Name: dry root rot disease assays in chickpea: a detailed methodology
Uploaded: 2021-01-17T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Dry Root Rot Disease Assays in Chickpea: a Detailed Methodology at JoVE.com

Les projets du laboratoire M.S.K sont appuyés par le financement de base du National Institute of Plant Genome Research. VI reconnaît DBT- FRJ (DBT/2015/NIPGR/430). Nous remercions les étudiants stagiaires, Mlle Rishika, M. Jayachendrayan et Mlle Durgadevi pour leur aide technique pendant le tournage vidéo, ainsi que M. Sandeep Dixit, Mlle Anjali et le Dr Avanish Rai pour avoir évalué de façon critique les données brutes et les fichiers manuscrits. Nous remercions M. Rahim H Tarafdar et M. Sunder Solanki pour leur aide dans le laboratoire. Nous reconnaissons le DBT-eLibrary Consortium (DeLCON) et la Bibliothèque NIPGR pour avoir fourni l’accès aux ressources électroniques et à l’installation de croissance des plantes NIPGR pour le soutien et l’espace de croissance des plantes.

1. Isolement de R. bataticola et stockage
<ol><li>Détails du génotype de pois chiches et des symptômes du DRR<ol>
<li>Utilisez des plants de pois chiches (génotype, JG 62) qui présentent généralement des symptômes typiques de DRR, tels que la racine primaire sèche et cassante sans racines latérales et microscléotie sous l’écorce et à l’intérieur du pith1,3.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Collecte et lavage<ol>
<li>Plantes déracinées présen...

<ol>
	<li>Sharma, M., Ghosh, R., Pande, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dry+root+rot+(Rhizoctonia+bataticola+(Taub.)+Butler):+an+emerging+disease+of+chickpea+-+where+do+we+stand.">Dry root rot (Rhizoctonia bataticola (Taub.) Butler): an emerging disease of chickpea - where do we stand.</a> Archives of Phytopathology and Plant Protection. 48 (13-16), 797-812 (2015).</li><li>Sinha, R., Irulappan, V., Mohan-Raju, B., Suganthi, A., Senthil-Kumar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+drought+stress+on+simultaneously+occurring+pathogen+infection+in+field-grown+chickpea.">Impact of drought stress on simultaneously occurring pathogen infection in field-grown chickpea.</a> Scientific Reports. 9 (1), (2019).</li><li>Nene, Y., Haware, M., Reddy, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chickpea+diseases:+resistance+screening+techniques,+information+bulletins+No.+10.+Patancheru.">Chickpea diseases: resistance screening techniques, information bulletins No. 10. Patancheru.</a> Information Bulletin No. 10. Patancheru, A.P., India: International CroDS Research Institute for the Semi-Arid Tropics. , 1-10 (1981).</li><li>Pande, S., Krishna Kishore, G., Upadhyaya, H. D., Narayana Rao, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+sources+of+multiple+disease+resistance+in+mini-core+collection+of+chickpea.">Identification of sources of multiple disease resistance in mini-core collection of chickpea.</a> Plant Disease. , (2006).</li><li>Pandey, P., Irulappan, V., Bagavathiannan, M. V., Senthil-Kumar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+combined+abiotic+and+biotic+stresses+on+plant+growth+and+avenues+for+crop+improvement+by+exploiting+physio-morphological+traits.">Impact of combined abiotic and biotic stresses on plant growth and avenues for crop improvement by exploiting physio-morphological traits.</a> Frontiers in Plant Science. 8, (2017).</li><li>Irulappan, V., Senthil-Kumar, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morpho-physiological+traits+and+molecular+intricacies+associated+with+tolerance+to+combined+drought+and+pathogen+stress+in+plants.">Morpho-physiological traits and molecular intricacies associated with tolerance to combined drought and pathogen stress in plants.</a> Biotechnologies of Crop Improvement, Volume 3: Genomic Approaches. , (2018).</li><li>Jensen, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standard+methods+for+fungal+brood+disease+research.">Standard methods for fungal brood disease research.</a> Journal of Apicultural Research. 52 (1), 1-39 (2013).</li><li>Agrios, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Plant Pathology: Fifth Edition. , 9780080473 (2004).</li><li>Coley-Smith, J. R., Cooke, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Survival+and+germination+of+fungal+sclerotia.">Survival and germination of fungal sclerotia.</a> Annual Review of Phytopathology. , (1971).</li><li>Nagamma, G., Saifulla, M., Sab, J., Pavitra, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Screening of chickpea genotypes against dry root rot caused by Macrophomina phaseolina (tassi) goid. 10 (4), 1795-1800 (2015).</li><li>Infantino, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Screening+techniques+and+sources+of+resistance+to+root+diseases+in+cool+season+food+legumes.">Screening techniques and sources of resistance to root diseases in cool season food legumes.</a> Euphytica. 147 (1-2), 201-221 (2006).</li><li>Khaliq, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrated+control+of+dry+root+rot+of+chickpea+caused+by+Rhizoctonia+bataticola+under+the+natural+field+condition.">Integrated control of dry root rot of chickpea caused by Rhizoctonia bataticola under the natural field condition.</a> Biotechnology Reports. 25, 00423 (2020).</li></ol>

La technique du papier buvard offre une approche simple pour dépister les génotypes de pois chiches dans des conditions de laboratoire. L’inoculation dip permet l’étude de l’interaction sur une base temporelle avec un contrôle facile sur la charge inoculum (Figure supplémentaire 1) et facilite le dépistage in vitro. En outre, même les jeunes semis peuvent être utilisés. La culture fongique de cinq jours (figure 1B) peut produire suffisamment d’inoculum pour ...

La pourriture sèche des racines (DRR) est l’une des maladies économiquement significatives chez les poischiches 1,2. Il s’agit d’une maladie spécifique aux racines causée par Rhizoctonia bataticola (télomorphe, Macrophomina phaseolina). Les plantes infectées n’ont pas de racines latérales et possèdent des taproots cassants et un feuillagejaune 1,3. DRR sous le stress de sécheresse a été rapporté pour être une menace émergente pour la culture de poischiches 1,2,3. En outre, l’incidence du DRR serait aggravée par le stress dû à la sécheresse sur leterrain 1,2,3. Le DRR est plus répandu dans les zones plu pleuvoir que dans les champs irrigués4. L’utilisation de variétés résistantes est le moyen de surmonter la maladie et de contourner l’utilisation de fongicides1,13. Étant donné que le germplasme de pois chiches disponible dans le monde entier abrite des variations génétiques pour le caractère5,le dépistage et l’identification des génotypes résistants/sensibles sont essentiels à la sélection moléculaire pour l’amélioration des cultures.
Des analyses robustes, faciles et rentables de la maladie sont essentielles pour étudier les modèles d’infection à R. bataticola chez les pois chiches. L’analyse primaire de la maladie utilisée pour observer la réponse des génotypes de pois chiches à l’infection à R. bataticola est la technique du papier buvard1,4. Il s’agit d’une technique simple qui peut être exécutée à l’aide d’inoculum fongique liquide, de semis aux racines et de papier buvard stérile. Cependant, cette technique n’a pas été utilisée à son maximum parce qu’aucun protocole étape par étape n’est disponible dans la littérature.
Pendant ce temps, la technique du pot malade implique la préparation d’une culture malade potentielle et l’imposition du stress dû à la sécheresse. Étant donné que le stress dû à la sécheresse aggrave l’incidence de la maladie de DRR3, il est essentiel d’étudier l’interaction plante-pathogène sous le stressdû à la sécheresse 6,7. La technique du pot malade fournit la plate-forme pour une telle étude simultanée, favorisant de meilleures possibilités pour le criblage de germplasme et comprenant la base mécaniste de l’interaction. Les changements pathomorphologiques tels qu’une augmentation de la longueur des racines et la réduction du nombre de racines latérales — inhérentes à la maladie du DRR — peuvent être abordés à l’aide de la technique du potmalade 1,3,7.
Dans ce cas, un protocole détaillé pour le papier buvard et les techniques de pot malade, qui peut être utilisé pour étudier l’interaction entre les pois chiches et R. bataticola et le germplasme de pois chiches, est présenté. Les détails des matériaux utilisés dans l’étude sont donnés dans le Tableau des matériaux.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Fungus- Rhizoctonia bataticola</td>
			<td>Pathogen inoculum</td>
			<td>Indian Type Culture Collection No. 8365</td>
			<td>GenBank: MH509971.1, ITCC 8635 (https://www.iari.res.in/index.php?option=com_content&#38;view=article&#38; id=1251&#38;Itemid=1370)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Soilrite mix</td>
			<td>Soil medium in the lab</td>
			<td>Keltech Energies Limited, Bangalore, India</td>
			<td>http://www.keltechenergies.com/</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Filter paper</td>
			<td>Blotting paper to support the plant growth</td>
			<td>Himedia</td>
			<td>http://himedialabs.com/catalogue/chemical2017/index.html#374</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pot</td>
			<td>Growing plants</td>
			<td>10 and 30 cm size pots</td>
			<td>Routinely used nursery pots, for example, https://dir.indiamart.com/impcat/nursery-pots.html</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potato dextrose agar/broth</td>
			<td>Culture and maintain the fungus</td>
			<td>Cat# 213400, DifcoTM, MD, USA</td>
			<td>https://www.fishersci.com/shop/products/bd-difco-dehydrated-culture-media-potato-dextrose-agar-3/p-4901946</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Incubator</td>
			<td>Culture the fungus</td>
			<td>LOM-150-2, S/N AI13082601-38, MRC, incubator, and shaker</td>
			<td>http://www.mrclab.com/productDetails.aspx?pid=91131</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Growth chamber</td>
			<td>Growing plants in controlled condition</td>
			<td>Model No. A1000, Conviron, Canada</td>
			<td>https://www.conviron.com/products/gen1000-reach-in-plant-growth-chamber</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laminar airflow</td>
			<td>Carrying out aseptic exercises</td>
			<td>Telstar, Bio II advance, Class II cabinet, EN-12469-2000</td>
			<td>https://www.telstar.com/lab-hospitals-equipment/biological-safety-cabinets/bio-ii-advance-plus/, http://www.atlantisindia.co.in/laminar-air-flow.html</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mesh</td>
			<td>Filtering the fungal mycelia</td>
			<td>Nylon mosquito net</td>
			<td>Mesh with 0.6-1 mm diameter pore size</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Autoclave</td>
			<td>Autoclaving media and chickpea seeds</td>
			<td>Autoclave</td>
			<td>http://www.scientificsystems.in/autoclave</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscopes</td>
			<td>Visualizing the infection ang fungal mycelia</td>
			<td>SMZ25 / SMZ18, Research Stereomicroscopes, Leica EZ4 educational stereomicroscope</td>
			<td>https://www.microscope.healthcare.nikon.com/products/stereomicroscopes-macroscopes/smz25-smz18 
			https://www.leica-microsystems.com/products/stereo-microscopes-macroscopes/p/leica-ez4/ 
			https://www.microscopyu.com/museum/eclipse-80i</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weighing balance</td>
			<td>Weighing fungus and chemicals</td>
			<td>Sartorius Electronic Weighing Balance, BSA 4202S-CW</td>
			<td>https://www.sartorius.com/en/products/weighing/laboratory-balances</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>WGA-FITC</td>
			<td>Fungus staining</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>https://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/l4895?lang=en&#38;region=IN</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aniline blue</td>
			<td>Fungus staining</td>
			<td>Himedia</td>
			<td>http://www.himedialabs.com/intl/en/products/Chemicals/Dyes-Indicators-and-Stains/Aniline-blue-Water-soluble-Practical-grade-GRM901</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dry root rot disease assays in chickpea: a detailed methodology

La maladie de la pourriture sèche des racines (DRR) est une menace émergente pour le stress biotique pour la culture des pois chiches dans le monde entier. Elle est causée par un pathogène fongique transmis par le sol, Rhizoctonia bataticola. Dans la littérature, les protocoles complets et détaillés étape par étape sur des analyses de maladie sont clairsemés. Cet article fournit des détails complets sur les étapes impliquées dans la mise en place d’une technique de papier buvard pour le dépistage rapide des génotypes pour la résistance à la DRR. La technique du papier buvard est facile et moins coûteuse. Une autre méthode, basée sur l’approche du pot malade, est un mimétisme de l’infection naturelle et peut être appliquée pour étudier les composants en interaction - plante, agent pathogène et environnement - impliqués dans le triangle de la maladie.
De plus, dans la nature, le DRR se produit principalement dans les zones de culture des pois chiches plu la pluie, où l’humidité du sol recule à mesure que la croissance des cultures progresse. Le stress dû à la sécheresse est connu pour prédisposer les plants de pois chiches à la maladie de DRR. La compréhension pathomorphologique et moléculaire de l’interaction plante-pathogène sous le stress dû à la sécheresse peut ouvrir la voie à l’identification de variétés d’élite résistantes au DRR à partir du bassin de germplasmes de pois chiches. Cet article fournit une méthodologie stepwise pour la préparation d’un pot malade et l’essai suivant de maladie. Dans l’ensemble, l’information présentée ci-après aidera les chercheurs à préparer l’inoculum fongique R. bataticola, à maintenir cet agent pathogène, à mettre en place la technique du papier buvard, à préparer la culture malade et le pot malade, et à évaluer l’infection pathogène chez les plantes de pois chiches.

Cette étude visait à démontrer des techniques telles que le papier buvard et les techniques de pot malade pour faciliter la compréhension pathomorphologique et moléculaire de l’interaction plante-pathogène sous le stress de la sécheresse. Pour ce faire, les plantes présentant des symptômes de DRR1,3,4 ont été recueillies dans un champ de pois chiches, et le champignon a été isolé en utilisant la méthode de point...

Watch this Scientific Journal Video about Dry Root Rot Disease Assays in Chickpea: a Detailed Methodology at JoVE.com

Dry Root Rot Disease Assays in Chickpea: a Detailed Methodology

Cette étude présente des méthodologies pour étudier les mécanismes pathomorphologiques et moléculaires sous-jacents à l’interaction entre le pois chiches etla rhizoctonia bataticola. La méthode du papier buvard est utile pour étudier rapidement les réponses du génotype de pois chiches, tandis que la méthode à base de pot malade peut être utilisée pour imposer simultanément la sécheresse et l’infection à R. bataticola et dépister les génotypes tolérants.

Analyses de la maladie de la pourriture des racines sèches chez les pois chiches : une méthodologie détaillée

Dry root rot (DRR) disease is an emerging biotic stress threat to chickpea cultivation around the world. It is caused by a soil-borne fungal pathogen, ...

L’objectif principal de cette étude est de démontrer une méthodologie détaillée des analyses sèches de la maladie de pourriture des racines, telles que la technique du papier buvard et la technique du pot malade. Ces techniques seront utiles pour étudier l’interaction entre la plante de pois chiches et rhizoctonia bataticola. Comprendre l’interaction des plantes d’herbe à chiches avec l’agent pathogène fongique Rhizoctonia bataticola est d’importance agricole.Pour cela, des analyses polyvalentes et hautement reproductibles sont nécessaires. Ici, deux essais qui sont largement utilisés dans notre laboratoire sont démontrés. L’un d’eux est gonflé à base de papier, et l’autre est malade pot à base d’analyse.Pour exécuter l’analyse de papier buvard, préparer Rhizoctonia bataticola champignon inoculum en s’haussant de la culture oblique à la plaque Petri, puis à la culture liquide. Préparer la pépinière de pois chiches par, semer des graines dans une grande casserole. Déraciner et les mettre dans l’inoculum liquide et les placer sur du papier buvard.Observez les symptômes de la maladie, à savoir la nécrose sur la racine, la pourriture des racines et le jaunissement des feuilles huit jours après l’inoculation. Montré ici est un mot, les étapes dans la technique de papier buvard. Pour exécuter l’analyse de pot malade, inoculer le repas de pois chiches avec le champignon.Après incubation à 30 degrés Celsius pendant 15 jours, la culture malade est obtenue. Ensuite, poudrez-les et mélangez avec le mélange de pot. Semer des graines sur le pot de contrôle et le pot malade.Les jours suivants, observez les symptômes, à savoir la nécrose sur la racine, la pourriture des racines et le jaunissement des feuilles sur les plantes infectées, 10 jours après le semis. Le pot malade peut être mis à l’échelle et peut être utilisé pour des dépistages à grande échelle. Montré ici est un mot d’étapes dans la technique pot malade.Rhizoctonia bataticola est un pathogène en développement. Ce champignon produit de l’hyphae et de la microscléotie, qui agissent comme inuclum primaire pendant l’infection végétale. La culture pure qui s’applique par la méthode isolative est utilisée pour les analyses.Le point clé pour ces analyses réussies est la charge optimale d’inoculum. La démonstration de la technique du papier buvard commence ici. Pour préparer l’inoculum liquide rhizoctonia bataticola, inoculer le bouillon de 500 ml avec le bouchon d’agar fongique de trois jours de culture de plaques fraîches et incuber le flacon dans un incubateur à 28 degrés Celsius pendant cinq jours.Filtrer les mycélies fongiques gris foncé avec la microscléotie. Suspendre dans l’eau autoclavée et retirer les supports. Encore une fois, filtrer le mycélie et enlever l’humidité en séchant les mycélia pendant quelques minutes.Suspendre 100 grammes d’inoculum fongique dans 200 ml d’eau autoclavée dans une bouteille de confiture et mélanger correctement. Développer la pépinière de pois chiches en semant des graines stérilisées de surface en solerant. Déraciner les plantes huit jours après le semis, les laver et les rincer à l’aide d’un RO autoclavé. Prenez un papier buvard et pliez-le une fois et placez-en la moitié sur le plateau.Faites-le mouiller avec de l’eau autoclavée. Prenez les plantes et plongez dans l’inoculum pendant 30 secondes avec des mouvements intermittents de haut en bas. Placez les plantes de manière à ce que les racines soient couvertes à l’intérieur de la feuille et que les fœlias restent à l’extérieur.Pliez l’autre moitié et pliez le papier. Pour le contrôle, tremper les plantes dans de l’eau autoclavée, garder les plateaux dans une chambre de croissance pendant huit jours. Résultats. Observez les symptômes tels que le jaunissement des feuilles, la pourriture des racines, la nécrose de la racine et la réduction du nombre latéral de racines.La démonstration de la technique du pot malade commence ici. Prenez un kilogramme de graines commerciales de pois chiches. Laver les graines avec de l’eau du robinet et laver à nouveau avec l’eau RO.Faire tremper les graines pendant cinq heures. Encore une fois, laver les graines avec de l’eau RO ajouter 300 grammes dans une bouteille de confiture. Autoclavez-les à 121 LVS pendant 15 minutes deux fois en continu.Après refroidissement, transférer la bouteille à travers le flux laminaire. Inoculer les bouteilles avec trois bouchons d’agar fongique d’environ quatre millimètres carrés et bien les secouer pour bien mélanger. Enveloppez les bouteilles et incubez-les dans un incubateur à 30 degrés Celsius pendant 15 jours.Observez pour les bouteilles avec la croissance mycéliale foncée autour des graines de pois chiches et enlevez les graines. Séchez-les à température ambiante et poudrez-les. Mélanger la poudre de rhizoctonia bataticola avec le solorite et les garder à température ambiante pendant cinq jours.La surface stérilise les graines GT62 et les sème à deux centimètres de profondeur. Résultats. Observez la mortalité de 90% dans le pot malade. 10 jours après le semis, observez les symptômes tels que la nécrose des racines et la réduction du nombre de racines latérales et du jaunâtrement des feuilles dans les jours suivants.Pot malade peut être préparé dans le sol du champ ainsi. Sécheresse et infection à rhizoctonia bataticola. Imposer le stress de sécheresse dans le pot malade en retenant l’eau.On y voit les plantes soumises à la lutte, à la sécheresse, à l’agent pathogène et à la sécheresse et au stress pathogène simultanés. Observez pour les symptômes, à savoir, plus de nécrose, pourriture des racines, et la réduction du nombre de racines latérales, et la longueur des racines dans le traitement combiné de stress par rapport au traitement pathogène seulement. Conclusions. La technique du papier blotting peut être effectuée dans des conditions in vitro.La technique du pot malade peut être exécutée dans des conditions In Vivo. Dans les ports malades, le stress abiotique, c’est-à-dire le stress dû à la sécheresse, peut être imposé avec l’infection pathogène. En utilisant ces techniques, on peut étudier le modèle d’infection pathogène.La plupart des changements physiologiques se produisent au cours de l’interaction pois chiches-Rhizoctonia bataticola, et aussi l’écran des génotypes de pois chiches pour la résistance. L’analyse de papier buvard est très utile pour générer des échantillons de qualité pour la microscopie et les études de biologie moléculaire. L’essai de pot malade, qui imite les conditions normales d’infection, est applicable pour le criblage du germplasme de pois chiches.

Research

JoVE Journal

Biology

Protocol for RNAi Assays in Adult Mosquitoes (A. gambiae)

Protocol for RNAi Assays in Adult Mosquitoes A. gambiae

Protocole pour des essais de l&#39;ARNi dans les moustiques adultes (A. gambiae)

Reverse genetic approaches have proven extremely useful for determining  which genes underly resistance to vector pathogens in mosquitoes.  This video ...

Recherche

Biologie

Preparation and Maintenance of Dorsal Root Ganglia Neurons in Compartmented Cultures

Préparation et entretien des neurones ganglions de la racine dorsale dans les cultures à compartiments

Neurons extend axonal processes that are far removed from the cell body to innervate target tissues, where target-derived growth factors are required for ...

Neurocircuit Assays for Seizures in Epilepsy Mutants of Drosophila

Neurocircuit Assays for Seizures in Epilepsy Mutants of Drosophila

Les dosages des Saisies en Neurocircuit Mutants épilepsie du Drosophile</em

Drosophila melanogaster is a useful tool for studying seizure like activity. A variety of mutants in which seizures can be induced through either physical ...

Isolation of Ribosome Bound Nascent Polypeptides in vitro to Identify Translational Pause Sites Along mRNA

Isolation of Ribosome Bound Nascent Polypeptides in vitro to Identify Translational Pause Sites Along mRNA

Isolement du ribosome Bound polypeptides naissants<em&gt; In vitro</em&gt; Pour identifier les sites de pause de translation le long d&#39;ARNm

The rate of translational elongation is non-uniform. mRNA secondary structure, codon usage and mRNA associated proteins may alter ribosome movement on the ...

Using SecM Arrest Sequence as a Tool to Isolate Ribosome Bound Polypeptides

Utilisation de la séquence d&#39;arrêt SecM comme un outil pour isoler les polypeptides Ribosome Bound

Extensive research has provided ample evidences suggesting that protein folding in the cell is a co-translational process1-5. However, the exact pathway ...

Coupled Assays for Monitoring Protein Refolding in Saccharomyces cerevisiae

Coupled Assays for Monitoring Protein Refolding in Saccharomyces cerevisiae

Les analyses couplées pour la surveillance protéines repliement<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Proteostasis, defined as the combined processes of protein folding/biogenesis, refolding/repair, and degradation, is a delicate cellular balance that must ...

Analysis of Skeletal Muscle Defects in Larval Zebrafish by Birefringence and Touch-evoke Escape Response Assays

Zebrafish (Danio rerio) have become a particularly effective tool for modeling human diseases affecting skeletal muscle, including muscular ...

A Fast Air-dry Dropping Chromosome Preparation Method Suitable for FISH in Plants

Un air sec Chromosome Dropping rapide Méthode de préparation adéquate pour les poissons dans les usines

Preparation of chromosome spreads is a prerequisite for the successful performance of fluorescence in situ hybridization (FISH). Preparation of high ...

Lateral Root Inducible System in Arabidopsis and Maize

Lateral Root Inducible System in Arabidopsis and Maize

Lateral système inductible Racine dans<em&gt; Arabidopsis</em&gt; Et de maïs

Lateral root development contributes significantly to the root system, and hence is crucial for plant growth. The study of lateral root initiation is ...

Divergence of Root Microbiota in Different Habitats based on Weighted Correlation Networks

Divergence du microbiote racinaire dans différents habitats sur la base de réseaux de corrélation pondérés

The root microbiome plays an important role in plant growth and environmental adaptation. Network analysis is an important tool for studying communities, ...