Name: electric and magnetic field devices for stimulation of biological tissues
Uploaded: 2021-05-15T15:00:00
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Os autores agradecem o apoio financeiro prestado pelo "Fondo Nacional de Financiamiento para la Ciencia, la Tecnología, y la Innovación -Fondo Francisco José de Caldas- Minciencias" e Pela Universidad Nacional de Colombia através da bolsa nº 80740-290-2020 e do apoio recebido pela Valteam Tech - Research and Innovation para fornecer o equipamento e suporte técnico na edição do vídeo.

1. Simulação de EFs e MFs
NOTA: A simulação de EFs e MFs foi realizada em COMSOL Multifísica.
<ol><li>Selecione uma configuração 2D 2D axisymétrica para representar ambos os domínios elétricos e magnéticos.</li>
	<li>Na configuração física, selecione a interface Corrente Elétrica para calcular EFs em eletrodos paralelos ou a interface de campo magnético para calcular MFs em torno de bobinas.</li>
	<li>Na configuração do estudo, selecione <s...

Os tratamentos utilizados para curar diferentes patologias que afetam os tecidos humanos são as terapias farmacológicas32 ou intervenções cirúrgicas33,que buscam aliviar a dor localmente ou substituir os tecidos afetados por explantas ou transplantes. Recentemente, a terapia celular autóloga foi proposta como uma terapia alternativa para tratar tecidos feridos, onde as células são isoladas do paciente e expandidas, através de técnicas in vitro, para serem implanta...

EFs e MFs têm sido mostrados para modificar a dinâmica celular, estimulando a proliferação e aumentando a síntese das principais moléculas associadas à matriz extracelular dos tecidos1. Esses estímulos biofísicos podem ser aplicados de diferentes maneiras usando configurações e dispositivos específicos. Em relação aos dispositivos para gerar EFs, os estimuladores de acoplamento direto utilizam eletrodos que estão em contato com amostras biológicas in vitro ou implantados diretamente em tecidos de pacientes e animais in vivo2; no entanto, ainda existem limitações e deficiências que incluem biocompatibilidade insuficiente pelos eletrodos em contato, alterações nos níveis de pH e oxigênio molecular1. Pelo contrário, dispositivos de acoplamento indireto geram EFs entre dois eletrodos, que são colocados em paralelo às amostras biológicas3,permitindo uma técnica alternativa não invasiva para estimular amostras biológicas e evitar o contato direto entre tecidos e eletrodos. Esse tipo de dispositivo pode ser extrapolado para futuras aplicações clínicas para realizar procedimentos com invasão mínima ao paciente. Em relação aos dispositivos que geram MFs, estimuladores de acoplamento indutivo criam uma corrente elétrica que varia o tempo, que flui através de uma bobina que está localizada ao redor das culturas celulares4,5. Finalmente, existem dispositivos combinados, que usam EFs e MFs estáticos para gerar campos eletromagnéticos transitórios1. Dado que existem diferentes configurações para estimular amostras biológicas, é necessário considerar variáveis como tensão e frequência quando são aplicados estímulos biofísicos. A tensão é uma variável importante, pois influencia o comportamento dos tecidos biológicos; por exemplo, foi demonstrado que a migração celular, orientação e expressão genética dependem da amplitude da tensão aplicada3,6,7,8,9,10. A frequência desempenha um papel importante na estimulação biofísica, pois tem sido evidenciado que estes ocorrem naturalmente in vivo. Tem sido demonstrado que frequências altas e baixas têm efeitos benéficos sobre as células; especialmente, nos canais de cálcio fechados pela tensão da membrana celular ou no ânticulo endoplasmático, que desencadeiam diferentes vias de sinalização no nível intracelular1,7,11.
De acordo com o citado, um dispositivo para geração de EFs consiste em um gerador de tensão conectado a dois capacitores paralelos12. Este dispositivo foi implementado por Armstrong et al. para estimular tanto a taxa de proliferação quanto a síntese molecular dos condrócitos13. Uma adaptação deste dispositivo foi realizada por Brighton et al. que modificaram as placas de cultura celular perfurando suas tampas superior e inferior. Os buracos foram preenchidos por lâminas de cobertura, onde os óculos inferiores eram usados para cultivar tecidos biológicos. Eletrodos foram colocados em cada slide de cobertura para gerar EFs14. Este dispositivo foi utilizado para estimular eletricamente condrócitos, osteoblastos e explantes de cartilagem, mostrando um aumento na proliferação celular14,15,16 e síntese molecular3,17. O dispositivo projetado por Hartig et al. consistia em um gerador de ondas e um amplificador de tensão, que estavam conectados a capacitores paralelos. Os eletrodos eram feitos de aço inoxidável de alta qualidade localizados em uma caixa isolante. O dispositivo foi utilizado para estimular os osteoblastos, mostrando um aumento significativo na proliferação e secreção deproteínas 18. O dispositivo usado por Kim et al. consistia em um chip estimulador de corrente bifásica, que foi construído usando um processo de fabricação de semicondutores complementares de óxido metálico de alta tensão. Um bem-prato de cultura foi projetado para cultivar células sobre uma superfície condutiva com estimulação elétrica. Os eletrodos foram revestidos em ouro sobre placasde silício 19. Este dispositivo foi utilizado para estimular os osteoblastos, mostrando um aumento na proliferação e na síntese do fator de crescimento endotelial vascular19, e estimulando a produção de atividade fosfatase alcalina, deposição de cálcio e proteínas morfogênicasósseas 20. Da mesma forma, este dispositivo foi utilizado para estimular a taxa proliferativa e a expressão do fator de crescimento endotelial vascular das células-tronco mesenquimais da medula óssea humana21. O dispositivo projetado por Nakasuji et al. era composto por um gerador de tensão conectado a placas de platina. Eletrodos foram construídos para medir o potencial elétrico em 24 pontos diferentes. Este dispositivo foi utilizado para estimular condrócitos, mostrando que os EFs não alteraram a morfologia celular e aumentaram a proliferação e a síntese molecular22. O dispositivo utilizado por Au et al. consistia em uma câmara de vidro equipada com duas hastes de carbono conectadas a um estimulador cardíaco com fios de platina. Este estimulador foi utilizado para estimular cardiomiócitos e fibroblastos, melhorando o alongamento celular e o alinhamento do fibroblasto23.
Diferentes dispositivos MF foram fabricados com base em bobinas Helmholtz para estimular vários tipos de amostras biológicas. Por exemplo, as bobinas Helmholtz têm sido usadas para estimular a proliferação e a síntese molecular de conrócitos24,25, melhorar a síntese proteoglicana das explanações de cartilagem articular26,melhorar a regulação genética relacionada à formação óssea de células semelhantes ao osteoblasto27, e aumentar a proliferação e expressão molecular das células endoteliais28. As bobinas helmholtz geram MFs ao longo de duas bobinas localizadas uma na frente da outra. As bobinas devem ser colocadas com uma distância igual ao raio das bobinas para garantir uma MF homogênea. A desvantagem de usar bobinas Helmholtz está nas dimensões da bobina, porque elas precisam ser grandes o suficiente para gerar a intensidade de MF necessária. Além disso, a distância entre as bobinas deve ser adequada para garantir uma distribuição homogênea de FMs ao redor de tecidos biológicos. Para evitar problemas causados pelas bobinas helmholtz, diferentes estudos têm sido focados na fabricação de bobinas solenoides. As bobinas solenoides são baseadas em um tubo, que é ferido com fio de cobre para gerar MFs. As entradas de fio de cobre podem ser conectadas diretamente à tomada ou a uma fonte de alimentação para energizar a bobina e criar MFs no centro do solenoide. Quanto mais giros a bobina tem, maior o MF gerado. A magnitude do MF também depende da tensão e da corrente aplicada para energizar a bobina29. Bobinas solenoides têm sido usadas para estimular células magneticamente diferentes, como HeLa, HEK293 e MCF730 ou células-tronco mesenquimais31.
Os dispositivos utilizados por diferentes autores não consideraram o tamanho adequado dos eletrodos ou o comprimento correto da bobina para distribuir homogeneamente tanto os EFs quanto os MFs. Além disso, os dispositivos geram tensões e frequências fixas, limitando seu uso para estimular tecidos biológicos específicos. Por essa razão, neste protocolo é realizada uma diretriz de simulação computacional para simular tanto sistemas capacitivos quanto bobinas para garantir a distribuição homogênea de EFs e MFs sobre amostras biológicas, evitando o efeito de borda. Além disso, mostra-se que o desenho dos circuitos eletrônicos gera tensões e frequência entre os eletrodos e a bobina, criando EFs e MFs que superarão limitações causadas pela impedância do bem-estar da cultura celular e do ar. Essas modificações permitirão a criação de bioreatores não invasivos e adaptativos para estimular qualquer tecido biológico.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Electrical stimulator</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Operational amplifier</td>
			<td>Motorola</td>
			<td>LF-353N</td>
			<td>---- 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>22 k&#937; 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>10 k&#937; 
			Quantity: 3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>2.6 k&#937; 
			Quantity: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>2.2 k&#937; 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>1 k&#937; 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>220 &#937; 
			Quantity: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>22 &#937; 
			Quantity: 5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>10 &#937; 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>6.8 &#937; 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Resistors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>3.3 &#937; 
			Quantity: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyester capacitors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>1 nF 
			Quantity: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyester capacitors</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>100 nF 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VHF Band Amplifier Transistor JFET</td>
			<td>Toshiba</td>
			<td>2SK161</td>
			<td>---- 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Power transistor BJT NPN</td>
			<td>Mospec</td>
			<td>TIP 31C</td>
			<td>---- 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zener diode</td>
			<td>Microsemi</td>
			<td>1N4148</td>
			<td>---- 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Switch</td>
			<td>Toogle Switch</td>
			<td>SPDT - T13</td>
			<td>---- 
			Quantity: 3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Toroidal ferrite core</td>
			<td>Caracol</td>
			<td>----</td>
			<td>T*22*14*8 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cooper wire</td>
			<td>Greenshine</td>
			<td>----</td>
			<td>AWG &#8211; 24 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Relimate header with female housing</td>
			<td>ADAFRUIT</td>
			<td>----</td>
			<td>8 pin connectors 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Relimate header with female housing</td>
			<td>ADAFRUIT</td>
			<td>----</td>
			<td>2 pin connectors 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Female plug terminal connector</td>
			<td>JIALUN</td>
			<td>----</td>
			<td>4mm Lantern Plugs (Plug + Socket) 15 A 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aluminum Heat Sink</td>
			<td>AWIND</td>
			<td>----</td>
			<td>For TIP 31C transistor 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Led</td>
			<td>CHANZON</td>
			<td>----</td>
			<td>5 mm red 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Integrated circuit socket connector</td>
			<td>Te Electronics Co., Ltd.</td>
			<td>----</td>
			<td>Double row 8-pin DIP 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3 pin connectors set</td>
			<td>STAR</td>
			<td>----</td>
			<td>JST PH 2.0 
			Quantity: 3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2 pin screw connectors</td>
			<td>STAR</td>
			<td>----</td>
			<td>For PCB 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3 pin screw connectors</td>
			<td>STAR</td>
			<td>----</td>
			<td>For PCB 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Banana connector test lead</td>
			<td>JIALUN</td>
			<td>----</td>
			<td>P1041 - 4 mm - 15 A 
			Quantity: 7</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bullet connectors to banana plug charge lead</td>
			<td>JIALUN</td>
			<td>----</td>
			<td>4 mm male-male/female-female adapters - 15 A 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Case</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>ABS 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrodes</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>Stainless &#8211; steel 
			Quantity: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrode support</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>Teflon 
			Quantity: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Printed circuit board</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnetic stimulator</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cooper wire</td>
			<td>Greenshine</td>
			<td>----</td>
			<td>AWG &#8211; 18 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AC power plugs</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>120 V AC &#8211; 60 Hz 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Banana female connector test lead</td>
			<td>JIALUN</td>
			<td>----</td>
			<td>1Set Dual Injection - 4 mm &#8211; 15 A 
			Quantity: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Banana male connector test lead</td>
			<td>JIALUN</td>
			<td>----</td>
			<td>1Set Dual Injection - 4 mm 15 A 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell culture well plate support</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>PMMA 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fuse</td>
			<td>Bussmann</td>
			<td>2A</td>
			<td>---- 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Transformer</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>1A &#8211; 6 V AC 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tube</td>
			<td>----</td>
			<td>----</td>
			<td>PVC 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Variable rheostat</td>
			<td>MCP</td>
			<td>BXS150</td>
			<td>10 &#937; 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>General equipment</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital dual source&#160;</td>
			<td>PeakTech</td>
			<td>DG 1022Z</td>
			<td>2 x 0 - 30 V / 0 - 5 A CC / 5 V / 3 A fijo 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital Oscilloscope</td>
			<td>Rigol</td>
			<td>DS1104Z Plus</td>
			<td>100 MHz, bandwidth, 4 channels 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital multimeter</td>
			<td>Fluke</td>
			<td>F179</td>
			<td>Voltage CC &#8211; CA (1000 V). Current CC &#8211; CA 10 A. Frequency 100 kHz 
			Quantity: 1</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

electric and magnetic field devices for stimulation of biological tissues

Campos elétricos (EFs) e campos magnéticos (MFs) têm sido amplamente utilizados pela engenharia de tecidos para melhorar a dinâmica celular, como proliferação, migração, diferenciação, morfologia e síntese molecular. No entanto, variáveis como força de estímulo e tempos de estimulação precisam ser consideradas ao estimular células, tecidos ou andaimes. Dado que os EFs e os FMs variam de acordo com a resposta celular, ainda não está claro como construir dispositivos que gerem estímulos biofísicos adequados para estimular amostras biológicas. Na verdade, faltam evidências sobre o cálculo e distribuição quando são aplicados estímulos biofísicos. Este protocolo é focado no projeto e fabricação de dispositivos para gerar EFs e MFs e implementação de uma metodologia computacional para prever a distribuição de estímulos biofísicos dentro e fora de amostras biológicas. O dispositivo EF era composto por dois eletrodos paralelos de aço inoxidável localizados na parte superior e inferior das culturas biológicas. Os eletrodos foram conectados a um oscilador para gerar tensões (50, 100, 150 e 200 Vp-p) a 60 kHz. O dispositivo MF era composto por uma bobina, que foi energizada com um transformador para gerar uma corrente (1 A) e tensão (6 V) a 60 Hz. Um suporte de metacrilato de polimetila foi construído para localizar as culturas biológicas no meio da bobina. A simulação computacional elucidou a distribuição homogênea de EFs e MFs dentro e fora dos tecidos biológicos. Este modelo computacional é uma ferramenta promissora que pode modificar parâmetros como tensões, frequências, morfologias teciduais, tipos de placas de poço, eletrodos e tamanho da bobina para estimar os EFs e MFs para obter uma resposta celular.

Simulação computacional As distribuições de EFs e MFs são mostradas na Figura 3. Por um lado, foi possível observar a distribuição homogênea de EFs no sistema capacitivo (Figura 3A). A EF foi traçada para observar detalhadamente a magnitude do campo dentro da amostra biológica(Figura 3B). Esta simulação foi útil para parametrizar o tamanho dos eletrodos e fabricá-los para evitar o efeito de borda. ...

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Electric and Magnetic Field Devices for Stimulation of Biological Tissues

Este protocolo descreve o processo passo a passo para construir estimuladores elétricos e magnéticos usados para estimular tecidos biológicos. O protocolo inclui uma diretriz para simular campos computacionais elétricos e magnéticos e fabricação de dispositivos estimuladores.

Dispositivos de campo elétrico e magnético para estimulação de tecidos biológicos

Electric fields (EFs) and magnetic fields (MFs) have been widely used by tissue engineering to improve cell dynamics such as proliferation, migration, ...

Estímulos biofísicos têm sido usados para estimular a dinâmica celular e molecular em diferentes tecidos. Alguns estudos avaliaram o impacto dos campos elétricos e magnéticos em diferentes tipos de células, como condrócitos, osteoblastos e fibroblastos, implantes teciduais e andaimes. Embora diferentes dispositivos estimulantes tenham sido desenvolvidos sob as características específicas para estimular tecidos biológicos, é necessário confirmar dispositivos elétricos e magnéticos nos quais a tensão e a frequência poderiam ser variadas para estimular uma ampla gama de amostras biológicas.A simulação computacional para verificar a distribuição do campo elétrico foi realizada na COMSOL Multifísica. Aqui, uma configuração axisymetric foi utilizada para simular o sistema capacitivo que é composto por dois eletrodos paralelos, o ar, nossa placa de cultura, a mídia cultural, e a amostra biológica, que neste caso, foi representada por um andaime. As propriedades materiais de cada elemento foram a condutividade elétrica e a relativa permissão.A tensão aplicada foi fixada em 100 volts, enquanto a frequência foi fixada em 60 kilohertz sine Wien para. Após a introdução de todos os parâmetros, o modelo é calculado para observar a distribuição do campo elétrico em todas as superfícies. Para observar de forma mais detalhada a distribuição do campo elétrico, é possível conectar o campo elétrico no sistema completo, dentro do andaime, na mídia cultural, no ar, e dentro da placa do poço cultural e fora dos eletrodos.O circuito vai gerar os campos elétricos, é baseado no oscilador de wien da ponte. Esta é uma sequência RCnonthian de chip facial que usa feedback positivo e negativo. O oscilador de wien da ponte é composto por uma rede de laboratório iluminada que é uma tensão reativa dividida na qual a tensão de entrada é dividida pela combinação entre R5 e C2 em série e pela combinação entre R6 e C3 em paralelo.Para calcular a frequência, usamos uma equação de frequência ressonante onde F Sub-Zero é a frequência R igual a R5 igual a R6 são os resistores e C igual a C2 e C3 são os capacitores. Este circuito é projetado para que a tensão resistiva dividida aumente quando a saída que aumenta em amplitude e a tensão resistiva dividida diminua quando a tensão de saída diminui em amplitude. Assim, o ganho de tensão do amplificador começa automaticamente as mudanças de amplitude do sinal de saída.Em seguida, uma combinação de resistores foi calculada para gerar as quatro tensões superiores. Finalmente, um estágio de retificação de sinal foi implementado antes para amplificar o sinal com o transformador. Uma vez simulado o circuito, a placa de circuito pintada foi fabricada como resultado o sinal sinusoidal final gerado pelo oscilador é enredo.Uma vez que o circuito é simulado o próximo passo é construir o oscilador da ponte de wien em uma prancha aqui, podemos testar as quatro tensões de saída e a frequência que está gerando o circuito. Então fabricamos em uma placa de circuito impresso o oscilador que fizemos para o formato Reed Curtis e os resisters que usamos para as tensões que o oscilador gera. E finalmente temos aqui a montagem final para os indicadores do circuito.O primeiro passo para testar o dispositivo estimulador elétrico é verificar a tensão de saída da fonte de alimentação para isso, ajustar a fonte de alimentação em paralelo e medir a tensão de saída de 12 e 12 volts entre o solo e os terminais positivos e negativos. Uma vez verificada a tensão de saída, podemos continuar a conectar cada saída da fonte de alimentação na entrada atual do dispositivo estimulador elétrico. O cabo branco é o chão.O cabo preto é a tensão negativa. E o cabo vermelho é a tensão positiva. Para testar o sinal de saída que está gerando o dispositivo estimulador elétrico, localizamos uma placa de poço de cultura no meio dos eletrodos.Depois disso, conectamos as tensões de saída geradas pelo dispositivo estimulador elétrico a cada placa paralela. Dado que estamos trabalhando em corrente alternada não há uma ordem estrita de conectar a tensão de saída do oscilador aos terminais da placa paralela. Para verificar o sinal de saída usamos um Osciloscópio, que está conectado diretamente a cada eletrodo.Quando o C nove é capturado pelo Osciloscópio modificamos a amplitude e o período do sinal para observar a onda completamente. Nesta etapa, é possível verificar as quatro tensões geradas pelo dispositivo estimulador elétrico. 50 volts, 100 volts, 150 volts e 200 volts a 60 quilos hertz, fórum de vento sine.Semelhante aos campos elétricos, foi implementada uma simulação computacional para verificar a distribuição do campo magnético. Uma configuração axisymétrica foi usada para simular a bobina que é composta pelo fio cooper e ar. Aqui, foram consideradas diferentes propriedades materiais e a frequência aplicada foi fixada em 60 Hertz.Após a introdução de todos os parâmetros, o modelo foi calculado para observar a distribuição do campo magnético. Finalmente, foi realizado um diagrama para observar como o campo magnético é distribuído de forma homogênea no centro da bobina. A equação de campo solenoide, derivada da Lei de Ampere foi usada para calcular o campo magnético onde está a permeabilidade magnética do vácuo N'é o número de voltas do fio Cooper.Eu sou a corrente e h'que deve ser classificado em seu diâmetro, é o comprimento da bobina. Os valores desses parâmetros foram escolhidos para estimar um campo magnético de dois milímetros. O circuito para gerar os campos magnéticos foi simulado computacionalmente.Aqui, o transformador está conectado diretamente à tomada. Um resistor variável foi usado para esarcoar a corrente e gerar os campos magnéticos de 1 milímetro de comprimento. Um fusível foi conectado para proteger o circuito.Uma vez realizados os cálculos, o suporte de metacrilato de polimetila e a bobina foram construídos Após a realização da simulação, fabricamos um dispositivo especial para garantir que as placas de Petri serão localizadas no meio do dispositivo de estimulação. Depois disso, fabricamos uma moeda com 450 giros de arame cooper em um tubo de PVC que vai ser localizado no meio da cultura para garantir um campo magnético homogêneo no meio da bobina. Depois disso, fabricamos um transformador com uma saída de seis Volts e um Ampere para energizar o circuito.Para testar o dispositivo simulador magnético, medimos a corrente que a bobina está gerando. Esta medida é realizada conectando o multimetro em série com a bobina. Uma vez verificado que a corrente é de cerca de um Ampere, o transformador está conectado à bobina para fechar o circuito.Depois disso, o osciloscópio é conectado às saídas da bobina, a fim de verificar o sinal seno a 60 Hertz que é gerado pela estimulação magnética. Quando as culturas celulares estão sendo estimuladas eletricamente é relevante manter as condições estéreis quando as mudanças na mídia cultural são realizadas nas amostras biológicas, por isso é necessário introduzir os eleitores na cabine. Uma vez que a mídia cultural mudou a placa de cultura bem está localizada acima do eletrodo.Para devolver as culturas celulares à incubadora, o eletrodo inferior está localizado sobre uma superfície estável para colocar o eletrodo superior no topo da cultura celular. Em seguida, os cabos de saída do dispositivo simulador elétrico são conectados ao terminus de cada eletrodo. Finalmente, os eleitores são cuidadosamente localizados na incubadora para iniciar a estimulação elétrica.Condições estéreis semelhantes são consideradas quando a mídia cultural é alterada para as amostras biológicas que estão sendo estimuladas magneticamente. Aqui, placas de Petri de 35 milímetros são usadas para cultivar células, explantes ou andaimes. Uma vez que a mídia cultural é alterada, as culturas celulares precisam ser localizadas no suporte de polimetilmetatocrila.Aqui cada placa de Petri está localizada uma acima da outra. Depois disso, a bobina é cuidadosamente localizada sobre o suporte para cobrir as culturas celulares. Finalmente, o dispositivo estimulador magnético está localizado na incubadora para iniciar a estimulação magnética.Como você pode ver, o dispositivo estimulador elétrico foi testado para estimular condrócitos e osteoblastos. Aqui, avaliamos a proliferação e a síntese molecular. O estimulador elétrico também foi testado para estimular a condroepifise, explanta para avaliar as mudanças morfológicas na placa de crescimento.Além disso, a cultura, as células STEM mesenquimais em ácido urônico e hidrânis de gelatina foram estimuladas eletricamente para avaliar o potencial de diferenciação condrogênica. Por outro lado, seu dispositivo estimulador magnético foi testado para estimular conrócitos para avaliar tanto a proliferação quanto a síntese molecular. Os dispositivos que desenvolvemos, neste estudo evitam problemas de compatibilidade, contam com os eletrodos quando estão em contato direto com o material biológico.Além disso, esses tipos de dispositivos representam uma vantagem porque evitam as mudanças no pH e a redução dos níveis de gel de cultura molecular. Tensão e frequências são variáveis importantes a serem consideradas no momento de estimular tecidos biológicos. Por um lado, tem sido evidenciado que a dinâmica celular como migração, proliferação, expressão genética entre outros, depende da aptidão da tensão aplicada.Por outro lado, foi comprovado que frequências baixas e altas têm um efeito sobre as células especialmente na abertura e fechamento dos canais de membrana celular, que desencadeiam diferentes vias de sinal em níveis extra e intracelular. No geral, este dispositivo semelhante pode ser extrapolado para ambientes clínicos para melhorar terapias regenerativas, como a implantação alternativa celular. Esse tipo de tratamento combina técnicas in vitro e in vivo para regeneração tecidual.Aqui, os estimuladores elétricos e magnéticos poderiam desempenhar um papel fundamental na estimulação de materiais biológicos, melhorando as características celulares e moleculares das células, tecidos e andaimes antes de serem implantados no paciente.

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Electrohydrodynamic (EHD) jet printing has drawn attention in various fields because it can be used as a high-resolution and low-cost direct patterning ...