Name: microdissection of mouse brain into functionally and anatomically different regions
Uploaded: 2021-02-15T12:30:00
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Wir danken Frau Seshmalini Srinivasan, Herrn Stephen Butler und Frau Pamela Spellman für die experimentelle Unterstützung und Frau Dana Youssef für die Bearbeitung des Manuskripts. Die finanzielle Unterstützung von USAMRDC wird dankbar gewürdigt. Die Genfer Stiftung trug zu dieser Arbeit bei und wurde durch Mittel des Military and Operational Medicine Research Area Directorate III über das US Army Research Office unterstützt.
Verzichtserklärung:
Das Material wurde vom Walter Reed Army Institute of Research überprüft. Gegen die Darstellung und/oder Veröffentlichung ist nichts einzuwenden. Die hierin enthaltenen Meinungen oder Behauptungen sind die privaten Ansichten des Autors und dürfen nicht als offiziell ausgelegt werden oder spiegeln wahre Ansichten des Department of the Army oder des Department of Defense wider. Die Forschung wurde unter einem genehmigten Tierverwendungsprotokoll in einer AAALAC-akkreditierten Einrichtung in Übereinstimmung mit dem Tierschutzgesetz und anderen Bundesgesetzen und -vorschriften in Bezug auf Tiere und Tierversuche durchgeführt und entspricht den Grundsätzen des Leitfadens für die Pflege und Verwendung von Labortieren, NRC Publication, Ausgabe 2011.

Die Handhabung und die Versuchsverfahren der Tiere wurden in Übereinstimmung mit europäischen, nationalen und institutionellen Richtlinien für die Tierpflege durchgeführt. Alle Tierversuche wurden vom Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) am US Army Center for Environmental Health Research, jetzt Walter Reed Army Institute of Research (WRAIR), genehmigt und in einer von der Association for the Assessment and Accreditation of Laboratory Animal Care International (AAALAC) akkreditierten Einrichtung durchg...

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C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Micro-dissection+of+rat+brain+for+RNA+or+protein+extraction+from+specific+brain+region.">Micro-dissection of rat brain for RNA or protein extraction from specific brain region.</a> Journal of Visualized Experiments. (7), (2007).</li><li>Rajmohan, V., Mohandas, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+limbic+system.">The limbic system.</a> Indian Journal of Psychiatry. 49 (2), 132-139 (2007).</li></ol>

Das Gehirn von Säugetieren ist ein komplexes Organ, das aus einer Reihe morphologisch unterschiedlicher und funktionell einzigartiger Zellen mit verschiedenen molekularen Signaturen und mehreren Regionen besteht, die spezialisierte und diskrete Funktionen erfüllen. Das hier beschriebene Präparierverfahren kann je nach den Anforderungen des Labors mehrere Ziele haben. In unserem Labor untersuchten wir die Transkription in mehreren Gehirnregionen, die von Mäusen gesammelt wurden, die PTBS wie Stress ausgesetzt waren<su...

Das Gehirn bildet zusammen mit dem Rückenmark und der Netzhaut das zentrale Nervensystem, das komplexe Verhaltensweisen ausführt, die von spezialisierten, präzise positionierten und interagierenden Zelltypen im gesamten Körper gesteuert werden1. Das Gehirn ist ein komplexes Organ mit Milliarden von miteinander verbundenen Neuronen und Gliazellen mit präzisen Schaltkreisen, die zahlreiche Funktionen erfüllen. Es ist eine bilaterale Struktur mit zwei verschiedenen Lappen und verschiedenen zellulären Komponenten2. Das Rückenmark verbindet das Gehirn mit der Außenwelt und wird durch Knochen, Hirnhäute und Liquor geschützt und leitet Nachrichten zum und vom Gehirn 2,3,4. Die Oberfläche des Gehirns, die Großhirnrinde, ist uneben und hat deutliche Falten, genannt Gyri, und Rillen, genannt Sulci, die das Gehirn in funktionelle Zentren trennen5. Der Kortex ist bei Säugetieren glatt mit einem kleinen Gehirn 6,7. Es ist wichtig, die Architektur des menschlichen Gehirns zu charakterisieren und zu untersuchen, um die Störungen im Zusammenhang mit den verschiedenen Gehirnregionen sowie seine funktionellen Schaltkreise zu verstehen. Die neurowissenschaftliche Forschung hat sich in den letzten Jahren erweitert und eine Vielzahl von experimentellen Methoden wird verwendet, um die Struktur und Funktion des Gehirns zu untersuchen. Entwicklungen auf dem Gebiet der molekularen und systemischen Biologie haben eine neue Ära der Erforschung der komplexen Beziehung zwischen Gehirnstrukturen und der Funktionsweise von Molekülen eingeleitet. Darüber hinaus expandieren Molekularbiologie, Genetik und Epigenetik rasant, was es uns ermöglicht, unser Wissen über die zugrunde liegenden Mechanismen zu erweitern, die an der Funktionsweise von Systemen beteiligt sind. Diese Analysen können auf einer viel lokaleren Basis durchgeführt werden, um die Erforschung und Entwicklung wirksamerer Therapien gezielt zu unterstützen.
Das Gehirn von Säugetieren ist strukturell in klar identifizierbare diskrete Regionen unterteilt; Die funktionelle und molekulare Komplexität dieser diskreten Strukturen ist jedoch noch nicht klar verstanden. Die multidimensionale und vielschichtige Natur des Hirngewebes macht es schwierig, diese Landschaft auf funktioneller Ebene zu untersuchen. Darüber hinaus erschwert die Tatsache, dass mehrere Funktionen von derselben Struktur ausgeführt werden und umgekehrt, das Verständnis des Gehirns weiter8. Es ist wichtig, dass der experimentelle Ansatz zur strukturellen und funktionellen Charakterisierung von Hirnregionen präzise Forschungsmethoden verwendet, um eine Konsistenz bei der Stichprobe für die Korrelation der neuroanatomischen Architektur mit der Funktion zu erreichen. Die Komplexität des Gehirns wurde kürzlich mit Hilfe der Einzelzellsequenzierung 9,10 erklärt, wie z.B. dem Gyrus temporalis des menschlichen Gehirns, das aus 75 verschiedenen Zelltypen besteht 11. Durch den Vergleich dieser Daten mit denen aus einer analogen Region des Mausgehirns zeigt die Studie nicht nur Ähnlichkeiten in ihrer Architektur und Zelltypen, sondern zeigt auch die Unterschiede auf. Um die komplexen Mechanismen zu entschlüsseln, ist es daher wichtig, verschiedene Regionen des Gehirns mit voller Präzision zu untersuchen. Konservierte Strukturen und Funktionen zwischen einem menschlichen und einem Mausgehirn ermöglichen die Verwendung einer Maus als vorläufiges Surrogat zur Aufklärung der menschlichen Gehirnfunktion und der Verhaltensergebnisse.
Mit der Weiterentwicklung systembiologischer Ansätze ist die Gewinnung von Informationen aus diskreten Hirnregionen bei Nagetieren zu einem Schlüsselverfahren in der neurowissenschaftlichen Forschung geworden. Während einige Protokolle wie die Lasererfassungsmikrodissektion12 teuer sein können, sind mechanische Protokolle kostengünstig und werden mit allgemein verfügbaren Werkzeugendurchgeführt 13,14. Wir haben mehrere Gehirnregionen für transkriptomische Assays15 verwendet und ein praktisches und schnelles Verfahren entwickelt, um Maushirnregionen von Interesse Schritt für Schritt in kurzer Zeit zu sezieren. Nach dem Sezieren können diese Proben sofort unter kalten Bedingungen gelagert werden, um die Nukleinsäuren und Proteine dieser Gewebe zu erhalten. Unser Ansatz kann schneller durchgeführt werden, was zu einer hohen Effizienz führt und weniger Chancen für eine Gewebeverschlechterung zulässt. Dies erhöht letztendlich die Chancen, qualitativ hochwertige, reproduzierbare Experimente mit Hirngewebe zu generieren.

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		<tr>
			<td>Brain Removal</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Deaver scissors</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-6762</td>
			<td>5.5&#34; straight sharp/sharp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Deaver scissors</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-6763</td>
			<td>5.5&#34; curved sharp/sharp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Delicate operating scissors</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-6703</td>
			<td>4.75&#34; curved sharp/sharp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Delicate operating scissors</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-6702</td>
			<td>4.75&#34; straight sharp/sharp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light operating scissors</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-6753</td>
			<td>5&#34; curved Sharp/Sharp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro spatula, radius and tapered flat ends</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>stainless steel mirror finish</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Operating scissors 6.5&#34;</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-6846</td>
			<td>curved sharp/sharp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue forceps</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-8160</td>
			<td>4.5&#8221; 1X2 teeth 2mm tip width</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rongeur (optional)</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-8321 many styles to choose</td>
			<td>Lempert Rongeur 6.5&#34; 2X8mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pituitary Dissection</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel handle</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-9843</td>
			<td>Scalpel Handle #3 Solid 4&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>and blades</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-9801-11</td>
			<td>Sterile Scalpel Blades:#11 Box 100 40mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Super fine forceps Inox</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-4955</td>
			<td>tip size 0.025 X 0.005 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Brain Dissection</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>A magnification visor</td>
			<td>Penn Tool Col</td>
			<td>40-178-6</td>
			<td>2.2x Outer and 3.3x Inner Lens Magnification, Rectangular Magnifier</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissection cold plate</td>
			<td>Cellpath.com</td>
			<td>JRI-0100-00A</td>
			<td>Iceberg cold plate &#38; base</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graefe forceps, full curve extra delicate</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-5138</td>
			<td>0.5 mm Tip 4&#8221; (10 cm) long</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Light operating scissors</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-6753</td>
			<td>5&#34; curved sharp/sharp</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel handle</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-9843 (repeated above)</td>
			<td>Scalpel Handle #3 Solid 4&#34;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>and blades (especially #11)</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-9801-11 (repeated above)</td>
			<td>Sterile Scalpel Blades:#11 Box 100 40mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spatula</td>
			<td>Amazon</td>
			<td>MS-SQRD9-4</td>
			<td>Double Ended Spatula Square AND Round End</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue forceps</td>
			<td>Roboz Surgical Store</td>
			<td>RS-8160 (repeated above)</td>
			<td>4.5&#8221; 1X2 teeth</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

microdissection of mouse brain into functionally and anatomically different regions

Das Gehirn ist die Kommandozentrale für das Nervensystem von Säugetieren und ein Organ mit enormer struktureller Komplexität. Geschützt im Schädel besteht das Gehirn aus einer äußeren Hülle aus grauer Substanz über den Hemisphären, die als Großhirnrinde bekannt ist. Unter dieser Schicht befinden sich viele andere spezialisierte Strukturen, die für mehrere Phänomene unerlässlich sind, die für die Existenz wichtig sind. Die Entnahme von Proben bestimmter grober Hirnregionen erfordert schnelle und präzise Sezierschritte. Es versteht sich, dass auf mikroskopischer Ebene viele Teilregionen existieren und wahrscheinlich die willkürlichen regionalen Grenzen überschreiten, die wir für diese Analyse auferlegen.
Mausmodelle werden routinemäßig verwendet, um menschliche Gehirnfunktionen und Krankheiten zu untersuchen. Veränderungen in den Genexpressionsmustern können auf bestimmte Gehirnbereiche beschränkt sein, die auf einen bestimmten Phänotyp abzielen, abhängig vom erkrankten Zustand. Daher ist es von großer Bedeutung, die Regulation der Transkription in Bezug auf ihre genau definierte strukturelle Organisation zu untersuchen. Ein vollständiges Verständnis des Gehirns erfordert die Untersuchung verschiedener Gehirnregionen, die Definition von Verbindungen und die Identifizierung wichtiger Unterschiede in den Aktivitäten jeder dieser Gehirnregionen. Ein umfassenderes Verständnis jeder dieser verschiedenen Regionen könnte den Weg für neue und verbesserte Behandlungen auf dem Gebiet der Neurowissenschaften ebnen. Hier diskutieren wir eine Schritt-für-Schritt-Methodik zur Zerlegung des Mausgehirns in sechzehn verschiedene Regionen. In diesem Verfahren haben wir uns auf die Entfernung und Dissektion des Gehirns der männlichen Maus C57Bl / 6J (6-8 Wochen alt) unter Verwendung neuroanatomischer Orientierungspunkte konzentriert, um diskrete funktionell relevante und verhaltensrelevante Gehirnregionen zu identifizieren und zu beproben. Diese Arbeit wird dazu beitragen, eine starke Grundlage auf dem Gebiet der Neurowissenschaften zu schaffen, was zu fokussierteren Ansätzen im tieferen Verständnis der Gehirnfunktion führt.

Unser Verständnis der komplexen Gehirnstruktur und -funktion entwickelt sich schnell weiter und verbessert sich. Das Gehirn enthält mehrere verschiedene Regionen und der Aufbau einer molekularen Karte kann uns helfen, besser zu verstehen, wie das Gehirn funktioniert. In diesem Methodenpapier haben wir die Dissektion des Mausgehirns in mehrere verschiedene Regionen diskutiert (Tabelle 1). In diesem Protokoll werden die Strukturen anhand der kritischen Orientierungspunkte identifiziert und erreicht, inde...

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Microdissection of Mouse Brain into Functionally and Anatomically Different Regions

Wir präsentieren ein praktisches, schrittweises, schnelles Protokoll für die Entfernung und Dissektion diskreter Regionen aus frischem Hirngewebe von Mäusen. Die Gewinnung von Hirnregionen für molekulare Analysen ist in vielen neurowissenschaftlichen Laboren zur Routine geworden. Diese Gehirnregionen werden sofort eingefroren, um qualitativ hochwertige transkriptomische Daten für die Analyse auf Systemebene zu erhalten.

Mikrodissektion des Mausgehirns in funktionell und anatomisch unterschiedliche Regionen

The brain is the command center for the mammalian nervous system and an organ with enormous structural complexity. Protected within the skull, the brain ...

Das Studium verschiedener Hirnregionen ist ein Sprungbrett zum Verständnis der molekularen und strukturellen Komplexität des Gehirns. Dieses Protokoll beschreibt eine systematische Dissektion des Mausgehirns, um verschiedene Hirnregionen zu isolieren. Aus der Perspektive der Gehirnanatomie ist es ein Top-Down-Ansatz, der leicht reproduzierbar ist.Dieses Protokoll bietet zwei Vorteile. Erstens bietet dieser Ansatz die Möglichkeit, molekulare Grundlagen kleiner, aber kritischer Hirnregionen zu verstehen. Zweitens ist dieser gesamte Dissektionsprozess kurz genug, um die Erhaltung der molekularen Integrität zu gewährleisten, eine entscheidende Voraussetzung für Rücken- und molekulare Assays.Dieses Verfahren erfordert Übung und schonende Handhabung. Das Timing ist hier sehr wichtig, um die strukturellen Wahrzeichen zu erhalten, und kann mit richtiger Ausbildung und Übung erreicht werden. Seid Muhie, ein Forschungschemiker und Bioinformatiker aus unserem Labor, demonstriert das Verfahren der Entfernung des Gehirns von Mäusen.James Meyerhoff, ein Neurowissenschaftler aus unserem Labor, wird das Verfahren der Hirndissektion von Mäusen weiter demonstrieren. Um zu beginnen, reinigen und entfernen Sie die Haut für einen guten Halt. Klemmen Sie den Oberkiefer des enthaupteten Kopfes mit einem Hämostat und verwenden Sie eine Gaze, um die Kopfhaut rostral zu reflektieren.Führen Sie die fein gebogene Schere in das Foramen magnum ein, um die anhaftenden Hirnhäute zu trennen. Führen Sie dann die Schere an der Öffnung der Schädelbasis ein, wo das Rückenmark verläuft, wobei die Klinge vertikal zeigt, aber parallel zur Innenfläche des Basalplattenknochens und gegen sie drückt, wobei die Klinge um 45 Grad nach links und dann nach rechts gedreht wird. Entfernen Sie das Hinterhauptsbein im intraparietalen Knochen, um das Kleinhirn freizulegen.Schieben Sie die Schere rostral entlang der mittleren sagittalen Naht bis zum Bregma und schneiden Sie sie durch Anheben nach oben, um eine Platzwunde der zerebralen Kortikale zu vermeiden. Wenn die Parietaknochen angehoben werden, identifizieren und schneiden Sie die verbleibenden meningealen Anhänge. Machen Sie zwei parallele Schnitte in der sagittalen Ebene und entfernen Sie die Fragmente des Stirnbeins, um eine Verletzung der Gehirnoberfläche zu vermeiden.Während Sie meningeale Anhänge und Hirnnerven schneiden, drehen Sie den Schädel um, damit die Schwerkraft die Entfernung des Gehirns in eine kleine Tasse unterstützen kann, die mit Kochsalzlösung vorgefüllt ist. Halten Sie die Gehörbulle intakt, damit die Anatomie der Hypophyse identifizierbar ist. Machen Sie einen extrem kleinen parasaggitalen Schnitt auf beiden Seiten im Kamm des Membranzeltes, das die Hypophyse an seiner Stelle hält, und heben Sie den hinteren Lappen der Hypophyse mit einer ultrafeinen Pinzette an.Machen Sie einen sagittalen Schnitt zwischen den seitlichen Rändern des Vorderlappens der Hypophyse im nächsten Trigeminusnerv und heben Sie dann den Vorderlappen der Hypophyse heraus. Richten Sie die Quelle des weißen Lichts über das Gewebe. Legen Sie das Gehirn auf einen vorgekühlten Edelstahlblock und halten Sie den Block kalt, indem Sie ihn mit Eis in einer eiskalten Salzlösung umgeben.Befeuchten Sie das Gewebe regelmäßig mit eiskalter Kochsalzlösung, um die Strukturen zu erhalten. Positionieren Sie das Gehirn so, dass die Hirnkortices nach oben zeigen. Entfernen Sie mit einer kleinen gebogenen Pinzette das Kleinhirn.Schieben Sie mit dem dorsalen Ansatz die geschlossenen Klingen einer kleinen gebogenen Pinzette unter das Corpus callosum und spreizen Sie es vorsichtig, um den Neokortex bilateral zurückzuziehen, um die kritisch hervorstechenden Mittellinien-Orientierungspunkte zu erhalten. Schließlich wären Strukturen wie optischer Chiasma, Hypothalamus, Riechkolben, Medulla oblongata, Hypophysenschaft und Pontinbrücke sichtbar. Versuchen Sie, die Hemisphären zu trennen.Drehen Sie die ventrale Stelle des Gehirns nach oben und machen Sie einen mittleren sagittalen Schnitt, beginnend vom Rücken zwischen den Riechkolben in den Gehirnhemisphären. Entfernen Sie Medulla und trennen Sie dann vorsichtig die beiden Hemisphären. Als nächstes machen Sie einen koronalen Schnitt am inneren Rand der Teiche, um das Hinterhirn zu erhalten und die Medulla am hinteren Rand der Teiche zu trennen.Drehen Sie das Hirngewebe um, um die beiden Gehirnhälften sorgfältig zu trennen. Entfernen Sie bei diesem Schritt den Riechkolben. Machen Sie einen koronalen Schnitt einen Millimeter vor dem Genu des Corpus callosum und entfernen Sie die zusätzlichen Riechkolben, gefolgt von der Trennung des medialen und lateralen präfrontalen Kortex.Teilweise horizontal oder koronal durch den transversalen Teil der vorderen Kommisssur von der Mittellinie unter dem Vorderhorn des lateralen Ventrikels schneiden, um den Septumkern dorsal und das ventrale Striatum ventral zu befreien. Entfernen Sie die kleine Menge des Kortex von der lateralen Oberfläche, um den Kern und den Riechtuberkel zu entfernen. Trennen Sie den rostralen Teil des Corpus striatum vom darüber liegenden Kortex durch ein gebogenes Skalpell, das direkt außerhalb der äußeren Kapsel geschnitten wird.Identifizieren Sie die Septumkerne oder das Septum und isolieren Sie sie aus diesem Abschnitt. Machen Sie einen gebogenen Schnitt, um den Hypothalamus bei diesem Schritt zu trennen. Dies geschieht mit einem partiellen koronalen Schnitt hinter den Mammillarkörpern, der sich nur seitlich bis zum hypothalamischen Sulcus erstreckt.Dann befreien Sie den Hypothalamusquerschnitt mit einem parasagittalen Schnitt entlang der Länge des hypothalamischen Sulcus. Evert den lateralen Ventrikel, um zusätzliche intralimbische Verbindungen in den verbleibenden limbischen Systemkomponenten aufzudecken. Auf der Innenseite des inneren Kortex wird nach dem Öffnen des Ventrikels eine fächerartige Struktur beobachtet.Verwenden Sie die fächerartige Struktur im entorhinalen Kortex, um die Ränder zum Zwecke der Dissektion zu definieren, identifizieren und entfernen Sie dann die Amygdala, den entorhinalen Kortex, den posterioren cingulären Kortex und den Hippocampus. Bestätigen Sie die Identifizierung des Thalamus durch Visualisierung der Stria medullaris auf ihrer dorsalen Oberfläche, die sich in der mittleren rostralen kortikalen Ebene erstreckt. Trennen Sie den Thalamus vollständig vom Mittelhirn durch einen koronalen Schnitt.Dieses Protokoll kann zur sofortigen Entfernung des Gehirns aus dem Schädel verwendet werden, gefolgt von einer Dissektion. Die sezierten Gewebe können je nach den Anforderungen der Studie konserviert und später verarbeitet werden. Extrahierte RNA aus mehreren sezierten Geweben kann auf Genexpression untersucht werden.Die repräsentativen Ergebnisse wurden mit entnommenen Gehirnen erzielt, die vor der RNA-Extraktion mehrere Monate bei minus 80 Grad Celsius gelagert wurden. Unterschiedliche Hirnregionen zusammen mit Gewichtsdaten wurden im Rahmen des Studienaggressor-exponierten sozialen Stressmodells von PTBS gesammelt. RNA-Konzentrationen und spektrophotometrische Messwerte sind hier dargestellt.Wenn Sie dieses Protokoll befolgen, stellen Sie sicher, dass das Gewebe jederzeit gekühlt ist, indem Sie das Gehirn auf einem Eisstahlblock halten und das Gewebe regelmäßig mit Eiskochsalzlösung übergießen. Sobald Gewebe gesammelt und sofort eingefroren sind, können sie zu einem späteren Zeitpunkt für Assays wie Transkriptomik, Metabolomik und Proteomik verwendet werden.

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Non-Laser Capture Microscopy Approach for the Microdissection of Discrete Mouse Brain Regions for Total RNA Isolation and Downstream Next-Generation Sequencing and Gene Expression Profiling

Non-Laser Capture Microscopy Approach for the Microdissection of Discrete Mouse Brain Regions for Total RNA Isolation and Downstream Next-Generation Sequencing and Gene Expression Profiling  |

Non-Laser Capture Microscopy Ansatz für die Mikrodissektion von Discrete-Maus Hirnregionen für Gesamt-RNA Isolierung und Downstream Next-Generation Sequencing and Gene Expression Profiling

As technological platforms, approaches such as next-generation sequencing, microarray, and qRT-PCR have great promise for expanding our understanding of ...

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