Name: maximum isometric tetanic force measurement of the tibialis anterior muscle in the rat
Uploaded: 2021-06-26T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat at JoVE.com

Forskning som rapporterades i denna publikation stöddes av National Institute of Neurological Disorders and Stroke of the National Institutes of Health under Award Number RO1 NS 102360. Innehållet är enbart författarnas ansvar och representerar inte nödvändigtvis de nationella hälsoinstitutens officiella åsikter.

Alla djurförsök utfördes med godkännande av Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC A334818).
1. Kalibrering av kraftgivaren
<ol><li>Kontrollera att datorn är korrekt ansluten till USB-6009 multifunktionella I/O-datainsamlingsenhet (DAQ), som i sin tur ska anslutas till kraftgivaren. OBS: Andra råttstammar och arter kan kräva en annan lastcellskraftgivare eftersom högre krafter kan förväntas 44.</li>
	<li>Fäst en anpassad klämma från en modi...

Detta protokoll beskriver en tidigare validerad metod för att förvärva exakta maximala ITF mätningar av TA muskeln i råtta modell32. Återhämtning av maximal styrka efter experimentella nerv återuppbyggnad behandlingar är av primärt intresse i den kliniska inställningen eftersom det bevisar att nerven inte bara regenereras, men också gjorde fungerande anslutningar med målmuskeln. ITF kan användas i en liten nervgap modell, såsom råtta ischias nerv modell32, o...

Förlust av motorisk funktion efter traumatisk perifera nerv skada har en betydande inverkan på livskvalitet och socioekonomisk status hos patienter1,2,3. Prognosen för denna patientpopulation är fortfarande dålig på grund av minimala förbättringar i kirurgiska tekniker under åren4. Direkt end-to-end spänning-fria epineural reparation bildar guld standard kirurgiska återuppbyggnad. Men i fall med utökade nerv luckor interposition av en autolog nerv moderplantor har visat sig vara överlägsen5,6. Den tillhörande donator webbplats sjuklighet och begränsad tillgänglighet av autolog nerv ympkvistar har infört behovet av alternativa tekniker7,8.
Experimentella djurmodeller har använts för att belysa mekanismen för perifer nervregenerering och för att utvärdera resultaten av en mängd rekonstruktiva och farmakologiska behandlingsalternativ8,9. Råtta ischias nerv modell är den vanligaste djurmodell10. Deras lilla storlek gör dem lätta att hantera och hysa. På grund av deras superlativa neuroregenerativa potential kan den minskade tiden mellan intervention och utvärdering av resultat resultera i relativt lägre kostnader11,12. Andra fördelar med dess användning inkluderar morfologiska likheter med mänskliga nervfibrer och det höga antalet jämförande / historiska studier13. Även om det senare bör närma sig försiktigt, eftersom en mängd olika utfallsmått mellan studier gör det svårt att jämföra resultat14,15,16,17,18.
Utfallsåtgärder för att bedöma nervregenerering sträcker sig från elektrofysiologi till histomorfologi, men dessa metoder innebär ett samband men mäter inte nödvändigtvis direkt återkomsten av motoriskfunktion 14,15. Regenererande nervfibrer kanske inte gör lämpliga anslutningar som kan orsaka en överskattning av antalet funktionella anslutningar14,15,19,20. Den bästa och kliniskt mest relevanta mätningen för att påvisa korrekt återinsättning av slutorgan förblir bedömning av muskelfunktion21,22,23. Att skapa motoriska funktionsbedömningsverktyg för djurmodeller är dock utmanande. Medinaceli et al. beskrev först vandringsspåranalysen, som sedan dess har varit den vanligaste metoden för att utvärdera funktionell återhämtning i experimentella periferanervstudier 21,24,25,26,27,28. Vandringsspåranalysen kvantifierar det ischiasfunktionella indexet (SFI) baserat på mätningar av tassavtryck från gångråttor21,29. Stora begränsningar av vandringsspåranalysen, såsom tåkontrakturer, automutilation, utstryk av trycket och dålig korrelation med andra åtgärder för återinsättning, har krävt användning av andra parametrar för kvantifiering av funktionellåterhämtning 30,31.
I tidigare studier på Lewis råttor32 och Nya Zeelandkaniner 33, validerade vi den isometriska tetaniska kraften (ITF) mätning för tibialis främre (TA) muskeln och visade dess effektivitet i utvärderingen av muskelåterhämtning efter olika typer av nerv reparation34,35,36,37,38,39. TA-muskeln är väl lämpad på grund av dess relativt stora storlek, innervation av den peroneala grenen av ischiasnerven och väl belyser biokemiska egenskaper40,41,42,43. När muskellängd (förbelastningskraft) och elektriska parametrar optimeras ger ITF en variabilitet från sida till sida på 4,4% respektive 7,5% hos råttor32 respektivekaniner 33.
Denna artikel ger ett detaljerat protokoll av ITF mätning i råtta ischias nerv modell, inklusive en grundlig beskrivning av den nödvändiga pre-surgical planering, kirurgiska tillvägagångssätt och dissekering av den gemensamma peroneal nerv och distala TA muskel sena. Med hjälp av förutbestämda värden för stimulansintensiteten och varaktigheten kommer den optimala muskellängden och stimulanspulsfrekvensen att definieras. Med dessa fyra parametrar kan ITF därefter mätas konsekvent och noggrant.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% Sodium Chloride</td>
			<td>Baxter Healthcare Corporation, Deerfield, IL, USA</td>
			<td>G130203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mm Kirshner wires</td>
			<td>Pfizer Howmedica, Rutherford, NJ</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adson Tissue Forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>MTK-6801226</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar electrode cables</td>
			<td>Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar stimulator device</td>
			<td>Grass SD9, Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton-tip Applicators</td>
			<td>Cardinal Health, Waukegan, IL, USA</td>
			<td>C15055-006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Curved Mosquito forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>MTK-1201112</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Force Transducer MDB-2.5</td>
			<td>Transducer Techniques, Temecula, CA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze Sponges 4x4</td>
			<td>Covidien, Mansfield, MA, USA</td>
			<td>2733</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ground cable</td>
			<td>Grass Instrument, Quincy, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane chamber</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine</td>
			<td>Ketalar, Par Pharmaceutical, Chestnut, NJ</td>
			<td>42023-115-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LabView Software</td>
			<td>National Instruments, Austin, TX</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Loop</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical curved forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>JFA-5B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical scissors</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>SAS-15R-8-18</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microsurgical straight forceps</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>JF-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Retractor</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>AG-124426</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel Blade No. 15</td>
			<td>Bard-Parker, Aspen Surgical, Caledonia, MI, USA</td>
			<td>371115</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slim Body Skin Stapler</td>
			<td>Covidien, Mansfield, MA, USA</td>
			<td>8886803512</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Subminiature electrode</td>
			<td>Harvard Apparatus, Holliston, MA</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical Nerve Stimulator</td>
			<td>Checkpoint Surgical LCC, Cleveland, OH, USA</td>
			<td>9094</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terrell Isoflurane</td>
			<td>Piramal Critical Care Inc., Bethlehem, PA, USA</td>
			<td>H961J19A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Testing platform</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tetontomy Scissors</td>
			<td>ASSI, Westbury, NY, USA</td>
			<td>ASIM-187</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Traceable Big-Digit Timer/Stopwatch</td>
			<td>Fisher Scientific, Waltham, MA, USA</td>
			<td>S407992</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>USB-6009 multifunctional I/O data acquisition (DAQ) device</td>
			<td>National Instruments, Austin, TX</td>
			<td>779026-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vacuum Base Holder</td>
			<td>Noga Engineering &#38; Technology Ltd., Shlomi, Isreal</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Attached clamp is custom-made</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (10 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820010.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (20 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820020.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Weight (50 g)</td>
			<td>Denver Instruments, Denver, CO, USA</td>
			<td>820050.4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine</td>
			<td>Xylamed, Bimeda MTC Animal Health, Cambridge, Canada</td>
			<td>1XYL002</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

maximum isometric tetanic force measurement of the tibialis anterior muscle in the rat

Traumatiska nerv skador resulterar i betydande funktionella förlust och segmental nerv defekter kräver ofta användning av autolog interposition nerv ympkvistar. På grund av deras begränsade tillgänglighet och tillhörande donator sida sjuklighet, många studier inom området nerv regenerering fokuserar på alternativa tekniker för att överbrygga en segmental nerv gap. För att undersöka resultaten av kirurgiska eller farmakologiska experimentella behandlingsalternativ används råtta ischias nerv modell ofta som en bioassay. Det finns en mängd olika utfallsmätningar som används i råttmodeller för att bestämma omfattningen av nervregenerering. Den maximala utdatakraften hos målmuskeln är fortfarande det mest relevanta resultatet för klinisk översättning av experimentella terapier. Isometrisk kraftmätning av stelkramp muskelkontraktion har tidigare beskrivits som en reproducerbar och giltig teknik för att utvärdera motorisk återhämtning efter nervskada eller reparation i både råtta och kanin modeller. I den här videon kommer vi att ge en steg-för-steg-instruktion av detta ovärderliga förfarande för bedömning av funktionell återhämtning av tibialis främre muskeln i en råtta ischias nerv defekt modell med hjälp av optimerade parametrar. Vi kommer att beskriva de nödvändiga pre-kirurgiska preparat utöver kirurgiska tillvägagångssätt och dissekering av gemensamma peroneal nerv och tibialis främre muskel sena. Den isometriska tetaniska kraftmätningstekniken kommer att specificeras. Bestämning av optimal muskellängd och stimulanspulsfrekvens förklaras och mätning av maximal stelkramtisk muskelkontraktion påvisas.

Fem parametrar används för att mäta ITF-mätningen. Dessa inkluderar muskelspänning (förbelastningskraft), stimulansintensitet (spänning), stimulanspulsfrekvens, stimulanstid på 0,4 ms och en fördröjning på 2 ms. Innan ITF mäts måste den optimala muskelspänningen bestämmas med hjälp av två muskelsammandragningar med en intensitet av 2 V under parametertestet. Dessa stimuli orsakar dorsiflexion av tassen och ger en utgångssignal på grafen i VI (Figur 5). Dessa enda ryckkurvo...

Watch this Scientific Journal Video about Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat at JoVE.com

Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat

Utvärdering av motorisk återhämtning förblir riktmärket resultatet åtgärd i experimentella perifera nerv studier. Den isometriska stelkramp kraft mätning av tibialis främre muskeln i råtta är ett ovärderligt verktyg för att bedöma funktionella resultat efter återuppbyggnad av ischias nerv defekter. Metoderna och nyanserna beskrivs i den här artikeln.

Maximal isotrisk stelkramp mätning av tibialis främre muskeln hos råtta

Traumatic nerve injuries result in substantial functional loss and segmental nerve defects often necessitate the use of autologous interposition nerve ...

Det övergripande målet med denna video är att ge en steg-för-steg-instruktion om hur man mäter den isometriska stelkramtiska kraften hos tibialis främre muskeln hos råttan, en reproducerbar och validerad metod för att bedöma funktionell återhämtning efter ischiasnervskada eller rekonstruktion. Råtta ischias nerv defekt modell används ofta för att utvärdera experimentella behandlingsalternativ för perifera nerv skada. För att replikera guldstandardbehandlingen för segmentala nervdefekter hos råttor, vanligtvis är ett 10 millimeters segment av ischiasnerven struket omvänd på plats som en interposition autograft.Vid experimentella behandlingar kan nervgapet rekonstrueras med andra tekniker, såsom en nerv allograft eller ledning. För klinisk översättning av dessa experimentella tekniker är det viktigt att mäta omfattningen av motorisk funktion återhämtning i målmuskeln. I den här videon kommer vi att beskriva hur man gör det för tibialis främre muskeln genom att stimulera den gemensamma peroneal nerven.Starta proceduren genom att kalibrera kraftgivaren. Placera testplattformen, som innehåller två träblock på procedurbordet. Kontrollera att datorn är ansluten till en datainsamlingsenhet, som i sin tur ska anslutas till kraftgivaren.Fäst kraftgivaren vertikalt på testplattformen med hjälp av dess vakuumbas. Fäst slingan på klämman för kalibreringsvikterna. Öppna programvaran och kör det virtuella instrumentet för isometrisk tetanisk kraftmätning och välj ny kalibrering.Kalibreringen börjar med noll vikt på slingan. I följd, med 10, 20, 30 och 50 gram vikt och samla in data mellan varje viktmätning. Välj process när alla fem viktmätningarna har samlats in.Vid en lyckad kalibrering bör diagrammet visa en positiv linjär kurva, acceptera värdena för att fortsätta. Ta bort slingan och vikterna från klämman och flytta kraftgivaren horisontellt på testplattformen. Välj noll för att avsluta kalibreringsprocessen.Efter att ha inducera anestesi med hjälp av en isoflurankammare, raka en bakben och placera råttan på en 37 graders värmeplatta. Bedövade djupt råttan med en intraperitoneal injektion av en ketamin och xylazin cocktail och administrera fem till sex milliliter saltlösning subkutant för att upprätthålla en adekvat hydrering status under hela förfarandet. Placera råttan på sidan och skapa ett 2 till 3 centimeters bakre lårsnitt, parallellt med lårbenet.För att exponera den peroneal nerv grenen av ischias nerv, separera biceps femoris muskeln från gluteus maximus och vastus lateralis muskel genom att dissekera fascial planet mellan dessa muskler. Placera upprullningsdonet mellan de separerade musklerna för att få bättre tillgång till ischiasnerven. Identifiera trifurcation av ischiasnerven i peroneal nerv, tibialis nerv och sural nerv.Använd en krökt tång för att dissekera peronealnerven från den omgivande vävnaden. Vid osäkerhet, nyp försiktigt nerven och observera om motorsvaret är dorsiflexion av bakpoten. För att exponera tibialis främre muskeln, placera råttan på ryggen och inkabilisera den anterolaterala aspekten av nedre delen, börja vid knäleden och gå ner till tassens mediodorsala sida.Isolera distala tibialis främre muskel sena från den omgivande vävnaden. Använd en myggtång för att trubbigt dissekera senan hela vägen till dess införande och skär senan vid insättningspunkten. Det första steget i processen med isometrisk ttanisk kraftmätning är optimering av muskellängden, även känd som parametertestet.Överför råttan tillsammans med värmedynan till testplattformen använd två 1 millimeters k-ledningar för att fixera bakbenet till träblocket. Borra den första k-tråden genom det distala lårbenet och den andra genom fotleden. Fäst hållaren för subminiaturelektroden på testplattformen och placera klämman runt peronealnervens placering.För in jordkabeln i de omgivande musklerna och placera tillbaka upprullningsdonet för åtkomst till peronealnerven. Fäst de bipolära elektrodkablar på subminiturelektroden och haka elektroden runt peronealnerven med hjälp av de böjda tångarna. Använd klämman på hållaren för att fixera underminiturelektrodens läge.Kläm fast den distala tibialis främre muskelsenan på klämman som är fäst vid kraftgivaren. För noggrann mätning är det viktigt att kraftomvandatorn placeras parallellt med tibialis främre muskelns förvans. Se till att råttreferenskabeln placeras distal på subminiaturelektroden och den svarta aktiva elektrodkabeln proximal.Anslut både dessa kablar och jordkabeln till en bipolär stimulatoranordning. För optimering av muskellängd, justera inställningarna för den bipolära stimulatorn till en fördröjning av två millisekunder varaktighet på 0,4 millisekunder och en stimulansintensitet på 2 volt. När allt är väl anslutet ställer du in programvaran på parametertest och trycker på triggersamling.Öka muskellängden, även känd som en förladdning, genom att flytta spakens arm fäst vid kraftgivaren. Förladdningen är det stora kitet ovanpå diagrammet på skärmen. Börja med en förladdning på 10 gram och ge två enda ryckningar genom att trycka på stimulansknappen på den bipolära simulatorn nedåt.Utgången kommer att vara synlig på diagrammet som två topputgångskrafter och råttan ska visa dorsiflexion av tassen. Tryck på utlösarsamlingen igen för att mäta dessa två toppar. Vanligtvis upptäcker programmet automatiskt topparna.I så fall accepterar pressen att fortsätta. Om programvaran dock inte känner igen topparna klickar du på nedgången och väljer topparna manuellt. De två uteffektkrafterna kommer att vara genomsnittliga till en genomsnittlig toppeffektkraft, som kommer att presenteras på höger sida av diagrammet.Den aktiva muskelkraften kan sedan beräknas genom att subtrahera förladdningen från denna genomsnittliga toppeffektkraft. Använd steg om 10 gram förladdning tills förladdningen som resulterar i maximal aktiv muskelkraft identifieras. Varje förladdningsmätning bör utföras på samma sätt genom att trycka på stimulansknappen på den bipolära simulatorn två gånger nedåt.För att göra denna process enklare, skriv ner den aktiva muskelkraften för varje förladdning och sluta öka förladdningen så snart den aktiva muskelkraften sjunker. I det här exemplet är den maximala aktiva muskelkraften switch vid en förladdning på 20 gram. Förladdningen som ger den högsta aktiva muskelkraften, med andra ord den optimala muskellängden, kommer att användas för att mäta den isometriska stelkramtiska kraften.Släpp spänningen på muskeln och fukta muskeln med uppvärmd saltlösning. Vänta fem minuter innan du påbörjar mätningen av isometrisk stelkramp. Justera stimulansintensiteten till 10 volt medan du väntar, led varaktigheten på 0,4 millisekunder och fördröjningen på två millisekunder.Den isometriska stelkrampkraften mäts med ökande frekvenser, från och med 30 Hertz. Växla från parametertest till frekvenstest på programvaran och flytta kraftomvandlaren till den förutbestämda optimala muskellängden. Framkalla nu den stelkramtiska stimuleringen genom att trycka på stimulansknappen på den bipolära simulatorn uppåt i högst fem sekunder eller tills en krafttopp tydligt observeras.Den optimala stelkrampkurvan ökar kraftigt och har sedan en långsamt minskande platåfas följt av en kraftig minskning. Dokumentera krafttoppen för varje stimulansfrekvens. Låt muskeln vila vid noll förladdning i fem minuter och återfukta muskeln med uppvärmd saltlösning mellan varje mätning.Använd steg om 30 Hertz och en upplösning på 10 Hertz tills den maximala kraftplatån observeras. Detta kommer att vara den isometriska stelkrampkraften. Använd häftklamrar eller suturer för att stänga huden och upprepa hela proceduren till den kontralaterala bakbenet.Avliva djuret efter avslutad mätning på kontralateralsidan. Efter att ha tittat på den här videon bör du ha en god förståelse för hur du reproducerbart mäter den isometriska stelkramtiska muskelkraften hos råttor som har genomgått ischiasnervrekonstruktion.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Visualization of Proprioceptors in Drosophila Larvae and Pupae

Visualisering av proprioceptorer i<em&gt; Drosophila</em&gt; Larver och puppor

Proprioception is the ability to sense the motion, or position, of body parts by responding to stimuli arising within the body. In fruitflies and other ...

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

Ett<em&gt; In Vitro</em&gt; Adult Mouse Muskel-nerv Förberedelse för Studera Förbränningsegenskaper för Muscle afferenter

Muscle sensory neurons innervating muscle spindles and Golgi tendon organs encode length and force changes essential to proprioception. Additional ...

Diffusion Imaging in the Rat Cervical Spinal Cord

Diffusion Imaging i Rat Cervical Spinal Cord

Magnetic resonance imaging (MRI) is the state of the art approach for assessing the status of the spinal cord noninvasively, and can be used as a ...

Analysis of Gene Expression Changes in the Rat Hippocampus After Deep Brain Stimulation of the Anterior Thalamic Nucleus

Analys av genuttryck Förändringar i Rat Hippocampus Efter Deep Brain Stimulation av Anterior Thalamic Nucleus

Deep brain stimulation (DBS) surgery, targeting various regions of the brain such as the basal ganglia, thalamus, and subthalamic regions, is an effective ...

Generation of Local CA1 &#947; Oscillations by Tetanic Stimulation

Generation of Local CA1 ÃƒÅ½Ã‚Â³ Oscillations by Tetanic Stimulation

Generation av lokala CA1 γ Svängningar från tetanisk Stimulering

Neuronal network oscillations are important features of brain activity in health and disease and can be modulated by a range of clinically used drugs. A ...

Visual Evoked Potential Recording in a Rat Model of Experimental Optic Nerve Demyelination

Visual evoked potential inspelning i en råttmodell av experimentell Optic Nerve Demyelinisering

The visual evoked potential (VEP) recording is widely used in clinical practice to assess the severity of optic neuritis in its acute phase, and to ...

Sublimation of DAN Matrix for the Detection and Visualization of Gangliosides in Rat Brain Tissue for MALDI Imaging Mass Spectrometry

Sublimering av DAN Matrix för detektion och visualisering av gangliosider i råtthjärnvävnad för MALDI Imaging Mass Spectrometry

Sample preparation is key for optimal detection and visualization of analytes in Matrix-assisted Laser Desorption/Ionization (MALDI) Imaging Mass ...

The Use of Trace Eyeblink Classical Conditioning to Assess Hippocampal Dysfunction in a Rat Model of Fetal Alcohol Spectrum Disorders

Användning av Trace Blink klassisk betingning att bedöma Hippocampus dysfunktion i en råtta modell av fetala alkoholeffekter spektrum

Neonatal rats were administered a relatively high concentration of ethyl alcohol (11.9% v/v) during postnatal days 4-9, a time when the fetal brain ...

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

In Vivo Elektrofysiologisk mätning av råtta ulnarisnerven med Axonal retbarhet testning

Electrophysiology enables the objective assessment of peripheral nerve function in vivo. Traditional nerve conduction measures such as amplitude and ...

In Vivo Electrophysiological Measurement of Compound Muscle Action Potential from the Forelimbs in Mouse Models of Motor Neuron Degeneration

In Vivo Electrophysiological Measurement of Compound Muscle Action Potential from the Forelimbs in Mouse Models of Motor Neuron Degeneration

In Vivo Elektrofysiologisk mätning av sammansatta muskel aktionspotential från frambenen i musmodeller av motorneuronen Degeneration

Assessing the functionality of the nerve axon provides detailed information on the progression of neuromuscular disorders. Electrophysiological recordings ...