Name: maximum isometric tetanic force measurement of the tibialis anterior muscle in the rat
Uploaded: 2021-06-26T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat at JoVE.com

Forskning rapportert i denne publikasjonen ble støttet av National Institute of Neurological Disorders and Stroke of the National Institutes of Health under Award Number RO1 NS 102360. Innholdet er utelukkende forfatternes ansvar og representerer ikke nødvendigvis de offisielle synspunktene til National Institutes of Health.

Alle dyreprosedyrer ble utført med godkjenning fra Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC A334818).
1. Kalibrering av krafttransduseren
<ol><li>Kontroller at datamaskinen er riktig koblet til DEN multifunksjonelle DAQ-enheten (USB-6009 Multifunctional I/O), som igjen skal kobles til krafttransduseren. MERK: Andre rottestammer og arter kan kreve en annen lastcellekrafttransduser, da høyere krefter forventes 44.</li>
	<li>Fest en tilpasset klemme laget ...

Denne protokollen beskriver en tidligere validert metode for å oppnå nøyaktige maksimale ITF-målinger av TA-muskelen i rottemodellen32. Gjenvinning av maksimal styrke etter eksperimentelle nerverekonstruksjonsbehandlinger er av primær interesse for den kliniske innstillingen, da det beviser at nerven ikke bare regenererte, men også gjorde arbeidsforbindelser med målmuskelen. ITF kan brukes i en liten nervegapmodell, for eksempel rottes isjiasnervemodellen32, og med n...

Tap av motorisk funksjon etter traumatisk perifer nerveskade har en betydelig innvirkning på livskvaliteten og sosioøkonomisk status hos pasienter1,2,3. Prognosen for denne pasientpopulasjonen forblir dårlig på grunn av minimale forbedringer i kirurgiske teknikker gjennom årene4. Direkte ende-til-ende spenningsfri epineural reparasjon danner gullstandarden kirurgisk rekonstruksjon. Men i tilfeller med utvidede nervehull interposisjon av en autolog nervegraft har vist seg å være overlegen5,6. Den tilknyttede donorstedet sykelighet og begrenset tilgjengelighet av autologe nervetransplantasjoner har pålagt behovet for alternative teknikker7,8.
Eksperimentelle dyremodeller har blitt brukt til å belyse mekanismen for perifer nerveregenerering og for å evaluere resultatene av en rekke rekonstruktive og farmakologiske behandlingsalternativer8,9. Rotte isjias nervemodellen er den mest brukte dyremodellen10. Deres lille størrelse gjør dem enkle å håndtere og huse. På grunn av deres superlative nevroregenerative potensial, kan den reduserte tiden mellom intervensjon og evaluering av resultater resultere i relativt lavere kostnader11,12. Andre fordeler ved bruken inkluderer morfologiske likheter med menneskelige nervefibre og det høye antallet komparative / historiske studier13. Selv om sistnevnte bør nærmer seg forsiktig, som et bredt utvalg av forskjellige utfallstiltak mellom studier gjør det vanskelig å sammenligne resultater14,15,16,17,18.
Utfallstiltak for å vurdere nerveregenerering spenner fra elektrofysiologi til histomorfometri, men disse metodene innebærer en korrelasjon, men måler ikke nødvendigvis direkte retur av motorisk funksjon14,15. Det kan hende at regenererende nervefibre ikke gir riktige tilkoblinger som kan føre til overestimering av antall funksjonelle tilkoblinger14,15,19,20. Den beste og klinisk mest relevante målingen for å demonstrere riktig reinnervasjon av endeorganer forblir vurdering av muskelfunksjon21,22,23. Det er imidlertid utfordrende å lage motorfunksjonsvurderingsverktøy for dyremodeller. Medinaceli et al. beskrev først gåbaneanalysen, som siden har vært den mest brukte metoden for å evaluere funksjonell utvinning i eksperimentelle perifere nervestudier21,24,25,26,27,28. Gåbaneanalysen kvantifiserer isjiasfunksjonsindeksen (SFI) basert på målinger av potetrykk fra vandrende rotter21,29. Store begrensninger i gåbaneanalysen, som tåkontrakturer, automutilation, smøring av trykket og dårlig korrelasjon med andre tiltak for reinnervasjon, har nødvendiggjort bruken av andre parametere for kvantifisering av funksjonell utvinning30,31.
I tidligere studier i Lewis rotter32 og New Zealand kaniner33, validerte vi den isometriske tetaniske kraften (ITF) måling for tibialis fremre (TA) muskel og demonstrerte effektiviteten i evalueringen av muskelgjenoppretting etter forskjellige typer nervereparasjon34,35,36,37,38,39. TA-muskelen er godt egnet på grunn av sin relativt store størrelse, innervasjon av den peroneale grenen av isjiasnerven og godt belyste biokjemiske egenskaper40,41,42,43. Når muskellengde (preload force) og elektriske parametere er optimalisert, gir ITF en side-til-side-variasjon på henholdsvis 4,4% og 7,5% hos rotter32 og kaniner33.
Denne artikkelen gir en detaljert protokoll for ITF-målingen i rottes isjiasnervemodellen, inkludert en grundig beskrivelse av nødvendig pre-kirurgisk planlegging, kirurgisk tilnærming og disseksjon av den vanlige peroneale nerven og den distale TA-muskelsenen. Ved hjelp av forhåndsbestemte verdier for stimulusintensiteten og varigheten vil den optimale muskellengden og stimuluspulsfrekvensen bli definert. Med disse fire parameterne kan ITF-en deretter måles konsekvent og nøyaktig.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% Sodium Chloride</td>
			<td>Baxter Healthcare Corporation, Deerfield, IL, USA</td>
			<td>G130203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mm Kirshner wires</td>
			<td>Pfizer Howmedica, Rutherford, NJ</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson Tissue Forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>MTK-6801226</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar electrode cables</td>
			<td>Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar stimulator device</td>
			<td>Grass SD9, Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton-tip Applicators</td>
			<td>Cardinal Health, Waukegan, IL, USA</td>
			<td>C15055-006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Mosquito forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>MTK-1201112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Force Transducer MDB-2.5</td>
			<td>Transducer Techniques, Temecula, CA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze Sponges 4x4</td>
			<td>Covidien, Mansfield, MA, USA</td>
			<td>2733</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ground cable</td>
			<td>Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane chamber</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine</td>
			<td>Ketalar, Par Pharmaceutical, Chestnut, NJ</td>
			<td>42023-115-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LabView Software</td>
			<td>National Instruments, Austin, TX</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Loop</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical curved forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>JFA-5B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical scissors</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>SAS-15R-8-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical straight forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>JF-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Retractor</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>AG-124426</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel Blade No. 15</td>
			<td>Bard-Parker, Aspen Surgical, Caledonia, MI, USA</td>
			<td>371115</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slim Body Skin Stapler</td>
			<td>Covidien, Mansfield, MA, USA</td>
			<td>8886803512</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Subminiature electrode</td>
			<td>Harvard Apparatus, Holliston, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Nerve Stimulator</td>
			<td>Checkpoint Surgical LCC, Cleveland, OH, USA</td>
			<td>9094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terrell Isoflurane</td>
			<td>Piramal Critical Care Inc., Bethlehem, PA, USA</td>
			<td>H961J19A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Testing platform</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetontomy Scissors</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>ASIM-187</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Traceable Big-Digit Timer/Stopwatch</td>
			<td>Fisher Scientific, Waltham, MA, USA</td>
			<td>S407992</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>USB-6009 multifunctional I/O data acquisition (DAQ) device</td>
			<td>National Instruments, Austin, TX</td>
			<td>779026-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vacuum Base Holder</td>
			<td>Noga Engineering &#38; Technology Ltd., Shlomi, Isreal</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Attached clamp is custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (10 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820010.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (20 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820020.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (50 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820050.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine</td>
			<td>Xylamed, Bimeda MTC Animal Health, Cambridge, Canada</td>
			<td>1XYL002</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

maximum isometric tetanic force measurement of the tibialis anterior muscle in the rat

Traumatiske nerveskader resulterer i betydelig funksjonelt tap og segmentære nervefeil krever ofte bruk av autologe interposisjonsnervetransplantasjoner. På grunn av deres begrensede tilgjengelighet og tilhørende donorsidemorbiditet, fokuserer mange studier innen nerveregenerering på alternative teknikker for å bygge bro over et segmentært nervegap. For å undersøke resultatene av kirurgiske eller farmakologiske eksperimentelle behandlingsalternativer, brukes rottes isjiasnervemodellen ofte som bioassay. Det finnes en rekke utfallsmålinger som brukes i rottemodeller for å bestemme omfanget av nerveregenerering. Den maksimale utgangskraften til målmuskelen er fortsatt det mest relevante resultatet for klinisk oversettelse av eksperimentelle terapier. Isometrisk kraftmåling av tetanisk muskelkontraksjon har tidligere blitt beskrevet som en reproduserbar og gyldig teknikk for evaluering av motorisk utvinning etter nerveskade eller reparasjon i både rotte- og kaninmodeller. I denne videoen vil vi gi en trinnvis instruksjon av denne uvurderlige prosedyren for vurdering av funksjonell gjenoppretting av tibialis fremre muskel i en rotte isjias nerve defekt modell ved hjelp av optimaliserte parametere. Vi vil beskrive de nødvendige pre-kirurgiske preparater i tillegg til kirurgisk tilnærming og disseksjon av den vanlige peroneal nerve og tibialis fremre muskel sene. Den isometriske tetaniske kraftmålingsteknikken vil bli detaljert. Å bestemme optimal muskellengde og stimuluspulsfrekvens forklares og måling av maksimal stivkrampe muskelkontraksjon er demonstrert.

Fem parametere brukes til å måle ITF-målingen. Disse inkluderer muskelspenning (preload force), stimulusintensitet (spenning), stimuluspulsfrekvens, stimulusvarighet på 0,4 ms og en forsinkelse på 2 ms. Før du måler ITF, må den optimale muskelspenningen bestemmes ved hjelp av to enkelt rykninger muskelsammentrekninger med en intensitet på 2 V under parametertesten. Disse stimuliene forårsaker dorsiflexion av poten og produserer et utgangssignal på grafen i VI (figur 5). Disse enkl...

Watch this Scientific Journal Video about Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat at JoVE.com

Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat

Evaluering av motorisk utvinning er fortsatt målestokkens resultatmål i eksperimentelle perifere nervestudier. Den isometriske tetaniske kraftmålingen av tibialis fremre muskel i rotten er et uvurderlig verktøy for å vurdere funksjonelle resultater etter rekonstruksjon av isjiasnervefeil. Metodene og nyansene er beskrevet i denne artikkelen.

Maksimal isometrisk tetanisk kraftmåling av Tibialis fremre muskel i rotten

Traumatic nerve injuries result in substantial functional loss and segmental nerve defects often necessitate the use of autologous interposition nerve ...

Det overordnede målet med denne videoen er å gi en trinnvis instruksjon om hvordan du måler den isometriske tetaniske kraften til tibialis fremre muskel i rotten, en reproduserbar og validert metode for å vurdere funksjonell utvinning etter isjiasnerveskade eller rekonstruksjon. Rotte isjias nerve defekt modellen brukes ofte til å evaluere eksperimentelle behandlingsalternativer for perifer nerveskade. For å gjenskape gullstandardbehandlingen for segmentære nervefeil hos rotter, utskilles vanligvis et 10 millimeter segment av isjiasnerven på plass som en interposisjons autograft.Ved eksperimentelle behandlinger kan nervegapet rekonstrueres ved hjelp av andre teknikker, for eksempel en nerve allograft eller kanal. For klinisk oversettelse av disse eksperimentelle teknikkene er det viktig å måle omfanget av motorisk funksjonsgjenvinning i målmuskelen. I denne videoen vil vi beskrive hvordan du gjør det for tibialis fremre muskel ved å stimulere den vanlige peroneale nerven.Start prosedyren ved å kalibrere krafttransduseren. Plasser testplattformen, som inneholder to treblokker på prosedyrebordet. Kontroller at datamaskinen er koblet til en datainnsamlingsenhet, som igjen skal kobles til krafttransduseren.Fest krafttransduseren vertikalt til testplattformen ved hjelp av vakuumbasen. Fest løkken til klemmen for kalibreringsvektene. Åpne programvaren og kjør det virtuelle instrumentet for isometrisk tetanisk kraftmåling og velg ny kalibrering.Kalibreringen starter med null vekt på løkken. Fortløpende, med 10, 20, 30 og 50 gram vekt og samle inn dataene mellom hver vektmåling. Velg prosess når alle fem vektmålingene er samlet inn.Ved en vellykket kalibrering skal grafen skildre en positiv lineær kurve, godta verdiene for å fortsette. Fjern løkken og vektene fra klemmen og flytt krafttransduseren horisontalt på testplattformen. Velg null for å fullføre kalibreringsprosessen.Etter å ha indusert anestesi ved hjelp av et isoflurankammer, barber en bakben og legg rotten på en 37 graders varmepute. Dypt bedøvet rotten med en intraperitoneal injeksjon av en ketamin- og xylazincocktail og administrere fem til seks milliliter saltvann subkutant for å opprettholde en tilstrekkelig hydreringsstatus gjennom hele prosedyren. Plasser rotten på siden og lag et 2 til 3 centimeter posterolateralt lårinnsnitt, parallelt med lårbenet.For å eksponere den peroneale nervegrenen av isjiasnerven, skille biceps femoris muskelen fra gluteus maximus og vastus lateralis muskel ved å dissekere fascialplanet mellom disse musklene. Plasser retraktoren mellom de separerte musklene for å få bedre tilgang til isjiasnerven. Identifiser trifurkasjonen av isjiasnerven i peronealnerven, tibialisnerven og den surale nerven.Bruk en buet tang for å dissekere peroneal nervegrenen fra det omkringliggende vevet. I tilfelle usikkerhet, klem forsiktig nerven og observere om motorresponsen er dorsiflexion av bakpoten. For å eksponere tibialis fremre muskel, plasser rotten på ryggen og insolider det anterolaterale aspektet av underekstremiteten, start ved kneleddet og ned til middelmådig side av poten.Isoler den distale tibialis fremre muskelsenon fra det omkringliggende vevet. Bruk en mygg tang for å direkte dissekere senen helt til innsetting og kutte senen ved innsettingspunktet. Det første trinnet i prosessen med isometrisk tetanisk kraftmåling er optimalisering av muskellengden, også kjent som parametertesten.Overfør rotten sammen med varmeputen til testplattformen bruk to 1 millimeter k-ledninger for å feste bakbenet til treblokken. Bor den første k-ledningen gjennom den distale lårbenet og den andre gjennom ankelen. Fest holderen for subminiatylektroden til testplattformen og plasser klemmen rundt plasseringen av peronealnerven.Sett bakkekabelen inn i de omkringliggende musklene og plasser tilbaketrekkingsveien for tilgang til peronealnerven. Fest de bipolare elektrodekablene til subminiatylektroden og hekt elektroden rundt peronealnerven ved hjelp av de buede tangene. Bruk klemmen på holderen til å feste posisjonen til subminiatylektroden.Klem den distale tibialis fremre muskelsenen til klemmen som er festet til krafttransduseren. For nøyaktig måling er det viktig at krafttransduseren er plassert parallelt med løpet av tibialis fremre muskel. Kontroller at rottereferansekabelen er plassert distal på subminiatylektroden og den svarte aktive elektrodekabelen proksimal.Koble både disse kablene og jordkabelen til en bipolar stimulatorenhet. For optimalisering av muskellengde, juster innstillingene til den bipolare stimulatoren til en forsinkelse på to millisekunders varighet på 0,4 millisekunder og en stimulansintensitet på 2 volt. Når alt er godt tilkoblet, sett programvaren på parametertest og trykk på utløsersamling.Øk muskellengden, også kjent som en preload, ved å flytte spakarmen festet til krafttransduseren. Forhåndsinnlastingen er det store settet på toppen av grafen på skjermen. Start med en forhåndslast på 10 gram og gi to enkle rykninger ved å trykke på stimulansknappen på den bipolare simulatoren nedover.Utgangen vil være synlig på grafen som to toppeffektkrefter, og rotten skal vise dorsiflexion av poten. Trykk på utløsersamlingen igjen for å måle disse to toppene. Vanligvis oppdager programmet automatisk toppene.I så fall trykker du godta for å fortsette. Hvis programvaren imidlertid ikke gjenkjenner toppene, klikker du på nedgangen og velger toppene manuelt. De to utgangskreftene vil i gjennomsnitt være en gjennomsnittlig toppeffektstyrke, som vil bli presentert på høyre side av grafen.Den aktive muskelkraften kan deretter beregnes ved å trekke preloaden fra denne gjennomsnittlige topputgangskraften. Bruk trinn på 10 gram preload til forhåndsinnlastingen som resulterer i maksimal aktiv muskelkraft er identifisert. Hver forhåndsinnlastingsmåling bør utføres på samme måte ved å trykke på stimulusknappen på den bipolare simulatoren to ganger nedover.For å gjøre denne prosessen enklere, skriv ned den aktive muskelkraften for hver forhåndsbelastning og slutt å øke forhåndsbelastningen så snart den aktive muskelkraften faller. I dette eksemplet er maksimal aktiv muskelkraft byttet ved en forhåndsbelastning på 20 gram. Preloaden som gir den høyeste aktive muskelkraften, med andre ord den optimale muskellengden, vil bli brukt til å måle den isometriske tetaniske kraften.Slipp spenningen på muskelen og fukt muskelen med oppvarmet saltvann. Vent fem minutter før du starter målingen av isometrisk tetanisk kraft. Mens du venter, juster stimulansintensiteten til 10 volt, led varigheten på 0,4 millisekunder og forsinkelsen på to millisekunder.Den isometriske tetaniske kraften måles ved hjelp av økende frekvenser, fra 30 Hertz. Bytt fra parametertest til frekvenstest på programvaren og flytt krafttransduseren til den forhåndsbestemte optimale muskellengden. Induser nå den tetaniske stimuleringen ved å trykke på stimulansknappen på den bipolare simulatoren oppover i maksimalt fem sekunder eller til en krafttopp er tydelig observert.Den optimale tetaniske kurven øker kraftig, og har deretter en sakte avtagende platåfase etterfulgt av en kraftig nedgang. Dokumenter krafttoppen for hver stimulusfrekvens. La muskelen hvile ved null preload i fem minutter og fukte muskelen med oppvarmet saltvann mellom hver måling.Bruk trinn på 30 Hertz og en oppløsning på 10 Hertz til maksimalt kraftplatå observeres. Dette vil være den isometriske tetaniske kraften. Bruk stifter eller suturer for å lukke huden og gjenta hele prosedyren til det kontralaterale bakbenet.Avlivet dyret etter å ha fullført målingen på den kontralaterale siden. Etter å ha sett denne videoen, bør du ha en god forståelse av hvordan du reproduserer den isometriske tetaniske muskelkraften hos rotter som har gjennomgått isjiasnervenrekonstruksjon.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Visualisering av Proprioceptors i<em&gt; Drosophila</em&gt; Larver og pupper

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other ...

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

En<em&gt; In Vitro</em&gt; Adult Mouse Muskel-nerve Forberedelse til Studerer avfyring egenskaper Muscle afferenter

Muscle sensory neurons innervating muscle spindles and Golgi tendon organs encode length and force changes essential to proprioception. Additional ...

Diffusion Imaging in the Rat Cervical Spinal Cord

Diffusjon Imaging i Rat Cervical Spinal Cord

Magnetic resonance imaging (MRI) is the state of the art approach for assessing the status of the spinal cord noninvasively, and can be used as a ...

Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus After Deep Brain Stimulation of the Anterior Thalamic Nucleus

Analyse av genuttrykk Endringer i Rat Hippocampus Etter dyp hjernestimulering av fremre talamiske Nucleus

Deep brain stimulation (DBS) surgery, targeting various regions of the brain such as the basal ganglia, thalamus, and subthalamic regions, is an effective ...

Generation of Local CA1 &#947; Oscillations by Tetanic Stimulation

Generation of Local CA1 ÃƒÅ½Ã‚Â³ Oscillations by Tetanic Stimulation

Generasjon Lokale CA1 γ Svingninger av tetanic Stimulering

Neuronal network oscillations are important features of brain activity in health and disease and can be modulated by a range of clinically used drugs. A ...

Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination

Visuell fremkalt potensial Opptak i en rottemodell of Experimental Optic Nerve Demyelinisering

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to ...

Sublimation of DAN Matrix for the Detection and Visualization of Gangliosides in Rat Brain Tissue for MALDI Imaging Mass Spectrometry

Sublimering av DAN Matrix for søking og visualisering av gangliosider i Rat hjernevev for MALDI Imaging massespektrometri

Sample preparation is key for optimal detection and visualization of analytes in Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization (MALDI) Imaging Mass ...

The Use of Trace Eyeblink Classical Conditioning to Assess Hippocampal Dysfunction in a Rat Model of Fetal Alcohol Spectrum Disorders

Bruk av spor Eyeblink klassisk betinging å vurdere hippocampus dysfunksjon i en rotte modell av Fetal Alcohol Spectrum Disorders

Neonatal rats were administered a relatively high concentration of ethyl alcohol (11.9% v/v) during postnatal days 4-9, a time when the fetal brain ...

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

I Vivo Elektrofysiologiske måling av rotte Ulnar Nerve med Axonal Excitability Testing

Electrophysiology enables the objective assessment of peripheral nerve function in vivo. Traditional nerve conduction measures such as amplitude and ...

In Vivo Electrophysiological Measurement of Compound Muscle Action Potential from the Forelimbs in Mouse Models of Motor Neuron Degeneration

In Vivo Electrophysiological Measurement of Compound Muscle Action Potential from the Forelimbs in Mouse Models of Motor Neuron Degeneration

I Vivo Elektrofysiologiske måling av sammensatte muskel handling potensial fra Forelimbs i musen modeller av Motor Neuron degenerasjon

Assessing the functionality of the nerve axon provides detailed information on the progression of neuromuscular disorders. Electrophysiological recordings ...