Name: precise brain mapping to perform repetitive in vivo imaging of neuro-immune dynamics in mice
Uploaded: 2020-08-07T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice at JoVE.com

Wij danken de leden van het Eyo lab voor het bespreken van de ideeën gepresenteerd in dit manuscript. Wij danken Dr. Justin Rustenhoven van het Kipnis Lab aan de Universiteit van Virginia voor het geschenk van NG2DsRed muizen33. Dit werk wordt ondersteund door financiering van het National Institute of Neurological Disorders and Stroke of the National Institute of Health to U.B.E (K22 NS104392).

Alle stappen zijn in overeenstemming met de richtlijnen vastgesteld en goedgekeurd door de Institutional Animal Care and Use Committee van de Universiteit van Virginia.
1. Muisvoorbereiding voor schedelowimplantatie
LET OP: Verschillende transgene muislijnen met fluorescerende tags zijn geschikt voor beeldvorming.
<ol><li>Gebruik CX3CR1GFP/+ muizen26 om microglia in vivo te visualiseren. Typisch, jonge tot jonge volwassen 4 tot 1...

De komst van in vivo twee-foton beeldvorming heeft mogelijkheden geopend om de overvloed van cellulaire interacties en dynamiek die zich voordoen in de gezonde hersenen te verkennen. Eerste studies gericht op het gebruik van de open schedel craniotomie benadering van beeld neuronale dendrieten door zowel acute als chronische beeldvorming37,38. Dit kan ook worden gebruikt om neuro-immuun interacties in de hersenen te verduidelijken. Dit protocol beschrijft een met...

Het centrale zenuwstelsel (CNS) wordt beheerst door een complex samenspel van interacties tussen verschillende ingezeten celtypen, waaronder neuronen, glia en aan bloedvaten geassocieerde cellen. Traditioneel werden neurale cellen bestudeerd in geïsoleerde, co-gekweekte1,,2,,3,4,5 (in vitro) of uitgesneden hersenweefsel (ex vivo)6,7,8,9,10 contexten. Echter, er is behoefte aan verder te begrijpen neurale cel gedrag en interacties in de inheemse omgeving van de intacte hersenen in vivo. In dit protocol beschrijven we een methode om in vivo regio's van belang in kaart te brengen en deze regio's nauwkeurig opnieuw te beelden in toekomstige beeldvormingssessies om de complexe interacties tussen de verschillende CNS-celtypen gedurende langere perioden bij te houden.
De ontwikkeling van in vivo beeldvormingsbenaderingen heeft aanzienlijke voordelen opgeleverd voor het juiste begrip van neurale functie11,12,13,14,15. Met name deze benaderingen bieden verschillende voordelen ten opzichte van traditionele in vitro en ex vivo benaderingen. Ten eerste hebben in vivo beeldvormingssystemen fysiologisch relevante cel- en weefselcomponenten zoals de vasculatuur met het volledige repertoire van cellulaire interacties om een volledig begrip van neurale netwerkfysiologie te bieden. Ten tweede, recente bevindingen suggereren dat wanneer verwijderd uit hun eigen omgeving, bepaalde neurale cellen (zoals microglia) belangrijke kenmerken van hun identiteit en dus fysiologie16,17 die kunnen worden bewaard in de in vivo instelling te verliezen. Ten derde bieden in vivo beeldvormingssystemen de mogelijkheid voor stabiele longitudinale onderzoeken van weken tot maanden om cellulaire interacties van CNS te bestuderen. Ten slotte bieden in vivo-systemen, gezien het groeiende bewijs voor bijdragen van het perifere immuunsysteem18,,19 en het microbioom20,21 in de CNS-fysiologie, een platform om dergelijke bijdragen en effecten op CNS-cellen te ondervragen. Dus, benaderingen die longitudinale in vivo beeldvorming gebruiken om neuro-immuun fysiologie en interacties in gezonde, gewonde en zieke toestanden te bestuderen zijn een grote aanvulling op traditionele benaderingen.
In dit protocol beschrijven we een betrouwbare benadering van verschillende celtypen in de hersenen, waaronder microglia, neuronen en NG2+ cellen als voorbeelden. Er zijn twee benaderingen ontwikkeld om neurale cellen in vivo te visualiseren: de uitgedunde schedelbenadering en de open schedel met een craniale raambenadering. Hoewel uitgedunde schedelbenaderingen in gebruik zijn en de voorkeur hebben omdat ze enkele van de nadelen van de open schedelbenadering overwinnen, zoals gliacelactivering, hoger dan fysiologische wervelkolomdynamiek en het gebruik van ontstekingsremmende middelen22,23,24,25, uitgedunde schedelbenaderingen vertonen ook een paar kritische nadelen. Ten eerste is de dunner wordende procedure een zeer delicate procedure die veel onderzoekers moeilijk vinden om te perfectioneren, vooral wanneer het opnieuw uitdunnen noodzakelijk is. Dit is het geval omdat het vaak moeilijk is voor onderzoekers om na te gaan dat ze de schedel hebben uitgedund tot een ~ 20 μm diepte. Ten tweede, voor adequate vergelijkingen tussen muizen, dunner zou moeten identiek zijn en een verscheidenheid van dunner wordend succes tussen beeldvorming sessies of muizen kunnen compliceren visualisatie van neurale structuren. Ten derde, wanneer ze worden gebruikt voor longitudinale beeldvorming, kunnen dieren met uitgedunde schedels slechts voor een beperkt aantal sessies worden gebruikt wanneer het opnieuw uitdunnen van de schedel wordt gebruikt. Forth, aangezien sommige van het botweefsel nog steeds overblijft, duidelijkheid in de diepte van de beeldvorming kan worden aangetast van de uitgedunde schedel benadering waardoor grote visualisatie van meer oppervlakkige, maar niet zo veel met diepere regio's. In het licht hiervan kunnen diepere hersenstructuren zoals de hippocampus niet succesvol worden afgebeeld met de uitgedunde schedelbenadering. Deze overwegingen doen de noodzaak van alternatieve en complementaire benaderingen aan de orde die deze zorgen kunnen wegnemen.
Als alternatief voor de uitgedunde schedelbenadering, maakt de open schedelvensterimplantatiebenadering gebruik van een procedure waarbij de schedel wordt vervangen door een optisch heldere glazen coverslip. Dit zorgt voor een vrijwel onbeperkt aantal beeldvormingssessies. Bovendien, gezien de vervanging van de schedel door de glazen coverslip, deze methode zorgt voor een duidelijk kijkvenster van fluorescerend getagde hersencellen voor uitgebreide perioden van uren tot maanden en, daarom, kan worden gebruikt om celactiviteit en interacties die relevant zijn voor fysiologie, veroudering en pathologie te bestuderen.
Over het algemeen beschrijven we stappen die kunnen worden gevolgd om chronische craniale vensters te implanteren door middel van een stereotaxic craniotomie die in vivo beeldvorming van hersengebieden van belang mogelijk maakt. We beschrijven ook hoe de schromelijk stabiele hersenen vasculatuur of de fluorescerende gelabelde dendrieten kunnen worden gebruikt om een grove of een fijne kaart te genereren, respectievelijk van de hersenen regio's van belang. Deze aanpak kan vervolgens worden gebruikt voor herhaalde beeldvorming gedurende meerdere sessies. Het belang van deze techniek ligt daarom in zijn vermogen om de langetermijnveranderingen of stasis in hersenelementen in beeld te brengen, waaronder de opstelling, morfologie en interacties van de verschillende cellulaire typen.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Coverglass (3mm)</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>64-0726</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cyanoacrylate glue (Krazy Glue)</td>
			<td>Amazon</td>
			<td>https://www.amazon.com/Krazy-Glue-Original-Purpose-Instant/dp/B07GSF31WZ/ref=sr_1_2?keywords=krazy+glue&#38;qid=1583856837&#38;s=pet-supplies&#38;sr=8-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Demi Ultra LED Curing Light System</td>
			<td>Dental Health Products, Inc</td>
			<td>910860-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental Drill</td>
			<td>Osada: www.osadausa.edu</td>
			<td>EXL-M40</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill Bit</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>#19008-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye Ointment</td>
			<td>Henry Schien</td>
			<td>1338333</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>iBond Total Etch (Primer glue)</td>
			<td>Chase Dental Supply (Heraeus Kulzer)</td>
			<td>66040094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rhodamine B</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>81-88-9 (R6626)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetris Evoflow glue (Final glue)</td>
			<td>Top Dent (Ivoclar Vivadent)</td>
			<td>#595956</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wahl Brav Mini+</td>
			<td>Amazon</td>
			<td>https://www.amazon.com/Wahl-Professional-Animal-BravMini-41590-0438/dp/B00IN24ILE/ref=asc_df_B00IN24ILE/?tag=hyprod-20&#38;linkCode=df0&#38;hvadid=167141013968&#38;hvpos=&#38;hvnetw=g&#38;hvrand=12368793083893626704&#38;hvpone=&#38;hvptwo=&#38;hvqmt=&#38;hvdev=c&#38;hvdvcmdl=&#38;hvlocint=&#38;hvlocphy=9008337&#38;hvtargid=pla-332197544154&#38;psc=1</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

precise brain mapping to perform repetitive in vivo imaging of neuro-immune dynamics in mice

Het centrale zenuwstelsel (CNS) wordt gereguleerd door een complex samenspel van neuronale, gliale, stromale en vasculaire cellen die de juiste functie vergemakkelijken. Hoewel het bestuderen van deze cellen in isolatie in vitro of samen ex vivo nuttige fysiologische informatie biedt; opvallende kenmerken van neurale celfysiologie zullen worden gemist in dergelijke contexten. Daarom is er behoefte aan het bestuderen van neurale cellen in hun oorspronkelijke in vivo omgeving. Het hier beschreven protocol beschrijft repetitieve in vivo twee-foton beeldvorming van neurale cellen in de knaagdierschors als een hulpmiddel om specifieke cellen gedurende langere perioden van uren tot maanden te visualiseren en te bestuderen. We beschrijven in detail het gebruik van de schromelijk stabiele hersenvacuatuur als een grove kaart of fluorescerend gelabelde dendrieten als een fijne kaart van bepaalde hersengebieden van belang. Met behulp van deze kaarten als een visuele sleutel, laten we zien hoe neurale cellen nauwkeurig kunnen worden verplaatst voor latere repetitieve in vivo beeldvorming. Met behulp van voorbeelden van in vivo beeldvorming van fluorescerende microglia, neuronen en NG2+ cellen, toont dit protocol het vermogen van deze techniek aan om repetitieve visualisatie van cellulaire dynamiek in dezelfde hersenlocatie over langere perioden mogelijk te maken, die verder kan helpen bij het begrijpen van de structurele en functionele reacties van deze cellen in normale fysiologie of het volgen van pathologische beledigingen. Waar nodig kan deze aanpak worden gekoppeld aan functionele beeldvorming van neurale cellen, bijvoorbeeld met calciumbeeldvorming. Deze benadering is vooral een krachtige techniek om de fysieke interactie tussen verschillende celtypen van het CNS in vivo te visualiseren wanneer genetische muismodellen of specifieke kleurstoffen met duidelijke fluorescerende tags beschikbaar zijn om de cellen van belang te labelen.

Om de microgliale dynamiek in vivo te visualiseren, werden dubbele transgene CX3CR1GFP/+:Thy1YFP muizen gebruikt. De Thy1-YFP H-lijn wordt gebruikt in tegenstelling tot de Thy1-GFP M-lijn om te voorkomen dat de overlap van microglia (GFP) en neuronen (YFP) florescentie overlapt. Alternatieve benaderingen kunnen gebruik maken van een reporter lijn waarin microglia zijn gelabeld met bijvoorbeeld tdTomato en vervolgens de Thy1-GFP M lijn kan worden gebruikt. Een nadeel van de H-lijn is dat YFP veel neu...

Watch this Scientific Journal Video about Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice at JoVE.com

Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice

Dit protocol beschrijft een chronische craniale venster implantatie techniek die kan worden gebruikt voor longitudinale beeldvorming van neuro-glio-vasculaire structuren, interacties, en functie in zowel gezonde als zieke omstandigheden. Het dient als een aanvullend alternatief voor de transcraniële beeldvormingsbenadering die, hoewel vaak de voorkeur, een aantal kritische beperkingen bezit.

Nauwkeurige brain mapping om repetitieve in vivo beeldvorming van neuro-immuundynamica in muizen uit te voeren

The central nervous system (CNS) is regulated by a complex interplay of neuronal, glial, stromal, and vascular cells that facilitate its proper function. ...

Dit protocol laat zien hoe in Vivo Two-Photon microscopie kan worden gebruikt om repetitieve visualisatie van cellulaire dynamiek te doen, in dezelfde hersenlocatie gedurende langere perioden. Het voordeel van deze techniek is dat het mogelijk is om de veranderingen op lange termijn in cellulaire elementen van de hersenen in beeld te brengen, inclusief de rangorde, morfologie en fysieke interacties tussen het verschillende celtype van het CZS. Deze techniek kan vooral nuttig zijn bij het uitlokken van celcel-cel interacties, celdynamica, en morfologische veranderingen tijdens de hersenen plasticiteit, en neurodegeneratie.Begin met het voorbereiden van een jonge of jonge volwassene, vier tot 10 weken oud, een CX3CR1 GFP heterozygoot muis, die 17 tot 25 gram weegt, voor een craniale vensterimplantatie. Na het verdoven van de muis, gebruik maken van een haartrimmer om het haar te scheren op zijn hoofd, tussen de oren, ongeveer, van het oogniveau, naar de bovenkant van de nek regio. Verplaats de muis naar de stereotactische chirurgie station, neus kegel, en stabiliseren van het hoofd met behulp van oordoppen.Houd de muis gedurende de hele procedure op het verwarmingskussen. Smeer beide ogen met oliezalf, dan injecteren 100 microliter van 0,25%bupivacaine, en 100 microliter van vier milligram per milliliter dexamethasone, onderhuids op de incisie site. Wacht minstens vijf minuten voordat u verdergaat.Bloed de geschoren kop, met drie afwisselende wattenstaafjes betadine, en 70% alcohol. Maak dan een middellijn hoofdhuid incisie met een chirurgisch mes of schaar. Uit te breiden van de achterkant van de schedel regio, tussen de oren, naar het frontale gebied tussen de ogen.Snijd de resterende huid om de schedel bloot te leggen. Bloed het bindweefsel tussen de hoofdhuid en de onderliggende schedel met 3% waterstofperoxide en lokaliseer het te beelden hersengebied met stereotactische coördinaten. Boor een cirkelvormige opening, ongeveer vier millimeter in de schedel, met behulp van een tandheelkundige boor bit.Tijdens het boren, regelmatig bevochtigd de schedel met steriele zoutoplossing en wattenstaafjes om de hersenen te koelen. Ruim botresten op en verzacht het schedelbot. Wanneer u klaar bent, verwijder dan voorzichtig dit gedeelte van de schedel met puntige tangen.Nadat de schedel is verwijderd, zorgvuldig plaats een klein afdekglas, bevochtigd met zout in de craniotomie. Droog overtollige zoutoplossing af met een steriele doek. Met behulp van een puntige applicator, van toepassing cyanoacrylaat lijm rond het raam, en laat het hechten aan de hersenen en schedel.Breng de primer lijm op de rest van de schedel, en genezen met een uitharding licht gedurende 20 tot 40 seconden. Maak een put rond het raam met de uiteindelijke lijm, en genezen met een uitharding licht voor 20 tot 40 seconden. Lijm een kleine hoofdplaat op de schedel, op de contralaterale hemisfeer, de craniotomie, met de primerlijm, en vervolgens met de laatste lijm, die beide 20 tot 40 seconden uithard.Nadat de muis wakker wordt, injecteer een onderhuidse dosis buprenorfine SR als postoperatieve analgesie, wat 72 uur voldoende zal zijn. Herleef de muis met extra zout voedsel om een gezond herstel te vergemakkelijken. Beeldvorming kan al twee weken na de implantatieoperatie worden uitgevoerd.Gebruik schroeven om de kopplaat te monteren op de twee-foton microscoop stadium, die moet worden gehandhaafd op 35 graden Celsius met een verwarmingsplaat. Injecteer de muis onderhuids met 100 microliter bloedvatverf, zoals Rhodamine B.Voorzichtig reinigen van het oppervlak van het schedelvenster met een wattenstaafje, gedeponeerd in 70%ethanol. Doe een paar druppels water of zout op het raam en laat de objectieflens in de oplossing zakken.Zorg ervoor dat de laser is uitgeschakeld als het doel is het verlagen, en trek een cursus kaart om de belangrijkste bloedvat oriëntatiepunten aan te duiden, terwijl het kijken door het oculair. Gebruik deze tekening om de specifieke regio's te identificeren tijdens de beeldvorming met twee foto's. Verzamel beelden van fluorescerende cellen en vaten met behulp van twee-foton beeldvorming.Zie het tekstmanuscript voor beeldvormende parameters, maak zorgvuldige aantekeningen met de juiste coördinaten, om ervoor te zorgen dat de precieze regio's opnieuw kunnen worden bekeken voor een volgende beeldvorming. Teken als verschillende gezichtsvelden in deze eerste beeldvormingssessie, Aan het einde van de beeldvorming, haal de muis van het podium, laat hem wakker worden uit anesthesie en breng hem terug naar zijn thuiskooi. Gebruik de verkregen notities en afbeeldingen voor het opnieuw beeldvorming van de gebieden tijdens de volgende sessies.Dit protocol werd gebruikt om Microglial Dynamics In Vivo te visualiseren, in Taiwan YFP-H lijnmuizen. Specifieke dendrieten, diende als stabiele oriëntatiepunten voor het fijn in kaart brengen van hersengebieden. Terwijl dendrieten zijn een stabiele, sommige microglia bewegen dagelijks.Enkele transgene CX3CR1/GFP muizen, werden gebruikt om microglia te volgen voor maximaal acht weken. Injecties van rhodamine B, werden gebruikt om de vasculatuur te labelen, tijdens elke beeldvormingssessie. Terwijl de vasculatuur stabiel blijft, zijn de microglia dynamisch.De CX3CR1/GFP muizen, werden gebruikt om microglia te volgen voor en na ernstige aanvallen. De vasculaire bedstructuur werd gehandhaafd, maar het microglia cellulaire netwerk, en positielandschap waren voorbijgaand. Grotere veranderingen werden waargenomen binnen 24 tot 48 uur na aanvallen.Dubbele transgene CX3CR1/GFP en NG2DS-Red muizen, werden gebruikt om microglia te volgen, en NG2 naar positieve cellen In Vivo. Zonder etikettering van de vasculatuur, microglia evenals vat geassocieerde parasieten, en oligodendrocyten precursor cellen, of OPCs, werden geïdentificeerd. Parasieten hebben langwerpige processen die volgen langs de vaatwand, en OPC's tonen meestal grotere cellichamen die zich in de hersenen parenchyma, weg van de vasculatuur.Wanneer rhodamine B werd gebruikt, kon de helderdere fluorescentie van parasieten worden onderscheiden van de zwakkere fluorescentie van luminale rhodamine, ondanks vergelijkbare opwinding tijdens beeldvorming. Dagelijkse beeldvorming toonde aan dat parasieten stabiel waren gepositioneerd, terwijl OPC's en microglia dynamisch waren. Het is belangrijk om zorgvuldig te observeren van het gebied dat wordt gevisualiseerd, om een representatieve kaart te tekenen die zo nauwkeurig mogelijk is, en de stappen aan te geven die zijn genomen om de andere locaties te bereiken met betrekking tot het startpunt.In de volgende beeldvormingssessies zijn deze stappen, de handgetekende kaarten en de eerder gemaakte afbeeldingen van cruciaal belang om dezelfde locaties herhaaldelijk te identificeren. Deze techniek heeft onderzoekers toegestaan om neuron-glia interacties, neuro-immuun interacties, en neuro-cel dynamiek van langere perioden in zowel gezondheid en pathologie te verduidelijken.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo

Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo

Niet-invasieve beeldvorming van Leukocyte Homing en migratie In vivo</em

Two-photon (2P) microscopy is a high resolution imaging technique that has been broadly adapted by biologists.  The value of 2P microscopy is that it ...

An Orthotopic Model of Serous Ovarian Cancer in Immunocompetent Mice for in vivo Tumor Imaging and Monitoring of Tumor Immune Responses

An Orthotopic Model of Serous Ovarian Cancer in Immunocompetent Mice for in vivo Tumor Imaging and Monitoring of Tumor Immune Responses

Een orthotope Model van sereuze eierstokkanker in immunocompetente muizen voor In vivo Tumor Imaging en Bewaking van de Tumor Immuunrespons

Background: Ovarian cancer is generally diagnosed at an advanced stage where the case/fatality ratio is high and thus remains the most lethal of all ...

Bioluminescent Bacterial Imaging In Vivo

Bioluminescent Bacterial Imaging In Vivo

Bioluminescent Bacteriële Imaging<em&gt; In Vivo</em

This video describes the use of whole body bioluminesce imaging (BLI) for the study of bacterial trafficking in live mice, with an emphasis on the use of ...

4D Multimodality Imaging of Citrobacter rodentium Infections in Mice

4D Multimodality Imaging of Citrobacter rodentium Infections in Mice

4D multimodale beeldvorming van<em&gt; Citrobacter rodentium</em&gt; Infecties in Muizen

This protocol outlines the steps required to  longitudinally monitor a bioluminescent bacterial infection using composite 3D diffuse light imaging ...

In vivo Imaging Method to Distinguish Acute and Chronic Inflammation

In vivo Imaging Method to Distinguish Acute and Chronic Inflammation

In vivo beeldvorming methode om acute en chronische ontsteking Onderscheid

Inflammation is a fundamental aspect of many human diseases. In this video report, we demonstrate non-invasive bioluminescence imaging techniques that ...

Using Fluorescent Proteins to Visualize and Quantitate Chlamydia Vacuole Growth Dynamics in Living Cells

Using Fluorescent Proteins to Visualize and Quantitate Chlamydia Vacuole Growth Dynamics in Living Cells

Met behulp van fluorescerende eiwitten te visualiseren en te kwantificeren<em&gt; Chlamydia</em&gt; Vacuole groeidynamiek in levende cellen

The obligate intracellular bacterium Chlamydia elicits a great burden on global public health. C.&#160;trachomatis is the leading bacterial cause of ...

Detecting Glycogen in Peripheral Blood Mononuclear Cells with Periodic Acid Schiff Staining

Detecteren Glycogeen in perifeer bloed mononucleaire cellen met Periodic Acid Schiff kleuring

Periodic acid Schiff (PAS) staining is an immunohistochemical technique used on muscle biopsies and as a diagnostic tool for blood samples. ...

Neutrophil Isolation and Analysis to Determine their Role in Lymphoma Cell Sensitivity to Therapeutic Agents

Neutrofielen Isolatie en analyse van hun rol in de Lymphoma Cell Gevoeligheid voor therapeutische middelen te bepalen

Neutrophils are the most abundant (40% to 75%) type of white blood cells and among the first inflammatory cells to migrate towards the site of ...

Non-invasive In Vivo Fluorescence Optical Imaging of Inflammatory MMP Activity Using an Activatable Fluorescent Imaging Agent

Non-invasive In Vivo Fluorescence Optical Imaging of Inflammatory MMP Activity Using an Activatable Fluorescent Imaging Agent

Niet-invasieve<em&gt; In Vivo</em&gt; Fluorescentie Optische Imaging van Inflammatorische MMP Activiteit Met behulp van een Activateerbare Fluorescerende Imaging Agent

This paper describes a non-invasive method for imaging matrix metalloproteinases (MMP)-activity by an activatable fluorescent probe, via in vivo ...

Long-term In Vivo Tracking of Inflammatory Cell Dynamics Within Drosophila Pupae

Long-term In Vivo Tracking of Inflammatory Cell Dynamics Within Drosophila Pupae

Op lange termijn In Vivo Tracking van inflammatoire cel dynamiek binnen Drosophila poppen

During the rapid inflammatory response to tissue damage, cells of the innate immune system are quickly recruited to the injury site. Once at the wound, ...