Name: minimum volume vitrification of immature feline oocytes
Uploaded: 2020-06-24T15:00:00
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Este trabalho foi parcialmente apoiado pela EVSSAR (European Veterinary Society for Small Animal Reproduction) Grant 2016 e pela Università degli Studi di Milano, Piano di Sostegno alla Ricerca 2019 (Linea 2 Azione A). Também queremos agradecer à Dra.

Os procedimentos por este meio descritos não passaram por aprovação ética, uma vez que os ovários dos gatos foram coletados em clínicas veterinárias como subprodutos da ovariectomia de rotina ou ovariohisterectomia solicitada pelo proprietário.
1. Coleção Oócito
<ol><li>Antes de iniciar os experimentos, prepare soluções para coleta de ovário e oócito. Prepare a solução de coleta de ovário com soro fisiológico tamponado de fosfato (PBS) com uma mistura de antibióticos e an...

<ol>
	<li>Bankowski, B., Lyerly, A., Faden, R., Wallach, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+social+implications+of+embryo+cryopreservation.">The social implications of embryo cryopreservation.</a> Fertility and Sterility. 84 (4), 823-832 (2005).</li><li>Saragusty, J., Arav, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+progress+in+oocyte+and+embryo+cryopreservation+by+slow+freezing+and+vitrification.">Current progress in oocyte and embryo cryopreservation by slow freezing and vitrification.</a> Reproduction. 141 (1), 1-19 (2011).</li><li>Luvoni, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gamete+cryopreservation+in+the+domestic+cat.">Gamete cryopreservation in the domestic cat.</a> Theriogenology. 66 (1), 101-111 (2006).</li><li>Thongphakdee, A., Tipkantha, W., Punkong, C., Chatdarong, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monitoring+and+controlling+ovarian+activity+in+wild+felids.">Monitoring and controlling ovarian activity in wild felids.</a> Theriogenology. 109, 14-21 (2018).</li><li>Parks, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermia+and+mammalian+gametes.">Hypothermia and mammalian gametes.</a> Reproductive Tissue Banking. , 229-261 (1997).</li><li>Carabatsos, M. J., Sellitto, C., Goodenough, D. A., Albertini, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oocyte-granulosa+cell+heterologous+gap+junctions+are+required+for+the+coordination+of+nuclear+and+cytoplasmic+meiotic+competence.">Oocyte-granulosa cell heterologous gap junctions are required for the coordination of nuclear and cytoplasmic meiotic competence.</a> Developmental Biology. 226 (2), 167-179 (2000).</li><li>Murakami, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blastocysts+derived+from+in+vitro-fertilized+cat+oocytes+after+vitrification+and+dilution+with+sucrose.">Blastocysts derived from in vitro-fertilized cat oocytes after vitrification and dilution with sucrose.</a> Cryobiology. 48 (3), 341-348 (2004).</li><li>Merlo, B., Iacono, E., Regazzini, M., Zambelli, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cat+blastocysts+produced+in+vitro+from+oocytes+vitrified+using+the+cryoloop+technique+and+cryopreserved+electroejaculated+semen.">Cat blastocysts produced in vitro from oocytes vitrified using the cryoloop technique and cryopreserved electroejaculated semen.</a> Theriogenology. 70 (1), 126-130 (2008).</li><li>Luciano, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+different+cryopreservation+protocols+on+cytoskeleton+and+gap+junction+mediated+communication+integrity+in+feline+germinal+vesicle+stage+oocytes.">Effect of different cryopreservation protocols on cytoskeleton and gap junction mediated communication integrity in feline germinal vesicle stage oocytes.</a> Cryobiology. 59 (1), 90-95 (2009).</li><li>Comizzoli, P., Wildt, D. E., Pukazhenthi, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+compaction+of+germinal+vesicle+chromatin+is+beneficial+to+survival+of+vitrified+cat+oocytes.">In vitro compaction of germinal vesicle chromatin is beneficial to survival of vitrified cat oocytes.</a> Reproduction in Domestic Animals. 44, 269-274 (2009).</li><li>Alves, A. E., Kozel, A. C., Luvoni, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vitrification+with+DAP+213+and+Cryotop+of+ex+situ+and+in+situ+feline+cumulus-oocyte+complexes.">Vitrification with DAP 213 and Cryotop of ex situ and in situ feline cumulus-oocyte complexes.</a> Reproduction in Domestic Animals. 47 (6), 1003-1008 (2012).</li><li>Kuwayama, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Highly+efficient+vitrification+for+cryopreservation+of+human+oocytes+and+embryos:+The+Cryotop+method.">Highly efficient vitrification for cryopreservation of human oocytes and embryos: The Cryotop method.</a> Theriogenology. 67 (1), 73 (2007).</li><li>Pope, C. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+survival+of+domestic+cat+oocytes+after+vitrification,+intracytoplasmic+sperm+injection+and+embryo+transfer.">In vivo survival of domestic cat oocytes after vitrification, intracytoplasmic sperm injection and embryo transfer.</a> Theriogenology. 77 (3), 531-538 (2012).</li><li>Galiguis, J., G&#243;mez, M. C., Leibo, S. P., Pope, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Birth+of+a+domestic+cat+kitten+produced+by+vitrification+of+lipid+polarized+in+vitro+matured+oocytes.">Birth of a domestic cat kitten produced by vitrification of lipid polarized in vitro matured oocytes.</a> Cryobiology. 68 (3), 459-466 (2014).</li><li>Fernandez-Gonzalez, L., Jewgenow, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cryopreservation+of+feline+oocytes+by+vitrification+using+commercial+kits+and+slush+nitrogen+technique.">Cryopreservation of feline oocytes by vitrification using commercial kits and slush nitrogen technique.</a> Reproduction in Domestic Animals. 52, 230-234 (2017).</li><li>Colombo, M., Morselli, M. G., Tavares, M. R., Apparicio, M., Luvoni, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developmental+competence+of+domestic+cat+vitrified+oocytes+in+3D+enriched+culture+conditions.">Developmental competence of domestic cat vitrified oocytes in 3D enriched culture conditions.</a> Animals. 9 (6), 329 (2019).</li><li>Colombo, M., Morselli, M. G., Apparicio, M., Luvoni, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Granulosa+cells+in+three-dimensional+culture:+A+follicle-like+structure+for+domestic+cat+vitrified+oocytes.">Granulosa cells in three-dimensional culture: A follicle-like structure for domestic cat vitrified oocytes.</a> Reproduction in Domestic Animals. , (2020).</li><li>Wood, T. C., Wildt, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+the+quality+of+the+cumulus-oocyte+complex+in+the+domestic+cat+on+the+ability+of+oocytes+to+mature,+fertilize+and+develop+into+blastocysts+in+vitro.">Effect of the quality of the cumulus-oocyte complex in the domestic cat on the ability of oocytes to mature, fertilize and develop into blastocysts in vitro.</a> Journal of Reproduction and Fertility. 110 (2), 355-360 (1997).</li><li>Cobo, A., Kuwayama, M., P&#233;rez, S., Ruiz, A., Pellicer, A., Remoh&#237;, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+concomitant+outcome+achieved+with+fresh+and+cryopreserved+donor+oocytes+vitrified+by+the+Cryotop+method.">Comparison of concomitant outcome achieved with fresh and cryopreserved donor oocytes vitrified by the Cryotop method.</a> Fertility and Sterility. 89 (6), 1657-1664 (2008).</li><li>Mullen, S. F., Critser, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+science+of+cryobiology.">The science of cryobiology.</a> Oncofertility - Fertility preservation for Cancer Survivors. , 83-109 (2007).</li><li>Fahy, G. M., Wowk, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Principles+of+cryopreservation+by+vitrification.">Principles of cryopreservation by vitrification.</a> Methods in Molecular Biology. 1257, 21-82 (2015).</li><li>Apparicio, M., Ruggeri, E., Luvoni, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vitrification+of+immature+feline+oocytes+with+a+commercial+kit+for+bovine+embryo+vitrification.">Vitrification of immature feline oocytes with a commercial kit for bovine embryo vitrification.</a> Reproduction in Domestic Animals. 48 (2), 240-244 (2013).</li><li>Brambillasca, F., Guglielmo, M. C., Coticchio, G., Mignini Renzini, M., Dal Canto, M., Fadini, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+current+challenges+to+efficient+immature+oocyte+cryopreservation.">The current challenges to efficient immature oocyte cryopreservation.</a> Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 30 (12), 1531-1539 (2013).</li><li>Moussa, M., Shu, J., Zhang, X., Zeng, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cryopreservation+of+mammalian+oocytes+and+embryos:+current+problems+and+future+perspectives.">Cryopreservation of mammalian oocytes and embryos: current problems and future perspectives.</a> Science China Life Sciences. 57 (9), 903-914 (2014).</li><li>Luvoni, G., Pellizzari, P., Battocchio, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+slow+and+ultrarapid+freezing+on+morphology+and+resumption+of+meiosis+in+immature+cat+oocytes.">Effects of slow and ultrarapid freezing on morphology and resumption of meiosis in immature cat oocytes.</a> Journal of Reproduction and Fertility. Supplement. 51, 93-98 (1997).</li><li>Calvo, J. J., Robert, D., Viqueira, M., Lombide, P., Calvo, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vitrified+and+in+vitro+matured+oocytes+viability+from+adult+housecat+(Felis+catus)+in+reproductive+season.">Vitrified and in vitro matured oocytes viability from adult housecat (Felis catus) in reproductive season.</a> International Journal of Morphology. 33 (4), (2015).</li><li>Nowak, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+viability+of+Serval+(Leptailurus+serval)+and+Pallas+Cat+(Felis+manul)+oocytes+after+cryopreservation+using+the+Rapid-I+Method.">The viability of Serval (Leptailurus serval) and Pallas Cat (Felis manul) oocytes after cryopreservation using the Rapid-I Method.</a> Cryo Letters. 40 (4), 226-230 (2019).</li></ol>

A criopreservação de oócito é uma técnica crucial de conservação do germoplasma, especialmente em taxas onde muitas espécies estão ameaçadas de extinção, como a família Felidae. Neste manuscrito, foi apresentado um protocolo simples e amigável para a vitrificação de oócitos imaturos de gatos. Os meios de comunicação laboratoriais, suportes mínimos de vitrificação de volume e pessoal treinado são os fatores-chave para o sucesso deste método, o que permite a obtenção de oócitos viáveis de forma ...

A criopreservação tornou-se um passo fundamental das técnicas de reprodução assistida (ARTs). Em humanos, permite a preservação da fertilidade ou adiamento da paternidade por razões médicas ou pessoais. Em animais, é necessário superar a distância e o tempo em acasalamentos planejados, especialmente em animais de fazenda e animais de estimação, ou preservar material genético de indivíduos valiosos em programas de conservação, particularmente em espécies selvagens ameaçadas de extinção. A criopreservação gamete é a melhor escolha quando os indivíduos a serem criados ainda não foram escolhidos ou a fim de evitar questões éticas associadas ao congelamento de embriões, especialmente na medicina humana1. Espermatozoides são relativamente fáceis de preservar e dar resultados satisfatórios após o descongelamento, mas os oócitos, devido às suas características estruturais, podem ser mais complexos de armazenar. De fato, a baixa relação superfície/volume, bem como a presença da zona pellucida em torno do ooplasma, limita o movimento dos crioprotetores e da água através da célula2. Além disso, em animais domésticos, incluindo felídeos, eles são caracterizados por um citoplasma rico em lipídios, que é pensado para torná-los mais sensíveis à criopreservação3.
A maioria dos felídeos estão ameaçados, e o gato doméstico é usado como modelo para desenvolver protocolos de preservação de germoplasma graças à disponibilidade de gôndas da ovariectomia de rotina. Em animais selvagens, as gônadas podem ser obtidas após cirurgias eletivas ou (mais frequentemente) pós-mortem, e gametas imaturos (vesícula germinal) podem ser recuperados. A estimulação hormonal destinada à obtenção de oócitos maduros (metafase II) não é tão comum quanto nos ARTs humanos devido às questões éticas e à resposta específica da espécie e individual aos tratamentos4.
Portanto, o desenvolvimento de estratégias de criopreservação tem focado em gametas imaturos, que geralmente podem ser recuperados após a morte inesperada ou súbita de indivíduos raros. Do ponto de vista biológico, há algumas diferenças na criopreservação de gametas imaturos ou maduros, cada um tendo suas vantagens. Em primeiro lugar, o DNA é mais protegido em oócitos imaturos, cuja vesícula germinal contém cromossomos cercados por uma membrana nuclear, enquanto o fuso meiotic de oócitos metafase II poderia ser mais vulnerável aos crioinjuutos5. Em segundo lugar, os danos causados pelo citoesqueleto induzido a frio podem afetar a rotação do fuso, extrusão do corpo polar, migração pronuclear e citocinese, que podem ter diferentes impactos de acordo com a fase de desenvolvimento do oócito, influenciando a progressão da meiose ou eventos pós-fertilização. Finalmente, e talvez o mais importante, enquanto os oócitos maduros estão prontos para serem fertilizados, os gametas imaturos contam com o apoio das células cumulus circundantes para passar pela maturação nuclear e citoplasmática6, e esta é a razão pela qual todos os complexos cumulus-oócitos (COCs) são criopreservados. No entanto, a perda de células cumulus e/ou a perda de conexão funcional entre o gamete e as células somáticas circundantes são provavelmente o efeito mais prejudicial da criopreservação de COCs imaturos.
Entre as técnicas de criopreservação, a vitrificação é uma que pode ser aplicada mais facilmente em condições de campo. Em comparação com o congelamento lento (ou taxa controlada), a vitrificação é mais rápida e não requer equipamentos específicos, como um freezer programável. Para satisfazer os três princípios fundamentais da vitrificação (ou seja, alta viscosidade, ligada à alta concentração crioprotetora, pequenos volumes e diminuição da temperatura ultrarrápida), vários meios de comunicação e suportes têm sido desenvolvidos e usados especialmente em gatos para oócitos imaturos e maduros. Começando com canudossimples 7, os dispositivos foram então desenvolvidos para atingir a meta de "volume mínimo". Cryoloop8, canudos abertos puxados (OPS)9,calhas plásticas (palha modificada)10 e criotubos11 foram utilizados, até que um dispositivo mais eficiente (ou seja, Cryotop) foi empregado11, melhorando a sobrevivência e a retomada da meiase. Cryotop (Figura Suplementar 1) é um suporte comercialmente disponível que se tornou o sistema aberto eletivo para vitrificação. Desenvolvido para a vitrificação de oócitos e embriões humanos, consiste em uma pequena tira de filme presa a um suporte plástico duro, protegido por uma tampa de tubo de plástico durante o armazenamento12. Graças à sua usabilidade e à redução extrema do volume de vitrificação (apenas 0,1 μL), o que também leva a taxas de resfriamento e aquecimento extremamente rápidas, esse suporte de vitrificação tem sido cada vez mais aplicado em várias espécies, incluindo o gato doméstico, no qual tem sido usado com uma variedade de mídia13,14,,15,,16,,17.
O objetivo deste manuscrito é descrever um protocolo de coleta-vitrificação-aquecimento, com pequenas modificações daquela originalmente desenvolvida para oócitos humanos, que emprega mídias de laboratório e suportes comerciais para vitrificação de volume mínimo e pode ser facilmente aplicada em condições de campo para a criopreservação de COCs felinos imaturos.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Amphotericin B</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A2942</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Automatic pipettes &#38; tips</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>Needed to pipette 20, 100, 240 and 300 &#181;L</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical scalpels</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>Size 10 is usually ok</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bunsen beak</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Clamps</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>Some small (Mosquito clamp) for ovary isolation, some bigger (Klemmer clamp) to work in liquid nitrogen</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cryotop</td>
			<td>Kitazato (distributor: MBT - Medical Biological Technologies)</td>
			<td>01.CR</td>
			<td>Distributors and catalog number may change in different countries</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dimethyl sulfoxide (DMSO)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D2650</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethylene glycol (EG)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>E9129</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>F9665</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass Pasteur pipettes</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>Advised lenght 230 mm (100+130)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gobelets</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>According to the canisters of the storage tank</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating stage</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>All heating stages are ok, as long as they can keep 38&#186;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liquid nitrogen</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medium 199</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M4530</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate-buffered saline (PBS)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D8662</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin G sodium</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P3032</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyvinyl alcohol (PVA)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P8136</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Repro plate</td>
			<td>Kitazato (distributor: MBT - Medical Biological Technologies)</td>
			<td>01.K-2</td>
			<td>Distributors and catalog number may change in different countries</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereomicroscope</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>As long as the operator can select the oocytes, other stereomicroscopes are ok</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Storage tank</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>Any regularly filled tank is ok</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Streptomycin sulphate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S9137</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Styrofoam/nitrogen resistant box</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>All boxes which can contain liquid nitrogen are ok, as long as the operator is comfortable. Kitazato box is called &#34;Cooling Rack&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sucrose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S1888</td>
			<td>/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Timers</td>
			<td>/</td>
			<td>/</td>
			<td>All timers which can be set on times until 9 minutes are ok</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

minimum volume vitrification of immature feline oocytes

Nos programas de conservação de animais silvestres, o gamete banking é crucial para salvaguardar os recursos genéticos de indivíduos valiosos e espécies raras e promover a preservação da biodiversidade. Em felids, a maioria das espécies está ameaçada de extinção, e raças domésticas são usadas como modelo para aumentar a eficiência dos protocolos para o banco de germoplasma. Entre as técnicas de criopreservação oócito, a vitrificação é cada vez mais popular na reprodução assistida humana e veterinária. A vitrificação crioto, que foi inicialmente desenvolvida para oócitos e embriões humanos, demonstrou ser adequada para oócitos de gatos. Este método oferece diversas vantagens, como a viabilidade em condições de campo e a velocidade do procedimento, que pode ser útil quando várias amostras precisam ser processadas. No entanto, a eficiência depende fortemente das habilidades do operador, sendo necessária a padronização intra e interseção de laboratório, bem como o treinamento de pessoal. Este protocolo descreve a vitrificação de volume mínimo de oócitos felinos imaturos em um suporte comercial em um protocolo passo a passo amigável ao campo, da coleta de oócitos ao aquecimento. Seguindo o protocolo, preservação da integridade do oócito e viabilidade no aquecimento (até 90%) pode-se esperar, embora ainda haja espaço para melhorias no amadurecimento pós-aquecimento e resultados de desenvolvimento embrionário.

Seguindo a vitrificação e o aquecimento do oócito do gato de acordo com o presente protocolo (Figura 1 e Figura Suplementar 1), a grande maioria dos gametas sobrevivem. Após a vitrificação, entre outras técnicas, a viabilidade pode ser avaliada no microscópio óptico como integridade morfológica22 ou com o uso de manchas vitais. Um deles é o diacetato/dióceta de fluoresceína/iodeto de propídio (FDA/PI), que permite a identificação de c?...

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Minimum Volume Vitrification of Immature Feline Oocytes

Este manuscrito descreve um protocolo para a vitrificação de volume mínimo de oócitos imaturos de gatos com mídias de laboratório sobre suportes comerciais. Abrange cada passo desde o isolamento oócito desde gônias ex vivo até vitrificação e aquecimento.

Vitrificação de Volume Mínimo de Oócitos Felinos Imaturos

In wild animals&#8217; conservation programs, gamete banking is crucial to safeguard genetic resources of valuable individuals and rare species and to ...

Este protocolo é útil para a conservação a longo prazo dos oócitos felinos através de uma técnica de criopreservação conhecida como vitrificação, que é crucial para a fertilidade e preservação da biodiversidade em espécies animais. As principais vantagens da vitrificação são sua velocidade, uma vez que pode ser concluída em menos de 17 minutos e sua viabilidade em condições de campo se o nitrogênio líquido estiver disponível. O gato doméstico é um modelo viável para felinos selvagens em extinção.O desenvolvimento e otimização dos protocolos de criopreservação permitiria o estabelecimento de biobancos gamete para programas de conservação felina. Comece preparando uma placa de vitrificação Repro com três poços cônicos em uma fileira. Adicione 20 microliters de solução de equilíbrio ao primeiro poço e 300 microliters de solução de vitrificação ao segundo e terceiro poços.Para equilibrar os complexos cumulus oocyte, ou COCs, use uma pipeta de pequeno furo para transferir um ou mais complexos para o fundo do primeiro poço. Adicione lentamente 20 microliters de solução de equilíbrio à borda da queda e espere por três minutos, depois adicione outros 240 microliters de solução de equilíbrio e espere por nove minutos. Enquanto espera, prepare uma caixa com nitrogênio líquido e rotule um suporte de vitrificação com o código de identificação do experimento ou gato.Coloque a caixa e o suporte perto do microscópio estéreo. Após equilibrar os COCs, realize a vitrificação em menos de 90 segundos. Para vitranco os COCs, encha a pipeta de furo pequeno com a solução de vitrificação a partir do segundo poço.Pegue os COCs do fundo do primeiro poço e mova-os para a superfície do segundo poço. Lave a pipeta com a solução de vitrificação, depois mova os COCs para outra área do poço e misture a solução circundante. Encha a pipeta com solução de outra área do poço.Mova os COCs e misture o meio ao seu redor com a pipeta. Repita este processo mais uma vez. Em seguida, lave a pipeta com a solução de vitrificação do terceiro poço e use-a para mover os COCs para o fundo do terceiro poço.Novamente, misture a solução ao redor. Depois de encher a pipeta com solução de outra área do poço, mova os COCs e misture a solução. Repita esse processo.Encha a ponta da pipeta com a solução de vitrificação de outra área do poço e use-a para carregar os COCs na tira do suporte de vitrificação perto da ponta, em seguida, aspire o meio de excesso. Mergulhe imediatamente o suporte de vitrificação em nitrogênio líquido e use grampos para fechá-lo, certificando-se de que ele permaneça imerso. Armazene os suportes de vitrificação carregados em um cálice e mantenha-os em um tanque de nitrogênio líquido de armazenamento até o aquecimento.Coloque o estágio de aquecimento perto do microscópio estéreo e ligue-o a 38 graus Celsius. Aqueça a tampa de uma placa de Petri em cima do palco, em seguida, transfira os suportes de vitrificação do tanque de armazenamento para uma caixa com nitrogênio líquido. Prepare uma linha de uma placa Repro para que cada suporte de vitrificação seja aquecido.Adicione 300 microliters de solução de diluição ao primeiro poço e 300 microliters de solução de lavagem para o segundo e terceiro poços. Retire a solução de descongelamento da incubadora e deixe cair 100 microliters na tampa da placa de Petri. Use os grampos para abrir o suporte de vitrificação dentro do nitrogênio líquido.Coloque a tampa da placa de Petri sob o microscópio estéreo, em seguida, pegue rapidamente o suporte de vitrificação e mergulhe sua tira na gota, movendo-a até que todos os COCs se desprendem. Remova o suporte da queda assim que estiver vazio, mas deixe os COCs na solução de descongelamento por um minuto. Encha uma pipeta com solução de diluição e use-a para mover os COCs da queda da solução de descongelamento para o fundo do primeiro poço com solução de diluição.Deixe os COCs lá por três minutos. Lave a pipeta com a solução de lavagem a partir do segundo poço, depois pegue os COCs e mova-os para o fundo do segundo poço. Espere por cinco minutos.Lave a pipeta com uma solução do terceiro poço e use-a para mover os COCs do segundo poço para a superfície do terceiro poço. Espere os COCs tocarem no fundo do terceiro poço. Em seguida, repita o processo com outra área de poço.Quando terminar, lave a pipeta com meio de cultura e mova os oócitos para um prato de cultura. A grande maioria dos gametas sobrevive após a vitrificação e aquecimento oócito de acordo com este protocolo. Uma imagem representativa de um viável complexo de oócito de gato aquecido viável cumulus oocyte manchado com diacetato de fluoresceína e iodeto de propídio é mostrado aqui.Esta tabela mostra a porcentagem de sobrevivência após a vitrificação, que retrata dados pós-aquecimento de oócitos destinados à maturação in vitro. Dos 435 oócitos, 395 sobreviveram, marcando uma viabilidade global de 90,8% pós-aquecimento. No entanto, algumas alterações morfológicas podem ser notadas após o aquecimento.As anormalidades morfológicas mais frequentes são alterações na forma e granulação do ooplasma, perda parcial ou às vezes total de células cumulus, e fraturas zona pellucida. Ao tentar este procedimento, lembre-se de preparar a mídia com antecedência para que sejam a temperatura certa antes do uso e siga as temperaturas e horários do protocolo para evitar a toxicidade celular. O protocolo também poderia ser aplicado a oócitos de outras espécies.Se for bem-sucedido, isso também pode contribuir para a banca de germinais para a preservação da biodiversidade em felinos ameaçados de extinção.

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Expression of Fluorescent Proteins in Branchiostoma lanceolatum by mRNA Injection into Unfertilized Oocytes

Expression of Fluorescent Proteins in Branchiostoma lanceolatum by mRNA Injection into Unfertilized Oocytes

Expressão de proteínas fluorescentes em<em&gt; Branchiostoma lanceolatum</em&gt; Por injecção de mRNA em oócitos não fertilizados

We report here a robust and efficient protocol for the expression of fluorescent proteins after mRNA injection into unfertilized oocytes of the ...

Biologia do Desenvolvimento

Isolation and Characterization of Mouse Antral Oocytes Based on Nucleolar Chromatin Organization

Isolamento e Caracterização do mouse Antral Oócitos Baseado em Nucleolar organização da cromatina

This protocol describes a simple and quick method to isolate and characterize mouse antral GV (Germinal Vesicle) oocytes as able (SN, Surrounded ...

Modified MicroSecure Vitrification: A Safe, Simple and Highly Effective Cryopreservation Procedure for Human Blastocysts

Modificada Vitrificação MicroSecure: Um Altamente procedimento seguro, simples e eficaz para Criopreservação blastócitos humanos

Clinical embryo vitrification evolved with the development of unique vitrification devices in the 21st century and with the misconception that ultra-rapid ...

Analysis of Chromosome Segregation, Histone Acetylation, and Spindle Morphology in Horse Oocytes

Análise da segregação cromossômica, acetilação de histona e morfologia do fuso em ovócitos de cavalo

The field of assisted reproduction has been developed to treat infertility in women, companion animals, and endangered species. In the horse, assisted ...

Generation of Genetically Modified Mice through the Microinjection of Oocytes

Geração de ratos geneticamente modificados através da microinjecção de oócitos

The use of genetically modified mice has significantly contributed to studies on both physiological and pathological in vivo processes. The pronuclear ...

A Neural Network-Based Identification of Developmentally Competent or Incompetent Mouse Fully-Grown Oocytes

Uma identificação baseado em Rede Neural de ovócitos já crescido mentalmente competente ou incompetente do Mouse

Infertility clinics would benefit from the ability to select developmentally competent vs. incompetent oocytes using non-invasive procedures, thus ...

Minimally Invasive Embryo Transfer and Embryo Vitrification at the Optimal Embryo Stage in Rabbit Model

Transferência de embriões minimamente invasivos e vitrificação embrionária na fase de embrião ideal em modelo de coelho

Assisted reproductive techniques (ARTs), such as in vitro embryo culture or embryo cryopreservation, affect natural development patterns with perinatal ...

Human Blastocyst Biopsy and Vitrification

Biópsia e vitrificação humana do Blastocyst

Blastocyst biopsy is performed to obtain a reliable genetic diagnosis during IVF cycles with preimplantation genetic testing. Then, the ideal workflow ...

In Vitro Culture Strategy for Oocytes from Early Antral Follicle in Cattle

Estratégia de Cultura In Vitro para Oócitos do Folículo Antral Primitivo em Bovinos

The limited reserve of mature, fertilizable oocytes represents a major barrier for the success of assisted reproduction in mammals. Considering that ...

Separation of Follicular Cells and Oocytes in Ovarian Follicles of Zebrafish

Separação de células foliculares e oócitos em folículos ovarianos de zebrafish

Zebrafish has become an ideal model to study the ovarian development of vertebrates. The follicle is the basic unit of the ovary, which consists of ...