Name: automated gait analysis to assess functional recovery in rodents with peripheral nerve or spinal cord contusion injury
Uploaded: 2020-10-06T15:00:00
Duration: 6 min 31 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Automated Gait Analysis to Assess Functional Recovery in Rodents with Peripheral Nerve or Spinal Cord Contusion Injury at JoVE.com

ويود المؤلفان أن يشكرا كارين برينر على رعايتها للحيوانات بحماس. كما يود المؤلفان أن يشكرا كلوديا كيبل وجيمس فيرغسون وغابرييل لينفلنر وسوزان دريشلر على مساعدتهم خلال العمليات الجراحية التجريبية.

ويعلن المؤلفان أن هذا العمل كان مدعوما من قبل شركة نولدوس من خلال تغطية رسوم النشر المفتوحة. ولم يحصل أي من أصحاب البلاغ على أي مرتب شخصي أو أي نوع من المكافأة المالية. ولا يملك أصحاب البلاغ أي مصالح متنافسة أخرى يعلنونها.

ولا يزال تقييم الانتعاش الوظيفي في النماذج الحيوانية من PNI وSCI تحديا نظرا لتنوع كبير من أساليب التقييم، ولكل منها مزايا وعيوب فردية. ولم يتم اختبار سوى عدد قليل من الأساليب والتحقق من صحتها في نماذج متعددة من الإصابات العصبية الطرفية والمركزية، على الرغم من أن التقنيات الجديدة الواعدة التي تجمع بين تتبع الحركة والتعلم الآلي قد تدفع البحوث السلوكية العصبية إلى المستوى التالي من الاختبارات الوظيفية. ونحن مقتنعون بأن الأساليب المتطورة التي تنطبق على نطاق واسع على مجموعة واسعة من نماذج الحيوانات والإصابات ستظهر قريبا. في ضوء هذه الاعتبارات، واحدة من مزايا AGA هو إمكانية تقييم الانتعاش الوظيفي في نماذج متعددة من إصابات الأعصاب باستخدام جهاز واحد فقط. منذ أوائل 2000s وقد استخدم هذا النهج في النماذج التجريبية من PNI مثلالوركي 37، peroneal38، وإصابة العصب الفخذي نموذج22 وكذلك بعد avulsion الجذر من كل من39 و 39 زلقة العضدية40. كما تمت دراسة مختلف الإصابات العصبية المركزية بما في ذلك إصابة كدمة الحبل الشوكي مع طريقة41,42. مع هذه الورقة، عرضنا بروتوكولا مفصلا حول كيفية الحث على ثلاث إصابات الأعصاب درس عادة، فضلا عن كيفية تقييم الانتعاش الوظيفي بعد ذلك. في رأينا، من شأن التدريب العملي على المبادئ التوجيهية للباحثين المهتمين في مجال إصابة العصب التجريبية، وإصلاح، وتجديد حول كيفية الاستفادة المثلى من ميزات مفيدة الأسلوب يكون عونا كبيرا.
وقد تناول العديد من المؤلفين إمكانات AGA لتقييم الانتعاش الوظيفي في القوارض، وتسليط الضوء على ميزة الأسلوب لتقييم المعلمات مشية ذات الصلة في وقت واحد 27،28. بالإضافة إلى ذلك، فإن مقارنة البيانات من مخلب تجريبي، على سبيل المثال، إصابة الأعصاب المعاد بناؤها إلى مخلب غير مفتوح كما هو مبين في كل من النماذج المقدمة تسمح بإدراج عنصر تحكم إيجابي داخل الحيوان. عكسيا، مخلب تعمل دون إعادة بناء جراحية أو علاج إضافي يمكن أن تكون بمثابة السيطرة السلبية داخل الحيوان. كما تبين أنه من الممكن الجمع بين AGA مع أساليب التعلم الآلي43. وعلى الرغم من مزايا الأسلوب، فإنه أيضا لديه عدة قيود وعيوب، مثل جهود التدريب التي تستغرق وقتا طويلا، والتي هي إلزامية لتعود على الحيوان إلى إجراءات الاستحواذ28،44. وهناك قيد آخر من الـ AGA هو الحجم الأقصى للحيوانات المؤهلة للاختبار بسبب الأبعاد المحدودة للجهاز. ولذلك، فإن استخدام AGA يقتصر حاليا على الحيوانات حجم القوارض والنامس45. بالإضافة إلى ذلك ، قد تتجاوز نُهج التقييم السلوك العصبي الناشئة مؤخرًا في مجال تتبع الحركة القادرة على التعلم الآلي AGA في كل من الشمولية وكذلك التطبيقات الممكنة18،19،46. الأكثر الجديرة بالملاحظة، ولكن وفقا لأساليب التقييم الأخرى، يبدو أن الانتعاش الوظيفي كما تم تقييمه من قبل AGA محدودة بشدة - حتى إذا كان يحدث - في نماذج العصب الوركي47،48. من ناحية أخرى، يسمح AGA بتقييم شامل لمسار الانتعاش الوظيفي بعد تكوين العصب الفخذي كما هو موضح في بياناتنا. مع هذا العمل، أثبتنا أن منطقة باف الطباعة هي معلمة مشية تمثيلية قابلة للتقييم عبر AGA، والتي تعتبر مثالية لمسار الانتعاش الوظيفي في نموذجين إصابات الأعصاب الطرفية المذكورة أعلاه التي تقدمها لنا. في حين أن الانتعاش الوظيفية ad integrum كان يمكن ملاحظته بعد إصلاح autograft من العصب الفخذي، وكانت لا تزال المعلمات AGA تغيرت بشكل كبير من خط الأساس في نهاية فترة المراقبة بعد إصلاح autograft من العصب الوركي. وتجدر الإشارة في هذا السياق إلى أن انكماش الأطراف ظاهرة شائعة لدى الفئران المصابة بإصابة العصب الوركي والحذر ضروري لعدم الخلط بين علامات الاختلال العضلي والشلل هذه مع التعافى الوظيفي المُستجد32. هذا من ناحية يؤكد عدم قدرة طريقة AGA على اكتشاف الانتعاش الوظيفية كبيرة بعد الإصابة العصبية في هذا النموذج. من ناحية أخرى، فإنه يثير السؤال عما إذا كان من الممكن تقييم نموذج إصابة العصب الوركي من الفئران، والتي لا تزال نموذج إصلاح الأعصاب التجريبية الأكثر استخداما، عن طريق تحليل المشية بشكل عام في حالة إصابة الأعصاب هو أكثر شدة من axonotmesis48. يتم توفير تفاصيل استكشاف الأخطاء وإصلاحها في الملف التكميلي 1.
كما قدمنا بيانات مثالية عن استخدام طريقة تقييم وظيفة الحركي في الفئران المصابة بإصابة الحبل الشوكي، وهو أمر ممكن دون أي تغييرات مطلوبة في إعداد الأجهزة أو إجراء الاستحواذ. نفس المبدأ ينطبق على نماذج أخرى من القوارض من إصابة العصبي المركزي (CNI)26,49,50 وإصابة قاروية الجذر. على النقيض من PNIs المعزولة ، إصابات الحبل الشوكي هي أكثر تعقيدًا في عواقبها الفيزيولوجية ، حيث تضررت العديد من الهياكل المهمة للغاية ، والتي تنطوي على مسارات افيرنت مثل المسالك القشرية و rubrospinal والمسارات الدوارة مثل الأعمدة الظهرية والمسالك spinothalamic35. وينعكس التحدي في تقييم هذه التغيرات المرضية بشكل كاف في التسلح الشامل للاختبارات السلوكية، مثل باسو، بيتي، وبريسناهان (BBB) النتيجة36. وقد تم الإبلاغ عن معلمة مشية قاعدة الدعم لزيادة بعد الإصابات العصبية المركزية، على الأرجح لحساب مشية غير قابلة للانتهاك الناتجة. تم تغيير قاعدة الدعم بشكل كبير من خط الأساس من WPO10 حتى WPO14 في نموذجنا ، مما يدعم افتراضنا بأن هذه المعلمة تسمح بتقييم مسار الانتعاش الوظيفي من قبل AGA بعد إصابة كدمة الحبل الشوكي الصدرية.
نحن مقتنعون بأن AGA هو أداة مجدية لتقييم الانتعاش الوظيفي في القوارض مع إصابات الجهاز العصبي. ومع ذلك، فإننا ننصح أن تعكس التغيرات الملحوظة من مشية بعناية ودقة في كل الإعداد التجريبية المعنية. التعديلات في معلمات المشية، على سبيل المثال، زيادة في منطقة الطباعة بعد تراجع فوري بعد العملية الجراحية أو انخفاض في وقت التأرجح رفع فوري لهذه المعلمة بعد العملية الجراحية، على مدار فترة المراقبة لا تتصل حتما الانتعاش الوظيفي. بدلا من ذلك يمكن أن تكون هذه التغييرات أيضا ذات صلة التكيف الوظيفية المحتملة للحفاظ على مشية غير واضحة، بالنظر إلى أن الفئران هي الأنواع فريسة ومحاولة تجنب إظهار الألم أو العجز إلى الحيوانات المفترسة المحتملة51. ولذلك، فمن المستحسن استخدام تحليل مشية الآلي كأداة تكميلية لربط التغييرات في مشية إلى غيرها من التدابير نتيجة إصابات الأعصاب الطرفية والتجدد21. كما ذكر سابقا، ونحن نعتقد أيضا أنه ينبغي أن تنعكس بعناية إذا القوارض مع العصب الوركي ينبغي التحقيق عن طريق AGA كما تشير النتيجة التي توصلنا إليها بقوة إلى أن الانتعاش الوظيفي محدود بشدة في هذه الحالة.
كما هو موضح في عملنا، الأصول الرئيسية لـ AGA هي إمكانية دراسة كل من إعادة تنشيط المحرك والحسية في العديد من نماذج PNI التجريبية وكذلك CNI مع اشتراط إعداد واحد فقط. ولذلك، فإن هذه الطريقة هي، في رأينا، أداة قيمة للغاية لاختبار السلوك العصبي الشامل. واحدة من الأصول AGA ، وهو إمكانية لدراسة المحرك والحسيس reinnervation في مختلف النماذج الحيوانية من PNI و CNI في حين تتطلب الإعداد واحد فقط ، في رأينا ميزة الطريقة الرئيسية بالمقارنة مع أساليب التقييم الأخرى لدراسة الانتعاش الوظيفية ، مثل المشي تحليلالمسار 52، فون فراي اختبار53، أو مشية kinematics16. إن إمكانية تقييم تغيرات المشية في وقت واحد والتي ترتبط إما بنتائج التحقيقات الفيزيولوجية الكهربائية للعضلات22 أو طرق التقييم لوظيفة الحسية54 واعدة فيما يتعلق بالتطبيقات المستقبلية للطريقة. ولذلك نوصي باستخدام AGA للتحقيق في الانتعاش الوظيفي في نماذج القوارض من PNI forelimb، مثل العصب الزندي، شعاعي، أو متوسط، أو نماذج نقل الأعصاب التجريبية55، والتي لا تزال غير مدروسة مع هذه الطريقة حتى الآن.
نحن نقدم بموجب هذا بروتوكول مفصل حول كيفية استخدام تحليل المشي الآلي لدراسة الانتعاش الوظيفي في ثلاثة نماذج القوارض من إصابة الأعصاب. في حين أن هذه الطريقة تتطلب دراسة متأنية لمختلف الجوانب الرئيسية مثل التدريب الكافي ومعايرة الدقيق الثابت والبرمجيات، بل هو أداة تكميلية مجدية وقيمة لتقييم تجديد الأعصاب في نماذج القوارض من إصابات الأعصاب المركزية والمحيطية.

وغالبا ما تدرس إصابات الجهاز العصبي المحيطي والمركزي في القوارض، مما أدى إلى كمية كبيرة من البيانات المقارنة بشأن مسار إصابة الأعصاب، وإصلاح، أو العصبية لمواجهة المزيد من الإصابات الثانوية وتجديد1و2،3. يمكن تقييم نتائج استراتيجيات العلاج التجريبية في نماذج القوارض من خلال مجموعة متنوعة من التقنيات مثل الأنسجة ، والكيمياء المناعية ، والفيزيولوجيا الكهربائية ، وتقنيات التصوير مثل الأشعة السينية microtomography (μCT) بمسح ، ولكن المعيار الأكثر أهمية لتحديد نجاح العلاج هو - مثل في المرضى الإنسان -- درجة الانتعاش الوظيفي4،5. الدراسات الأولى التي تحقق الأداء الحركي في القوارض يعود تاريخها إلى 1940s6,7,8. الفئران والجرذان كانت تخضع لكمية كبيرة من الدراسات التي تحقق في سلوكها الحركي في العقود التالية9,10,11. في الوقت الحاضر ، مجموعة واسعة من تقنيات التقييم لنماذج القوارض من إصابات الأعصاب الطرفية والمركزية موجودة ، تتراوح بين تحليل مسار المشي بالحبر والورق12،13،14 على الكاحل والمشية15،16،17 إلى أساليب التعلم الآلي المعززة ، والتي تسمح بتقدير معقد من المشية ، والأطراف ، والمسارات المشتركة18،19.
يستخدم التحليل الآلي لـ Gait (AGA) المحوسب لتقييم وظيفة الحركيين في أعقاب الإصابات العصبية الطرفية والمركزية والعلاج التجريبي المحتمل لمثل هذه الإصابات. يتكون الجهاز بشكل رئيسي من ممر زجاجي ومصدر ضوء يضيء مطبوعات مخلب القوارض ارتباطًا بالضغط الذي يتجاوزه. ثم يتم حوسبة هذه البيانات لحساب مجموعة واسعة من المعلمات الثابتة والديناميكية. وفقا ل Deumens ، يمكن تقسيم هذه المعلمات إلى فئات من المعلمات العامة ، والمعلمات المتعلقة بالألم ، وكذلك المعلمات ذات الصلة بالتنسيق من مشية20 (الجدول 1). وقد ثبت جدوى AGA للكشف عن التغيرات في سلوك المشية في نماذج الحيوانات المختلفة من إصابة العصب المحيطي (PNI)21، مثل العصب الوركي20، العصب الفخذي22، والعصب المتوسط23،24. كما أنها تستخدم بشكل روتيني لتقييم وظيفة الحركي في الفئران مع إصابات عصبية مركزية، على سبيل المثال، السكتة الدماغية25 أو كدمة الحبل الشوكي26. تكمن تقدم الأسلوب في الكم الكبير من البيانات القابلة للمقارنة وإمكانية تسجيل عدد كبير من المعلمات المتعلقة بالمشي27. تهدف هذه الورقة إلى تزويد الباحثين المهتمين بالنماذج الحيوانية لـ PNI وإصابة الحبل الشوكي (SCI) بمبدأ توجيهي مفصل وعملي لتقييم وظيفة الحركي في مثل هذه النماذج.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>الفئه</td>
			<td>المعلمه</td>
			<td colspan="2">وصف</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="4">معلمات عامّة مشية</td>
			<td>منطقة الطباعة (وحدة المسافة)</td>
			<td colspan="2">مساحة من مخلب الطباعة</td>
		</tr>
<tr>
<td>طول الطباعة (وحدة المسافة)</td>
			<td colspan="2">طول طباعة مخلب</td>
		</tr>
<tr>
<td>قاعدة الدعم (وحدة المسافة)</td>
			<td colspan="2">المسافة بين الكفوف الخلفية أو الأمامية</td>
		</tr>
<tr>
<td>طول المدى (وحدة المسافة)</td>
			<td colspan="2">المسافة بين اثنين من المواضع المتتالية من مخلب</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">المعلمات المتعلقة بالألم من المشية</td>
			<td>وقت التأرجح (ق)</td>
			<td colspan="2">مدة مرحلة التأرجح</td>
		</tr>
<tr>
<td>وقت الوقوف (ق)</td>
			<td colspan="2">مدة مرحلة الموقف</td>
		</tr>
<tr>
<td>متوسط كثافة طباعة مخلب (وحدة تعسفية)</td>
			<td colspan="2">يعني iIntensity من مخلب الطباعة خلال مرحلة الموقف</td>
		</tr>
<tr>
<td rowspan="3">التنسيق ذات الصلة معلمات مشية</td>
			<td>أنماط تسلسل الخطوات العادية (NSSP)</td>
			<td colspan="2">تسلسلات محددة من مواضع مخلب خلال دورة خطوة</td>
		</tr>
<tr>
<td>تشتت المرحلة (%)</td>
			<td colspan="2">الاختلافات الزمنية بين دورات الخطوة من اثنين من الكفوف محددة</td>
		</tr>
<tr>
<td>مؤشر الانتظام (نسبة مئوية)</td>
			<td colspan="2">القياس الكمي للتنسيق بين ااإلتشابه من خلال تقسيم كمية من لا تشوبه شائبة NSSP مرات 4 على العدد الإجمالي لوضع مخلب خلال دورة خطوة واحدة</td>
		</tr>
</tbody></table>الجدول 1: معلمات المشية التي يمكن تقييمها مع تحليل المشي الآلي. ويتم اختيار الفئات التي تصنف فيها المعلمات وفقا لـ Deumens etal. 20.

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% Saline</td>
			<td>B. Braun Austria</td>
			<td>3570410</td>
			<td>Vehicle for drug delivery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 ml syringe</td>
			<td>B. Braun Austria</td>
			<td>9161708V</td>
			<td>Injecting device</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 ml syringe</td>
			<td>B. Braun Austria</td>
			<td>4606728 V</td>
			<td>Injecting device</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1-Propanol, 2-Propanol, Hexetidin</td>
			<td>Gebro Pharma</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Alcoholic skin disinfection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>23-gauge (G) canula</td>
			<td>B. Braun Austria</td>
			<td>4657667</td>
			<td>Canula for s.c. injection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26-gauge (G) canula</td>
			<td>B. Braun Austria</td>
			<td>4657683</td>
			<td>Canula for s.c. injection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 ml syringe</td>
			<td>B. Braun Austria</td>
			<td>4606710 V</td>
			<td>Injecting device</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine hydrochloride</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>B9275</td>
			<td>Analgetic agent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Burrs for Micro Drill</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>19007-29</td>
			<td>Drilling of a hole inside the lamina</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Caprofen</td>
			<td>Zoetis Austria</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Analgetic agent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Catwalk Automated gait analysis system</td>
			<td>Noldus</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Automatic analysis software of animal gait</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cauterizer Kit</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>18010-00</td>
			<td>Cauterization of vessels during surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Enrofloxacin</td>
			<td>Bayer Austria</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Antibiotic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethilon (10-0)</td>
			<td>ETHICON</td>
			<td>2810G</td>
			<td>Suture material for neurrorhaphy</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethilon (11-0)</td>
			<td>ETHICON</td>
			<td>EH7465G</td>
			<td>Suture material for neurrorhaphy</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye ointment</td>
			<td>Fresenius Kabi Austria</td>
			<td>4302436</td>
			<td>Eye protection during anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Friedman-Pearson Rongeurs</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>16221-14</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gabapentin</td>
			<td>Wedgewood Pharmacy</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Analgetic agent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goldstein retractor</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>17003-03</td>
			<td>Retraction of tissues during surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hair trimmer</td>
			<td>Aescular</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Hair trimmer for shaving of the operation site prior to surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating Pad for rodents</td>
			<td>ALA Scientific Instruments</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Regulation of body temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Impactor</td>
			<td>Precision Systems and Instrumentation</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Induction of spinal cord contusion</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lewis rat (<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/61852/61852equ01.jpg" />)</td>
			<td>Janvier</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Experimental animal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnetic Fixator Retraction System</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>18200-50</td>
			<td>Retraction of tissues during surgery</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Metzenbaum Baby Scissors</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>14019-13</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Drill</td>
			<td>Word Precision Instruments</td>
			<td>503599</td>
			<td>Instrument for bone drilling</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Needle holder</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>12076-12</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro-scissors (curved)</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>15023-10</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro-scissors (straight)</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>15007-08</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mirror Finish Forceps</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>11251-23</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle holder</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>12002-12</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Operating microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>M651 MSD</td>
			<td>Magnification of the operative site</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Povidone Iod</td>
			<td>B. Braun Melsungen</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Non-alcoholic skin disinfectant</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pulse Oximeter</td>
			<td>STARR Life Sciences</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Surveillance of heart rate and oxygen saturation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rodent thermometer</td>
			<td>BIOSEB</td>
			<td>BIO-TK8851</td>
			<td>Surveillance of body temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel blade</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>10010-00 (#10)</td>
			<td>Surgical instrument to make an incision</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel handle</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>10003-12 (#3)</td>
			<td>Surgical instrument to make an incision</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sevoflurane Inhalation Vapour, Liquid (100%)</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>HDG9117A</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spatula &#38; Probe</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>10090-13</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sprague Dawley rat (<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/61852/61852equ01.jpg" />)</td>
			<td>Janvier</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Experimental animal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterila gauze 5x5cm</td>
			<td>EVAC MEDICAL</td>
			<td>E010.03.00215</td>
			<td>Sterile gauze compress</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue Forceps</td>
			<td>F.S.T</td>
			<td>11021-12</td>
			<td>Surgical instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vicryl (4-0)</td>
			<td>ETHICON</td>
			<td>V3040H</td>
			<td>Suture material for subcutaneous sutures</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vicryl (5-0)</td>
			<td>ETHICON</td>
			<td>V303H</td>
			<td>Suture material for subcutaneous sutures</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vicryl cutting needle (4-0)</td>
			<td>ETHICON</td>
			<td>V392ZH</td>
			<td>Suture material for skin sutures</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vicryl cutting needle (5-0)</td>
			<td>ETHICON</td>
			<td>V391H</td>
			<td>Suture material for skin sutures</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

automated gait analysis to assess functional recovery in rodents with peripheral nerve or spinal cord contusion injury

تتم دراسة إصابات الأعصاب الطرفية والمركزية في الغالب في القوارض ، وخاصة الفئران ، نظرًا لحقيقة أن هذه النماذج الحيوانية فعالة من حيث التكلفة وقد تم نشر الكثير من البيانات المقارنة في المؤلفات. وهذا يشمل العديد من أساليب التقييم لدراسة الانتعاش الوظيفي بعد إصابة الأعصاب وإصلاح. بالإضافة إلى تقييم تجديد الأعصاب عن طريق علم الأنسجة ، الفيزيولوجيا الكهربائية ، وغيرها في تقنيات التقييم في الجسم الحي وفي المختبر ، فإن الانتعاش الوظيفي هو المعيار الأكثر أهمية لتحديد درجة التجدد العصبي. يسمح تحليل المشي الآلي بتسجيل كمية هائلة من المعلمات ذات الصلة بالمشي مثل منطقة باو للطباعة وسرعة باو سوينغ بالإضافة إلى مقاييس التنسيق بين الأطراف. بالإضافة إلى ذلك، توفر هذه الطريقة بيانات رقمية عن كفوف الفئران بعد تلف الخلايا العصبية وأثناء تجديد الأعصاب، مما يضيف إلى فهمنا لكيفية تأثير الإصابات العصبية الطرفية والمركزية على سلوكهم الحركي. إلى جانب نموذج إصابة العصب الوركي المستخدم في الغالب ، يمكن دراسة نماذج أخرى من إصابة الأعصاب الطرفية مثل العصب الفخذي عن طريق هذه الطريقة. بالإضافة إلى إصابات الجهاز العصبي المحيطي ، يمكن تقييم آفات الجهاز العصبي المركزي ، على سبيل المثال ، كدمة الحبل الشوكي. يعتمد تقييم البيانات الصالح والقابل لإعادة الإنتاج بشكل قوي على الضبط الدقيق لإعدادات الثابت والبرمجيات قبل الحصول على البيانات. بالإضافة إلى ذلك، التدريب المناسب للحيوانات التجريبية هو من الأهمية الحاسمة. يهدف هذا العمل إلى توضيح استخدام التحليل الآلي المحوسب ل المشية لتقييم التعافي الوظيفي في نماذج حيوانية مختلفة من إصابة الأعصاب الطرفية وكذلك إصابة كدمة الحبل الشوكي. كما يؤكد على القيود التي تفرضها الطريقة، مثل تقييم تجديد الأعصاب في الفئران المصابة بتشلس الأعصاب الوركي بسبب محدودية الانتعاش الوظيفي. لذلك ، يعتقد أن هذا البروتوكول يساعد الباحثين المهتمين بالإصابات العصبية الطرفية والمركزية على تقييم الانتعاش الوظيفي في نماذج القوارض.

خضع 12 جرذًا لجراحة الأعصاب الطرفية التجريبية. تم إجراء استئصال العصب الوركي(الشكل 2A)في 7 فئران ، في حين أن تكوين العصب الفخذي(الشكل 2B)تم تحريضه في 5 فئران. في جميع الحيوانات، تم إعادة بناء الخلل العصبي عن طريق الكسب غير المشروع العصبي الذاتي. إصابة كدمة الحبل الشوكي(الشكل 2C)في مستوىTh 11 تم حدوثها في 6 فئران، مما أدى إلى ما مجموعه 18 الفئران.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61852/61852fig02.jpg"> الشكل 2: مواقع العمليات بعد إعادة بناء الأعصاب. إعادة بناء العصب مع autografts في العصب الوركي (أ) والاعصاب الفخذية (B) وكذلك بعد إصابة كدمة الحبل الشوكي (C). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61852/61852fig02large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
وقد تعافت جميع الحيوانات بشكل جيد من الجراحة ولم تحدث أي حالات لتشويه الذات. طوّر واحد من مجموعة إصابات العصب الوركي انكماشات قوية للمخلف الخلفي الأيمن خلال فترة المراقبة بعد العملية الجراحية وكان لا بد من استبعاده من المزيد من تحليل البيانات.
العصب العصبي الوركي منذ أن يوفر العصب الوركي الداخلي العضلي والحسي لغالبية hindlimb ، فإن استئصاله يؤدي إلى ضعف شديد في وظيفة الحركي. بعد الإصابة، الفئران استخدام كعب مخلب لدعم الوزن فقط (الشكل 3B-E) ويتم نقل الطرف في حركة محيطة كاسحة. ولذلك، تصبح التغيرات الحركيّة التي تمّ تقييمها عبر AGA واضحة عن طريق منطقة طباعة مُخفّضَة بشكل ملحوظ (الشكل 4A) وزادت بشكل كبير من وقت الأرجوحة (الشكل 4B). وما زالت كلتا المعلمتين تُغيَّر كثيراً بالمقارنة مع قياسات ما قبل البروتوكول الاختياري في نهاية فترة المراقبة. جدير بالذكر، وضعت واحد انكماش قوية من مخلب هند الحق بدءا من الأسبوع بعد العملية الجراحية (WPO) 10. وأدى ذلك إلى زيادة مساحة الطباعة من مخلب هند الحق إلى أكثر من 150٪ بالمقارنة مع مخلب اليسار في WPO12 (الشكل 5). وبما أن هذا كان مُنْتَدِيًا بالمقارنة مع جميع الحيوانات الأخرى التي تم تقييمها في هذه الدراسة، فقد استبعدنا هذا الحيوان من تحليل البيانات فيما يتعلق بمنطقة الطباعة.
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61852/61852fig03.jpg"> الشكل 3: ممثل مخلب يطبع قبل وبعد التصاق حجم حرج من العصب الوركي الأيمن وإصلاح autograft. لاحظ الانخفاض القوي في منطقة الطباعة بعد إصابة العصب (B) مقارنة بـ (A) قبل الجراحة . على الرغم من زيادة طفيفة في منطقة الطباعة خلال فترة المراقبة (C-E)ظلت بصمات مخلب الطرف الخلفي الأيمن تتغير بشكل ملحوظ من التسجيلات الأساسية. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61852/61852fig03large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61852/61852fig04.jpg"> الشكل 4: مسار الانتعاش الوظيفي بعد استئصال الحجم الحرج وإصلاح autograft من العصب الوركي. نسبة منطقة الطباعة (A) ونسبة وقت التأرجح (B) تغيرت إحصائيا بشكل كبير من قيم ما قبل OP مباشرة بعد استئصال العصب الوركي. بينما ظلت منطقة الطباعة انخفضت بشكل ملحوظ مقارنة مع خط الأساس حتى WPO10، تم زيادة وقت سوينغ بشكل كبير إلى قيم ما قبل البروتوكول الاختياري في WPO12. *: p < 0.05 مقارنة بـ Pre-OP، **: p < 0.01 مقارنة بـ Pre-OP. تشير أشرطة الخطأ إلى الخطأ ± الخطأ القياسي في الوسط (SEM). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61852/61852fig04large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61852/61852fig05.jpg"> الشكل 5: Boxplot من مسار منطقة الطباعة بعد إصابة العصب الوركي. لاحظ الطرف (القطع الناقص الأحمر) في WPO12، والذي يفسره حقيقة أن حيوانًا واحدًا طور انكماشات قوية للمخلف الخلفي الأيمن بدءًا من WPO10. ولذلك تم استبعاد الحيوان من التحليل الإحصائي المعروض في الشكل 4. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61852/61852fig05large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
تكوين العصب الفخذي العصبي استئصال العصب الفخذي النتائج في denervation من العضلات رباعية الفخذ33,34. ونتيجة لذلك، يتم اضعف تمديد الركبة، مما يؤدي إلى فرط المرونة من مفصل الكاحل مع رفع متتالية من كعب الكف. لذلك ، يتم تقليل منطقة طباعة مخلب المعنية (الشكل 6B) ، بقوة بعد الجراحة. يتم زيادة مساحة الطباعة من مخلب هند اليسار بسبب تحول تعويضي من الوزن إلى اليسار. وينبغي أن يوضع هذا في الاعتبار، لأن هذه الظاهرة تؤثر بشكل مباشر على النسبة المحسوبة بين مخلب "التجريبي" و "السيطرة". بدءا من WPO4 reinnervation من رباعية من قبل العصب الفخذي تجديد يؤدي إلى عكس هذه التغيرات مما أدى إلى زيادة منطقة طباعة مخلب مخلب من مخلب الحق(الشكل 7A). كما أن العضلات رباعية الفخذ يلعب أيضا دورا في مرحلة التأرجح من مخلب المعنية، سوينغ تايم(الشكل 7B)هو لفترات طويلة إلى حد كبير في الفئران مع إصابة العصب الفخذي. يعكس عودة منطقة الطباعة، وينخفض وقت سوينغ مع وصول العصب الفخذي المتجدد إلى عضلة الفخذ الرباعية. في WPO10، عادت كل من معلمات مشية إلى خط الأساس، مما يشير إلى الانتعاش الوظيفي الكامل.
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61852/61852fig06.jpg"> الشكل 6: مطبوعات مخلب الممثل. ممثل مخلب يطبع قبل (A) وبعد (B –E) حق استئصال العصب الفخذي وإصلاح autograft. انخفضت مساحة الطباعة من RH بقوة في WPO2 (B)، في حين أصبحت الزيادة في مساحة الطباعة للمخلب الخلفي (LH) بسبب زيادة الحمل الوزن مرئية. بدأت منطقة الطباعة RH لزيادة بدءا من WPO6 (C) يرافقه انخفاض في منطقة الطباعة من LH. في WPO8 (D) وWPO10 (E) منطقة الطباعة من RH تعافى مرة أخرى قريبة من مستويات ما قبل الجراحة. (مقتبس بإذن من Heinzel et al.22، مرخص بموجب CC BY 4.0).) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61852/61852fig06large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61852/61852fig07.jpg"> الشكل 7: مسار الانتعاش الوظيفي بعد استئصال 7 مم وإصلاح الأورغات الأوتوماتيكية للأعصاب الفخذية. مسار نسبة منطقة الطباعة (A) و نسبة وقت الأرجوحة (B) كشفت عن تغير قوي مباشرة بعد استئصال العصب الفخذي ، ولكن القيم التي تم استردادها مرة أخرى إلى قيم ما قبل الجراحة في WPO8. #: p < 0.05. تشير أشرطة الخطأ إلى متوسط ± SEM.(مقتبس بإذن من Heinzel etal. 22، مرخص تحت CC BY 4.0.) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61852/61852fig07large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
كدمة الحبل الشوكي وكشف تحليل مشية بشكل ملحوظ مطبوعات مخلب تغيرت بعد إصابة كدمة الحبل الشوكي الصدري (الشكل 8)، والأهم من ذلك أن ينشط في منطقة الطباعة ودوران داخلي ملحوظ من الكفوف الخلفية في WPO2 (الشكل 8B). الجدير بالذكر، يتم تنفيذ تناوب مخلب أيضا كميزة قابلة للتقييم في BBB، مما يؤكد على قابلية تطبيق تحليل مشية المحوسبة لتقييم التغيرات في مشية التي تم تقييمها في الأصل مع اختبار حقل مفتوح. وفيما يتعلق بمسار معلمات المشي الفردية، فإن كدمة الحبل الشوكي عند مستوى11 th أدت إلى انخفاض نسبة مساحة الطباعة (الشكل 9A) وزيادة نسبة وقت التأرجح (الشكل 9B). وقد اتجهت كل من البارامترات نحو مستويات خط الأساس خلال دورة أخرى من فترة المراقبة، ولكن لم تحدث أي تغييرات ذات دلالة إحصائية يمكن ملاحظتها. كما انخفض مؤشر انتظام المعلمة المتعلقة بالتنسيق(الشكل 9C)في WPO2 ، ولكن درجة تباينت بشكل كبير بين الحيوانات. كما اتجهت نحو القيم قبل الجراحة حتى WPO16. قاعدة دعم الكفوف الخلفية(الشكل 9D)،معلمة عامة من مشية وفقا لDumens، وأظهرت زيادة ملحوظة، والتي كانت ذات دلالة إحصائية من WPO10 حتى WPO14. اتجهت نحو مستويات خط الأساس في WPO16 ولم تعد تتغير بشكل كبير من قيمة ما قبل البروتوكول الاختياري في هذه النقطة الزمنية.
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61852/61852fig08.jpg"> الشكل 8: ممثل مخلب يطبع من الكفوف الخلفية اثنين. مخلب يطبع قبل الجراحة (A) وبعد إصابة كدمة الحبل الشوكي الصدرية (B – F). لاحظ انخفاض في مجال الطباعة بدءا من WPO2 (B) يرافقه تناوب الداخلية ملحوظ من الكفوف. خلال فترة المراقبة (C -F) زيادة في منطقة الطباعة يمكن ملاحظتها وكذلك إزالة الدوران الداخلي. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61852/61852fig08large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
<img alt="Figure 9" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61852/61852fig09.jpg"> الشكل 9: كدمة الحبل الشوكي عند مستوى 11. كدمات الحبل الشوكي في th 11 أسفرت عن تغييرات ملحوظة من نسبة منطقة الطباعة (أ) ووقت سوينغ (ب) ومؤشر الانتظام (C) ، ولكن هذه التغييرات لم تكن ذات دلالة إحصائية. بعد الإصابة، أظهرت قاعدة دعم الكفوف الخلفية زيادة ملحوظة مقارنة مع خط الأساس، ما كان ذا أهمية إحصائية في WPO10 حتى WPO14. *: p < 0.05 بالمقارنة مع ما قبل البروتوكول الاختياري. تشير أشرطة الخطأ إلى ± SEM. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61852/61852fig09large.jpg" target="_blank">الرجاء النقر هنا لعرض إصدار أكبر من هذا الرقم.</a>
الملف التكميلي 1: تفاصيل استكشاف الأخطاء وإصلاحها. <a href="https://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/61852/Supplementary_File_1.docx" target="_blank">الرجاء النقر هنا لتحميل هذا الملف.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Automated Gait Analysis to Assess Functional Recovery in Rodents with Peripheral Nerve or Spinal Cord Contusion Injury at JoVE.com

Automated Gait Analysis to Assess Functional Recovery in Rodents with Peripheral Nerve or Spinal Cord Contusion Injury

تحليل المشي الآلي هو أداة مجدية لتقييم الانتعاش الوظيفي في نماذج القوارض من إصابة الأعصاب الطرفية وإصابة كدمة الحبل الشوكي. في حين أنه يتطلب إعداد واحد فقط لتقييم وظيفة الحركي في مختلف النماذج التجريبية، دقيق من الصعب لينة وير التكيف وتدريب الحيوانات أمر بالغ الأهمية.

تحليل مشية الآلي لتقييم الانتعاش الوظيفي في القوارض مع الأعصاب الطرفية أو إصابة كدمة الحبل الشوكي

Peripheral and central nerve injuries are mostly studied in rodents, especially rats, given the fact that these animal models are both cost-effective and ...

تحليل مشية الآلي هو أسلوب يستخدم على نطاق واسع لتقييم نماذج التسجيل الانتعاش الوظيفية من إصابة الأعصاب الطرفية، وإصلاح، والتجدد. يمكن استخدام هذه الطريقة لدراسة التغيرات في المشية بعد إصابة الأعصاب الطرفية ، والمتعلقة بوظيفة الأعصاب الحركية والحسية. وقد يواجه الباحثون الجدد على هذه الطريقة صعوبات في الحصول على بيانات عالية الجودة.العقبات النموذجية هي التدريب الكافي على الحيوانات ومعايرة دقيقة للأجهزة والبرامج. أثناء جلسات التدريب وفي يوم الاختبار، قم بإيقاف تشغيل جميع مصادر الضوء في غرفة الاختبار السلوكية ومواجهة شاشة الكمبيوتر للحصول على البيانات بعيدًا عن الكاميرا لمنع ضوائها من التدخل في الكاميرا. تأكد من تثبيت الجهاز في وضع مستقر بطريقة تمنع أي شكل من أشكال الاهتزاز، واجلب الفئران إلى غرفة الاختبار السلوكي في قفصها المنزلي لمدة 30 دقيقة على الأقل قبل الاختبار، في اليوم الأول من التدريب، قم بقبضة على بلطف تحت جذعه ووضعه بعناية في مدخل الممشى.دع الجرذ يستكشف فتح الممر دون أي تدخل ، وانتظر حتى يعبر الحيوان الممشى طواعية للوصول إلى قفصه المنزلي دون أي حافز خارجي أو حافز. في اليوم الثاني من التدريب، السماح للحيوانات أن تصبح معتادة على دخول الممشى والعودة إلى قفص وطنهم دون تردد. في اليوم الثالث من التدريب، تأكد من أن الحيوانات تعلمت عبور الممشى بسرعة موحدة دون تردد، أو استنشاق، أو حركات استكشافية أخرى.في الرابع والخامس، كرر التدريب لتعزيز إجراء الاختبار. في يوم التجربة، استخدم منظف الزجاج التجاري وممسح لتنظيف الجزء العلوي والسفلي من الممشى مع الحرص على إزالة جميع السوائل من نهايات الممشى. ضع كل من الجرذان الأخف والأثقل على الممشى وحدد كاميرا مسجلة من علامة التبويب الإعداد للسماح للكاميرا بالحصول على الضوء ، وإضاءة السقف الأحمر ، وإضاءة الممشى الأخضر ، وعتبة الكثافة الخضراء التي سيتم تعديلها لضمان اكتشاف طباعة مخلب الأمثل لجميع الحيوانات في التحليل.بعد ذلك، انقر فوق فتح الاستحواذ والحصول على لقطة من الممشى الفارغ النظيف لاستخدامه كمرجع طوال إجراء الحصول على البيانات. سيتم تغيير الحالة من انتظار لقطة جاهزة للحصول على. انقر فوق بدء عملية الاكتساب.سيتم تغيير الحالة من جاهز للاكتساب إلى انتظار تشغيل لبدء. عندما تكون الكاميرا جاهزة، ضع فأرًا على الممشى وتابع حركة الحيوان على شاشة الكمبيوتر. ملاحظة، تغيير الحالة من انتظار تشغيل لبدء تشغيل إلى تشغيل التسجيل.في نهاية التحليل، انقر فوق تصنيف في علامة التبويب مستكشف التجريبية من التجربة ليتم تصنيفها، وتشغيل تشغيل المكتسبة بالسرعة العادية لتحديد ما إذا كانت البيانات تتوافق مع متطلبات التصنيف. انقر فوق تصنيف تلقائي للتصنيف التلقائي لبصمات مخلب من قبل البرنامج. لحساب الصحيح من أنماط تسلسل الخطوة العادية، تأكد من أن خوارزمية تصنيف لا يتم الخلط بين مطبوعات مخلب غير مرئية، مما يؤدي إلى خلل NSSP، وأنه يتم تضمين فقط مطبوعات مخلب التي يمكن الكشف عنها في حين أن مخلب contralateral هو أيضا مرئية لحسابات NSSP.للتحليل الإحصائي للبيانات، انقر فوق عرض إحصائيات التشغيل للحصول على نظرة عامة شاملة لإحصائيات التشغيل. ثم حدد الملف والتصدير، لتصدير الإحصاءات التجريبية أو التجريبية إلى برنامج جدول بيانات. بعد إصابة العصب الوركي، الفئران استخدام كعب مخلب لدعم الوزن فقط ويتم نقل الطرف في حركة محيطية كاسحة.ولذلك، تصبح التغييرات الحرّة التي تُقيَّم عن طريق التحليل الآلي لـ المشية ظاهرةً من خلال انخفاض كبير في مساحة الطباعة وزيادة وقت التأرجح بشكل كبير. يؤدي استئصال العصب الفخذي إلى إزالة العضلات الرباعية للفخذ، مما يضعف امتداد الركبة ويحفز فرط تصريف مفصل الكاحل مع رفع الكعب المقابل على التوالي. بدءا من الأسبوع الرابع بعد الجراحة، تؤدي إعادة تنشيط رباعيات العصب الفخذي المتجدد إلى عكس هذه التغييرات.كما أن عضلة رباعية الفخذ يلعب أيضا دورا في مرحلة التأرجح من مخلب المعنية، ويطول وقت التأرجح إلى حد كبير في الفئران مع إصابة العصب الفخذي. تحليل المشية يكشف عن مطبوعات مخلب تغيرت بشكل ملحوظ بعد كدمة الحبل الشوكي الصدري. كما تؤدي كدمة الحبل الشوكي عند مستوى الصدر 11 إلى انخفاض نسبة مساحة الطباعة، أي بزيادة في نسبة وقت التأرجح.كما ينخفض مؤشر انتظام التنسيق في الأسبوع الثاني بعد العملية الجراحية، في حين أن قاعدة دعم الكفوف الخلفية تظهر زيادة ملحوظة. عند استخدام تحليل البوابة الآلي لتقييم الانتعاش الوظيفي في القوارض ، تأكد من تدريب الحيوانات بعناية وأن تكون دقيقة عند إجراء أي تعديلات على البرامج أو الأجهزة. باستخدام تحليل المشي الآلي، يمكن تقييم الإصابة وتجديد الجهاز العصبي المركزي والمحيطي في نماذج مختلفة من القوارض، بما في ذلك نماذج الأعصاب الرسمية غير المدروسة، مثل العصب الوسيط.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Transplantation of Olfactory Ensheathing Cells to Evaluate Functional Recovery after Peripheral Nerve Injury

زرع الخلايا الشمية مغمد لتقييم الانتعاش وظيفية بعد إصابة العصب المحيطي

Olfactory ensheathing cells (OECs) are neural crest cells which allow growth and regrowth of the primary olfactory neurons. Indeed, the primary olfactory ...

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

ل<em&gt; فيفو السابقين</em&gt; يسببها الليزر اصابات الحبل الشوكي نموذج لتقييم آليات محور عصبي تنكس في الوقت الحقيقي

Injured CNS axons fail to regenerate and often retract away from the injury site. Axons spared from the initial injury may later undergo secondary axonal ...

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

التصوير النشاط العصبي في القشرة الأولية Somatosensory باستخدام Thy1-GCaMP6s الفئران المحورة وراثيا

The mammalian brain exhibits marked symmetry across the sagittal plane. However, detailed description of neural dynamics in symmetric brain regions in ...

Automated Gait Analysis in Mice with Chronic Constriction Injury

تحليل مشيه الآلي في الفئران مع الإصابات المزمنة انقباض

The von Frey test is a classical method that has been widely used to examine the sensory function of neuropathic pain animals. However, it has some ...

Activity-based Training on a Treadmill with Spinal Cord Injured Wistar Rats

التدريب القائم على النشاط في حلقة مفرغة مع النخاع الشوكي أصيب ويستار

Spinal cord injury (SCI) results in lasting deficits that include both mobility and a multitude of autonomic-related dysfunctions. Locomotor training (LT) ...

3D Kinematic Analysis for the Functional Evaluation in the Rat Model of Sciatic Nerve Crush Injury

3D تحليل الحركية للتقييم الوظيفي في نموذج الفئران من عرق النسا الأعصاب سحق الإصابة

Compared to the Sciatic Functional Index (SFI), kinematic analysis is a more reliable and sensitive method for performing functional evaluations of ...

Intra-Arterial Delivery of Neural Stem Cells to the Rat and Mouse Brain: Application to Cerebral Ischemia

التسليم داخل الشرايين للخلايا الجذعية العصبية إلى الدماغ الفئران والفأر: تطبيق على الإقفاري الدماغي

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to ...

Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice

تحريض كامل من إصابة الحبل الشوكي من نوع الترانصيب في الفئران

Spinal cord injury (SCI) largely leads to irreversible and permanent loss of function, most commonly as a result of trauma. Several treatment options, ...

Comprehensive Understanding of Inactivity-Induced Gait Alteration in Rodents

فهم شامل لتغيير المشية الناجم عن الخمول في القوارض

It is well known that disuse affects neural systems and that joint motions become altered; however, which outcomes properly exhibit these characteristics ...

Establishing a Mouse Contusion Spinal Cord Injury Model Based on a Minimally Invasive Technique

إنشاء نموذج إصابة الحبل الشوكي لكدمة الفأر بناء على تقنية طفيفة التوغل

Using minimally invasive methods to model spinal cord injury (SCI) can minimize behavioral and histological differences between experimental animals, ...