Name: implantation of combined telemetric ecg and blood pressure transmitters to determine spontaneous baroreflex sensitivity in conscious mice
Uploaded: 2021-02-14T14:00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Implantation of Combined Telemetric ECG and Blood Pressure Transmitters to Determine Spontaneous Baroreflex Sensitivity in Conscious Mice at JoVE.com

Ce travail a été soutenu par la Fondation allemande pour la recherche [FE 1929/1-1 et WA 2597/3-1]. Nous remercions Sandra Dirschl pour son excellente assistance technique et Julia Rilling pour ses conseils vétérinaires.

<ol>
	<li>Landgren, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+excitation+mechanism+of+the+carotid+baroceptors.">On the excitation mechanism of the carotid baroceptors.</a> Acta Physiologica Scandinavica. 26 (1), 1-34 (1952).</li><li>Heyman, C., Neil, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reflexogenic+areas+of+the+cardiovascular+system.">Reflexogenic areas of the cardiovascular system.</a> British Journal of Surgery. 46 (195), 92 (1958).</li><li>Lu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ion+channel+ASIC2+is+required+for+baroreceptor+and+autonomic+control+of+the+circulation.">The ion channel ASIC2 is required for baroreceptor and autonomic control of the circulation.</a> Neuron. 64 (6), 885-897 (2009).</li><li>Fadel, P. J., Raven, P. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+investigations+into+the+arterial+and+cardiopulmonary+baroreflexes+during+exercise.">Human investigations into the arterial and cardiopulmonary baroreflexes during exercise.</a> Experimental Physiology. 97 (1), 39-50 (2012).</li><li>Nagura, S., Sakagami, T., Kakiichi, A., Yoshimoto, M., Miki, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+shifts+in+baroreflex+control+of+renal+sympathetic+nerve+activity+induced+by+REM+sleep+and+grooming+in+rats.">Acute shifts in baroreflex control of renal sympathetic nerve activity induced by REM sleep and grooming in rats.</a> The Journal of Physiology. 558, 975-983 (2004).</li><li>Crandall, C. G., Cui, J., Wilson, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+heat+stress+on+baroreflex+function+in+humans.">Effects of heat stress on baroreflex function in humans.</a> Acta Physiologica Scandinavica. 177 (3), 321-328 (2003).</li><li>Crandall, M. E., Heesch, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Baroreflex+control+of+sympathetic+outflow+in+pregnant+rats:+effects+of+captopril.">Baroreflex control of sympathetic outflow in pregnant rats: effects of captopril.</a> The American Journal of Physiology. 258 (6), 1417-1423 (1990).</li><li>Mortara, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Arterial+baroreflex+modulation+of+heart+rate+in+chronic+heart+failure:+clinical+and+hemodynamic+correlates+and+prognostic+implications.">Arterial baroreflex modulation of heart rate in chronic heart failure: clinical and hemodynamic correlates and prognostic implications.</a> Circulation. 96 (10), 3450-3458 (1997).</li><li>La Rovere, M. T., Bigger, J. T., Marcus, F. I., Mortara, A., Schwartz, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Baroreflex+sensitivity+and+heart-rate+variability+in+prediction+of+total+cardiac+mortality+after+myocardial+infarction.+ATRAMI+(Autonomic+Tone+and+Reflexes+After+Myocardial+Infarction)+Investigators.">Baroreflex sensitivity and heart-rate variability in prediction of total cardiac mortality after myocardial infarction. ATRAMI (Autonomic Tone and Reflexes After Myocardial Infarction) Investigators.</a> Lancet. 351 (9101), 478-484 (1998).</li><li>Robinson, T. G., Dawson, S. L., Eames, P. J., Panerai, R. B., Potter, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+baroreceptor+sensitivity+predicts+long-term+outcome+after+acute+ischemic+stroke.">Cardiac baroreceptor sensitivity predicts long-term outcome after acute ischemic stroke.</a> Stroke. 34 (3), 705-712 (2003).</li><li>Fenske, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=cAMP-dependent+regulation+of+HCN4+controls+the+tonic+entrainment+process+in+sinoatrial+node+pacemaker+cells.">cAMP-dependent regulation of HCN4 controls the tonic entrainment process in sinoatrial node pacemaker cells.</a> Nature Communications. 11 (1), 5555 (2020).</li><li>Fenske, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comprehensive+multilevel+in+vivo+and+in+vitro+analysis+of+heart+rate+fluctuations+in+mice+by+ECG+telemetry+and+electrophysiology.">Comprehensive multilevel in vivo and in vitro analysis of heart rate fluctuations in mice by ECG telemetry and electrophysiology.</a> Nature Protocols. 11 (1), 61-86 (2016).</li><li>Thireau, J., Zhang, B. L., Poisson, D., Babuty, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+rate+variability+in+mice:+a+theoretical+and+practical+guide.">Heart rate variability in mice: a theoretical and practical guide.</a> Experimental Physiology. 93 (1), 83-94 (2008).</li><li>Cesarovic, N., Jirkof, P., Rettich, A., Arras, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Implantation+of+radiotelemetry+transmitters+yielding+data+on+ECG,+heart+rate,+core+body+temperature+and+activity+in+free-moving+laboratory+Mice.">Implantation of radiotelemetry transmitters yielding data on ECG, heart rate, core body temperature and activity in free-moving laboratory Mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (57), e3260 (2011).</li><li>Alam, M. A., Parks, C., Mancarella, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=long-term+blood+pressure+measurement+in+freely+moving+mice+using+telemetry.">long-term blood pressure measurement in freely moving mice using telemetry.</a> Journal of Visualized Experiments. (111), e53991 (2016).</li><li>Optical and electrophysiological approaches to examine the role of cAMP-dependent regulation of the sinoatrial pacemaker channel HCN4. Dissertation, LMU Munich Available from: <a target="_blank" href="https://edoc.ub.uni-muenchen.de/24431/1/Brox_Verena.pdf">https://edoc.ub.uni-muenchen.de/24431/1/Brox_Verena.pdf</a> (2019)</li><li>Just, A., Faulhaber, J., Ehmke, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Autonomic+cardiovascular+control+in+conscious+mice.">Autonomic cardiovascular control in conscious mice.</a> American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 279 (6), 2214-2221 (2000).</li><li>Parati, G., Di Rienzo, M., Mancia, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=How+to+measure+baroreflex+sensitivity:+from+the+cardiovascular+laboratory+to+daily+life.">How to measure baroreflex sensitivity: from the cardiovascular laboratory to daily life.</a> Journal of Hypertension. 18 (1), 7-19 (2000).</li><li>Robbe, H. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+baroreceptor+reflex+sensitivity+by+means+of+spectral+analysis.">Assessment of baroreceptor reflex sensitivity by means of spectral analysis.</a> Hypertension. 10 (5), 538-543 (1987).</li><li>Pinna, G. D., Maestri, R., Raczak, G., La Rovere, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+baroreflex+sensitivity+from+the+gain+function+between+arterial+pressure+and+heart+period.">Measuring baroreflex sensitivity from the gain function between arterial pressure and heart period.</a> Clinical Science. 103 (1), 81-88 (2002).</li><li>Pinna, G. D., Maestri, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+criteria+for+estimating+baroreflex+sensitivity+using+the+transfer+function+method.">New criteria for estimating baroreflex sensitivity using the transfer function method.</a> Medical and Biological Engineering and Computing. 40 (1), 79-84 (2002).</li><li>Laude, D., Baudrie, V., Elghozi, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Applicability+of+recent+methods+used+to+estimate+spontaneous+baroreflex+sensitivity+to+resting+mice.">Applicability of recent methods used to estimate spontaneous baroreflex sensitivity to resting mice.</a> American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 294 (1), 142-150 (2008).</li><li>Ma, X., Abboud, F. M., Chapleau, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+afferent,+central,+and+efferent+components+of+the+baroreceptor+reflex+in+mice.">Analysis of afferent, central, and efferent components of the baroreceptor reflex in mice.</a> American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 283 (5), 1033-1040 (2002).</li><li>Fleming, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impaired+Baroreflex+Function+in+Mice+Overexpressing+Alpha-Synuclein.">Impaired Baroreflex Function in Mice Overexpressing Alpha-Synuclein.</a> Frontiers in Neurology. 4 (103), (2013).</li></ol>

Importance de la méthode par rapport aux méthodes alternatives Dans le présent travail, nous présentons un protocole détaillé pour quantifier les BRS spontanés en utilisant la méthode de séquence. Cette approche utilise des changements spontanés de PA et de HR réflexes mesurés par ECG et télémétrie BP. L’avantage de cette méthode est que les deux paramètres peuvent être enregistrés chez des animaux conscients, se déplaçant librement et sans retenue sans déranger les animaux en entrant dans la pièce où les mesures sont effectuées ou même par l’interaction physique requise pour l’injection de drogues. Ce point est très important car il a été clairement démontré que de telles perturbations interfèrent gravement avec les enregistrements HR et BP. Par exemple, l’injection de médicaments nécessite une fixation des souris, ce qui provoque une réponse maximale au stress qui augmente la FC jusqu’à 650-700 bpm. Pour contourner ces réponses au stress, BRS a déjà été déterminé chez des souris anesthésiées. Cependant, les anesthésiques standard utilisés en médecine vétérinaire tels que la kétamine/xylazine ou l’isoflurane induisent une bradycardie et influencent les réponses réflexes autonomes, limitant la validité de ces approches et l’interprétation des résultats. Pour surmonter partiellement ces limitations, des dispositifs implantables d’administration de médicaments, c’est-à-dire des pompes osmotiques, qui peuvent libérer des médicaments dans la cavité péritonéale, ont été utilisés. Cependant, avec les pompes osmotiques, il n’est pas possible d’appliquer un bolus d’une dose définie de médicament limitant l’application de tels dispositifs. Alternativement, cathéters de perfusion complexes17 peut être implanté chez la souris afin d’administrer des médicaments. Cependant, ces cathéters sont difficiles à manipuler et nécessitent des compétences chirurgicales comparables à celles requises pour l’implantation de dispositifs télémétriques, tout en produisant moins de résultats scientifiques que les mesures de BRS spontanées. Outre les problèmes techniques associés à la mesure du SRB à l’aide de l’injection de drogues, il existe certaines limites liées à l’action du médicament en soi. Les approches traditionnelles pour déterminer le BRS comprennent des injections en bolus de médicaments vasoactifs. Cependant, l’injection en bolus de vasoconstricteurs (par exemple, phényléphrine) ou de vasodilatateurs (par exemple, nitroprussiate de sodium) a été considérée comme un stimulus excessif et non physiologique pour l’adaptation réflexe HR aux changements de PA18. L’activité spontanée du réflexe barorécepteur peut également être quantifiée à l’aide de méthodes spectrales. L’une de ces méthodes évalue le BRS dans le domaine des fréquences en calculant le rapport entre les changements de HR et les changements de pression artérielle dans une bande de fréquences spécifique18,19. D’autres méthodes spectrales impliquent la détermination de la fonction de transfert de BP et HR ou la quantification de la cohérence entre BP et HR20,21. Ces méthodes nécessitent également l’acquisition télémétrique de paramètres spontanés de BP et HR et, bien qu’elles soient appropriées pour la détermination des BRS spontanés, elles nécessitent des outils de calcul intensifs et sont difficiles à appliquer. En outre, toutes les méthodes spectrales souffrent de la limitation que les signaux non stationnaires empêchent l’application de méthodes spectrales. En particulier, les pics spectraux induits par les rythmes respiratoires peuvent être réduits chez les patients humains en demandant au patient d’arrêter de respirer, ce qui n’est évidemment pas possible chez la souris. Par conséquent, le rapport signal sur bruit est souvent assez faible chez la souris. Compte tenu des limites des méthodes discutées ci-dessus, nous privilégions la méthode de séquence pour déterminer BRS chez la souris. Un avantage considérable de cette méthode est le fait qu’il s’agit d’une technique non invasive qui fournit des données sur le SRB spontané dans des conditions réelles.22. Un autre point important est que la durée des séquences analysées à l’aide de la méthode de séquence est assez courte, impliquant 3 à 5 battements. La régulation réflexe de la FC par le nerf vagal est très rapide et bien dans le délai de ces séquences. Par conséquent, la méthode de séquence est bien adaptée pour évaluer la contribution du nerf vagal au BRS. En revanche, la régulation par le système nerveux sympathique est beaucoup plus lente. En fait, au cours de ces courtes séquences, on peut supposer que l’activité du système nerveux sympathique est presque constante. Par conséquent, la méthode est personnalisée pour détecter sélectivement les changements réflexes de la FC entraînés par l’activité du nerf vague.
Interprétation des données BRS Pour l’interprétation du dysfonctionnement BRS ou des données BRS en soi, il est important de considérer les niveaux fonctionnels individuels qui sont impliqués dans le réflexe barorécepteur. Au niveau neuronal, les composantes afférentes, centrales ou efférentes du réflexe peuvent être affectées23. Sur le plan cardiovasculaire, une réactivité réduite ou exagérée du nœud sino-auriculaire à l’entrée SNA pourrait être présente11,24. Un changement à chaque niveau pourrait entraîner des changements dans le SRB. Afin de disséquer si les mécanismes neuronaux et / ou cardiaques sont responsables des changements observés dans le BRS, la suppression de gènes cardiaques ou spécifiques aux neurones, des approches knock down ou d’édition de gènes pourraient être utilisées.
Étapes critiques du protocole L’étape la plus sophistiquée et la plus critique de ce protocole est la préparation et la canulation de l’artère carotide gauche (étape 2.3). La tension de la suture d’occlusion caudale doit être suffisamment élevée pour arrêter complètement le flux sanguin avant la canulation. Sinon, même une petite fuite de sang pendant la canulation peut restreindre considérablement la visibilité ou même faire saigner la souris. La canulation devrait réussir dès la première tentative. Cependant, en cas d’échec de la première tentative, il est toujours possible de réessayer prudemment la canulation.
L’incision médiane et le tunnel sous-cutané du cou au flanc gauche (étape 2.3) doivent être suffisamment grands pour introduire facilement l’émetteur sans force, mais doivent également être aussi petits que possible pour maintenir l’émetteur en place. Sinon, il faudra le verrouiller en position avec un matériau de suture ou un adhésif tissulaire. Étant donné que les souris ont une peau très délicate, une nécrose de la peau peut survenir si le tunnel de l’émetteur est trop petit.
Si les électrodes ECG sont trop longues pour s’insérer dans le tunnel sous-cutané (étape 2.4), il est nécessaire de former une nouvelle pointe en raccourcissant l’électrode à une longueur appropriée. L’électrode doit reposer à plat contre le corps sur toute la longueur de la sonde. Des électrodes trop longues dérangeront les animaux et ils essaieront d’ouvrir la plaie pour enlever l’émetteur, ce qui entraînera un risque d’irritation des tissus et de déhiscence de la plaie. Les fils trop courts ne peuvent bien sûr pas être étendus et il se peut que, dans ce cas, les électrodes ne puissent pas être positionnées de manière à correspondre à la configuration Einthoven II. Nous recommandons donc de déterminer la longueur optimale des dérivations ECG sur une souris morte du même sexe, du même poids et du même bagage génétique.
Les souris doivent bénéficier d’un temps de récupération plus long après l’implantation de l’émetteur si elles n’ont pas un rythme circadien normal et que ce n’est pas le phénotype de la lignée de souris étudiée (étape 2.7). Une autre raison de la perturbation des rythmes circadiens pourrait être l’isolation acoustique inadéquate de l’animalerie ou du personnel entrant dans la salle pendant la mesure.
L’analyse des données ECG, BP et BRS est simple (étape 2.8). L’étape la plus critique consiste à exclure de l’analyse des données les battements ectopiques, les pauses sinusales, les épisodes arythmiques ou les sections avec des signaux de faible qualité.

Le réflexe barorécepteur artériel est le principal système de contrôle par rétroaction chez l’homme qui fournit un contrôle à court terme - et peut-être aussi à plus long terme 1,2 - de la pression artérielle artérielle (ABP). Ce réflexe amortit les perturbations de la PA qui se produisent en réponse à des déclencheurs physiologiques ou environnementaux. Il fournit des changements réflexes rapides dans la fréquence cardiaque, le volume de l’AVC et la résistance artérielle périphérique totale. Le réflexe provient des terminaisons nerveuses sensorielles de l’arc aortique et des sinus carotidiens. Ces terminaisons nerveuses constituent les barorécepteurs artériels. Les somata des terminaisons nerveuses de l’arc aortique sont situées dans le ganglion nodose tandis que celles des terminaisons nerveuses du sinus carotidien sont situées dans le ganglion pétrosal. Le réflexe est déclenché par une augmentation de la pression artérielle, qui étire et active les terminaisons nerveuses barorécepteurs (Figure 1A). L’activation entraîne des volées potentielles d’action qui sont transmises centralement via le dépresseur aortique afférent et les nerfs du sinus carotidien aux noyaux cardiovasculaires du tronc cérébral tels que le noyau tractus solitarii et le noyau dorsal du nerf vagal. Les changements dans l’activité nerveuse afférente modulent à leur tour l’activité efférente autonome. L’activité accrue des nerfs barorécepteurs diminue l’activité sympathique et augmente l’activité nerveuse parasympathique. Ainsi, les conséquences de l’activation des barorécepteurs sont une réduction de la fréquence cardiaque, du débit cardiaque et de la résistance vasculaire qui, ensemble, contrecarrent et amortissent l’augmentation de la pression artérielle3. En revanche, la diminution de l’activité des nerfs barorécepteurs augmente l’activité sympathique et diminue l’activité nerveuse parasympathique, ce qui augmente la fréquence cardiaque, le débit cardiaque et la résistance vasculaire et contrecarre ainsi la diminution de la pression artérielle.
De nombreuses études chez l’homme et l’animal ont démontré que le réflexe barorécepteur peut être ajusté dans des conditions physiologiques telles que l’exercice4, le sommeil5, le stress thermique6 ou la grossesse7. En outre, il existe des preuves que le baroréflexe est chroniquement altéré dans les maladies cardiovasculaires, telles que l’hypertension, l’insuffisance cardiaque, l’infarctus du myocarde et les accidents vasculaires cérébraux. En fait, le dysfonctionnement baroréflexe est également utilisé comme marqueur pronostique dans plusieurs maladies cardiovasculaires 8,9,10. De plus, un dysfonctionnement du baroréflexe est également présent dans les troubles du SNA. Compte tenu de l’importance du réflexe barorécepteur pour la santé et les états pathogènes, l’estimation in vivo de ce réflexe est une composante importante de la recherche autonome et cardiovasculaire avec certaines implications cliniques graves.
Les lignées génétiques de souris sont des outils essentiels dans la recherche cardiovasculaire. Les études in vivo de ces lignées de souris fournissent des informations précieuses sur la physiologie et la physiopathologie cardiovasculaires et, dans de nombreux cas, servent de systèmes de modèles précliniques pour les maladies cardiovasculaires. Nous fournissons ici un protocole pour l’enregistrement télémétrique in vivo de l’ECG et de la PA chez des souris conscientes, non retenues et se déplaçant librement et décrivons comment la sensibilité baroréflexe peut être déterminée à partir de ces enregistrements à l’aide de la méthode de séquence (Figure 1B). La méthode appliquée est appelée méthode de séquence, car les séries battement à battement des intervalles systolique BP (SBP) et RR sont criblées pour de courtes séquences de trois battements ou plus lors de l’augmentation ou de la diminution spontanée de la PAS avec adaptation réflexe de la FC. Cette méthode est l’étalon-or pour la détermination de la sensibilité baroréflexe puisque seuls les mécanismes réflexes spontanés sont étudiés. La technique est supérieure aux techniques plus anciennes qui impliquaient des procédures invasives telles que l’injection de médicaments vasoactifs pour induire des changements de PA.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62101/62101fig1v2.jpg"> Figure 1 : Représentation schématique de l’évaluation du baroréflexe et de la sensibilité baroréflexe à l’aide de la méthode de séquence. (A) Évolution du baroréflexe lors d’une augmentation aiguë de la pression artérielle. Une augmentation à court terme de l’ABP est détectée par les barorécepteurs situés dans l’arc aortique et le sinus carotidien. Cette information est transmise au système nerveux central et induit une diminution de l’activité du nerf sympathique parallèlement à une augmentation de l’activité parasympathique. La libération d’acétylcholine par les terminaisons nerveuses situées dans la région du nœud sino-auriculaire induit une diminution de l’AMPc du second messager dans les cellules du stimulateur cardiaque du ganglion sino-auriculaire et donc une réduction de la fréquence cardiaque. Une diminution à court terme de la pression artérielle a l’effet inverse. (B) Traces BP schématiques au cours d’une séquence ascendante (panneau supérieur gauche) et descendante (panneau supérieur droit) de trois battements consécutifs. Une séquence ascendante est associée à une augmentation parallèle des intervalles RR (panneau inférieur gauche) qui équivaut à une diminution de la FC. Une séquence descendante est associée à une diminution parallèle des intervalles RR (panneau inférieur droit) qui équivaut à une augmentation de la FC. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62101/62101fig1v2large.jpg" target="_blank">Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figure.</a>

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr >
			<td >Acepromazine maleate (Tranquisol KH) Solution Injectable 0.5 mg/mL</td>
			<td >CP-Pharma, Germany</td>
			<td >1229</td>
			<td >anesthesia</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >B.Braun Injekt-F 1 mL syringe</td>
			<td >Wolfram Droh GmbH, Germany</td>
			<td >9166017V</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Bepanthen eye and nose ointment</td>
			<td >Bayer AG, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Blunt dissecting scissors</td>
			<td >Fine Science Tools GmbH, Germany</td>
			<td >14078-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Carprofen (Carprosol) 50 mg/mL</td>
			<td >CP-Pharma, Germany</td>
			<td >115</td>
			<td>preemptive and post-operative pain relief</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Cutasept F skin desinfectant</td>
			<td >BODE Chemie GmbH, Germany</td>
			<td >9803650</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Cotton Tipped Applicator sterile</td>
			<td >Paul Boettger GmbH &#38; Co. KG, Germany</td>
			<td>09-119-9100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Forceps - Micro-Blunted Tips</td>
			<td >Fine Science Tools GmbH, Germany</td>
			<td >11253-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Forceps - straight</td>
			<td >Fine Science Tools GmbH, Germany</td>
			<td >11008-13</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Gauze swabs with cut edges, 7.5x7.5 cm, cotton</td>
			<td >Paul Hartmann AG. Germany</td>
			<td >401723</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >HD&#8209;X11, Combined telemetric ECG and BP transmitters&#160;</td>
			<td >Data Sciences International, United States</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Homothermic blanket system with flexible probe</td>
			<td >Harvard Apparatus, United States</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Hot bead sterilizer</td>
			<td >Fine Science Tools GmbH, Germany</td>
			<td >18000-45</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Ketamine 10%</td>
			<td >Ecuphar GmbH, Germany</td>
			<td >799-760</td>
			<td>anesthesia</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Magnet</td>
			<td >Data Sciences International, United States</td>
			<td ></td>
			<td>transmitter turn on/off</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Needle holder, Olsen-Hegar with suture cutter</td>
			<td >Fine Science Tools GmbH, Germany</td>
			<td >12502-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Needle single use No. 17, 0.55 x 25 mm</td>
			<td >Henke-Sass Wolf GmbH, Germany</td>
			<td>4710005525</td>
			<td>24 G needle</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Needle single use No. 20, 0.40 x 20 mm</td>
			<td >Henke-Sass Wolf GmbH, Germany</td>
			<td >4710004020</td>
			<td>27 G needle</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Needle-suture combination, sterile, absorbable (6-0 USP, metric 0.7, braided)</td>
			<td >Resorba Medical, Germany</td>
			<td >PA10273</td>
			<td>lead fixation</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Needle-suture combination, sterile, silk (5-0 USP, metric 1.5, braided)</td>
			<td >Resorba Medical, Germany</td>
			<td >4023</td>
			<td>skin closure</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >OPMI&#160;1FR&#160;pro,&#160;Dissecting&#160;microscope</td>
			<td >Zeiss, Germany</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Pilca depilatory mousse</td>
			<td >Werner Schmidt Pharma GmbH, Germany</td>
			<td>6943151</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >PVP-Iodine hydrogel 10%</td>
			<td >Ratiopharm, Germany</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Ringer&#39;s lactate solution</td>
			<td >B. Braun Melsungen AG, Germany</td>
			<td >401-951</td>
			<td>&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;&#160;</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Sensitive plasters, Leukosilk</td>
			<td >BSN medical GmbH, Germany</td>
			<td >102100</td>
			<td>surgical tape</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Sodium chloride solution 0.9% sterile Miniplasco Connect 5 ml</td>
			<td >B. Braun Melsungen AG, Germany</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Surgibond tissue adhesive</td>
			<td >SMI, Belgium</td>
			<td >ZG2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Suture, sterile, silk, non-needled (5-0 USP, metric 1 braided)</td>
			<td >Resorba Medical, Germany</td>
			<td >G2105</td>
			<td>lead preparation, ligation sutures</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Trimmer, Wella Contura type 3HSG1</td>
			<td >Procter &#38; Gamble</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Vessel Cannulation Forceps</td>
			<td >Fine Science Tools GmbH, Germany</td>
			<td >18403-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Xylazine (Xylariem) 2%</td>
			<td >Ecuphar GmbH, Germany</td>
			<td >797469</td>
			<td>anesthesia</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Data acquisition and analysis</td>
			<td >Source</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >DSI Data Exchange Matrix</td>
			<td >Data Sciences International, United States</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >DSI Dataquest ART 4.33</td>
			<td >Data Sciences International, United States</td>
			<td ></td>
			<td>data aquisition software</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >DSI Ponemah</td>
			<td >Data Sciences International, United States</td>
			<td ></td>
			<td>data aquisition software</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >DSI PhysioTel HDX-11 for mice</td>
			<td >Data Sciences International, United States</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >DSI PhysioTel receivers RPC1</td>
			<td >Data Sciences International, United States</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr >
			<td >ecgAUTO v3.3.5.11</td>
			<td >EMKA Technologies</td>
			<td ></td>
			<td>ECG and BP analysis software</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Microsoft Excel</td>
			<td >Microsoft Corporation, United States</td>
			<td ></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

implantation of combined telemetric ecg and blood pressure transmitters to determine spontaneous baroreflex sensitivity in conscious mice

La pression artérielle (PA) et la fréquence cardiaque (FC) sont toutes deux contrôlées par le système nerveux autonome (SNA) et sont étroitement liées en raison de mécanismes réflexes. Le baroréflexe est un mécanisme homéostatique clé pour contrer les changements aigus à court terme de la PA artérielle et pour maintenir la PA dans une plage physiologique relativement étroite. La PA est détectée par des barorécepteurs situés dans l’arc aortique et le sinus carotidien. Lorsque la PA change, les signaux sont transmis au système nerveux central et sont ensuite communiqués aux branches parasympathique et sympathique du système nerveux autonome pour ajuster la FC. Une augmentation de la PA provoque une diminution réflexe de la FC, une baisse de la PA provoque une augmentation réflexe de la FC.
La sensibilité baroréflexe (BRS) est la relation quantitative entre les changements dans la PA artérielle et les changements correspondants dans la HR. Les maladies cardiovasculaires sont souvent associées à une altération de la fonction baroréflexe. Dans diverses études, une réduction du BRS a été rapportée, par exemple, dans une insuffisance cardiaque, un infarctus du myocarde ou une maladie coronarienne. 
La détermination du BRS nécessite des informations provenant à la fois de BP et de HR, qui peuvent être enregistrées simultanément à l’aide de dispositifs télémétriques. L’intervention chirurgicale est décrite en commençant par l’insertion du capteur de pression dans l’artère carotide gauche et le positionnement de son extrémité dans l’arc aortique pour surveiller la pression artérielle, suivie de la mise en place sous-cutanée de l’émetteur et des électrodes ECG. Nous décrivons également les soins intensifs postopératoires et la prise en charge analgésique. Après une période de récupération post-chirurgicale de deux semaines, des enregistrements ECG et BP à long terme sont effectués chez des souris conscientes et non retenues. Enfin, nous incluons des exemples d’enregistrements de haute qualité et l’analyse de la sensibilité spontanée des barorécepteurs à l’aide de la méthode de séquence.

Watch this Scientific Journal Video about Implantation of Combined Telemetric ECG and Blood Pressure Transmitters to Determine Spontaneous Baroreflex Sensitivity in Conscious Mice at JoVE.com

Implantation of Combined Telemetric ECG and Blood Pressure Transmitters to Determine Spontaneous Baroreflex Sensitivity in Conscious Mice

Le baroréflexe est un mécanisme de régulation de la fréquence cardiaque par le système nerveux autonome en réponse aux changements de pression artérielle. Nous décrivons une technique chirurgicale pour implanter des transmetteurs de télémétrie pour la mesure continue et simultanée de l’électrocardiogramme et de la pression artérielle chez la souris. Cela peut déterminer la sensibilité spontanée aux baroréflexes, un marqueur pronostique important des maladies cardiovasculaires.

Implantation d’ECG télémétrique et de transmetteurs de pression artérielle combinés pour déterminer la sensibilité spontanée aux baroréflexes chez des souris conscientes

Blood pressure (BP) and heart rate (HR) are both controlled by the autonomic nervous system (ANS) and are closely intertwined due to reflex mechanisms. ...

La sensibilité baroréflexe décrit la relation entre les changements dans la pression artérielle et les changements réflexes dans la fréquence cardiaque. Lorsque la pression artérielle augmente, la fréquence cardiaque diminue et vice versa. L’électrocardiogramme télémétrique combiné et les mesures de pression artérielle chez des souris conscientes permettent de déterminer la sensibilité baroréflexe.Le principal avantage de cette technique par rapport aux anciennes méthodes de détermination de la sensibilité baroréflexe est qu’elle mesure le réflexe spontané. Les souris sont éveillées et n’ont pas besoin d’être retenues. Aucune procédure invasive telle que l’injection de médicaments vasoactifs pour induire des changements de pression artérielle n’est nécessaire.Le baroréflexe peut être utilisé pour la stratification du risque des patients atteints de maladies cardiaques telles que l’hypertension artérielle, l’infarctus du myocarde et l’insuffisance cardiaque. Les changements pathologiques de la sensibilité baroréflexe sont associés à un risque accru de mortalité cardiaque. C’est donc un marqueur pronostique important des maladies cardiovasculaires.Les détails microchirurgicaux tels que la perforation et la canulation de l’artère carotide sont les étapes les plus difficiles du protocole. Il faut veiller à ce qu’il y ait suffisamment de tension sur les sutures pour arrêter temporairement le flux sanguin et soulever légèrement l’artère pour la canulation. Commencez par utiliser une tondeuse pour raser la zone chirurgicale d’une souris anesthésiée du dessous du menton vers les muscles pectoraux transversaux.Après avoir positionné la souris en décubitus dorsal, appliquez une pommade pour les yeux de l’animal pendant l’anesthésie. Appliquez de la crème dépilatoire sur la zone chirurgicale préalablement rasée. Après trois à quatre minutes, retirez les cheveux et la crème dépilatoire à l’aide d’un coton et d’eau tiède, en vous assurant que la peau est propre et exempte de tout poil ou crème résiduel afin que la plaie ne soit pas contaminée pendant l’opération.Faites une incision médiane droite d’un à 1,5 centimètre à travers la peau du cou en commençant immédiatement sous le menton. Créez un espace sous-cutané des deux côtés de l’incision en séparant la peau du tissu conjonctif sous-jacent avec des ciseaux de dissection émoussés, en prenant soin de ne pas pincer la peau trop fortement avec les pinces, ce qui peut provoquer une nécrose et altérer la cicatrisation des plaies après la chirurgie. Séparez les glandes parotide et sous-maxillaire à l’aide d’applicateurs à pointe de coton pour exposer la musculature recouvrant la trachée.Rétractez la glande salivaire gauche à l’aide d’une pince à dissection incurvée pour identifier l’artère carotide gauche située latéralement à la trachée. Disséquez soigneusement l’artère carotide du tissu adjacent à l’aide d’une pince incurvée, en faisant très attention à ne pas blesser le nerf vagal qui court le long du vaisseau. Continuez la dissection contondante pour exposer l’artère carotide gauche à environ 10 millimètres de longueur et la séparer complètement du fascia vasculaire et du nerf vague.Passez une suture de soie non résorbable de cinq par zéro sous la partie isolée de l’artère carotide tout en soulevant légèrement le vaisseau sanguin avec des pinces incurvées pour réduire la friction entre les sutures et l’artère carotide. Placez la suture crânienne juste à proximité de la bifurcation de l’artère carotide. Ensuite, formez un nœud et attachez-le pour ligaturer définitivement le vaisseau.Fixez les deux extrémités de la suture d’occlusion crânienne à la table d’opération avec du ruban chirurgical. Passez une deuxième suture d’occlusion sous l’artère carotide et placez-la caudale à environ cinq millimètres de distance de la suture crânienne, en nouant un nœud lâche. Fixez les deux extrémités de suture avec du ruban chirurgical.Placez une troisième suture entre la suture d’occlusion crânienne et caudale pour maintenir le cathéter en place tout en canulant l’artère et faire un nœud lâche. Tirez doucement sur la suture d’occlusion caudale et fixez-la avec tension pour arrêter temporairement le flux sanguin et soulever légèrement l’artère. Pénétrez soigneusement l’artère proximale à la suture d’occlusion crânienne avec l’aiguille pliée.Tout en élevant légèrement l’artère carotide avec l’aiguille pliée, saisissez le cathéter avec une pince à canulation vasculaire, introduisez-le dans la petite ponction et laissez-le glisser lentement dans le vaisseau. Simultanément, retirez doucement l’aiguille pliée. Lorsque le cathéter atteint la suture d’occlusion caudale, serrez légèrement la suture sécurisée pour maintenir le cathéter en place.Desserrez la suture d’occlusion caudale afin que le cathéter puisse être déplacé davantage jusqu’à ce que son extrémité soit positionnée dans l’arc aortique. Une fois positionné correctement, fixez le cathéter avec les trois sutures et coupez les extrémités aussi courtes que possible sans trop serrer les nœuds. Former un tunnel sous-cutané à partir du cou dirigé vers le flanc gauche de l’animal et former une petite poche à l’aide de petits ciseaux émoussés à dissectionner.Irriguer le tunnel avec une seringue d’un millilitre remplie d’une solution chaude stérile de chlorure de sodium à 0,9% et introduire environ 300 microlitres de la solution dans la poche. Soulevez soigneusement la peau avec des pinces émoussées et introduisez le corps du dispositif émetteur dans la poche, en prenant soin de ne pas retirer le cathéter de pression artérielle de l’artère carotide. Formez un mince tunnel vers le muscle pectoral droit avec des ciseaux à dissection émoussée et placez la sonde négative dans le tunnel à l’aide d’une pince émoussée.Fixez l’extrémité terminale de la sonde avec un point au muscle pectoral en utilisant un matériau de suture absorbable six par zéro. Former une boucle dans la sonde positive, positionner son extrémité dans la région de la côte caudale gauche et sécuriser sa position à l’aide d’une suture absorbable six par zéro. Fermez la peau avec des nœuds simples en utilisant un matériau de suture non résorbable de cinq par zéro.De plus, appliquez une petite quantité d’adhésif tissulaire sur chaque nœud pour empêcher l’animal de mordre la suture et prévenir la déhiscence. Appliquez 10% d’hydrogel d’iode povidone sur la plaie pour prévenir l’infection de la plaie pendant la phase de récupération. Pour un soulagement préventif de la douleur, injectez du carprofène dans du chlorure de sodium à 0,9% par voie sous-cutanée pendant que la souris est encore sous anesthésie.Placez la moitié de la cage sur une plate-forme chauffante réglée à 36 degrés Celsius pendant 12 heures après la chirurgie et transférez la souris dans la zone chaude afin que l’animal ait la possibilité de rester dans la zone chaude ou de se déplacer vers la partie la plus froide de la cage lorsqu’il est éveillé. Après l’acquisition des données, inspectez les traces de pression artérielle et d’ECG et dépister une séquence de trois heures de faible activité. Pour effectuer une analyse de sensibilité baroréflexe ou BRS, ouvrez le panneau d’analyse BRS.Inspectez manuellement chaque séquence affichée dans le panneau et excluez les battements ectopiques, les pauses sinusales, les événements arythmiques ou les données bruyantes pour les exclure de l’analyse. Ce protocole peut être utilisé pour une analyse BRS précise et un large éventail de paramètres ECG ou dérivés de la PA tels que les intervalles ECG, la variabilité de la PA et les détections d’arythmie. Une souris en bonne santé qui a suffisamment récupéré de la chirurgie montre une augmentation physiologique de l’activité, de la fréquence cardiaque et de la PA pendant la phase sombre.La méthode de séquence a été utilisée pour déterminer BRS où la pression artérielle systolique et les intervalles RR ont été examinés sur une base battement à battement au cours de courtes séquences de trois battements ou plus avec une augmentation ou une baisse spontanée de la pression artérielle systolique. Pour évaluer la corrélation entre RR et la pression artérielle systolique, les deux paramètres ont été tracés l’un par rapport à l’autre et la pente de la droite de régression linéaire a été calculée pour chaque séquence. Le nombre total de séquences pour 1 000 battements et le gain moyen de BRS spontanés reflétés par les pentes des droites de régression linéaire calculées à partir du RR par relation de pression artérielle systolique sont des paramètres d’intérêt dans l’analyse.Pendant les phases d’activité plus élevée, la qualité du signal peut diminuer et induire du bruit. La fixation de deux valeurs basses pour le coefficient de corrélation minimal entraîne également de fausses détections de séquences qui ne reflètent pas l’activité baroréflexe, mais résultent de billes arythmiques. Pour l’interprétation des données de sensibilité des barorécepteurs, il est important de considérer les niveaux fonctionnels impliqués dans le réflexe barorécepteur.Au niveau neuronal, les composantes afférentes, centrales ou efférentes du réflexe peuvent être altérées. Au niveau cardiovasculaire, une réactivité réduite ou accrue du nœud sinusal peut entraîner des changements dans la sensibilité des barorécepteurs. Avec ces données, on peut non seulement déterminer la sensibilité baroréflexe et la fonction du ganglion sino-auriculaire cardiaque, mais aussi un large éventail de paramètres dérivés de l’ECG et de la pression artérielle.Ceux-ci incluent, par exemple, la pression artérielle systolique et diastolique, les intervalles ECG, la variabilité de la fréquence cardiaque ou les rythmes des cigales.

Research

JoVE Journal

Medicine

Pressure Controlled Ventilation to Induce Acute Lung Injury in Mice

La ventilation à pression contrôlée pour induire lésion pulmonaire aiguë chez la souris

Murine models are extensively used to investigate acute injuries of different organs systems (1-34). Acute lung injury (ALI), which occurs with prolonged ...

Recherche

Médecine

Hyperinsulinemic-euglycemic Clamps in Conscious, Unrestrained Mice

Hyperinsulinémique euglycémique-pinces dans Conscient, Souris illimités

Type 2 diabetes is characterized by a defect in insulin action. The hyperinsulinemic-euglycemic clamp, or insulin clamp, is widely considered the "gold ...

Implantation of Radiotelemetry Transmitters Yielding Data on ECG, Heart Rate, Core Body Temperature and Activity in Free-moving Laboratory Mice

Implantation de transmetteurs radiotélémétrie fournissant des données sur l&#39;ECG, fréquence cardiaque, température centrale du corps et de l&#39;activité des souris de laboratoire déplacement libre

The laboratory mouse is the animal species of choice for most biomedical research, in both the academic sphere and the pharmaceutical industry. Mice are a ...

Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements

Fémorale cathétérisme artériel et veineux pour le prélèvement sanguin, Drug Administration et la pression artérielle Conscient et Mesures du rythme cardiaque

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically ...

Orthotopic Implantation and Peripheral Immune Cell Monitoring in the II-45 Syngeneic Rat Mesothelioma Model

Orthotopique Implantation et périphérique des cellules immunitaires surveillance dans le modèle II-45 Syngénique Rat mésothéliome

The enormous upsurge of interest in immune-based treatments for cancer such as vaccines and immune checkpoint inhibitors, and increased understanding of ...

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

Mesure la pression artérielle à long terme chez la souris Librement mobile à l&#39;aide de télémesure

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Novel Approach for Simultaneous Recording of Renal Sympathetic Nerve Activity and Blood Pressure with Intravenous Infusion in Conscious, Unrestrained Mice.

Nouvelle approche pour l’enregistrement simultané de l’activité nerveuse sympathique rénale et de la pression artérielle avec une perfusion intraveineuse, conscients, souris sans retenue.

Renal sympathetic nerves contribute significantly to both physiological and pathophysiological phenomena. Evaluating renal sympathetic nerve activity ...

Assessment of Respiratory Function in Conscious Mice by Double-chamber Plethysmography

Évaluation de la fonction respiratoire chez des souris conscientes par pléthysmographie Double-chambre

Air volume changes created by a conscious subject breathing spontaneously within a body box are at the basis of plethysmography, a technique used to ...

Ultrasound Imaging of the Thoracic and Abdominal Aorta in Mice to Determine Aneurysm Dimensions

Échographie de l’aorte thoracique et abdominale chez les souris pour déterminer les Dimensions de l’anévrisme

Contemporary high-resolution ultrasound instruments have sufficient resolution to facilitate the measurement of mouse aortas. These instruments have been ...

Implantation of an Isoproterenol Mini-Pump to Induce Heart Failure in Mice

Implantation d'une mini-pompe isoprotéréendale pour induire une insuffisance cardiaque chez la souris

Isoproterenol (ISO), is a non-selective beta-adrenergic agonist, that is used widely to induce cardiac injury in mice. While the acute model mimics ...