<td style="width:201px;">Phymep</td>
			<td style="width:161px;">V100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">micropipette puller</td>
			<td style="width:201px;">Sutter Instrument Company</td>
			<td style="width:161px;">P-97</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">needle 26 G</td>
			<td style="width:201px;">BD microbalance</td>
			<td style="width:161px;">300300</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">non absorbable suturing thread</td>
			<td style="width:201px;">Peters surgical</td>
			<td style="width:161px;">Filapeau 4.0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">stereotaxic frame</td>
			<td style="width:201px;">David Kopf instruments</td>
			<td style="width:161px;">Model 902</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:247px;">surgical equipment</td>
			<td style="width:201px;">Kent scientific</td>
			<td style="width:161px;">clamp, microscissors, thin scissors</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:247px;">syringe 20 mL TERUMO</td>
			<td style="width:201px;">Thermofisher</td>
			<td>11866071</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

double direct injection of blood into the cisterna magna as a model of subarachnoid hemorrhage

Entre los accidentes cerebrovasculares, la hemorragia subaracnoidea (HS) consecutiva a la ruptura de un aneurisma arterial cerebral representa 5-9%, pero es responsable de alrededor del 30% de la mortalidad total relacionada con el accidente cerebrovascular con una morbilidad importante en términos de desenlace neurológico. Un vasoespasmo cerebral retrasado (CVS) puede ocurrir con mayor frecuencia en asociación con una isquemia cerebral retrasada. Se están utilizando diferentes modelos animales de SAH, incluyendo perforación endovascular e inyección directa de sangre en la cisterna magna o incluso en la cisterna prequismática, cada una de las que presenta ventajas y desventajas distintas. En este artículo, se presenta un modelo de ratón estandarizado de SAH mediante la inyección directa doble de volúmenes determinados de sangre entera autóloga en la cisterna magna. Brevemente, los ratones fueron pesados y luego anestesiados por inhalación de isoflurano. A continuación, el animal se colocó en una posición reclinable sobre una manta calentada manteniendo una temperatura rectal de 37 oC y se colocó en un marco estereotáctico con una curva cervical de unos 30o. Una vez en su lugar, la punta de una micropipeta de vidrio alargada llena con la sangre arterial homóloga extraída de la arteria carótida de otro ratón de la misma edad y sexo (C57Bl/6J) se posicionó en un ángulo recto en contacto con la membrana atlanto-occipital por medio de un micromaniprulador. Luego se inyectaron 60 l de sangre en la cisterna magna seguida de una inclinación descendente de 30o del animal durante 2 minutos. La segunda perfusión de sangre de 30oL en la cisterna magna se realizó 24 h después de la primera. El seguimiento individual de cada animal se lleva a cabo diariamente (evaluación cuidadosa del peso y el bienestar). Este procedimiento permite una distribución predecible y altamente reproducible de la sangre, probablemente acompañada de una elevación de la presión intracraneal que puede ser imitada por una inyección equivalente de un líquido cefalorraquídeo artificial (CSF), y representa un modelo agudo a leve de SAH que induce la baja mortalidad.

Cronología experimental, procedimiento, seguimiento y mortalidad La Figura 1A y la Figura 1B resumen el protocolo modelo SAH mediante inyección de sangre de doble intracisterna. Brevemente, el primer día de inducción de SAH (D-1), se inyectaron 60 l de sangre retirada de un ratón homólogo o 60 l de líquido cefalorraquídeo artificial (aCSF) en la cisterna magna en SAH o en condiciones falsas, respectivamente. Al día siguiente (D0), se...

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Double Direct Injection of Blood into the Cisterna Magna as a Model of Subarachnoid Hemorrhage

Describimos en este protocolo un modelo estandarizado de hemorragia subaracnoidea (SAH) mediante una doble inyección de sangre entera autóloga en la cisterna magna. El alto grado de estandarización del procedimiento de doble inyección representa un modelo de media a aguda de SAH con relativa seguridad con respecto a la mortalidad.

Doble inyección directa de sangre en la Cisterna Magna como modelo de hemorragia subaracnoidea

Among strokes, subarachnoid hemorrhage (SAH) consecutive to the rupture of a cerebral arterial aneurysm represents 5-9% but is responsible for about 30% ...

El objetivo general de este presente video es explicar el protocolo de una doble inyección directa de sangre en la cisterna magna como un modelo de hemorragia subaracnoidea. La fisiología de la hemorragia subaracnoidea a menudo se debe a una ruptura de un aneurisma. Y primero hacemos la extravasación de sangre en el compartimiento entre el cerebro y el tejido que cubre el cerebro.Este compartimiento es el espacio subaracnoideo. La hemorragia subaracnoidea representa hasta el 7% de todos los casos de huelga. La mortalidad varía entre el 30 y el 50% en los estudios basados en la población y los sobrevivientes de hemorragias subaracnoideas suelen experimentar secuelas cognitivas como déficits de memoria, astenia o trastornos del estado de ánimo.La principal causa en la alta prevalencia de un mal resultado es la isquemia cerebral. Los estudios hicieron un vínculo entre la aparición de isquemia en la vasoconstricción de las grandes arterias cerebrales, llamada vasoespasmo microscópico que se puede detectar en la mayoría de los pacientes entre el cuarto y el decimoquinto día después del primer evento de distensión abdominal. Debido a la ineficiencia de las opciones terapéuticas actuales, hay una necesidad médica obvia para una mejor comprensión de los eventos patológicos.Se debe probar la hemorragia subaracnoidea que acompaña y las nuevas dianas terapéuticas, pero esto requiere modelos animales variados y estandarizados. Es probable que sea difícil la ruptura del aneurisma intercraneal mayormente responsable de la hemorragia subaracnoidea en humanos. En animales, las principales dificultades residen en la incidencia de control de hemorragia y distribución sanguínea, pero estudios recientes se centran en el desarrollo de modelos más redicive de modelos de hemorragia subaracnoidea.Aquí representan un modelo de ratón estandarizado de dos inyecciones consecutivas de sangre arterial autóloga de nuestros dos días en la cisterna magna. Las principales ventajas de este modelo son dominar de forma reproducible un procedimiento quirúrgico no invasivo, adaptar la calidad y cantidad de la sangre inyectada, y reforzar el evento hemorrágico sin aumentar drásticamente la presión intracraneal. Antes del comienzo de la cirugía, usted tiene que poner otro gran número de capilares de vidrio mediante el uso de un tirador de micropipeta.La pipeta de inyección debe presentar un diámetro interior de 0,86 milímetros y un diámetro exterior de 0,5 milímetros. Preparar el líquido cefalorraquídeo artificial para una afección falsa, como se indica en el protocolo escrito. Debe darse cuenta de este líquido cefalorraquídeo artificial oxigenado con un aparato de filtro de 0,22 micras.El primer paso de nuestro modelo de hemorragia subaracnoidea consiste en el aislamiento de la arteria carótida a lo largo de la tráquea y la recolección del máximo de sangre de la punción de la arteria carótida. Después de la anestesia por isoflurano, compruebe la falta de reflejos sujetando una o dos extremidades posteriores para permitir el ajuste del procedimiento experimental. Codifque una jeringa de un milímetro con Eprin utilizando una aguja de calibre 26.Esto evitará la coagulación de la sangre durante los siguientes pasos. Pese cada ratón con precisión utilizando una balanza electrónica. En el estudio actual, ratones tendrían peso corporal dentro del rango de 20 Para 25 gramos justo antes de la cirugía.Como se explicó anteriormente, la anestesia inducida del ratón operado y luego afeitar el cuello y el espacio entre cada oreja por medio de un cortador eléctrico adecuado. Compruebe que el ratón está durmiendo y la cabeza del ratón está bien bloqueada. Inyectar por vía subcutánea 100 microlitros de buprenorfina a 0,1 miligramos por kilo con una aguja de calibre 26 en la parte inferior de la espalda para evitar el dolor después del despertar.Evite la sequedad de los ojos con un gel líquido protector y mantenga una temperatura intraductal de 37 grados con una manta eléctrica regulada automáticamente. Antes de tratar el área afeitada con una solución antiséptica, todos los instrumentos que tocan el tejido han sido esterilizados y se manejaron asépticamente. El primer día, corte una incisión de un centímetro de largo en el cuello posterior, seguido de la separación de los músculos a lo largo de la línea media, para acceder a la cisterna magna.Corte la punta de la pipeta de vidrio vacía con tijeras delgadas. A continuación, adáptese a una jeringa conectada a un conector de silicio flexible. Luego transfiera 60 microlitros de sangre o líquido cefalorraquídeo artificial en un tubo de 0,5 mililitros utilizando una micropipeta de precisión Succionar la pipeta de vidrio, los 60 microlitros de sangre para la condición de hemorragia subaracnoidea o 60 microlitros de líquido cefalorraquídeo artificial para la afección falsa.Para inyección, inserte la pipeta en el marco estereotáctico utilizando, por ejemplo, nuestro anillo o a y acercarse lentamente a la punta de la pipeta a la membrana en la interfaz con la cisterna magna. Inserte lentamente la punta de la pipeta a través de la membrana atlanto-occipital en la cisterna magna utilizando un micromanipulador del marco estereotáctico. Conecte la pipeta a la jeringa previamente llena, lista para la inducción de presión.Inyectar por presión a una velocidad baja alrededor de 10 microlitros por minuto para evitar la hipertensión intracraneal aguda. Durante la inyección, controle estrechamente la frecuencia respiratoria y la temperatura rectal. Al final de la inyección, retire cuidadosamente la pipeta con el micromanipulador y tenga cuidado visualmente de que no haya fugas durante la extracción.Alcanza la homeostasis y realiza dos suturas con hilo suturado trenzado no absorbible. Inmediatamente después de la cirugía, aísle y coloque el ratón en declive decúbito y cubra con una manta de supervivencia en una caja abierta durante la recuperación. Después de 24 horas, induzca la anestesia de nuevo, instale el ratón en el marco estereotáctico como el día anterior y retire con cuidado las suturas con micro-tijeras.Preparar como antes aséptico de la membrana atlanto-occipital, aplicando sobre la zona afeitada y solución aséptica con una varilla de algodón. Inyectar, como el día anterior, 30 microlitros de sangre o líquido cefalorraquídeo artificial a una velocidad baja. Como ya se ha mencionado, controlar la frecuencia respiratoria y la temperatura rectal.Al final de la inyección, quite cuidadosamente la pipeta y controle la ausencia de fuga de sangre durante la retirada. Alcanza la homeostasis y realiza dos suturas con un hilo de sutura absorbible trenzado. Desde el primer día después de la cirugía hasta el día del sacrificio, el peso corporal debe evaluarse diariamente como un indicador sensible para el bienestar general.Mostró una reducción significativa del aumento de peso corporal en hemorragia subaracnoidea, en comparación con animales falsos, lo que sugiere un proceso de recuperación de actividad de larga duración y eventos patológicos prolongados, hemorragia post subaracnoidea. ¿Por qué la mortalidad no está en condiciones falsas? La mortalidad es cercana al 30% en el séptimo día en la condición de hemorragia subaracnoidea, con la mayoría de los animales muriendo en el uno o el cuarto día después de la cirugía.Entre los puntos finales humanos, se observa una pérdida de peso significativa superior al 15% del peso inicial. Una postura encorvada, movimientos lentos, heridas, vocalizaciones anormales o agresiones significativas son también signos de que el animal está sufriendo. Si aparece alguno de estos signos o una combinación de signos, el seguimiento del animal se refuerza en cuestión de horas que siguen su apariencia.Si la condición del animal empeora en la hora que sigue o no mejora en 48 horas, se considerará que se alcanza un nivel de sufrimiento intolerable y se lleva a cabo la matanza. En este ejemplo en el primer día de la cirugía, se puede observar desde un cerebro de muestra, coágulos de sangre a lo largo de las grandes arterias del polígono Willis en sujeto de hemorragia subaracnoidea. En el día cinco después de la cirugía y antes del sacrificio, la inyección de tinta india intervascular permite la detección de vasoespasmo macroscópico correspondiente a la vasoconstricción de grandes arterias cerebelosas, Coloración de rodajas cerebrales con hematoxilina y eosina permite la medición de vasoespasmo cerebral.Aquí, como se ilustra en esta micrografía fotográfica, se puede observar como un vasoespasmo de la arteria basilar. En este modelo de desvío de la inyección directa de sangre a la cisterna magna, hemos demostrado recientemente vasoespasmo cerebral de grandes arterias cerebrales, deposición fibrina vascular cerebral, y apoptosis celular, acompañada de alteraciones de las funciones sensoriales, motoras y cognitivas en ratones. Por lo tanto, hace que este modelo valide y se caracterice para eventos a corto y largo plazo, hemorragia post subaracnoidea.Debe ser ideal para la identificación prospectiva de nuevas dianas y para estudios sobre estrategias terapéuticas eficientes contra las complicaciones asociadas a la hemorragia subaracnoidea.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Autologous Blood Injection to Model Spontaneous Intracerebral Hemorrhage in Mice

Inyección de sangre autóloga al modelo hemorragia intracerebral espontánea en ratones

Investigation of the pathophysiology of injury after intracerebral
hemorrhage (ICH) requires a reproducible animal model.  While ICH
accounts for 10-15% ...

Investigación

Neurociencias

Cannula Implantation into the Cisterna Magna of Rodents

Implantación de la cánula en la Cisterna Magna de roedores

Cisterna magna cannulation (CMc) is a straightforward procedure that enables direct access to the cerebrospinal fluid (CSF) without operative damage to ...

A Volumetric Method for Quantification of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

Un método volumétrico para la cuantificación de vasoespasmo Cerebral en un modelo murino de hemorragia subaracnoidea

Subarachnoid hemorrhage (SAH) is a subtype of hemorrhagic stroke. Cerebral vasospasm that occurs in the aftermath of the bleeding is an important factor ...

In Vivo Direct Reprogramming of Resident Glial Cells into Interneurons by Intracerebral Injection of Viral Vectors

En Vivo Reprogramación Directa de Células Gliales Residentes en Interneuronas por Inyección Intracerebral de Vectores Virales

Converting resident glia in the brain into functional and subtype-specific neurons in vivo provides a step forward towards the development of alternative ...

Massive Pontine Hemorrhage by Dual Injection of Autologous Blood

Hemorragia pontina masiva por inyección dual de sangre autóloga

We provide a protocol to establish a massive pontine hemorrhage model in a rat. Rats weighing about 250 grams were used in this study. One hundred ...

Analysis of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage with High Frequency Transcranial Duplex Ultrasound

Análisis Del Vasospasmo Cerebral En Un Modelo Murino De Hemorragia Subaracnoidea Con Ultrasonido Dúplex Transcraneal De Alta Frecuencia

Cerebral vasospasm that occurs in the weeks after subarachnoid hemorrhage, a type of hemorrhagic stroke, contributes to delayed cerebral ischemia. A ...

Pre-Chiasmatic, Single Injection of Autologous Blood to Induce Experimental Subarachnoid Hemorrhage in a Rat Model

Inyección única prequiasmática de sangre autóloga para inducir hemorragia subaracnoidea experimental en un modelo de rata

Despite advances in treatment over the last decades, subarachnoid hemorrhage (SAH) continues to carry a high burden of morbidity and mortality, largely ...

Direct Cannula Implantation in the Cisterna Magna of Pigs

Implantación directa de cánula en la Cisterna Magna de Cerdos

The glymphatic system is a waste clearance system in the brain that relies on the flow of cerebrospinal fluid (CSF) in astrocyte-bound perivascular spaces ...

Endovascular Perforation Model for Subarachnoid Hemorrhage Combined with Magnetic Resonance Imaging (MRI)

Endovascular Perforation Model for Subarachnoid Hemorrhage Combined with Magnetic Resonance Imaging MRI

Modelo de perforación endovascular para hemorragia subaracnoidea combinada con resonancia magnética (IRM)

The endovascular filament perforation model to mimic subarachnoid hemorrhage (SAH) is a commonly used model - however, the technique can cause a high ...

Stereotaxic Surgical Approach to Microinject the Caudal Brainstem and Upper Cervical Spinal Cord via the Cisterna Magna in Mice

Stereotaxic Surgical Approach to Microinject the Caudal Brainstem and Upper Cervical Spinal Cord via the Cisterna Magna in Mice

Abordaje quirúrgico estereotáxico para microinyectar el tronco encefálico caudal y la médula espinal cervical superior a través de la Cisterna Magna en ratones

Stereotaxic surgery to target brain sites in mice is commonly guided by skull landmarks. Access is then obtained via burr holes drilled through the skull. ...