Name: a simple dry sectioning method for obtaining whole-seed-sized resin section and its applications
Uploaded: 2021-01-23T13:00:00
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Le financement a été fourni par la National Natural Science Foundation of China (32071927), le Talent Project de l’Université de Yangzhou et le Programme académique prioritaire de développement des établissements d’enseignement supérieur du Jiangsu.

1. Préparation de semences encastrées dans la résine (figure 1)
<ol><li>Fixer six grains matures de maïs dans 10 mL de glutaraldehyde phosphaté à 2,5 % (0,1 M, pH7,2) à 4 °C pendant 48 h. Les chercheurs peuvent choisir d’autres mélanges fixatifs, concentrations fixatives et conditions de fixation en fonction de leurs objectifs de recherche et de leurs types de tissus.</li>
	<li>Sortez les grains et coupez-les longitudilement ou transversalement à l’épaisseur de 2-3 mm à l’aide d’une lame à double f...

<ol>
	<li>Cai, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heterogeneous+structure+and+spatial+distribution+in+endosperm+of+high-amylose+rice+starch+granules+with+different+morphologies.">Heterogeneous structure and spatial distribution in endosperm of high-amylose rice starch granules with different morphologies.</a> Journal of Agricultural and Food Chemistry. 62 (41), 10143-10152 (2014).</li><li>He, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+defective+effect+of+starch+branching+enzyme+IIb+from+weak+to+strong+induces+the+formation+of+biphasic+starch+granules+in+amylose-extender+maize+endosperm.">The defective effect of starch branching enzyme IIb from weak to strong induces the formation of biphasic starch granules in amylose-extender maize endosperm.</a> Plant Molecular Biology. 103 (3), 355-371 (2020).</li><li>Wang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gradually+decreasing+starch+branching+enzyme+expression+is+responsible+for+the+formation+of+heterogeneous+starch+granules.">Gradually decreasing starch branching enzyme expression is responsible for the formation of heterogeneous starch granules.</a> Plant Physiol. 176 (1), 582-595 (2018).</li><li>Chen, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dek35+encodes+a+PPR+protein+that+affects+cis-splicing+of+mitochondrial+nad4+intron+1+and+seed+development+in+maize.">Dek35 encodes a PPR protein that affects cis-splicing of mitochondrial nad4 intron 1 and seed development in maize.</a> Molecular Plant. 10 (3), 427-441 (2017).</li><li>Hu, Z. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Seed+structure+characteristics+to+form+ultrahigh+oil+content+in+rapeseed.">Seed structure characteristics to form ultrahigh oil content in rapeseed.</a> PLoS One. 8 (4), 62099 (2013).</li><li>Huang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maize+VKS1+regulates+mitosis+and+cytokinesis+during+early+endosperm+development.">Maize VKS1 regulates mitosis and cytokinesis during early endosperm development.</a> Plant Cell. 31 (6), 1238-1256 (2019).</li><li>Xu, A., Wei, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comprehensive+comparison+and+applications+of+different+sections+in+investigating+the+microstructure+and+histochemistry+of+cereal+kernels.">Comprehensive comparison and applications of different sections in investigating the microstructure and histochemistry of cereal kernels.</a> Plant Methods. 16, 8 (2020).</li><li>Zhao, L., Pan, T., Cai, C., Wang, J., Wei, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Application+of+whole+sections+of+mature+cereal+seeds+to+visualize+the+morphology+of+endosperm+cell+and+starch+and+the+distribution+of+storage+protein.">Application of whole sections of mature cereal seeds to visualize the morphology of endosperm cell and starch and the distribution of storage protein.</a> Journal of Cereal Science. 71, 19-27 (2016).</li><li>Zhao, L., Cai, C., Wei, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+image+processing+method+for+investigating+the+morphology+of+cereal+endosperm+cells.">An image processing method for investigating the morphology of cereal endosperm cells.</a> Biotech &amp; Histochemistry. 95 (4), 249-261 (2020).</li><li>Borisjuk, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Seed+architecture+shapes+embryo+metabolism+in+oilseed+rape.">Seed architecture shapes embryo metabolism in oilseed rape.</a> The Plant Cell. 25 (5), 1625-1640 (2013).</li><li>Lott, J. N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein+bodies+in+seeds.">Protein bodies in seeds.</a> Nordic Journal of Botany. 1, 421-432 (1981).</li><li>Jing, Y. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+endosperm+cells+and+starch+granules+in+common+wheat.">Development of endosperm cells and starch granules in common wheat.</a> Cereal Research Communications. 42 (3), 514-524 (2014).</li></ol>

Les semences sont la ressource renouvelable la plus importante pour la nourriture, le fourrage et les matières premières industrielles, et sont riches en matériaux de stockage tels que l’amidon et les protéines. La morphologie et la quantité des cellules ainsi que le contenu et la configuration des matériaux de stockage affectent le poids et laqualité des graines 7,12. Bien que la technologie de stéréologie et d’analyse d’image puisse mesurer la ta...

Les graines végétales contiennent des matériaux de stockage tels que l’amidon et les protéines et fournissent de l’énergie et de la nutrition aux gens. La forme, la taille et la quantité de cellules et de matériaux de stockage déterminent le poids et la qualité des semences. Les cellules et les matériaux de stockage dans différentes régions de semences ont des morphologies significativement différentes, en particulier pour certaines cultures céréalières à haute teneur en amylose avec inhibition de l’amidon ramissant enzyme IIb1,2,3. Par conséquent, il est très important d’étudier les morphologies des cellules et des matériaux de stockage dans différentes régions de semences.
La paraffine est une bonne méthode pour préparer la section de la taille d’une graine entière et peut présenter la structure tissulaire des graines et l’accumulation de matériel de stockage dans différentes régionsde semences 4,5,6. Cependant, les sections de paraffine ont habituellement 6-8 μm d’épaisseur avec la basse résolution ; il est donc très difficile d’observer clairement et d’analyser quantitativement la morphologie des cellules et des matériaux de stockage. Les sections de résine ont habituellement 1-2 épaisseur de μm et haute résolution et sont très appropriées pour observer et analyser la morphologie des matériaux de cellule et destockage 7. Toutefois, la méthode de sectionation de résine de routine a de la difficulté à préparer la section de la taille d’une graine entière, en particulier pour les graines à fort volume et à forte teneur en amidon; ainsi, il n’existe aucun moyen d’observer et d’analyser la morphologie des cellules et des matériaux de stockage dans différentes régions de la graine. La résine blanche LR est une résine acrylique qui présente une faible viscosité et une forte perméabilité, ce qui conduit à ses bonnes applications dans la préparation de la section résine des graines, en particulier pour les grains matures céréaliers à fort volume et à forte teneur en amidon. En outre, l’échantillon incorporé dans la résine blanche LR peut être taché facilement avec de nombreux colorants chimiques pour montrer clairement la morphologie des cellules et des matériaux de stockage sous la lumière ou le microscope fluorescent7. Dans notre article précédent, nous avons signalé une méthode de sectionation sèche pour la préparation des sections entières de la taille d’une graine de grains de céréales matures incorporés dans la résine blanche LR. La méthode peut également préparer la section entière de la taille d’une graine de noyau de céréales en développement, germé et cuit8. La section obtenue de la taille d’une graine entière a de nombreuses applications dans l’observation et l’analyse de la micromorphologie, en particulier pour observer clairement et analyser quantitativement les différences de morphologie des cellules et des matériaux de stockage dans différentes régionsde semences 8,9.
Cette technique convient aux chercheurs qui veulent observer la microstructure des tissus et la forme et la taille des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques dans différentes régions de semences à l’aide d’un microscope léger. Les images de sections entières de la taille d’une graine tachées spécifiquement pour l’exposition de cellules, de granules d’amidon et de corps protéiques peuvent être analysées par un logiciel d’analyse morphologique pour mesurer quantitativement les paramètres de morphologie des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques dans différentes régions de semences. Afin de démontrer l’applicabilité technique et les applications de sections de la taille d’une graine entière, nous avons étudié les graines matures de maïs et de colza oléaté et les grains de riz en développement, germés et cuits dans cette étude. Le protocole contient quatre processus. Ici, nous utilisons le noyau de maïs mature, qui est le plus difficile à préparer les sections de la taille d’une graine entière en raison du grand volume et de la teneur élevée en amidon, comme échantillon pour exposer les processus étape par étape.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Acetic acid</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A501931</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Compact glass staining jar (5-Place)</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>E678013</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coomassie brilliant blue R-250</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A100472</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslip</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>F518211</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Double-sided blade</td>
			<td>Gillette Shanghai Co., Ltd.</td>
			<td>74-S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol absolute</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A500737</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flattening table</td>
			<td>Leica</td>
			<td>HI1220</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescence microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>BX60</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescent brightener 28</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>910090</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass strips</td>
			<td>Leica</td>
			<td>840031</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde 50% solution in water</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A600875</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycerol</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A600232</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iodine</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A500538</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A507048</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td>BX53</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LR White resin</td>
			<td>Agar Scientific</td>
			<td>AGR1281A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oven</td>
			<td>Shanghai Jing Hong Laboratory Instrument Co.,Ltd.</td>
			<td>9023A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium iodide</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A100512</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slide</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>F518101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tweezers</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>F519022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium phosphate dibasic dodecahydrate</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A607793</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium phosphate monobasic dihydrate</td>
			<td>Sangon Biotech (Shanghai) Co., Ltd.</td>
			<td>A502805</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultramicrotome</td>
			<td>Leica</td>
			<td>EM UC7</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a simple dry sectioning method for obtaining whole-seed-sized resin section and its applications

La morphologie, la taille et la quantité des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques dans les graines déterminent le poids et la qualité des semences. Ils sont sensiblement différents d’une région à l’autre. Afin de visualiser clairement les morphologies des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques, et d’analyser quantitativement leurs paramètres de morphologie avec précision, la section de la taille d’une graine entière est nécessaire. Bien que la section de paraffine de la taille d’une graine entière puisse étudier l’accumulation de matériaux de stockage dans les graines, il est très difficile d’analyser quantitativement les paramètres de morphologie des cellules et des matériaux de stockage en raison de la faible résolution de la section épaisse. La section résine mince a une haute résolution, mais la méthode de sectionation de résine de routine n’est pas appropriée pour préparer la section entière de graines de la taille d’une graine avec un grand volume et une teneur élevée en amidon. Dans cette étude, nous présentons une méthode simple de sectionation sèche pour préparer la section de résine de la taille d’une graine entière. La technique peut préparer les sections transversales et longitudinales de la taille d’une graine entière de graines en développement, matures, germées et cuites intégrées dans la résine blanche LR, même pour les grosses graines à haute teneur en amidon. La section de la taille d’une graine entière peut être tachée d’un égayer fluorescent 28, d’iode et de Coomassie bleu brillant R250 pour exposer spécifiquement la morphologie des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques clairement, respectivement. L’image obtenue peut également être analysée quantitativement pour montrer les paramètres de morphologie des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques dans différentes régions de semences.

Méthode simple de sectionment sec pour l’obtention d’une section entière de la taille d’une graine Nous établissons une méthode simple de sectionation sèche pour la préparation d’une section entière de graines de la taille d’une graine intégrée dans la résine blanche LR (figure 1). La méthode peut préparer des sections transversales et longitudinales de la taille d’une graine entière d’une épaisseur de 2 μm(figure 2-5,</st...

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A Simple Dry Sectioning Method for Obtaining Whole-Seed-Sized Resin Section and Its Applications

Cette technique permet la préparation rapide et simple de la section de résine de la taille d’une graine entière pour l’observation et l’analyse des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques dans différentes régions de la graine.

Une méthode simple de section à sec pour l’obtention de la section résine de la taille d’une graine entière et de ses applications

The morphology, size and quantity of cells, starch granules&#160;and protein bodies in seed determine the weight and quality of seed. They are ...

La science de la morphologie et la qualité des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques du noyau déterminent le poids et la qualité des graines. Dans cette étude, nous présentons comme une population simple d’un noyau entier incorporé dans la résine blanche LR et établissons une méthode d’aspiration sèche simple des grains entiers. Nous choisissons la résine blanche LR comme support embarqué pour deux raisons majeures.Tout d’abord, il est faible viscosité et forte perméabilité, conduisant à ses bonnes applications dans la préparation de cette puissante section de graines, en particulier pour les grains matures céréaliers avec un grand volume et une teneur élevée en amidon. Deuxièmement, l’échantillon incorporé dans la résine blanche LR peut être taché facilement avec de nombreux colorants chimiques pour montrer clairement la morphologie des échantillons sous la lumière avec microscope fluorescent. Les sections préparées peuvent être spécifiquement tachées pour montrer clairement les cellules, les granules d’amidon et les corps protéiques dans l’émergence du noyau entier, et les paramètres de morphologie peuvent également être analysés quantitativement.La méthode contient des études. Ici, nous utilisons des grains de maïs matures avec un plus grand volume et une teneur élevée en amidon comme échantillon pour montrer les processus étape par étape. Pour commencer, clips grains dans une bouteille simple.Ajouter environ 10 millimètres de glutaraldehyde tamponné au phosphate à 2,5 %. un pH de plus 7,2 et placez-le à 4 degrés centigrades pendant 48 heures pour les fixer tous les deux. Puis sortez ces grains et coupez-les longitudinellement ou transversalement, avec une épaisseur de deux à trois millimètres.Vous avez besoin d’une lame tranchante à double face. Et fixez-les encore 48 heures. Ensuite, lavez vos échantillons trois fois avec environ 10 millimètres, donc tampon de phosphate de 0,1 M, pH 7,2 pendant 30 minutes à chaque fois.Pour hydrater les échantillons étape par étape, trempez-les dans environ 10 millimètres de solution aqueuse à 30% d’éthanol pendant 30 minutes d’abord, et trempez-les successivement dans 10 millimètres, donc 50%70%90% une fois, et 100% trois fois. Pour infiltrer un échantillon étape par étape, récupérez-les successivement avec 10 millimètres de solution de résine blanche LR diluée avec de l’éthanol de 25%50%75% une fois, et 100% deux fois à quatre degrés centigrades pendant 12 heures à chaque fois. Avant d’intégrer, nous devons préparer les piédestaux pour les échantillons.Ajouter 250 microlitres de résine blanche LR pure dans un tube de centrifugeuse de deux millimètres et le polymériser à six degrés centigrades pendant 48 heures. Ensuite, ajoutez successivement 500 microlitres de résine blanche LR pure et infiltrez l’échantillon dans le tube de centrifugeuse avec un piédestal. Après avoir redressé les échantillons avec une aiguille anatomique, mettre la résine à six degrés centigrades dans un four pendant 48 heures.Sortez les grains incorporés du tube de centrifugeuse et découpez l’excès de résine autour d’un échantillon à l’aide d’une lame tranchante. Placez le bloc de résine dans le porte-échantillon de microton et coupez la résine superflue à la surface de l’échantillon et autour de l’échantillon avec la lame. Polir davantage la surface de l’échantillon enfin à l’aide d’un couteau en verre jusqu’à ce qu’une section complète puisse être formée.Maintenant, il est temps de préparer cette section étonnante avec deux microns d’épaisseur. Avant de trancher, mettez un petit cuivre parlé de deux millimètres au-dessus du bord de la lame pour empêcher une section de curling. Au fur et à mesure que la section s’allonge, mettez un porte-parole sous la section pour l’appuyer.Ensuite, ajoutez les 100 microlitres d’eau sur la glissière non prouvée et transférez soigneusement la section complète et ininterrompue à l’eau avec les gâteries. Chauffez-les et séchez-les à 50 degrés centigrades pour lisser la section ridée. Enfin, deux conseils importants ont besoin d’attention.Tout d’abord, si la section s’effrite ou déchire, prolonger le temps pour chaque infiltration de résine de l’échantillon. Deuxièmement, si la section a quelques lignes parallèles au couteau, pincez le bloc d’échantillon étroitement. Si la section a quelques lignes verticales au couteau, s’il vous plaît utiliser un nouveau couteau.Pour observer la morphologie des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques, nous pouvons tacher les sections avec l’éclaircisseur fluorescent 28, la solution d’iode, et coomassie bleu brillant R250 respectivement. Pour d’autres taches spécifiques, basez-la sur la recherche sur la proposition. Ici, nous utilisons la solution d’iode pour tacher les granules d’amidon à titre d’exemple.Ajouter 40 microlitres de solution d’iode pour immerger la section. Et gardez-le dans le bocal pendant une minute. Et ensuite couvrir l’échantillon avec un manchon de couverture.Et effacer la solution agent excédentaire autour d’elle. Observez et photographiez immédiatement l’échantillon sous un microscope allumé équipé d’une caméra de vidéosurveillance. Nous pouvons traiter et analyser quantitativement les images photographiées pour la zone, l’accès long ou court, et la rondeur des cellules, des granules d’amidon, et des corps de protéine dans différentes régions pour le noyau utilisant le logiciel d’analyse de morphologie.Nous établissons une méthode simple de sectionment sec pour retenir des sections entières de taille de noyau dans la résine blanche de LR. La méthode peut préparer des sections transversales et longitudinales de l’ensemble du noyau avec deux microns. ou par exemple, la graine entière mature de colza oléagineux peut être sectionnée transversalement et longitudienment.Les sections d’un noyau entier mature de maïs avec un plus grand volume peuvent également être préparées avec succès. En outre, le noyau en développement, le noyau cuit et le noyau germé peuvent également être étudiés à l’aide de la méthode. Les sections préparées de grains entiers ont les applications ci-dessous.Tout d’abord, les sections du noyau entier peuvent être utilisées pour observer la structure tissulaire des graines. Par exemple, les sections de l’embryon entier de colza oléaillé avec de la safranine peuvent clairement montrer qu’il s’agit d’un radical, hyper occasionnel, intérieur et externe Les sections du noyau entier peuvent être utilisées pour observer et analyser la morphologie des cellules. Par exemple, les sections transversales de l’embryon entier de colza oléagineuse sont tachées d’un égayer fluorescent 28, et les huiles cellulaires sont tachées spécifiquement.La micromorphologie des cellules dans n’importe quelle région de l’embryon entier peut être affichée à un grossissement élevé. Les paramètres de morphologie des cellules parenchymales peuvent être analysés quantitativement à l’aide d’un logiciel d’analyse morphologique et montrer certaines différences dans diverses régions de l’embryon. Les sections transversales du noyau entier de maïs teintées d’égayer fluorescent 28 peuvent également présenter comme morphologie des cellules, et les paramètres de morphologie des cellules sont différents dans diverses régions de l’endosperme.des sections de grains entiers peuvent être tachées de solution d’iode pour montrer sa morphologie des granules d’amidon, par exemple, les sections transversales et longitudinales des grains de maïs tachés d’iode peuvent montrer clairement sa morphologie des granules d’amidon. Les granules d’amidon dans diverses régions montrent la morphologie, la taille, et la quantité sensiblement différentes dans les cellules d’endosperme. Ainsi, l’analyse quantitative des paramètres morphologiques des granules d’amidon montre qu’ils sont significativement différents dans diverses régions pour l’endosperme.Les sections peuvent être utilisées pour observer et analyser la morphologie des corps protéiques. Par exemple, la protéine amidon est teintée de bleu à l’aide de Coomassie bleu brillant R250. La distribution spatiale de protéines d’amidon dans l’embryon entier de colza oléaillé peut être observée dans son grossissement faible, et la micro structure peut être exposée clairement à un grossissement élevé.En outre, l’indice d’erreur de nombres et les paramètres de morphologie des corps protéiques dans les régions choisies peuvent également être analysés quantitativement. Cette technique fournit la première et simple préparation de sections de résine de grains entiers à partir de graines en développement et matures. Les applications sectionnelles dans la structure tissulaire du noyau entier, puis l’étude de la morphologie des cellules, granules d’amidon, et les corps protéiques dans différentes régions d’un noyau entier.Les images acquises peuvent être analysées quantitativement pour montrer les paramètres de morphologie des cellules, des granules d’amidon et des corps protéiques et les comparer davantage dans différentes régions du noyau entier.

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