Name: using the gal4-uas system for functional genetics in anopheles gambiae
Uploaded: 2021-04-15T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Using the GAL4-UAS System for Functional Genetics in Anopheles gambiae at JoVE.com

Riconosciamo con gratitudine i finanziamenti di LSTM e IVCC (Adriana Adolfi), BBSRC (New Investigator Award (AL), MRC (PhD studentship a BCP: MR / P016197 / 1), Wellcome (Sir Henry Wellcome Postdoctoral fellowship to LG: 215894 / Z / 19 / Z) che hanno incorporato l'analisi Gal4UAS nelle proposte.

1. Progettazione e costruzione di costrutti UAS
<ol><li>Progettazione e assemblaggio di vettori per l'espressione genica candidata
	<ol>
<li>Determinare la sequenza da utilizzare per l'upregulation del gene candidato.<ol>
<li>Sequenziare il cDNA/gDNA dal ceppo di interesse e confrontarlo con la sequenza pubblicata per verificarne l'identità e identificare potenziali SNP e siti di restrizione per il digest diagnostico.</li>
			<li>Assicurarsi che il primer in avanti utilizzato per l'am...

<ol>
	<li>Brand, A. H., Perimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeted+gene+expression+as+a+means+of+altering+cell+fates+and+generating+dominant+phenotypes.">Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes.</a> Development. 118 (2), 401-415 (1993).</li><li>Duffy, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=GAL4+system+in+drosophila:+A+fly+geneticist's+swiss+army+knife.">GAL4 system in drosophila: A fly geneticist's swiss army knife.</a> Journal of Genetics and Development. 34 (1-2), 1-15 (2002).</li><li>Dow, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> ELS. , (2012).</li><li>Edi, C. 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Comprendere la funzione del gene della zanzara è vitale per sviluppare nuovi approcci per controllare l'anofele e influenzare la trasmissione della malaria. Il sistema GAL4-UAS descritto è un sistema versatile e potente per l'analisi funzionale dei geni candidati e ad oggi abbiamo utilizzato il sistema per esaminare le basi genetiche della resistenza agli insetticidi17 e della produzione di idrocarburi cuticolari15,23, nonché per etichettare fluorescentemente diverse popolazioni di cel...

Il sistema bipartito GAL4-UAS è il cavallo di battaglia della caratterizzazione funzionale dei geni nell'organismo modello di insetto Drosophila melanogaster1,2,3. Per utilizzare il sistema GAL4-UAS, le linee driver transgeniche, che esprimono il fattore di trascrizione del lievito GAL4 sotto il controllo di una sequenza regolatoria, vengono incrociate con linee di responder portatrici di un costrutto di genico di interesse o di interferenza dell'RNA (RNAi) controllato da una sequenza di attivazione a monte (UAS) riconosciuta da GAL4. La progenie di questa croce esprime il transgene di interesse per un pattern spaziotemporale dettato dal promotore che controlla l'espressione GAL4 (Figura 1). I fenotipi visualizzati dalla progenie di incroci driver-responder possono essere valutati per chiarire la funzione dei geni candidati. Sebbene D. melanogaster sia stato utilizzato per esaminare geni di altri organismi4,5,6,7, il sistema GAL4-UAS è stato ora adattato per l'uso in insetti di importanza medica e agricola per fornire analisi dirette nelle specie di interesse 8,9,10,11,12,13,14.
Nella zanzara africana della malaria, Anopheles gambiae, il sistema GAL4-UAS è stato testato per la prima volta dalla co-trasfezione della linea cellulare9. Sono stati analizzati più costrutti per l'efficienza in diverse combinazioni a coppie e hanno scoperto che 14 UAS ripetuti in tandem integrati con un piccolo introne artificiale (UAS-14i) mostravano la più ampia gamma di potenziale di attivazione quando utilizzati con un pannello di driver GAL4. Per dimostrare la funzionalità in vivo, questi costrutti sono stati poi utilizzati per creare due linee transgeniche Separate an. gambiae mediante la trasformazione piggyBac8: una linea driver che trasporta GAL4 guidata da un promotore specifico del midgut e una linea di risposta contenente sia la luciferasi che i geni della proteina fluorescente gialla potenziata (eYFP) sotto la regolazione delle sequenze UAS. L'attività della luciferasi specifica dell'intestino e la fluorescenza nella progenie indicavano che il sistema era efficiente in Anopheles. Da allora, sono state create linee driver che esprimono transgeni in altri tessuti importanti per la capacità vettoriale e la resistenza agli insetticidi, compresi gli enociti15 e gli emociti16, e in un modello quasi onnipresente10. Sono state inoltre generate numerose linee UAS per analizzare geni ritenuti coinvolti nel metabolismo e nel sequestro mediato dalla resistenza agli insetticidi, dalla sintesi di idrocarburi cuticolari e per etichettare fluorescentemente diversi tipi di cellule e tessuti (Tabella 1). Per le linee di risposta, l'integrazione site-directed del transgene viene ora eseguita mediante scambio di cassette di ricombinazione catalizzate ΦC31111117,18 per fissare il contesto genomico dei geni regolati UAS. In questo modo, l'espressione transgenica viene normalizzata per quanto riguarda la posizione di inserimento genomico, consentendo un confronto più accurato degli effetti fenotipici di diversi geni candidati.
Le linee di risposta create fino ad oggi sono progettate per esprimere il transgene a livelli elevati o per ridurre l'espressione genica attraverso l'interferenza dell'RNA (RNAi). Di solito i cloni di cDNA sono fusi alla sequenza UAS per generare plasmidi di espressione adatti, tuttavia anche le sequenze genomiche complete sono fattibili supponendo che non siano troppo grandi per la clonazione. Per generare costrutti di silenziamento, abbiamo usato tre diversi metodi per ottenere sequenze invertite in tandem adatte che formano dsRNA a forcina che stimola l'RNAi. Questi hanno incluso la PCR di fusione, la PCR asimmetrica e la sintesi commerciale di costrutti a forcina. Comune a ciascun metodo è l'inclusione di una sequenza di introni tra le sequenze invertite per fornire stabilità di clonazione. Sono stati sviluppati plasmidi responder in cui può essere inserito un costrutto gene di interesse/RNAi15. Questi plasmidi portano anche i siti ΦC31 attB richiesti per RMCE (descritti in Adolfi che accompagna l'articolo JoVE che descrive la tecnica RCME in dettaglio). I protocolli che coprono i passaggi importanti richiesti quando si seleziona la sequenza per l'inserimento in uno di questi plasmidi per la sovraespressione sono inclusi in questo manoscritto. Inoltre, vengono descritti e illustrati due protocolli per la creazione di costrutti a forcina RNAi.
Quando si creano nuove linee, l'identificazione di individui transgenici rari è fondamentale per riprodursi per stabilire e mantenere colonie transgeniche. Ancora più importante per il sistema GAL4-UAS c'è la necessità di distinguere le linee di risposta e driver per stabilire incroci e identificare la progenie individuale che trasporta entrambi i transgeni. Ciò si ottiene utilizzando diversi geni marcatori selezionabili dominanti collegati alle cassette del conducente e del risponditore. Più comunemente si tratta di geni marcatori fluorescenti che sono chiaramente distinguibili utilizzando filtri ottici (ad esempio, eYFP, eCFP, dsRed). È importante che i marcatori siano espressi in un modello spaziotemporale noto e affidabile in quanto ciò rende più facile l'identificazione delle anomalie e della contaminazione. L'espressione genica dei marcatori fluorescenti è regolata di routine dal promotore sintetico 3xP3, che causa l'espressione specifica dei gangli oculari e ventrali in tutte le fasi dello sviluppo di An. gambiae19. I marcatori fluorescenti controllati da 3xP3 sono inclusi in tutti i plasmidi di trasformazione descritti in questo articolo. Un protocollo che descrive in dettaglio i metodi comuni utilizzati per schermare le linee fluorescenti An. gambiae pupae GAL4-UAS è incluso qui.
Uno degli elementi chiave del sistema GAL4-UAS è la necessità di attraversare le linee di guida e di risposta con marcatura differenziale. Per fare questo maschio e femmine da ogni linea devono essere separati prima dell'accoppiamento. Gli adulti sono facilmente distinguibili dalla vista, tuttavia, per stabilire incroci genetici è sensato separare i sessi prima dell'emergere degli adulti per garantire che l'accoppiamento non si sia verificato. La differenza generale di dimensioni tra maschio e femmina An. gambiae pupae è troppo variabile per essere un metodo efficiente e affidabile di determinazione del sesso20. Invece chiare differenze morfologiche nei genitali esterni forniscono una base affidabile per il sexing in An. gambiae. In questo articolo, descriviamo un metodo affidabile per il sexing An. gambiae pupae per impostare croci appropriate.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62131/62131fig1v3.jpg"> Figura 1 - Rappresentazione diagrammatica del processo per l'utilizzo del sistema bipartito GAL4-UAS in Anopheles gambiae. (A) Sono rappresentati i componenti principali di un vettore di esempio (pSL-attB-UAS14-gyp[3xp3-eYFP]), che descrivono in dettaglio i siti di restrizione disponibili (EcoRI, NheI, XhoI e NcoI) all'interno dei siti di clonazione multipli che sono adatti all'uso per inserire il costrutto a forcina o la sequenza codificante per il gene di interesse. Anche la struttura della linea di attracco è raffigurata. (B) La fase di attraversamento è illustrata indicando l'uso di maschi dalla linea di guida (che trasportano il conducente GAL4 da un promotore di interesse e eCFP guidato dal promotore 3xP3) e femmine dalla linea di risposta (portatori del gene di interesse o del costrutto a forcina controllato da un promotore UAS e da un marcatore eYFP controllato dal promotore 3xP3). (C) Una rappresentazione diagrammatica dell'espressione trainante GAL4 del gene di interesse nella progenie della croce in B e un elenco di alcuni dei fenotipi tipici che vengono valutati. Abbreviazioni: Multiple Cloning Site (MCS), Recombinase mediated cassette exchange (RMCE), Upstream Activator Sequence (UAS), enhanced yellow fluorescent protein (eYFP), enhanced cyan fluorescent protein (eCFP). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62131/62131fig1v2large.jpg" target="_blank">Fare clic qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
È l'uso delle croci che fornisce la natura bipartita del sistema GAL4-UAS, che presenta vantaggi distinti rispetto agli approcci più lineari. Ad esempio, è possibile valutare molte più combinazioni di linee driver e responder di quanto sarebbe fattibile se una nuova linea transgenica dovesse essere generata e mantenuta per ciascuna combinazione promotore/gene. Ancora più importante, consente l'analisi di geni che producono fenotipi letali o sterili quando la loro espressione è perturbata che sono difficili da creare / mantenere in un sistema lineare. Tali fenotipi letali possono manifestarsi in tutte le fasi dello sviluppo, a seconda della funzione genica e dell'espressione spaziotemporale, ma sono più spesso osservati durante lo sviluppo embrionale. Visualizzare lo sviluppo dell'embrione di zanzara richiede la pulizia del corion opaco che ricopre le uova. Seguendo i metodi descritti in Trpiš (1970)21 e Kaiser et al. (2014)22, descriviamo i protocolli che usiamo per fissare gli embrioni, pur mantenendo l'integrità strutturale, e lo sbiancamento per eliminare l'endocorion che consente la visualizzazione microscopica e l'imaging.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>100 x 15 mm plastic Petri dish</td>
			<td>SLS</td>
			<td>2175546</td>
			<td>Pack of 10</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1000 &#181;L Gilson Pipette</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>F144059P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20/25 mL Universal Tubes</td>
			<td>Starlab</td>
			<td>E1412-3020</td>
			<td>Pack of 400</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3 mL Pasteur Pipettes</td>
			<td>SLS</td>
			<td>G612398</td>
			<td>Greiner Pasteur pipette 3 mL sterile individually wrapped</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL Falcon Tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>11512303</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Absolute Ethanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP2818-500</td>
			<td>500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetic Acid</td>
			<td>SLS</td>
			<td>45726-1L-F</td>
			<td>1 L</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cages</td>
			<td>SLS</td>
			<td>E6099</td>
			<td>30x30x30 with screen port</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fine Paint Brushes</td>
			<td>Amazon</td>
			<td>UKDPB66</td>
			<td>KOLAMOON 9 Pieces Detail Painting Brush Set Miniture Brushes for Watercolor, Acrylic Painting, Oil Painting (Wine Red)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fish food</td>
			<td>Amazon</td>
			<td></td>
			<td>Tetra Min Fish Food, Complete Food for All Tropical Fish for Health, Colour and Vitality, 10 L&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formaldehyde Solution</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F8775</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouth Aspirator</td>
			<td>John Hock</td>
			<td>612</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pond Salt</td>
			<td>Amazon</td>
			<td></td>
			<td>Blagdon Guardian Pond Tonic Salt, for Fish Health, Water Quality, General Tonic, pH Buffer, 9.08 kg, treats 9,092 L&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pupae Pots</td>
			<td>Cater4you</td>
			<td>SP8OZ</td>
			<td>250 pots with lids</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Plastic Buckets</td>
			<td>Amazon</td>
			<td></td>
			<td>2.5 L White Plastic Pail Complete with White Lid (Pack of 10)&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Hypochlorite</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>S25552</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

using the gal4-uas system for functional genetics in anopheles gambiae

Il sistema bipartito GAL4-UAS è uno strumento versatile e potente per l'analisi genetica funzionale. L'essenza del sistema è quella di incrociare linee transgeniche "driver" che esprimono il fattore di trascrizione del lievito GAL4 in modo specifico per il tessuto, con linee transgeniche "responder" portatrici di un costrutto di interferenza gene/RNA candidato la cui espressione è controllata da Upstream Activation Sequences (UAS) che legano GAL4. Nella progenie che ne consegue, il gene o il costrutto di silenziamento è quindi espresso in modo spaziotemporale prescritto, consentendo di dosare i fenotipi risultanti e di dedurre la funzione genica. Il sistema binario consente flessibilità negli approcci sperimentali per lo screening dei fenotipi generati dall'espressione transgenica in più modelli tessuto-specifici, anche se sono indotti gravi costi di fitness. Abbiamo adattato questo sistema per Anopheles gambiae, il principale vettore di malaria in Africa.
In questo articolo vengono fornite alcune delle procedure comuni utilizzate durante l'analisi GAL4-UAS. Descriviamo le linee An. gambiae GAL4-UAS già generate, così come la clonazione di nuovi costrutti di responder per l'upregulation e il knockdown RNAi. Specifichiamo una guida passo passo per il sexing delle pupe di zanzara per stabilire incroci genetici, che include anche lo screening della progenie per seguire l'ereditarietà di marcatori genetici fluorescenti che etichettano le inserzioni del conducente e del soccorritore. Presentiamo anche un protocollo per la rimozione degli embrioni di An. gambiae per studiare lo sviluppo embrionale. Infine, introduciamo potenziali adattamenti del metodo per generare linee driver attraverso l'inserimento CRISPR/Cas9 di GAL4 a valle dei geni bersaglio.

L'espressione 3xP3 di eYFP, dsRed ed eCFP fornisce un'identificazione affidabile e facilmente distinguibile degli individui che possiedono i geni marcatori che producono espressione negli occhi e nei gangli ventrali di An. gambiae pupae (Figura 3). La morfologia differenziale osservata nei genitali esterni maschili e femminili utilizzati per il sexing e un esempio di pupe non identificabili sono evidenziati nella Figura 4. La rimozione di tutta...

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Using the GAL4-UAS System for Functional Genetics in Anopheles gambiae

Il sistema bipartito GAL4-UAS è uno strumento versatile per la modifica dell'espressione genica in modo spaziotemporale controllato che consente l'analisi genetica funzionale in Anopheles gambiae. Le procedure descritte per l'utilizzo di questo sistema sono una strategia di clonazione semi-standardizzata, sexing e screening delle pupe per marcatori proteici fluorescenti e fissazione dell'embrione.

Utilizzo del sistema GAL4-UAS per la genetica funzionale in Anopheles gambiae

The bipartite GAL4-UAS system is a versatile and powerful tool for functional genetic analysis. The essence of the system is to cross transgenic 'driver' ...

Il sistema bipartito GAL4-UAS è uno strumento versatile per l'analisi genetica funzionale in Anopheles gambiae attraverso la modificazione genetica dell'espressione genica in modo controllato spaziotemporale. Il sistema binario consente flessibilità negli approcci sperimentali per la caratterizzazione fenotipica dell'espressione transgenica anche se sono indotti gravi costi di fitness. Questo sistema può essere utilizzato per la caratterizzazione fenotipica di geni potenzialmente coinvolti nella resistenza agli insetticidi, nella trasmissione di agenti patogeni o in quelli che hanno usi nei metodi di controllo genetico.Fraser Coleman, un tecnico di ricerca, aiuterà a dimostrare questa procedura Inizia raccogliendo le pupe usando un pipetto Pasteur di plastica da tre millilitri con l'estremità tagliata su un piatto piatto trasparente adatto per l'uso con uno stereomicroscopio. Rimuovere con attenzione la maggior parte dell'acqua intorno alle pupe. Accendi la lampadina fluorescente e lasciala riscaldare.Considerare i modelli spaziotemporali di colore di un'espressione e il rapporto di diversi fenotipi che ci si aspetta quando si esegue lo screening per il marcatore fluorescente. Selezionare il filtro richiesto sullo stereoscopio a fluorescenza e verificare che sia visibile un fascio di luce colorato diretto al centro della piastra del palco. Sotto la luce bianca, centra le pupe nel campo visivo e mettile a fuoco.Spegni la luce bianca e usa la messa a fuoco fine per mettere a fuoco l'area delle pupe che trasportano il fenotipo di interesse con un motivo fluorescente visibile. Utilizzare un pennello dettagliato per ruotare delicatamente le pupe e spostare le pagaie anali in modo che i genitali esterni possano essere identificati. Pupe separate basate su genitali esterni distintivi.I maschi hanno un lungo tubo che estrude dal segmento dorsale finale circa la metà della lunghezza delle pagaie anali. I genitali esterni delle pupe femminili sono considerevolmente più corti e biforcati. Separare le pupe sessuate in gruppi di 10 o meno in tubi trasparenti da 20 millilitri con acqua e sigillare i tubi con un batuffolo di cotone idrofilo.Aspirare il numero desiderato di adulti maschi e femmine dai tubi in una gabbia o in un piccolo secchio, facendo attenzione a non danneggiare gli adulti durante questo trasferimento. Mantenere la croce per cinque o sette giorni prima di nutrirsi con il sangue. Il giorno seguente, le uova possono essere raccolte per studiare lo sviluppo dell'embrione.Assemblare la camera di ovodeposizione e introdurre con cura da 10 a 15 femmine alimentate con sangue in essa. Coprire la camera di ovodeposizione e lasciare agire per 20 minuti. Staccare con cura il tubo di polipropilene da 50 millilitri dal vaso di ovodeposizione, assicurandosi di non rilasciare le zanzare.Coprire la pentola e lasciare che le uova maturino fino alla fase di sviluppo di interesse. Raccogli le uova dalla pentola usando un pennello finemente dettagliato e mettile sull'acqua in un blocco di vetro scavato di 40 millimetri quadrati. Rimuovere con cura l'acqua dal mattone di vetro con una micropipetta e coprire le uova in 500 microlitri di FAA.Oscillare delicatamente sullo shaker orbitale a temperatura ambiente per 30 minuti. Risciacquare accuratamente le uova 15 volte con acqua distillata per rimuovere tutte le tracce di soluzione FAA. Utilizzando una micropipetta da 1000 microlitri aggiungere e quindi rimuovere un millilitro di acqua distillata alla volta facendo attenzione a non danneggiare le uova mentre lo si fa.Coprire le uova fisse con un millilitro di soluzione di Trpis e incubare a temperatura ambiente per 30 minuti. Le uova inizieranno a sviluppare chiazze pallide dopo cinque minuti di incubazione raggiungendo infine un colore bianco latte una volta eliminato. Risciacquare accuratamente le uova 15 volte con acqua distillata per rimuovere tutte le tracce di soluzione di Trpis.L'espressione di marcatori fluorescenti guidati dal promotore 3xP3 è osservata negli occhi e nei gangli ventrali delle pupe di Anopheles gambiae. L'utilizzo di diversi marcatori fluorescenti colorati consente la selezione e lo screening di individui modificati che trasportano diversi componenti GAL4 e UAS. Quando si lavora con un sistema BIPARTITO GAL4-UAS, è necessario incrociare maschi e femmine di ceppi diversi per acquisire progenie che trasporta sia i componenti GAL4 che UAS.La morfologia differenziale osservata nel genitale esterno maschile e femminile delle pupe viene utilizzata per il sexing. Un esempio di pupe non identificabili è evidenziato qui. La rimozione di tutta l'acqua dalle pupe, come mostrato a destra, aumenta la difficoltà di sexing poiché le pagaie anali oscurano la visualizzazione dei genitali.Il sistema bipartito GAL4-UAS consente la modifica dell'espressione genica in modo spaziotemporale controllato. Questo può essere visualizzato incrociando l'enocita e l'onnipresente GAL4 quattro linee di guida che esprimono con la linea di risposta UAS-mCherry. Un vantaggio chiave dell'utilizzo di un sistema BIPARTITO GAL4-UAS è la facilità di studiare fenotipi letali anche nella fase embrionale.Per fare questo, è necessario visualizzare la morfologia interna degli embrioni. Le normali caratteristiche morfologiche osservate nelle diverse fasi dello sviluppo embrionale a 12, 24 e 36 ore dopo la deposizione possono essere osservate dopo il completamento del protocollo di compensazione degli embrioni. È fondamentale durante questa procedura che pupe e uova non siano autorizzate a seccare.Pertanto, è importante lavorare rapidamente quando si rimuovono i liquidi. Il metodo GAL4-UAS ci ha permesso di caratterizzare funzionalmente i geni coinvolti nella resistenza agli insetticidi e quelli con potenziali usi nei metodi di controllo del gene drive.

Research

JoVE Journal

Genetics

Using the GAL4-UAS System for Functional Genetics in Anopheles gambiae

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L&#39;analisi del particolato ambientale indotto aberrazioni cromosomiche L&#39;utilizzo di un<em&gt; In Vitro</em&gt; sistema

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