Name: collection and identification of pollen from honey bee colonies
Uploaded: 2021-01-19T14:00:00
Duration: 8 min 11 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Collection and Identification of Pollen from Honey Bee Colonies at JoVE.com

Мы благодарим доктора Гретхен Джонс (USDA-ARS, APMRU, College Station, TX) за помощь в сортировке цветов и анализе ацетолиза. Это исследование было поддержано исследовательскими фондами, предоставленными R.R.S. Ассоциацией пчеловодов штата Орегон.

Авторам нечего раскрывать.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>#8 hardware cloth</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>2.7 mm aperture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10 mL graduated cylinder</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1000 uL micropipette tips</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1250 mL filter micropipette tips</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 x 75 mm glass slides</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Thickness: 0.93 mm - 1.05 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 mL microcentrifuge tubes</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>250 mL graduated Borosilicate glass beakers (x3)</td>
			<td>VWR</td>
			<td>10754-952</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL graduated Borosilicate glass beakers (x6)</td>
			<td>VWR</td>
			<td>10754-946</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>95% EtOH</td>
			<td>Pharmco AAPER</td>
			<td>111000200DM55</td>
			<td>ACS/USP/Kosher grade</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Butyl vinyl gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>1060 x g maximum speed; horizontal swing preferred</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chemical safety goggles</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Color guide</td>
			<td>Pantone</td>
			<td>SKU: GP1601A</td>
			<td>Solid coated</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslip of 1 or 1.5</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Thickness: 0.13 mm - 0.19 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Distilled water</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fume hood</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glacial acetic acid</td>
			<td>BDH Chemicals</td>
			<td>BDH3092</td>
			<td>ACS grade</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass funnel</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glycerin</td>
			<td>Humco</td>
			<td>103196001_1</td>
			<td>USP grade, 99.5%, anhydrous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hazardous waste containers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hive tool</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hot block</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Must reach 80 degree C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lab coat with long sleeves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Latex or polyurethane foam</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nailpolish, clear</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitrile gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>P1000 pipette</td>
			<td>VWR</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic spoon</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safranin</td>
			<td>Ward&#39;s Science</td>
			<td>470302-322</td>
			<td>Lab grade</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Smoker</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>For pollen trap installation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium bicarbonate</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>SX0320</td>
			<td>ACS grade, powder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Squirt bottles (x2)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sulfuric acid</td>
			<td>EMD Millipore</td>
			<td>SX1244</td>
			<td>ACS grade</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sundance Bottom Mount Pollen Trap</td>
			<td>Betterbee Beekeeping Supply</td>
			<td>PTRAPB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tape</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wooden stir sticks</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wooden tooth picks</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

collection and identification of pollen from honey bee colonies

Исследователи часто собирают и анализируют корбикулярную пыльцу от медоносных пчел, чтобы определить растительные источники, на которых они питают пыльцу, или оценить воздействие пестицидов на пчел с помощью пыльцы. Здесь описан эффективный метод улавливания пыльцы для сбора корбикулярной пыльцы у медоносных пчел, возвращающихся в свои ульи. Этот метод сбора приводит к большому количеству корбикулярной пыльцы, которая может быть использована в исследовательских целях. Медоносные пчелы собирают пыльцу со многих видов растений, но обычно посещают один вид во время каждой поездки по сбору. Поэтому каждая корбикулярная пыльцевая гранула преимущественно представляет один вид растений, и каждая пыльцевая гранула может быть описана по цвету. Это позволяет сортировать образцы корбикулярной пыльцы по цвету для разделения растительных источников. Исследователи могут дополнительно классифицировать корбикулярную пыльцу, анализируя морфологию ацетолизованных пыльцевых зерен для таксономической идентификации. Эти методы обычно используются в исследованиях, связанных с опылителями, таких как эффективность опыления, динамика кормления опылителей, качество диеты и разнообразие. Представлены подробные методики сбора корбикулярной пыльцы с помощью пыльцевых ловушек, сортировки пыльцы по цвету, ацетолизации пыльцевых зерен. Также представлены результаты, относящиеся к частоте цветов гранул и таксонов корбикулярной пыльцы, собранной у медоносных пчел в пяти различных системах земледелия.

В предыдущем исследовании сообщалось об оценке разнообразия пыльцы, собранной медоносными пчелами в следующих сельскохозяйственных культурах: миндаль, вишня, голубика высокого роста, гибридная морковь и луговая пена14. Используя описанные способы, корбикулярную пыльцу собирали, сортировали по цвету, а растительные источники каждой цветовой группы гранул идентифицировали для оценки разнообразия пыльцы. Пыльцевые ловушки с нижним креплением были установлены на колониях в нескольких местах для каждой культуры (рисунок 1А). Количество пыльцы, собранной с каждого участка, было достаточным для выполнения требований к весу образца методов цветовой сортировки и анализа ацетолиза. Каждый образец сбора пыльцы имел несколько различимых цветовых групп (рисунок 2 и рисунок 3). В некоторых образцах цветовые группы пыльцы содержали всего 4-5 гранул; однако большинство групп имели значительно больше этого и, таким образом, служили своей собственной меченой цветовой группой для ацетолиза (рисунок 4 и рисунок 5). После ацетолиза (рисунок 6) для эффективной идентификации каждой цветовой группы до минимально возможного таксономического ранга использовалась микроскопия яркого поля, подтверждающая морфологические характеристики ваучерных образцов, собранных из области, окружающей каждый участок исследования (рисунок 7). 
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62064/62064fig01.jpg"> Рисунок 1: Пыльцевые ловушки, установленные на колонии медоносных пчел для сбора корбикулярной пыльцы. (А) Ловушки для нижнего крепления, размещенные над нижней доской улья и непосредственно над самым нижним ящиком улья. Другие стили пыльцевых ловушек включают (B) передние крепления и (C) шнековые входные ловушки. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62064/62064fig01large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62064/62064fig02.jpg"> Рисунок 2: Улавливающий механизм и лоток для сбора пыльцевой ловушки. Возвращающиеся пыльцевые фуражиры должны протиснуться через механизм улавливания сетки, прежде чем достичь своего улья. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62064/62064fig02large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62064/62064fig03.jpg"> Рисунок 3: Лоток для сбора пыльцевой ловушки. Корбикулярная пыльца соскребается с ног возвращающихся пыльцевых фуражиров пыльцевой ловушкой и попадает в лоток для сбора. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62064/62064fig03large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62064/62064fig04.jpg"> Рисунок 4: Сортировка образца корбикулярной пыльцы по цветовым группам. Пыльца корбикулярных частиц может быть высушена и взвешена после того, как она будет отсортирована по цветовым группам, чтобы сообщить пропорции собранных гранул различного цвета. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62064/62064fig04large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62064/62064fig05.jpg"> Рисунок 5: Четыре группы гранул пыльцы, отсортированные по цвету с использованием руководства по цвету Pantone. Цветовые группы обозначены как (A) серый, Pantone 5855C, (B) коричневый, Pantone 7557C, (C) желтый, Pantone 458C и (D) светло-коричневый, Pantone 3547C. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62064/62064fig05large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62064/62064fig06.jpg"> Рисунок 6: Установка оборудования для ацетолиза внутри вытяжного шкафа. Тепловой блок, реагенты, контейнеры для отходов растворителей и кислотных отходов, маркированные стаканы, пипетки, наконечники пипеток, палочки для перемешивания и микроцентрифужные трубки, расположенные внутри вытяжного шкафа. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62064/62064fig06large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62064/62064fig07.jpg"> Рисунок 7: Микрофотография окрашенных, ацетолизированных пыльцевых зерен. Многие грани ацетолизированной горчицы (Brassicaceae) пыльцевыми зернами при 40-кратном увеличении. Шкала = 50.398 мкм. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62064/62064fig07large.jpg" target="_blank">Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.</a>
Пыльца, собранная из мест выращивания миндаля, имела относительно более низкое разнообразие пыльцы, чем пыльца, собранная с других культур, в среднем 3,0 ± 0,5 цвета гранул и 3,2 ± 1,2 таксонов растений на участок (таблица 2)14. Остальные четыре системы земледелия имели более высокие уровни разнообразия пыльцы в среднем 6,0 ± 2,0 цвета гранул и 8,0 ± 1,5 таксонов растений на участок в вишне, 8,8 ± 1,4 цвета гранул и 13,5 ± 2,0 таксонов растений на участок в голубике высокого роста, 7,0 ± 1,0 цветов гранул и 11,0 ± 0,0 таксонов растений на участок гибридной моркови и 10,0 ± 0,0 цветов гранул и 13,0 ± 1,5 таксонов растений на участок в луговой пене14.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td>Урожай</td>
			<td>Среднее количество цветов пыльцевых гранул/участок (SE)</td>
			<td>Среднее число таксонов/участка растений (SE)</td>
			<td colspan="3">Всего идентифицированных таксонов</td>
		</tr><tr><td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Семья</td>
			<td>Род</td>
			<td>Вид</td>
		</tr><tr><td>Миндаль</td>
			<td>3.0 (0.5)</td>
			<td>3.2 (1.2)</td>
			<td>4</td>
			<td>3</td>
			<td>4</td>
		</tr><tr><td>Черника</td>
			<td>8.8 (1.4)</td>
			<td>13.5 (2.0)</td>
			<td>5</td>
			<td>10</td>
			<td>13</td>
		</tr><tr><td>Морковь</td>
			<td>7.0 (1.0)</td>
			<td>11.0 (0.0)</td>
			<td>3</td>
			<td>5</td>
			<td>6</td>
		</tr><tr><td>Вишня</td>
			<td>6.0 (2.0)</td>
			<td>8.0 (1.5)</td>
			<td>4</td>
			<td>7</td>
			<td>5</td>
		</tr><tr><td>Луговая пена</td>
			<td>10.0 (0.0)</td>
			<td>13.0 (1.5)</td>
			<td>5</td>
			<td>4</td>
			<td>14</td>
		</tr></tbody></table>
Таблица 2: Разнообразие корбикулярной пыльцы, собранной у медоносных пчел в пяти системах земледелия. Метрики разнообразия включают среднее количество цветов гранул (± SE), среднее число таксонов растений (± SE) и общее количество идентифицированных таксонов. Эта таблица была изменена с14. Аббревиатура: SE = стандартная ошибка.

Watch this Scientific Journal Video about Collection and Identification of Pollen from Honey Bee Colonies at JoVE.com

Collection and Identification of Pollen from Honey Bee Colonies

Описаны методы сбора корбикулярной пыльцы у медоносных пчел, а также протоколы сортировки цветов, ацетолиза и микроскопической подготовки пыльцы для таксономической идентификации. Кроме того, мы представляем цвет гранул и таксономическое разнообразие корбикулярной пыльцы, собранной из пяти систем земледелия с использованием пыльцевых ловушек.

Сбор и идентификация пыльцы из пчелиных семей

Researchers often collect and analyze corbicular pollen from honey bees to identify the plant sources on which they forage for pollen or to estimate ...

В этом протоколе описаны три метода: сбор корбикулярной пыльцы с помощью пыльцевых ловушек, сортировка пыльцы по цвету и ацетолиз. Эти методы обычно используются в исследованиях, связанных с опылителями, таких как эффективность опыления, динамика кормления опылителей, а также качество и разнообразие рациона. Улавливание пыльцы — это простой способ сбора объемных количеств пыльцы из колоний медоносных пчел.Сортировка пыльцевых гранул по цвету является доступным методом классификации пыльцы, который требует низких знаний, а ацетолиз позволяет идентифицировать таксон растений, связанный с каждым цветом гранул. Демонстрировать процедуру будут Эллен Топитцхофер, научный сотрудник факультета, и Эмили Карсон, аспирант-исследователь из моей лаборатории. Для начала определите, когда ловить пыльцу с нужного места пасеки и выберите оптимальные колонии медоносных пчел для улавливания пыльцы.Оцените силу колонии, подсчитав фуражиров, возвращающихся ко входу в колонию в течение двух минут, а затем выберите колонии с наибольшим общим количеством возвращающихся фуражиров. Выбирайте ульи с деревянной посудой, которая находится в хорошем состоянии, желательно без лишних входов и искривленных крышек. Используйте колонии с меньшим количеством альтернативных входов, так как пчелы-фуражиры, возвращающиеся в такие колонии, с большей вероятностью переориентируются на вход в ловушку.По возможности выбирайте входы в улей, выходящие на юг. Если ульи упакованы на паллеты, установите пыльцевые ловушки на каждой колонии, обращенной в одном и том же направлении на данном поддоне, чтобы избежать дрейфа фуражиров в соседние входы ульев. При желании оцените расплодное гнездо колонии, осмотрев рамки на наличие личинок и выделите колонии с относительно большим количеством личинок.Далее устанавливают пыльцевые ловушки на выбранные колонии медоносных пчел. Для ловушек с передним креплением прикрепите ловушку перед входом с помощью скоб, винтов и ленты или подключите ловушку к шнурам тарзанки, обернутым вокруг улья. Запечатайте все другие возможные входы в колонию неадгезионным и формуемым материалом, таким как латекс или пенополиуретан или аппаратная ткань номер восемь для отверстий шнека.Используйте клейкую ленту для небольших трещин. При использовании ловушек переднего крепления, которые находятся на ульях на уровне земли, установите барьер, такой как резиновый коврик, между корзиной для сбора и травой, чтобы избежать повреждения влагой от росы. Включите механизм улавливания пыльцевой ловушки через 24 часа после установки и до начала дневного полета корма.Соберите корбикулярную пыльцу из лотка для сбора и поместите ее в полиэтиленовые пакеты или центрифужные трубки, затем храните ее в холодильнике со льдом. Используйте совок или большую ложку, чтобы зачерпнуть 10 граммов пыльцы в качестве репрезентативного субобразца. Удалите все части пчелы и мусор из подобразца, затем отсортируйте каждую гранулу пыльцы из 10-граммового субобразца в цветовую группу, используя как цвет, так и текстуру пыльцы, чтобы различать группы.Чтобы обеспечить не менее 0,25 грамма каждой цветовой группы для последующих этапов, поместите любые гранулы, которые недостаточно многочисленны, чтобы сформировать цветовую группу не менее 0,25 грамма, в другую группу. Назовите каждую отдельную цветовую группу с помощью Руководства по цвету Pantone. Взвесьте 0,25 грамма пыльцевых гранул из каждой цветовой группы.Наденьте соответствующие СИЗ. Затем медленно добавляют 500 микролитров ледниковой кислотной кислоты в каждую микроцентрифужную трубку, содержащую 0,25 грамма пыльцы цветовой группы. При визуальном осмотре трубки перемешивайте пыльцу чистой зубочисткой в течение 10-15 секунд.Центрифугируйте образец в течение трех минут при 1, 100 раз G, затем декантируйте супернатант в стакан кислотных отходов. Чтобы приготовить ацетолизную смесь, добавьте 10,8 миллилитра ледниковой кислотной кислоты в помеченную ацетолизную смесь. Затем медленно добавляют 1 200 микролитров концентрированной серной кислоты из исходного раствора.Медленно добавляйте 1000 микролитров ацетолизной смеси в каждый тюбик и перемешивайте чистой зубочисткой в течение 10-15 секунд. Поместите образцы на тепловой блок, предварительно нагретый до 80 градусов Цельсия. Инкубируйте трубочки в течение пяти минут, тщательно перемешивая каждый тюбик чистой зубочисткой на полпути через инкубацию.После инкубации медленно добавляйте 500 микролитров ледниковой уксусной кислоты в каждый тюбик и перемешивайте чистой зубочисткой в течение 10-15 секунд. Центрифугируйте образцы, затем декантируйте супернатант из каждой трубки в стакан кислотных отходов. Промойте каждый образец три раза водой, добавив 1000 микролитров дистиллированной воды в каждый тюбик и перемешав чистой зубочисткой.Центрифугируйте образцы и декантируйте супернатант из трубок в стакан бикарбоната натрия. Затем повторите промывку водой еще два раза. Добавьте 1000 микролитров 95% этанола из этанолового стакана в каждый тюбик и перемешайте чистой зубочисткой.Затем центрифугируйте образцы и декантируйте супернатант из трубок в стакан для отходов этанола. Смешайте раствор для окрашивания сафранин-О и добавьте от 5 до 10 капель в каждый тюбик. Перемешайте зубочисткой в течение 10-15 секунд и оставьте зубочистку в тюбике.Добавьте 1000 микролитров 95% этанола из этанолового стакана в каждую трубку и перемешайте. После центрифугирования образцов декантируйте супернатант в стакан для отходов этанола. Добавьте от 10 до 15 капель глицерина в каждый тюбик и перемешивайте содержимое в течение 10-15 секунд.Оставьте трубки открытыми в вытяжке, чтобы испарить этанол в течение не менее двух часов при комнатной температуре окружающей среды. Маркировка слайдов микроскопа для идентификации пыльцы. Извлеките одну каплю остатка пыльцы из трубки и поместите ее в центр меченого слайда микроскопа, чтобы капля слегка распространилась.Поместите чистую крышку поверх капли на слайде и запечатайте крышку на слайде прозрачным лаком для ногтей. Используя описанные способы, корбикулярную пыльцу собирали, сортировали по цвету, и идентифицировали растительные источники каждой цветовой группы гранул для оценки разнообразия пыльцы. Каждый образец сбора пыльцы имел несколько различимых цветовых групп.В некоторых образцах цветовые группы пыльцы содержали всего четыре-пять гранул. Тем не менее, большинство групп имели значительно больше и служили их собственной меченой цветовой группой для ацетолиза. После ацетолиза ярко-полевая световая микроскопия использовалась для эффективной идентификации каждой цветовой группы в ее минимально возможном таксономическом ранге путем подтверждения морфологических характеристик с характеристиками ваучерных образцов, собранных из области, окружающей каждый участок исследования.Пыльца, собранная из мест выращивания миндаля, имела относительно более низкое разнообразие пыльцы, чем пыльца, собранная с других культур, в среднем три цвета гранул в 3,2 таксонах растений на участок Отсортированная пыльца может быть проверена на наличие пестицидов для выяснения агрохимикатов, обнаруженных на кормовых растениях медоносных пчел, или проанализирована на химический состав для определения ее питательной ценности для медоносных пчел. Результаты этого исследования предоставили ценную информацию о видовом разнообразии, наблюдаемом в пыльце, собранной колониями, подчеркнув существенно низкое разнообразие пыльцы, собранной в системах выращивания миндаля.

Research

JoVE Journal

Biology

Purifying Plasmid DNA from Bacterial Colonies Using the Qiagen Miniprep Kit

Очищающий плазмидной ДНК из бактериальных колоний Использование Qiagen Miniprep Kit

Plasmid DNA purification from E. coli is a core technique for molecular cloning. Small scale purification (miniprep) from less than 5 ml of bacterial ...

In vivo Ca2+- Imaging of Mushroom Body Neurons During Olfactory Learning in the Honey Bee

In vivo Ca2+- Imaging of Mushroom Body Neurons During Olfactory Learning in the Honey Bee

В естественных условиях Са 2 + - Съемка Гриб Нейроны тела во время обучения в обонятельной Honey Bee

The in vivo and semi-in vivo preparation for Calcium imaging has been developed in our lab by Joerges, K&uuml;ttner and Galizia over ten years ago, to ...

Selecting and Isolating Colonies of Human Induced Pluripotent Stem Cells Reprogrammed from Adult Fibroblasts

Выбор и изоляция Колонии человека индуцированных плюрипотентных стволовых клеток из взрослых Перепрограммированный Фибробласты

Herein we present a protocol of reprogramming human adult fibroblasts into human induced pluripotent stem cells (hiPSC) using retroviral vectors encoding ...

Obtaining Specimens with Slowed, Accelerated and Reversed Aging in the Honey Bee Model

Получение мутантов Замедление, ускоренного и Обратный Старение в Honey Bee Model

Societies of highly social animals feature vast lifespan differences between closely related individuals. Among social insects, the honey bee is the best ...

Methods for Comparing Nutrients in Beebread Made by Africanized and European Honey Bees and the Effects on Hemolymph Protein Titers

Методы для сравнения питательных веществ в перги сделан африканизированных и европейской медоносных пчел и воздействие на Гемолимфа белка титров

Honey bees obtain nutrients from pollen they collect and store in the hive as beebread. We developed methods to control the pollen source that bees ...

Dissection and Observation of Honey Bee Dorsal Vessel for Studies of Cardiac Function

Вскрытие и наблюдение Honey Bee Спинной сосуд для исследований сердечной функции

The European honey bee, Apis mellifera L., is a valuable agricultural and commercial resource noted for producing honey and providing crop pollination ...

Monitoring Colony-level Effects of Sublethal Pesticide Exposure on Honey Bees

Мониторинг колонии уровне последствия воздействия сублетальных пестицидов на медоносных пчел

The effects of sublethal pesticide exposure to honey bee colonies may be significant but difficult to detect in the field using standard visual assessment ...

A 3D Printed Pollen Trap for Bumble Bee (Bombus) Hive Entrances

A 3D Printed Pollen Trap for Bumble Bee Bombus Hive Entrances

3D-печатная пыльцевая ловушка для входов в улей шмелей(Bombus)

To verify the plant sources from which bumble bees forage for pollen, individuals must be collected to remove their corbicular pollen loads for analysis.  ...

Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens

Оценка агрохимического риска для спаренных пчелиных маток

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not ...

An Improved Method to Measure Pollen Hydration Profiles in Arabidopsis thaliana

A High-Resolution, Single-Grain, In Vivo Pollen Hydration Bioassay for Arabidopsis thaliana

A High-Resolution, Single-Grain, In Vivo Pollen Hydration Bioassay for Arabidopsis thaliana (Video) | JoVE 

Биоанализ гидратации пыльцы in vivo с высоким разрешением для гидратации пыльцы Arabidopsis thaliana

Sexual reproduction in flowering plants requires initial interaction between the pollen grain and the stigmatic surface, where a molecular dialog is ...