Name: maximum isometric tetanic force measurement of the tibialis anterior muscle in the rat
Uploaded: 2021-06-26T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat at JoVE.com

Forskning rapporteret i denne publikation blev støttet af National Institute of Neurological Disorders and Stroke fra National Institutes of Health under Award Number RO1 NS 102360. Indholdet er udelukkende forfatternes ansvar og repræsenterer ikke nødvendigvis de nationale sundhedsinstitutters officielle synspunkter.

Alle dyreforsøg blev udført med godkendelse af Den Institutionelle Dyrepleje- og Brugskomité (IACUC A334818).
1. Kalibrering af krafttransduceren
<ol><li>Sørg for, at computeren er korrekt tilsluttet USB-6009 multifunktionel I/O-dataopsamlingsenhed (DAQ), som igen skal tilsluttes krafttransduceren. BEMÆRK: Andre rottestammer og arter kan kræve en anden belastningscellekrafttransducer, da der kan forventes højere kræfter 44.</li>
	<li>Fastgør en brugerdefin...

Denne protokol beskriver en tidligere valideret metode til anskaffelse af nøjagtige maksimale ITF-målinger af TA-musklen i rottemodellen32. Inddrivelsen af maksimal styrke efter eksperimentelle nerverekonstruktionsbehandlinger er af primær interesse i de kliniske omgivelser, da det beviser, at nerven ikke kun regenererede, men også lavede arbejdsforbindelser med målmusklen. ITF kan bruges i en lille nervegabmodel, såsom rotte iskiasnerven model32, og med et par ændri...

Tab af motorisk funktion efter traumatisk perifer nerveskade har en betydelig indvirkning på livskvaliteten og den socioøkonomiske status for patienter1,2,3. Prognosen for denne patientpopulation forbliver dårlig på grund af minimale forbedringer i kirurgiske teknikker gennem årene4. Direkte end-to-end spændingsfri epineural reparation danner guldstandard kirurgisk rekonstruktion. Men i tilfælde med udvidet nerve huller interposition af en autolog nervetransplantation har vist sig at være overlegen5,6. Den tilhørende donor site sygelighed og begrænset tilgængelighed af autologe nervetransplantationer har pålagt behovet for alternative teknikker7,8.
Eksperimentelle dyremodeller er blevet brugt til at belyse mekanismen for perifer nervegendannelse og til at evaluere resultaterne af en række rekonstruktive og farmakologiske behandlingsmuligheder8,9. Rotte iskiasnerven model er den hyppigst anvendte dyr model10. Deres lille størrelse gør dem nemme at håndtere og hus. På grund af deres superlative neuroregenerative potentiale kan den formindskede tid mellem intervention og evaluering af resultater resultere i relativt lavere omkostninger11,12. Andre fordele ved dets anvendelse omfatter morfologiske ligheder med menneskelige nervefibre og det høje antal sammenlignende / historiske undersøgelser13. Selv om sidstnævnte bør gribes forsigtigt an, gør det, da en lang række forskellige resultatmål mellem undersøgelserne gør det vanskeligt at sammenligne resultater14,15,16,17,18.
Resultatforanstaltninger til vurdering af nervegendannelse spænder fra elektrofysiologi til histomorfometrisk, men disse metoder indebærer en korrelation, men måler ikke nødvendigvis direkte tilbagevenden af motorfunktion14,15. Regenererende nervefibre kan ikke foretage passende forbindelser, som kan forårsage en overvurdering af antallet af funktionelle forbindelser14,15,19,20. Den bedste og klinisk mest relevante måling til påvisning af korrekt reinnervation af slutorganer er fortsat vurdering af muskelfunktion21,22,23. Det er dog en udfordring at skabe værktøjer til vurdering af motorfunktionen til dyremodeller. Medinaceli et al. beskrev først vandrestianalysen, som siden har været den hyppigst anvendte metode til at evaluere funktionel genopretning i eksperimentelle perifere nerveundersøgelser21,24,25,26,27,28. Analysen af vandrestien kvantificerer det iskiasfunktionelle indeks (SFI) baseret på målinger af poteaftryk fra vandrerotter21,29. Større begrænsninger i gangstianalysen, såsom kontrakturer, automutilation, udtværing af udskriften og dårlig korrelation med andre renervationsforanstaltninger, har nødvendiggjort brugen af andre parametre til kvantificering af funktionel genopretning30,31.
I tidligere undersøgelser i Lewis rotter32 og New Zealand kaniner33, vi valideret den isometriske stivkrampe kraft (ITF) måling for tibialis forreste (TA) muskel og demonstreret dens effektivitet i evalueringen af muskel opsving efter forskellige typer af nerve reparation34,35,36,37,38,39. TA-musklen er velegnet på grund af dens relativt store størrelse, innervation af den peroneale gren af iskiasnerven og velforlyste biokemiske egenskaber40,41,42,43. Når muskellængde (preload force) og elektriske parametre er optimeret, giver ITF en side-til-side variation på henholdsvis 4,4% og 7,5% hos rotter32 og kaniner33.
Denne artikel giver en detaljeret protokol over ITF måling i rotte iskiasnerven model, herunder en grundig beskrivelse af den nødvendige præ-kirurgisk planlægning, kirurgisk tilgang og dissektion af den fælles peroneal nerve og distale TA muskel senen. Ved hjælp af forudbestemte værdier for stimulusintensiteten og varigheden defineres den optimale muskellængde og stimuluspulsfrekvens. Med disse fire parametre kan ITF efterfølgende måles konsekvent og præcist.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% Sodium Chloride</td>
			<td>Baxter Healthcare Corporation, Deerfield, IL, USA</td>
			<td>G130203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mm Kirshner wires</td>
			<td>Pfizer Howmedica, Rutherford, NJ</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson Tissue Forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>MTK-6801226</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar electrode cables</td>
			<td>Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar stimulator device</td>
			<td>Grass SD9, Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton-tip Applicators</td>
			<td>Cardinal Health, Waukegan, IL, USA</td>
			<td>C15055-006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Mosquito forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>MTK-1201112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Force Transducer MDB-2.5</td>
			<td>Transducer Techniques, Temecula, CA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze Sponges 4x4</td>
			<td>Covidien, Mansfield, MA, USA</td>
			<td>2733</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ground cable</td>
			<td>Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane chamber</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine</td>
			<td>Ketalar, Par Pharmaceutical, Chestnut, NJ</td>
			<td>42023-115-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LabView Software</td>
			<td>National Instruments, Austin, TX</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Loop</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical curved forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>JFA-5B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical scissors</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>SAS-15R-8-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical straight forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>JF-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Retractor</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>AG-124426</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel Blade No. 15</td>
			<td>Bard-Parker, Aspen Surgical, Caledonia, MI, USA</td>
			<td>371115</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slim Body Skin Stapler</td>
			<td>Covidien, Mansfield, MA, USA</td>
			<td>8886803512</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Subminiature electrode</td>
			<td>Harvard Apparatus, Holliston, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Nerve Stimulator</td>
			<td>Checkpoint Surgical LCC, Cleveland, OH, USA</td>
			<td>9094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terrell Isoflurane</td>
			<td>Piramal Critical Care Inc., Bethlehem, PA, USA</td>
			<td>H961J19A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Testing platform</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetontomy Scissors</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>ASIM-187</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Traceable Big-Digit Timer/Stopwatch</td>
			<td>Fisher Scientific, Waltham, MA, USA</td>
			<td>S407992</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>USB-6009 multifunctional I/O data acquisition (DAQ) device</td>
			<td>National Instruments, Austin, TX</td>
			<td>779026-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vacuum Base Holder</td>
			<td>Noga Engineering &#38; Technology Ltd., Shlomi, Isreal</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Attached clamp is custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (10 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820010.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (20 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820020.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (50 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820050.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine</td>
			<td>Xylamed, Bimeda MTC Animal Health, Cambridge, Canada</td>
			<td>1XYL002</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

maximum isometric tetanic force measurement of the tibialis anterior muscle in the rat

Traumatiske nerveskader resulterer i betydelige funktionelle tab og segmentale nervedefekter kræver ofte brug af autologe interposition nervetransplantationer. På grund af deres begrænsede tilgængelighed og tilhørende donor side sygelighed, mange undersøgelser inden for nerve regenerering fokus på alternative teknikker til at bygge bro over en segmental nerve hul. For at undersøge resultaterne af kirurgiske eller farmakologiske eksperimentelle behandlingsmuligheder, er rotte iskiasnerven model ofte bruges som en bioassay. Der er en række resultatmålinger, der anvendes i rottemodeller til at bestemme omfanget af nerve regenerering. Målmusklens maksimale outputkraft er fortsat det mest relevante resultat for klinisk oversættelse af eksperimentelle behandlinger. Isometrisk kraftmåling af stivkrampe muskelsammentrækning er tidligere blevet beskrevet som en reproducerbar og gyldig teknik til evaluering af motorgenvinding efter nerveskade eller reparation i både rotte- og kaninmodeller. I denne video vil vi give en trinvis instruktion af denne uvurderlige procedure for vurdering af funktionel genopretning af tibialis forreste muskel i en rotte iskiasnervedefektmodel ved hjælp af optimerede parametre. Vi vil beskrive de nødvendige præ-kirurgiske præparater ud over den kirurgiske tilgang og dissektion af den fælles peroneal nerve og tibialis forreste muskel senen. Den isometriske stivkrampe kraftmålingsteknik vil blive detaljeret. Bestemmelse af den optimale muskellængde og stimulus pulsfrekvens forklares, og måling af den maksimale stivkrampe muskelsammentrækning demonstreres.

Der bruges fem parametre til at måle ITF-målingen. Disse omfatter muskelspændinger (preload force), stimulus intensitet (spænding), stimulus puls frekvens, stimulus varighed på 0,4 ms og en forsinkelse på 2 ms. Før itf måles, skal den optimale muskelspænding bestemmes ved hjælp af to enkelt twitch muskelsammentrækninger ved en intensitet på 2 V under parametertesten. Disse stimuli forårsager dorsiflexion af poten og producerer et udgangssignal på grafen i VI (Figur 5). Disse en...

Watch this Scientific Journal Video about Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat at JoVE.com

Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat

Evaluering af motorgenvinding er fortsat benchmark resultatmålet i eksperimentelle perifere nerveundersøgelser. Den isometriske stivkrampe kraftmåling af tibialis forreste muskel i rotten er et uvurderligt værktøj til at vurdere funktionelle resultater efter rekonstruktion af iskiasnervedefekter. Metoderne og nuancerne er beskrevet i denne artikel.

Maksimal isometrisk stivkrampe kraftmåling af Tibialis-forreste muskel i rotten

Traumatic nerve injuries result in substantial functional loss and segmental nerve defects often necessitate the use of autologous interposition nerve ...

Det overordnede mål med denne video er at give en trin-for-trin instruktion om, hvordan man måler den isometriske stivkrampe kraft af tibialis forreste muskel i rotten, en reproducerbar og valideret metode til at vurdere funktionel genopretning efter iskiasnerveskade eller genopbygning. Den rotte iskiasnerven defekt model bruges ofte til at evaluere eksperimentelle behandlingsmuligheder for perifere nerveskader. For at kopiere guldstandardbehandlingen for segmentelle nervedefekter hos rotter, er normalt et 10 millimeter segment af iskiasnerven fjernet omvendt som en interposition autograft.I eksperimentelle behandlinger, nervekløften kan rekonstrueres ved hjælp af andre teknikker, såsom en nerve allograft eller kanal. Ved klinisk oversættelse af disse eksperimentelle teknikker er det vigtigt at måle omfanget af motorisk funktionsgenvinding i målmusklen. I denne video vil vi beskrive, hvordan man gør det for tibialis forreste muskel ved at stimulere den fælles peroneal nerve.Start proceduren ved at kalibrere krafttransduceren. Placer testplatformen, som indeholder to træblokke på procedurebordet. Sørg for, at computeren er tilsluttet en dataindsamlingsenhed, som igen skal tilsluttes krafttransduceren.Påhæft krafttransduceren lodret til testplatformen ved hjælp af dens vakuumbase. Fastgør løkken til klemmen for kalibreringsvægtene. Åbn softwaren, og kør det virtuelle instrument til isometrisk ktanikkraftmåling, og vælg ny kalibrering.Kalibreringen starter med nul vægt på løkken. Fortløbende, med 10, 20, 30 og 50 gram vægt og indsamle data i mellem hver vægtmåling. Vælg proces, når alle fem vægtmålinger er indsamlet.I tilfælde af en vellykket kalibrering skal grafen vise en positiv lineær kurve, acceptere værdierne for at fortsætte. Fjern løkken og vægtene fra klemmen, og flyt krafttransduceren vandret på testplatformen. Vælg nul for at afslutte kalibreringsprocessen.Efter at have induceret anæstesi ved hjælp af et isoflurankammer, barber en bagben og læg rotten på en 37 graders varmepude. Dybt bedøvet rotten med en intraperitoneal injektion af en ketamin og xylazin cocktail og administrere fem til seks milliliter saltvand subkutanly at opretholde en passende hydrering status under hele proceduren. Placer rotten på sin side og skabe en 2 til 3 centimeter posterolateral lår snit, parallelt med lårbenet.For at afsløre peroneal nerve gren af iskiasnerven, adskille biceps femoris muskel fra gluteus maximus og vastus lateralis muskel ved dissekere fascial plan mellem disse muskler. Placer retractor mellem de adskilte muskler for at få bedre adgang til iskiasnerven. Identificer trifurcation af iskiasnerven i peroneal nerve, tibialis nerve, og sural nerve.Brug en buet pincet til at dissekere peroneal nerve gren fra det omgivende væv. I tilfælde af usikkerhed klemmes nerven forsigtigt og observeres, om motorresponset er dorsiflexion af bagpoten. For at eksponere tibialis forreste muskel, skal du placere rotten på ryggen og incise det anterolaterale aspekt af underekstremiteten, der starter ved knæleddet og ned til den middelmådige side af poten.Isoler den distale tibialis forreste muskel senen fra det omgivende væv. Brug en myg pincet til stumpt dissekere senen hele vejen til sin indsættelse og skære senen ved indsættelsespunktet. Det første skridt i processen med isometrisk stivkrampe kraftmåling er optimering af muskellængden, også kendt som parametertesten.Overfør rotten sammen med varmepuden til testplatformen brug to 1 millimeter k-ledninger til at fastgøre baglimb til træblokken. Bor den første k-wire gennem distal lårbenet og den anden gennem anklen. Fastgør holderen til subminiatureelektroden på testplatformen, og placer klemmen omkring peronealnervens placering.Sæt jordkablet ind i de omgivende muskler og placer retractoren tilbage for at få adgang til peronealnerven. Fastgør de bipolære elektrodekabler til subminiatureelektroden og krog elektroden omkring peronealnerven ved hjælp af de buede pincet. Brug klemmen på holderen til at fastsætte placeringen af subminiature elektroden.Clamp den distale tibialis forreste muskel senen til klemmen, som er knyttet til kraft transducer. For nøjagtig måling er det vigtigt, at krafttransduceren er placeret parallelt med tibialis forreste muskelforløb. Sørg for, at rottereferencekablet er placeret distalt på subminiatureelektroden og det sorte aktive elektrodekabel proksimalt.Tilslut både disse kabler og jordkablet til en bipolar stimulatorenhed. For optimering af muskellængden skal du justere indstillingerne for den bipolære stimulator til en forsinkelse på to millisekunders varighed på 0,4 millisekunder og en stimulusintensitet på 2 volt. Når alt er godt forbundet, skal du indstille softwaren på parametertest og trykke på triggerindsamling.Forøg muskellængden, også kendt som en preload, ved at flytte håndtaget arm knyttet til kraft transducer. Forudindlæsningen er det store sæt oven på grafen på skærmen. Start med en 10 gram forudindlæsning og giv to enkelt ryk ved at trykke stimulus-knappen på den bipolære simulator nedad.Outputtet vil være synligt på grafen som to spidseffektkræfter, og rotten skal vise dorsiflexion af poten. Tryk på udløsersamling igen for at måle disse to toppe. Normalt registrerer programmet automatisk toppe.I så fald accepterer pressen at fortsætte. Hvis softwaren ikke genkender spidsbelastningsperioderne, skal du klikke på afvis og manuelt vælge spidsbelastninger. De to udgangskræfter vil blive gennemsnit til en gennemsnitlig peak output kraft, som vil blive præsenteret på højre side af grafen.Den aktive muskelkraft kan derefter beregnes ved at trække forbelastningen fra denne gennemsnitlige maksimale udgangskraft. Brug intervaller på 10 gram forudindlæsning, indtil den forudindlæsning, der resulterer i den maksimale aktive muskelkraft, er identificeret. Hver forudindlæsningsmåling skal udføres på samme måde ved at trykke på stimulusknappen på den bipolære simulator to gange nedad.For at gøre denne proces lettere, nedskred den aktive muskelkraft for hver preload og stop med at øge forbelastningen, så snart den aktive muskelkraft falder. I dette eksempel er den maksimale aktive muskelkraft switch ved en forudindlæsning på 20 gram. Forbelastningen, der giver den højeste aktive muskelkraft, med andre ord den optimale muskellængde, vil blive brugt til at måle den isometriske stivkratiske kraft.Slip spændingen på musklen og fugt musklen med opvarmet saltvand. Vent fem minutter, før målingen af isometrisk stivkrampekraft påbegyndes. Mens du venter, skal du justere stimulusintensiteten til 10 volt, føre varigheden på 0,4 millisekunder og forsinkelsen på to millisekunder.Den isometriske stivkrampe kraft måles ved hjælp af stigende frekvenser, der starter ved 30 Hertz. Skift fra parametertest til frekvenstest på softwaren, og flyt krafttransduceren til den forudbestemte optimale muskellængde. Fremkald nu den stivkrampe stimulation ved at trykke på stimulusknappen på den bipolære simulator opad i højst fem sekunder, eller indtil en krafttop er tydeligt observeret.Den optimale stivkratiske kurve stiger kraftigt og har derefter en langsomt faldende plateaufase efterfulgt af et kraftigt fald. Dokumenter krafttoppen for hver stimulusfrekvens. Lad musklen hvile ved nul preload i fem minutter og fugter musklen med opvarmet saltvand mellem hver måling.Brug intervaller på 30 Hertz og en opløsning på 10 Hertz, indtil det maksimale kraftplateau er observeret. Dette vil være den isometriske stivkrampe kraft. Brug hæfteklammer eller suturer til at lukke huden og gentag hele proceduren til den kontralaterale baglimb.Aflive dyret efter endt måling på kontralateral side. Efter at have set denne video, bør du have en god forståelse af, hvordan man reproducerbart måle den isometriske stivkrampe muskelkraft hos rotter, der har gennemgået iskiasnerven genopbygning.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Visualisering af proprioceptorer i<em&gt; Drosophila</em&gt; Larver og pupper

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other ...

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

En<em&gt; In Vitro</em&gt; Voksen Mouse Muskel-nerve Forberedelse til at studere affyringen Egenskaber af Muscle afferenter

Muscle sensory neurons innervating muscle spindles and Golgi tendon organs encode length and force changes essential to proprioception. Additional ...

Diffusion Imaging in the Rat Cervical Spinal Cord

Diffusion Imaging i Rat Cervical Spinal Cord

Magnetic resonance imaging (MRI) is the state of the art approach for assessing the status of the spinal cord noninvasively, and can be used as a ...

Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus After Deep Brain Stimulation of the Anterior Thalamic Nucleus

Analyse af genekspression Ændringer i rottehippocampus Efter Deep Brain Stimulation af den forreste thalamiske Nucleus

Deep brain stimulation (DBS) surgery, targeting various regions of the brain such as the basal ganglia, thalamus, and subthalamic regions, is an effective ...

Generation of Local CA1 &#947; Oscillations by Tetanic Stimulation

Generation of Local CA1 ÃƒÅ½Ã‚Â³ Oscillations by Tetanic Stimulation

Generation af Lokale CA1 γ Svingninger ved tetanisk Stimulation

Neuronal network oscillations are important features of brain activity in health and disease and can be modulated by a range of clinically used drugs. A ...

Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination

Visuelt fremkaldt Potentiel optagelse i en rotte model for Eksperimentel Optic Nerve Demyelinisering

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to ...

Sublimation of DAN Matrix for the Detection and Visualization of Gangliosides in Rat Brain Tissue for MALDI Imaging Mass Spectrometry

Sublimation af DAN Matrix til påvisning og Visualisering af Gangliosider i Rat Brain Tissue for MALDI Imaging massespektrometri

Sample preparation is key for optimal detection and visualization of analytes in Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization (MALDI) Imaging Mass ...

The Use of Trace Eyeblink Classical Conditioning to Assess Hippocampal Dysfunction in a Rat Model of Fetal Alcohol Spectrum Disorders

Brugen af Trace Eyeblink klassisk konditionering at vurdere hippocampus dysfunktion i en rotte Model af føtale alkohol spektrum forstyrrelser

Neonatal rats were administered a relatively high concentration of ethyl alcohol (11.9% v/v) during postnatal days 4-9, a time when the fetal brain ...

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

In Vivo Elektrofysiologiske målinger af rotte Nervus Nerve med cytoskeletale ophidselse test

Electrophysiology enables the objective assessment of peripheral nerve function in vivo. Traditional nerve conduction measures such as amplitude and ...

In Vivo Electrophysiological Measurement of Compound Muscle Action Potential from the Forelimbs in Mouse Models of Motor Neuron Degeneration

In Vivo Electrophysiological Measurement of Compound Muscle Action Potential from the Forelimbs in Mouse Models of Motor Neuron Degeneration

In Vivo Elektrofysiologiske målinger af sammensatte muskel aktionspotentialet fra forbens i musemodeller af Motor Neuron Degeneration

Assessing the functionality of the nerve axon provides detailed information on the progression of neuromuscular disorders. Electrophysiological recordings ...