Name: precise brain mapping to perform repetitive in vivo imaging of neuro-immune dynamics in mice
Uploaded: 2020-08-07T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice at JoVE.com

Eyo laboratuvarı üyelerine bu el yazmasında sunulan fikirleri tartıştıkları için teşekkür ederiz. Biz NG2DsRed fareler33hediye için Virginia Üniversitesi'nde Kipnis Lab Dr Justin Rustenhoven teşekkür ederiz. Bu çalışma, Ulusal Nörolojik Bozukluklar ve Ulusal Sağlık Enstitüsü İnme Enstitüsü'nden U.B.E'ye (K22 NS104392) yapılan fonla desteklenmiştir.

Tüm adımlar, Virginia Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından belirlenen ve onaylanan yönergelere uygundur.
1. Kafatası penceresi implantasyonu için fare hazırlığı
NOT: Floresan etiketleri ile çeşitli transgenik fare hatları görüntüleme için uygundur.
<ol><li>Vivo in microglia görselleştirmek için CX3CR1GFP / + fareler26 kullanın. Tipik olarak, genç erişkin 4-10 haftalık 17-25...

In vivo iki foton görüntüleme gelişiyle sağlıklı beyinde meydana gelen hücresel etkileşimler ve dinamikleri bolluk keşfetmek için fırsatlar açtı. İlk çalışmalar hem akut hem de kronik görüntüleme ile görüntü nöronal dendritler için açık kafatası kraniyotomi yaklaşımı kullanarak odaklanmıştır37,38. Bu da beyindeki nöroimmün etkileşimleri açıklamak için kullanılabilir. Bu protokol, kısa veya uzun vadede uzun süre floresan...

Merkezi sinir sistemi (CNS) nöronlar, glia ve damar ilişkili hücreler de dahil olmak üzere çeşitli yerleşik hücre türleri arasındaki etkileşimlerin karmaşık bir etkileşim tarafından yönetilir. Geleneksel olarak, nöral hücreler izole, co-kültürlü1,2,,3,4,5 (in vitro) veya excised beyin dokusu (ex vivo)6,7,8,9,10 bağlamlarda incelenmiştir., Ancak, daha fazla in vivo bozulmamış beynin yerli ortamda nöral hücre davranışı ve etkileşimleri anlamak için ihtiyaç vardır. Bu protokolde, in vivo ilgi alanlarının haritasını çıkarmak ve bu bölgeleri gelecekteki görüntüleme oturumlarında tam olarak yeniden görebilmek için çeşitli CNS hücre türleri arasındaki karmaşık etkileşimleri uzun süreler boyunca izlemek için bir yöntem açıklıyoruz.
In vivo görüntüleme yaklaşımlarının geliştirilmesi nöral fonksiyonun doğru anlaşılması için önemli kazanımlar sağlamıştır11,12,13,,14,15. Özellikle, bu yaklaşımlar geleneksel in vitro ve ex vivo yaklaşımlar üzerinde çeşitli avantajlar sağlar. İlk olarak, in vivo görüntüleme sistemleri nöral ağ fizyolojisi tam bir anlayış sağlamak için hücresel etkileşimlerin tam repertoi ile vaskülatür gibi fizyolojik olarak ilgili hücre ve doku bileşenleri var. İkinci olarak, son bulgular kendi doğal ortamdan kaldırıldığında, bazı nöral hücrelerin (mikroglia gibi) kimliklerinin önemli özelliklerini kaybetmek ve böylece fizyoloji16,17 in vivo ortamda korunabilir öneririz. Üçüncü olarak, in vivo görüntüleme sistemleri CNS hücresel etkileşimleri incelemek için haftalar ile aylar arasında istikrarlı uzunlamasına araştırmalar alametim sağlar. Son olarak, periferik bağışıklık sistemi katkıları için artan kanıt göz önüne alındığında18,19 ve mikrobiyom20,21 CNS fizyolojisi, in vivo sistemleri cns hücreleri üzerinde bu tür katkıları ve etkileri sorgulamak için bir platform sağlar. Bu nedenle, nöro-immün fizyoloji ve sağlıklı, yaralı ve hastalıklı durumlarda etkileşimleri incelemek için in vivo görüntüleme de longitudinal kullanan yaklaşımlar geleneksel yaklaşımlara büyük bir tamamlayıcı ektir.
Bu protokolde, mikroglia, nöronlar ve NG2+ hücreleri de dahil olmak üzere beyindeki farklı hücre tiplerini görüntülemek için güvenilir bir yaklaşımı örnek olarak tanımlıyoruz. In vivo nöral hücreleri görselleştirmek için iki yaklaşım geliştirilmiştir: inceltilmiş kafatası yaklaşımı ve kafatası pencere yaklaşımı ile açık kafatası. İnceltilmiş kafatası yaklaşımları kullanımda olmasına ve glial hücre aktivasyonu, daha yüksek fizyolojik omurga dinamiği ve anti-inflamatuar ajanların kullanımı22,23,,24,25, inceltilmiş kafatası yaklaşımları gibi açık kafatası yaklaşımının bazı dezavantajları aşmak çünkü tercih edilir de birkaç kritik sakıncaları göstermektedir. İlk olarak, incelme prosedürü birçok araştırmacı özellikle yeniden inceltme gerekli olduğunda mükemmel bulmak zor bir çok hassas bir işlemdir. Bu durum, deneycilerin kafatasını ~20 μm derinliğe kadar inceltmiş olduklarını tespit etmeleri genellikle zor olduğundan durum böyledir. İkinci olarak, fareler arasında yeterli karşılaştırmalar için, inceltme aynı olması gerekir ve görüntüleme oturumları veya fareler arasında inceltme başarı çeşitli nöral yapıların görselleştirilmesi karmaşık olabilir. Üçüncü olarak, uzunlamasına görüntüleme için kullanıldığında, inceltilmiş kafatasları olan hayvanlar sadece kafatasının yeniden inceltilmesi kullanıldığında sınırlı sayıda seans için kullanılabilir. İleri, bazı kemik dokusu hala kalır bu yana, görüntüleme derinliği netlik daha yüzeysel ama çok daha derin bölgeler ile büyük görselleştirme için izin inceltilmiş kafatası yaklaşımı tehlikeye olabilir. Bunun ışığında, hipokampus gibi daha derin beyin yapıları, inceltilmiş kafatası yaklaşımı ile başarılı bir şekilde görüntülenemez. Bu hususlar, bu endişelerin üstesinden gelebilecek alternatif ve tamamlayıcı yaklaşımlara duyulan ihtiyacı gündeme getirecektir.
İnceltilmiş kafatası yaklaşımına alternatif olarak, açık kafatası penceresi implantasyon yaklaşımı, kafatasının optik olarak net cam kapak kaydırışla değiştirildiği bir prosedür kullanır. Bu, neredeyse sınırsız sayıda görüntüleme oturumu na olanak sağlar. Ayrıca, cam kapak lı kafatasının değiştirilmesi göz önüne alındığında, bu yöntem floresan etiketli beyin hücrelerinin saatlerce nisbeten aylara kadar geniş süreler için net bir görüntüleme penceresi sağlar ve bu nedenle, fizyoloji, yaşlanma ve patoloji ile ilgili hücre aktivitesi ve etkileşimleri incelemek için istihdam edilebilir.
Genel olarak, ilgi beyin bölgelerinin in vivo görüntüleme sağlayan bir stereotaksik kraniyotomi ile implant kronik kranial pencereler yapmak için takip edilebilir adımları ayrıntılı. Ayrıca, brüt olarak kararlı beyin vaskülatürü veya floresan etiketli dendritlerin, ilgi çekici beyin bölgelerinin sırasıyla kaba veya güzel bir haritasını oluşturmak için nasıl kullanılabileceğini de anlatıyoruz. Bu yaklaşım daha sonra birkaç oturum boyunca tekrarlanan görüntüleme için kullanılabilir. Bu tekniğin önemi, bu nedenle, düzenleme, morfoloji ve farklı hücresel türlerin etkileşimleri de dahil olmak üzere beyin elemanlarında uzun vadeli değişiklikler veya durağan görüntü yeteneği yatıyor.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Coverglass (3mm)</td>
			<td>Warner Instruments</td>
			<td>64-0726</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cyanoacrylate glue (Krazy Glue)</td>
			<td>Amazon</td>
			<td>https://www.amazon.com/Krazy-Glue-Original-Purpose-Instant/dp/B07GSF31WZ/ref=sr_1_2?keywords=krazy+glue&#38;qid=1583856837&#38;s=pet-supplies&#38;sr=8-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Demi Ultra LED Curing Light System</td>
			<td>Dental Health Products, Inc</td>
			<td>910860-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental Drill</td>
			<td>Osada: www.osadausa.edu</td>
			<td>EXL-M40</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill Bit</td>
			<td>Fine Science Tools</td>
			<td>#19008-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye Ointment</td>
			<td>Henry Schien</td>
			<td>1338333</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>iBond Total Etch (Primer glue)</td>
			<td>Chase Dental Supply (Heraeus Kulzer)</td>
			<td>66040094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rhodamine B</td>
			<td>Millipore Sigma</td>
			<td>81-88-9 (R6626)</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetris Evoflow glue (Final glue)</td>
			<td>Top Dent (Ivoclar Vivadent)</td>
			<td>#595956</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wahl Brav Mini+</td>
			<td>Amazon</td>
			<td>https://www.amazon.com/Wahl-Professional-Animal-BravMini-41590-0438/dp/B00IN24ILE/ref=asc_df_B00IN24ILE/?tag=hyprod-20&#38;linkCode=df0&#38;hvadid=167141013968&#38;hvpos=&#38;hvnetw=g&#38;hvrand=12368793083893626704&#38;hvpone=&#38;hvptwo=&#38;hvqmt=&#38;hvdev=c&#38;hvdvcmdl=&#38;hvlocint=&#38;hvlocphy=9008337&#38;hvtargid=pla-332197544154&#38;psc=1</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

precise brain mapping to perform repetitive in vivo imaging of neuro-immune dynamics in mice

Merkezi sinir sistemi (CNS) nöronal karmaşık bir etkileşim tarafından düzenlenir, glial, stromal, ve vasküler hücrelerin uygun işlevini kolaylaştırmak. Her ne kadar bu hücreleri in vitro veya birlikte ex vivo izole olarak incelemek yararlı fizyolojik bilgiler sağlar; nöral hücre fizyolojisinin belirgin özellikleri bu bağlamda özlenecektir. Bu nedenle, in vivo ortamda kendi yerli nöral hücrelerin incelenmesi için bir ihtiyaç vardır. Burada ayrıntılı protokol, kemirgen korteksteki nöral hücrelerin in vivo iki foton görüntülemesini, belirli hücreleri saatler ile aylar arasında uzun süreler boyunca görselleştirmek ve incelemek için bir araç olarak tanımlar. Biz ayrıntılı olarak kaba bir harita veya floresan ilgi belirli beyin bölgelerinin ince bir harita olarak dendritler etiketli olarak brüt kararlı beyin vaskülatür kullanımını açıklar. Bu haritaları görsel bir anahtar olarak kullanarak, nöral hücrelerin in vivo görüntülemede sonraki tekrarlayan lar için nasıl tam olarak yer değiştirilebileceğini gösteriyoruz. Floresan etiketli mikroglia, nöronlar ve NG2+ hücrelerin in vivo görüntüleme örneklerini kullanarak, bu protokol bu tekniğin uzun süre boyunca aynı beyin yerinde hücresel dinamiklerin tekrarlayan görselleştirme izin yeteneğini göstermektedir, bu daha fazla normal fizyoloji veya aşağıdaki patolojik hakaret bu hücrelerin yapısal ve fonksiyonel tepkileri anlamada yardımcı olabilir. Gerektiğinde bu yaklaşım, örneğin kalsiyum görüntüleme ile nöral hücrelerin fonksiyonel görüntüleme ile birleştiğinde olabilir. Bu yaklaşım, özellikle genetik fare modelleri veya ilgi hücreleri etiketlemek için farklı floresan etiketleri ile belirli boyalar mevcut olduğunda cns in vivo farklı hücre türleri arasındaki fiziksel etkileşimi görselleştirmek için güçlü bir tekniktir.

In vivo'da mikroglial dinamikleri görselleştirmek için çift transgenik CX3CR1GFP/+:Thy1YFP fareler kullanıldı. Thy1-YFP H hattı, mikroglia (GFP) ve nöronların (YFP) floresan üst üste raşitini önlemek için Thy1-GFP M hattının aksine kullanılır. Alternatif yaklaşımlar, microglia'nın tdTomato ve daha sonra Thy1-GFP M hattı gibi etiketlendiği bir muhabir hattı kullanabilir. H çizgisinin bir dezavantajı YFP etiketlernbir sürü ve etiket artan yaş (kişisel gözlem) ile artar o...

Watch this Scientific Journal Video about Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice at JoVE.com

Precise Brain Mapping to Perform Repetitive In Vivo Imaging of Neuro-Immune Dynamics in Mice

Bu protokol, nöro-glio-vasküler yapıların uzunlamasına görüntülemesi, hem sağlıklı hem de hastalıklı koşullarda fonksiyon ve fonksiyon için kullanılabilecek kronik bir kafatası pencere implantasyon tekniğini açıklamaktadır. Genellikle tercih edilirken bazı kritik sınırlamalara sahip olan transkraniyal görüntüleme yaklaşımına tamamlayıcı bir alternatif olarak hizmet vermektedir.

Farelerde Nöro-İmmün Dinamiğin Vivo Görüntülemesinde Tekrarlayan Performans için Hassas Beyin Haritalaması

The central nervous system (CNS) is regulated by a complex interplay of neuronal, glial, stromal, and vascular cells that facilitate its proper function. ...

Bu protokol, In Vivo İki Foton mikroskopinin uzun süreler boyunca aynı beyin yerinde hücresel dinamiklerin tekrarlayan görselleştirmesi için nasıl kullanılabileceğini göstermektedir. Bu tekniğin avantajı, cns farklı hücre tipi arasındaki düzenleme, morfoloji ve fiziksel etkileşimler de dahil olmak üzere beynin hücresel elemanları, uzun vadeli değişiklikler görüntü mümkün kılar. Bu teknik özellikle hücre-hücre etkileşimleri, hücre dinamikleri ve beyin plastisite sırasında morfolojik değişiklikler ve nörodejenerasyon ortaya çıkarmada yararlı olabilir.Bir çocuk veya genç yetişkin hazırlayarak başlayın, dört ila 10 haftalık, bir CX3CR1 GFP heterozigot fare, bu ağırlığında 17-25 gram, bir kafatası pencere implantasyonu için. Fareyi anestezi ettikten sonra, saç düzeltici kullanarak kafasındaki saçı, kulakların arasında, yaklaşık olarak göz seviyesinden boyun bölgesinin tepesine kadar tıraş edin. Fareyi stereotaktik cerrahi istasyonuna, burun konisine taşıyın ve kulak çubuklarını kullanarak başını stabilize edin.İşlem boyunca fareyi ısıtma yastığında saklar. Her iki gözü yağ merhemiyle yağlayın, sonra 100 mikrolitre %0,25 bupivacaine enjekte edin ve 100 mikrolitre mililitre deksametazon başına dört miligram, subkutan olarak kesi yerinde. Devam etmeden önce en az beş dakika bekleyin.Üç alternatif betadin ve %70 alkol le tıraşlı başı tazmaz. Sonra bir cerrahi bıçak veya makas ile bir orta hat kafa derisi kesi olun. Kafatası bölgesinin arkasından, kulaklar arasında, gözler arasındaki ön bölgeye kadar uzanır.Kafatasını ortaya çıkarmak için kalan deriyi kesin. Kafa derisi ve altta yatan kafatası arasında bulunan bağ dokusunu %3 hidrojen peroksitle tazyir ve stereotaktik koordinatlarla görüntülenecek beyin bölgesini lokalize edin. Bir diş matkap ucu kullanarak kafatasıiçine yaklaşık dört milimetre, dairesel bir delik delin.Delme sırasında, düzenli olarak beyin soğutmak için steril tuzlu ve pamuklu bezler ile kafatası nemlendirilir. Kemik enkazını temizleyin ve kafatası kemiğini yumuşatın. Bittiğinde, dikkatle sivri forceps ile kafatasının bu kısmını çıkarın.Kafatası çıkarıldıktan sonra, dikkatle kraniyotomi tuzlu ile nemlendirilmiş küçük bir kapak cam yerleştirin. Steril bir mendil kullanarak fazla tuzlu eti kurutun. Sivri bir aplikatör kullanarak, pencere nin etrafına siyanoakrilat tutkal uygulayın ve beyin ve kafatası eklemek için izin.Kafatasının geri kalanına astar tutkal uygulayın ve 20 ila 40 saniye boyunca bir kür ışığı ile tedavi. Son tutkal ile pencerenin etrafında bir kuyu oluşturun ve 20 ila 40 saniye boyunca bir kür ışığı ile tedavi. Kafatası üzerine küçük bir kafa plakası tutkal, kontralateral hemisfer üzerinde, kraniyotomi, astar tutkal ile, ve sonra son tutkal ile, 20 ila 40 saniye için her ikisi de kür.Fare uyandıktan sonra, postoperatif analjezi olarak buprenorfin SR bir deri altı doz enjekte, hangi için yeterli olacaktır 72 saat. Sağlıklı bir iyileşme kolaylaştırmak için ekstra tuz gıda ile fare canlandırmak. İmplantasyon ameliyatından iki hafta sonra görüntüleme yapılabilir.Bir ısıtma plakası ile 35 santigrat derecede muhafaza edilmelidir iki foton mikroskop aşamasında baş plaka monte etmek için vida kullanın. Fareye 100 mikrolitre kan damarı boyası enjekte edin, rhodamine B.Gent kranial pencerenin yüzeyini %70 etanolle dabbed pamuklu bir bezle temizleyin. Pencereye birkaç damla su veya tuzlu su koyun ve objektif lensi çözeltiye indirin.Amaç alçaltılırken lazerin kapalı olduğundan emin olun ve mercek ten bakarken ana kan damarı simgelerini göstermek için bir rota haritası çizin. İki fotonlu görüntüleme sırasında belirli bölgeleri tanımlamak için bu çizimi kullanın. İki foton görüntüleme kullanarak floresan hücrelerin ve damarların görüntülerini toplayın.Görüntüleme parametreleri için metin el yazmasına bakın, kesin bölgelerin sonraki bir görüntüleme için tekrar ziyaret edilebilmesini sağlamak için uygun koordinatlarla dikkatli notlar alın. Bu ilk görüntüleme oturumunda birkaç görüş alanı gibi çizin, görüntülemenin sonunda fareyi sahneden alın, anesteziden uyanmasına izin verin ve ev kafesine geri götürün. Sonraki seanslarda alanların yeniden görüntülenmesi için elde edilen notları ve görüntüleri kullanın.Bu protokol, Tayvan YFP-H hat farelerinde Microglial Dynamics In Vivo'da görselleştirmek için kullanılmıştır. Özel dendritler, beyin bölgelerinin ince haritalama için istikrarlı dönüm noktası olarak görev yaptı. Dendritler stabil olmakla birlikte, bazı mikroglialar günlük hareket eder.Tek transgenik CX3CR1/GFP fareler, sekiz haftaya kadar mikroglia takip etmek için kullanıldı. Rhodamine B enjeksiyonları, her görüntüleme seansı sırasında vaskülatür etiketlemek için kullanılmıştır. Vaskülatür stably sabit kalırken, mikroglia dinamiktir.CX3CR1/GFP fareleri, şiddetli nöbetler öncesi ve sonrası mikrogliayı takip etmek için kullanıldı. Vasküler yatak yapısı korundu, ancak mikroglial hücresel ağ ve pozisyon manzara geçici oldu. Nöbetlerden sonraki 24 ila 48 saat içinde daha büyük değişiklikler gözlendi.Çift transgenik CX3CR1/GFP ve NG2DS-Kırmızı fareler, mikroglia izlemek için kullanıldı, ve NG2 pozitif hücrelere In Vivo. Vaskülatür etiketlemeden, mikroglia yanı sıra damar ilişkili parazitler, ve oligodendrosit öncühücreleri, ya da OPCs, tespit edildi. Parazitler vasküler duvar boyunca takip uzun süreçler var, ve OPCs genellikle beyin parankim içinde bulunan büyük hücre organları göstermek, uzak vaskülatür.Rhodamine B kullanıldığında, parazitlerin parlak floresansı, görüntüleme sırasında benzer uyarmalara rağmen, luminal rhodamine'nin sönük floresansından ayırt edilebilir. Günlük görüntüleme parazitlerin stably konumlandırılmış olduğunu gösterdi, OPCs ve mikroglia dinamik iken. Alanın görselleştirildiğine dair dikkatli bir gözlem yapmak, mümkün olduğunca doğru bir temsili harita çizmek ve başlangıç noktasına göre diğer yerlere ulaşmak için atılan adımları belirtmek önemlidir.Sonraki görüntüleme oturumlarında, bu adımlar, elle çizilmiş haritalar ve daha önce çekilen görüntüler, aynı konumların tekrar tekrar tanımlanmasında kritik öneme sahip olacaktır. Bu teknik, araştırmacıların hem sağlık hem de patolojide uzun süreli nöron-glial etkileşimleri, nöro-immün etkileşimleri ve nöro-hücre dinamiklerini açıklığa kavuşturmasına olanak sağlamıştır.

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo

Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo

Lökosit Homing Göç ve non-invaziv Görüntüleme In vivo</em

Two-photon (2P) microscopy is a high resolution imaging technique that has been broadly adapted by biologists.  The value of 2P microscopy is that it ...

An Orthotopic Model of Serous Ovarian Cancer in Immunocompetent Mice for in vivo Tumor Imaging and Monitoring of Tumor Immune Responses

An Orthotopic Model of Serous Ovarian Cancer in Immunocompetent Mice for in vivo Tumor Imaging and Monitoring of Tumor Immune Responses

Immünkompetan Fare Seröz Yumurtalık Kanseri bir Ortotopik Model In vivo</emTümör Bağışıklık Yanıtları> Tümör Görüntüleme ve İzleme

Background: Ovarian cancer is generally diagnosed at an advanced stage where the case/fatality ratio is high and thus remains the most lethal of all ...

Bioluminescent Bacterial Imaging In Vivo

Bioluminescent Bacterial Imaging In Vivo

Bioluminescent Bakteriyel Görüntüleme<em&gt; In Vivo</em

This video describes the use of whole body bioluminesce imaging (BLI) for the study of bacterial trafficking in live mice, with an emphasis on the use of ...

4D Multimodality Imaging of Citrobacter rodentium Infections in Mice

4D Multimodality Imaging of Citrobacter rodentium Infections in Mice

4D modelli Görüntüleme<em&gt; Citrobacter rodentium</emFarelerde&gt; Enfeksiyonlar

This protocol outlines the steps required to  longitudinally monitor a bioluminescent bacterial infection using composite 3D diffuse light imaging ...

In vivo Imaging Method to Distinguish Acute and Chronic Inflammation

In vivo Imaging Method to Distinguish Acute and Chronic Inflammation

In vivo Görüntüleme Yöntemi Akut ve Kronik İltihap ayırt

Inflammation is a fundamental aspect of many human diseases. In this video report, we demonstrate non-invasive bioluminescence imaging techniques that ...

Using Fluorescent Proteins to Visualize and Quantitate Chlamydia Vacuole Growth Dynamics in Living Cells

Using Fluorescent Proteins to Visualize and Quantitate Chlamydia Vacuole Growth Dynamics in Living Cells

Görselleştirme ve Miktarının Belirlenmesi için floresan proteinleri kullanarak<em&gt; Chlamydia</em&gt; Vakuol Büyüme Dinamikleri Yaşayan Hücrelerde

The obligate intracellular bacterium Chlamydia elicits a great burden on global public health. C.&#160;trachomatis is the leading bacterial cause of ...

Detecting Glycogen in Peripheral Blood Mononuclear Cells with Periodic Acid Schiff Staining

Periyodik Asit Schiff Boyama ile periferik kan mononükleer hücreleri glikojen algılama

Periodic acid Schiff (PAS) staining is an immunohistochemical technique used on muscle biopsies and as a diagnostic tool for blood samples. ...

Neutrophil Isolation and Analysis to Determine their Role in Lymphoma Cell Sensitivity to Therapeutic Agents

Nötrofil İzolasyon ve Analiz Terapötik Ajanların için Lenfoma Hücre Duyarlılık kendi Rolü belirleme

Neutrophils are the most abundant (40% to 75%) type of white blood cells and among the first inflammatory cells to migrate towards the site of ...

Non-invasive In Vivo Fluorescence Optical Imaging of Inflammatory MMP Activity Using an Activatable Fluorescent Imaging Agent

Non-invasive In Vivo Fluorescence Optical Imaging of Inflammatory MMP Activity Using an Activatable Fluorescent Imaging Agent

Non-invaziv<emIn vivo</em&gt; Aktive Edilebilir Floresan Görüntüleme Ajanını Kullanan İnflamatuvar MMP Aktivitesinin Flüoresan Optik Görüntülemesi

This paper describes a non-invasive method for imaging matrix metalloproteinases (MMP)-activity by an activatable fluorescent probe, via in vivo ...

Long-term In Vivo Tracking of Inflammatory Cell Dynamics Within Drosophila Pupae

Long-term In Vivo Tracking of Inflammatory Cell Dynamics Within Drosophila Pupae

İnflamatuar hücre dinamiği Drosophila pupa içinde uzun vadeli Vivo içinde izleme

During the rapid inflammatory response to tissue damage, cells of the innate immune system are quickly recruited to the injury site. Once at the wound, ...