Name: multi-system monitoring for identification of seizures, arrhythmias and apnea in conscious restrained rabbits
Uploaded: 2021-03-27T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Multi-system Monitoring for Identification of Seizures, Arrhythmias and Apnea in Conscious Restrained Rabbits at JoVE.com

Die Autoren bestätigen, dass diese Studie durch Zuschüsse der American Heart Association, der American Epilepsy Society und der SUNY Upstate Department of Pharmacology unterstützt wurde.

Alle Experimente wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien der National Institutes of Health (NIH) und dem Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der Upstate Medical University durchgeführt. Darüber hinaus finden Sie in Abbildung 1eine Übersicht über dieses Protokoll.
1. Vorbereitung des Kontrollgeräts
<ol><li>Schließen Sie den Computer an einen Verstärker mit einem 64-poligen Kopfkasten an. HINWEIS: Jedes Tier hat vi...

<ol>
	<li>Kaese, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ECG+in+cardiovascular-relevant+animal+models+of+electrophysiology.">The ECG in cardiovascular-relevant animal models of electrophysiology.</a> Herzschrittmacherther Elektrophysiology. 24 (2), 84-91 (2013).</li><li>Pogwizd, S. M., Bers, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+models+of+heart+disease.">Rabbit models of heart disease.</a> Drug Discovery Today: Disease Models. 5 (3), 185-193 (2008).</li><li>O'Hara, T., Rudy, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+comparison+of+cardiac+ventricular+myocyte+electrophysiology+and+response+to+drugs+in+human+and+nonhuman+species.">Quantitative comparison of cardiac ventricular myocyte electrophysiology and response to drugs in human and nonhuman species.</a> American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 302 (5), 1023-1030 (2012).</li><li>Brunner, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanisms+of+cardiac+arrhythmias+and+sudden+death+in+transgenic+rabbits+with+long+QT+syndrome.">Mechanisms of cardiac arrhythmias and sudden death in transgenic rabbits with long QT syndrome.</a> Journal of Clinical Investigation. 118 (6), 2246-2259 (2008).</li><li>Lengyel, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacological+block+of+the+slow+component+of+the+outward+delayed+rectifier+current+(I(Ks))+fails+to+lengthen+rabbit+ventricular+muscle+QT(c)+and+action+potential+duration.">Pharmacological block of the slow component of the outward delayed rectifier current (I(Ks)) fails to lengthen rabbit ventricular muscle QT(c) and action potential duration.</a> British Journal of Pharmacology. 132 (1), 101-110 (2001).</li><li>Baczko, I., Hornyik, T., Brunner, M., Koren, G., Odening, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transgenic+rabbit+models+in+proarrhythmia+research.">Transgenic rabbit models in proarrhythmia research.</a> Frontiers in Pharmacology. 11, 853 (2020).</li><li>Rudy, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systems+approach+to+understanding+electromechanical+activity+in+the+human+heart:+a+national+heart,+lung,+and+blood+institute+workshop+summary.">Systems approach to understanding electromechanical activity in the human heart: a national heart, lung, and blood institute workshop summary.</a> Circulation. 118 (11), 1202-1211 (2008).</li><li>Zhu, Y., Ai, X., Oster, R. A., Bers, D. M., Pogwizd, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sex+differences+in+repolarization+and+slow+delayed+rectifier+potassium+current+and+their+regulation+by+sympathetic+stimulation+in+rabbits.">Sex differences in repolarization and slow delayed rectifier potassium current and their regulation by sympathetic stimulation in rabbits.</a> Archives. 465 (6), 805-818 (2013).</li><li>Nerbonne, J. M., Nichols, C. G., Schwarz, T. L., Escande, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+manipulation+of+cardiac+K(+)+channel+function+in+mice:+what+have+we+learned,+and+where+do+we+go+from+here.">Genetic manipulation of cardiac K(+) channel function in mice: what have we learned, and where do we go from here.</a> Circulation Research. 89 (11), 944-956 (2001).</li><li>Eckardt, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drug-related+torsades+de+pointes+in+the+isolated+rabbit+heart:+comparison+of+clofilium,+d,l-sotalol,+and+erythromycin.">Drug-related torsades de pointes in the isolated rabbit heart: comparison of clofilium, d,l-sotalol, and erythromycin.</a> Journal of Cardiovascular Pharmacology. 32 (3), 425-434 (1998).</li><li>Baczko, I., Jost, N., Virag, L., Bosze, Z., Varro, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+models+as+tools+for+preclinical+cardiac+electrophysiological+safety+testing:+Importance+of+repolarization+reserve.">Rabbit models as tools for preclinical cardiac electrophysiological safety testing: Importance of repolarization reserve.</a> Progress on Biophysics and Molecular Biology. 121 (2), 157-168 (2016).</li><li>Richig, J. W., Sleeper, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Electrocardiography of Laboratory Animals. , (2019).</li><li>Edwards, A. G., Louch, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Species-dependent+mechanisms+of+cardiac+arrhythmia:+A+cellular+focus.">Species-dependent mechanisms of cardiac arrhythmia: A cellular focus.</a> Clinical Medicine Insights. Cardiology. 11, 1179546816686061 (2017).</li><li>Salama, G., London, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+models+of+long+QT+syndrome.">Mouse models of long QT syndrome.</a> Journal of Physiology. 578, 43-53 (2007).</li><li>Zhang, Y., Wu, J., King, J. H., Huang, C. L., Fraser, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+and+interpretation+of+electrocardiographic+QT+intervals+in+murine+hearts.">Measurement and interpretation of electrocardiographic QT intervals in murine hearts.</a> American Journal of Physiology. Heart and Circulation Physiology. 306 (11), 1553-1557 (2014).</li><li>Auerbach, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Altered+cardiac+electrophysiology+and+SUDEP+in+a+model+of+dravet+syndrome.">Altered cardiac electrophysiology and SUDEP in a model of dravet syndrome.</a> PLoS One. 8 (10), 15 (2013).</li><li>Aiba, T., Tomaselli, G. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+remodeling+in+the+failing+heart.">Electrical remodeling in the failing heart.</a> Current Opinion in Cardiology. 25 (1), 29-36 (2010).</li><li>Auerbach, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+biomarkers+for+the+risk+of+seizures+in+long+QT+syndrome.">Genetic biomarkers for the risk of seizures in long QT syndrome.</a> Neurology. 87 (16), 1660-1668 (2016).</li><li>Anderson, L. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antiepileptic+activity+of+preferential+inhibitors+of+persistent+sodium+current.">Antiepileptic activity of preferential inhibitors of persistent sodium current.</a> Epilepsia. 55 (8), 1274-1283 (2014).</li><li>Johnson, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+possible+pathogenic+link+between+congenital+long+QT+syndrome+and+epilepsy.">Identification of a possible pathogenic link between congenital long QT syndrome and epilepsy.</a> Neurology. 72 (3), 224-231 (2009).</li><li>Devinsky, O., Hesdorffer, D. C., Thurman, D. J., Lhatoo, S., Richerson, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sudden+unexpected+death+in+epilepsy:+epidemiology,+mechanisms,+and+prevention.">Sudden unexpected death in epilepsy: epidemiology, mechanisms, and prevention.</a> Lancet Neurology. 15 (10), 1075-1088 (2016).</li><li>Bagnall, R. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exome-based+analysis+of+cardiac+arrhythmia,+respiratory+control,+and+epilepsy+genes+in+sudden+unexpected+death+in+epilepsy.">Exome-based analysis of cardiac arrhythmia, respiratory control, and epilepsy genes in sudden unexpected death in epilepsy.</a> Annals in Neurology. 79 (4), 522-534 (2016).</li><li>Frasier, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Channelopathy+as+a+SUDEP+biomarker+in+dravet+syndrome+patient-derived+cardiac+myocytes.">Channelopathy as a SUDEP biomarker in dravet syndrome patient-derived cardiac myocytes.</a> Stem Cell Reports. 11 (3), 626-634 (2018).</li><li>Glasscock, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genomic+biomarkers+of+SUDEP+in+brain+and+heart.">Genomic biomarkers of SUDEP in brain and heart.</a> Epilepsy and Behavior. 38, 172-179 (2014).</li><li>Olejniczak, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurophysiologic+basis+of+EEG.">Neurophysiologic basis of EEG.</a> Journal of Clinical Neurophysiology. 23 (3), 186-189 (2006).</li><li>Gastaut, H., Hunter, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+experimental+study+of+the+mechanism+of+photic+activation+in+idiopathic+epilepsy.">An experimental study of the mechanism of photic activation in idiopathic epilepsy.</a> Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 2 (3), 263-287 (1950).</li><li>Fisher, R. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Photic-+and+pattern-induced+seizures:+A+review+for+the+Epilepsy+Foundation+of+America+Working+Group.">Photic- and pattern-induced seizures: A review for the Epilepsy Foundation of America Working Group.</a> Epilepsia. 46 (9), 1426-1441 (2005).</li><li>Specchio, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diagnosing+photosensitive+epilepsy:+fancy+new+versus+old+fashioned+techniques+in+patients+with+different+epileptic+syndromes.">Diagnosing photosensitive epilepsy: fancy new versus old fashioned techniques in patients with different epileptic syndromes.</a> Brain Development. 33 (4), 294-300 (2011).</li><li>Kasteleijn-Nolst Trenite, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methodology+of+photic+stimulation+revisited:+updated+European+algorithm+for+visual+stimulation+in+the+EEG+laboratory.">Methodology of photic stimulation revisited: updated European algorithm for visual stimulation in the EEG laboratory.</a> Epilepsia. 53 (1), 16-24 (2012).</li><li>Mishra, V., Gautier, N. M., Glasscock, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simultaneous+video-EEG-ECG+monitoring+to+identify+neurocardiac+dysfunction+in+mouse+models+of+epilepsy.">Simultaneous video-EEG-ECG monitoring to identify neurocardiac dysfunction in mouse models of epilepsy.</a> Journal of Visualized Experiments. (131), e57300 (2018).</li><li>Green, J. D., Maxwell, D. S., Schindler, W. J., Stumpf, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rabbit+EEG+"theta"+rhythm:+Its+anatomical+source+and+relation+to+activity+in+single+neurons.">Rabbit EEG "theta" rhythm: Its anatomical source and relation to activity in single neurons.</a> Journal of Neurophysiology. 23 (4), 403-420 (1960).</li><li>Petersen, J., Diperri, R., Himwich, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+comparative+development+of+the+EEG+in+rabbit,+cat+and+dog.">The comparative development of the EEG in rabbit, cat and dog.</a> Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 17, 557-563 (1964).</li><li>Strain, G. M., Van Meter, W. G., Brockman, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elevation+of+seizure+thresholds:+a+comparison+of+cerebellar+stimulation,+phenobarbital,+and+diphenylhydantoin.">Elevation of seizure thresholds: a comparison of cerebellar stimulation, phenobarbital, and diphenylhydantoin.</a> Epilepsia. 19 (5), 493-504 (1978).</li><li>Cheng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effectiveness+of+retigabine+against+levobupivacaine-induced+central+nervous+system+toxicity:+A+prospective,+randomized+animal+study.">Effectiveness of retigabine against levobupivacaine-induced central nervous system toxicity: A prospective, randomized animal study.</a> Journal of Anesthesia. 30 (1), 109-115 (2016).</li><li>Nascimento, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pulmonary+and+cardiac+pathology+in+sudden+unexpected+death+in+epilepsy+(SUDEP).">Pulmonary and cardiac pathology in sudden unexpected death in epilepsy (SUDEP).</a> Epilepsy and Behavior. 73, 119-125 (2017).</li><li>Buchanan, G. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impaired+CO2-Induced+Arousal+in+SIDS+and+SUDEP.">Impaired CO2-Induced Arousal in SIDS and SUDEP.</a> Trends in Neuroscience. 42 (4), 242-250 (2019).</li><li>Van Egmond, P., Binnie, C. D., Veldhuizen, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+background+illumination+on+sensitivity+to+intermittent+photic+stimulation.">The effect of background illumination on sensitivity to intermittent photic stimulation.</a> Electroencephalography and Clinical Neurophysiology. 48 (5), 599-601 (1980).</li><li>Harding, G. F., Fylan, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+visual+mechanisms+of+photosensitivity.">Two visual mechanisms of photosensitivity.</a> Epilepsia. 40 (10), 1446-1451 (1999).</li><li>Kuwada, S., Stanford, T. R., Batra, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interaural+phase-sensitive+units+in+the+inferior+colliculus+of+the+unanesthetized+rabbit:+effects+of+changing+frequency.">Interaural phase-sensitive units in the inferior colliculus of the unanesthetized rabbit: effects of changing frequency.</a> Journal of Neurophysiology. 57 (5), 1338-1360 (1987).</li><li>Kalume, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sudden+unexpected+death+in+a+mouse+model+of+Dravet+syndrome.">Sudden unexpected death in a mouse model of Dravet syndrome.</a> Journal of Clinical Investigation. 123 (4), 1798-1808 (2013).</li><li>Xiang, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Threshold+for+maximal+electroshock+seizures+(MEST)+at+three+developmental+stages+in+young+mice.">Threshold for maximal electroshock seizures (MEST) at three developmental stages in young mice.</a> Zoology Research. 40 (3), 231-235 (2019).</li><li>Ross, K. C., Coleman, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developmental+and+genetic+audiogenic+seizure+models:+behavior+and+biological+substrates.">Developmental and genetic audiogenic seizure models: behavior and biological substrates.</a> Neuroscience and Biobehavior Reviews. 24 (6), 639-653 (2000).</li><li>Faingold, C. L., Randall, M., Tupal, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DBA/1+mice+exhibit+chronic+susceptibility+to+audiogenic+seizures+followed+by+sudden+death+associated+with+respiratory+arrest.">DBA/1 mice exhibit chronic susceptibility to audiogenic seizures followed by sudden death associated with respiratory arrest.</a> Epilepsy and Behavior. 17 (4), 436-440 (2010).</li></ol>

Dieser Versuchsaufbau ermöglicht detaillierte simultane Video-EEG-EKG-Oximetrie-Kapnographie-Aufzeichnungen und Analysen bei Kaninchen, insbesondere in Modellen von Herz- und/oder neuronalen Erkrankungen. Die Ergebnisse dieses Artikels zeigen, dass diese Methode in der Lage ist, Anfälle und Arrhythmien zu erkennen und sie von elekrographischen Artefakten zu unterscheiden. Erwartete Ergebnisse wurden erzielt, wenn Kaninchen ein Prokonvulsivum gegeben wurde, das Anfälle induzierte. Die aus den Video-EEG-Aufzeichnungen g...

Die Elektrokardiographie (EKG) wird routinemäßig im klinischen Umfeld eingesetzt, um die Dynamik der elektrischen Herzleitung und den elektrischen Aktivierungs- und Genesungsprozess zu beurteilen. EKG ist wichtig für die Erkennung, Lokalisierung und Bewertung des Risikos von Arrhythmien, Ischämie und Infarkten. Typischerweise werden Elektroden an Brust, Armen und Beinen des Patienten befestigt, um eine dreidimensionale Sicht auf das Herz zu ermöglichen. Eine positive Ablenkung wird erzeugt, wenn die Richtung der Myokarddepolarisation in Richtung der Elektrode gerichtet ist, und eine negative Ablenkung wird erzeugt, wenn die Richtung der Myokarddepolarisation von der Elektrode entfernt ist. Zu den elektriographischen Komponenten des Herzzyklus gehören die vorhofliche Depolarisation (P-Welle), die vorhofventrikuläre Leitung (P-R-Intervall), die ventrikuläre Erregung (QRS-Komplex) und die ventrikuläre Repolarisation (T-Welle). Es gibt große Ähnlichkeiten in EKG- und Aktionspotenzialmessungen bei vielen Säugetieren, einschließlich Menschen, Kaninchen, Hunden, Meerschweinchen, Schweinen, Ziegen und Pferden1,2,3.
Kaninchen sind ein ideales Modell für die kardiale translationale Forschung. Das Kaninchenherz ähnelt dem menschlichen Herzen in Bezug auf die Ionenkanalzusammensetzung und die Aktionspotentialeigenschaften2,4,5. Kaninchen wurden für die Erzeugung von genetischen, erworbenen und medikamenteninduzierten Modellen von Herzerkrankungen verwendet2,4,6,7,8. Es gibt große Ähnlichkeiten im Herz-EKG und Aktionspotential-Reaktion auf Medikamente bei Menschen und Kaninchen7,10,11.
Die Herzfrequenz und der kardiale elektrische Aktivierungs- und Erholungsprozess unterscheiden sich bei Nagetieren sehr von Kaninchen, Menschen und anderen größeren Säugetieren12,13,14. Das Nagetierherz schlägt ~10 mal so schnell wie der Mensch. Im Gegensatz zum isoelektrischen ST-Segment in Menschen- und Kaninchen-EKGs gibt es bei Nagetieren14 , 15,16kein ST-Segment . Außerdem haben Nagetiere eine QRS-r' Wellenform mit einer invertierten T-Welle14,15,16. Die Messungen des QT-Intervalls sind bei Nagetieren sehr unterschiedlich im Vergleich zu Menschen und Kaninchen14,15,16. Darüber hinaus sind normale EKG-Werte beim Menschen sehr unterschiedlich gegenüber Nagetieren12,15,16. Diese Unterschiede in den EKG-Wellenformen können auf Unterschiede in der Morphologie des Aktionspotentials und den Ionenkanälen zurückgeführt werden, die die kardiale Repolarisationantreiben 9,14. Während der transiente nach außen gerichtete Kaliumstrom bei Nagetieren der wichtigste repolarisierende Strom in der kurzen (nicht dome) kardialen Wirkungspotentialmorphologie ist, gibt es bei Menschen und Kaninchen eine große Phase-2-Kuppel auf dem Aktionspotential, und die verzögerten Gleichrichter-Kaliumströme (IKr und IKs)sind die wichtigsten repolarisierenden Ströme bei Menschen und Kaninchen4,9,13,17. Wichtig ist, dass die Expression von IKr und IKs bei Nagetieren fehlt / minimal ist und aufgrund der zeitlichen Aktivierungskinetik von IKr und I Ks keine Rolle in der Morphologie des Herzaktionspotentialsspielt 9, 13. Somit bieten Kaninchen ein translationaleres Modell zur Beurteilung der Mechanismen für medikamenteninduzierte, erworbene und vererbte EKG-Anomalien und Arrhythmien4,7,13. Da zahlreiche Studien das Vorhandensein von neuronalen und kardialen elektrischen Anomalien bei primären kardialen (Long QT-Syndrom18,19,20) oder neuronalen Erkrankungen (Epilepsie21,22,23,24) gezeigt haben, ist eswichtig,die zugrunde liegenden Mechanismen in einem Tiermodell zu untersuchen, das die menschliche Physiologie genau reproduziert. Während Nagetiere ausreichen können, um das menschliche Gehirn zu modellieren, sind Nagetiere kein ideales Modell der menschlichen Herzphysiologie7.
Die Elektroenzephalographie (EEG) verwendet Elektroden, die normalerweise auf der Kopfhaut oder intrakraniell platziert werden, um die kortikale elektrische Funktion aufzuzeichnen. Diese Elektroden können Veränderungen der Feuerrate und Synchronizität von Gruppen nahegelegener pyramidaler Neuronen in der Großhirnrindeerkennen 25. Diese Informationen können verwendet werden, um die Gehirnfunktion und den Wach- / Schlafzustand zu beurteilen. EEGs sind auch nützlich, um die epileptiforme Aktivität zu lokalisieren und epileptische Anfälle von nicht-epileptischen Ereignissen (z. B. psychogene nicht-epileptiforme Aktivität und kardiogene Ereignisse) zu unterscheiden. Um den Epilepsietyp, provozierende Faktoren und den Ursprung des Anfalls zu diagnostizieren, werden Epilepsiepatienten verschiedenen Manövern unterzogen, die zu einem Anfall führen können. Verschiedene Methoden umfassen Hyperventilation, photische Stimulation und Schlafentzug. Dieses Protokoll demonstriert die Verwendung von photischer Stimulation zur Induktion von EEG-Aberrationen und Anfällen bei Kaninchen26,27,28,29.
Simultane Video-EEG-EKG-Aufzeichnungen wurden bei Menschen und Nagetieren ausgiebig verwendet, um die Verhaltens-, neuronale und kardiale Aktivität während der prä-italen, iktalen und post-italen Zustände zu beurteilen30. Während mehrere Studien EEG- und EKG-Aufzeichnungen getrennt bei Kaninchen4,31,32,33durchgeführthaben,ist ein System zur Erfassung und Analyse simultaner Video-EEG-EKG beim bewussten zurückgehaltenen Kaninchen nicht gut etabliert34. Dieser Artikel beschreibt das Design und die Implementierung eines Protokolls, das simultane Video-EEG-EKG-Kapnographie-Oximetriedaten bei bewussten Kaninchen aufzeichnen kann, um die neuro-kardiale elektrische und respiratorische Funktion zu beurteilen. Die ergebnisse dieser Methode können die Anfälligkeit, Auslöser, Dynamik und Konkordanz zwischen Arrhythmien, Krampfanfällen, Atemstörungen und körperlichen Manifestationen anzeigen. Ein Vorteil unseres experimentellen Systems ist, dass wir bewusste Aufnahmen ohne Beruhigungsmittel erwerben. Die Kaninchen bleiben ≥5 h in den Rückhaltemitteln, mit minimaler Bewegung. Da Anästhetika die neuronale, kardiale, respiratorische und autonome Funktion stört, liefern Aufzeichnungen während des Bewusstseinszustands die physiologischsten Daten.
Dieses Aufzeichnungssystem kann letztendlich detaillierte Einblicke liefern, um das Verständnis der neurologischen, kardialen und respiratorischen Mechanismen für den plötzlichen unerwarteten Tod bei Epilepsie (SUDEP) zu verbessern. Zusätzlich zur neurologischen und kardialen Überwachung haben jüngste Erkenntnisse auch die Rolle von Atemversagen als potenziellen Beitrag zum plötzlichen Tod nach einem Anfall unterstützt35,36. Um den Atemstatus der Kaninchen zu überwachen, wurden Oximetrie und Kapnographie implementiert, um den Status des Atmungssystems vor, während und nach einem Anfall zu bewerten. Das hier vorgestellte Protokoll wurde mit dem Ziel entwickelt, die Schwelle für pharmakologisch und photisch-stimulierende Kaninchenanfälle zu bewerten. Dieses Protokoll kann subtile EEG- und EKG-Anomalien erkennen, die möglicherweise nicht zu körperlichen Manifestationen führen. Darüber hinaus kann diese Methode für die kardiale Sicherheit und die antiarrhythmische Wirksamkeitsprüfung neuartiger Medikamente und Geräte eingesetzt werden.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% Sodium Chloride Irrigation, USP - Flexible Container</td>
			<td>PFIZER (HOSPIRA)</td>
			<td>7983-09</td>
			<td>Dilutant</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10cc Luer Lock syringe with 20G x 1&#34; Needle</td>
			<td>Sur-Vet</td>
			<td>SS-10L2025</td>
			<td>Used as a flush after drug injection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4x4 gauze sponges</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>22-415-469</td>
			<td>Rolled in a tube to splint ear with angiocatheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Apple Sauce</td>
			<td>Kirkland</td>
			<td>897971</td>
			<td>Vehicle for oral medications</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer</td>
			<td>Dell</td>
			<td>Optiplex 5040</td>
			<td>Acquisition computer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E-4031</td>
			<td>Tocris</td>
			<td>1808</td>
			<td>Agent known to prolong the QT interval</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ECG Electrode</td>
			<td>RhythmLink</td>
			<td>RLSND116-2.5</td>
			<td>13mm 35-degree bent (0.4 mm diameter) subdermal pin electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EEG Electrode</td>
			<td>RhythmLink</td>
			<td>RLSP513</td>
			<td>5-twist 13mm straight (0.4mm diameter) subdermal pin electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EEGLAB (2020)</td>
			<td>Swartz Center for Computational Neuroscience</td>
			<td>Open Access</td>
			<td>Can perform spectral analysis of EEG</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethernet-to-ethernet adapter</td>
			<td>Linksys</td>
			<td>USB3G16</td>
			<td>Adapter for connecting the camera to the computer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Euthanasia-III Solution</td>
			<td>Med-Pharmex</td>
			<td>ANADA 200-280</td>
			<td>Contains pentobarbital sodium and phenytoin sodium, controlled substance</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Foam padding</td>
			<td>Generic</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Reduces pressure applied to the neck of small rabbits by the restrainer in order to prevent the adverse cardiorespiratory effects of neck compression</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Lock Flush</td>
			<td>Medline</td>
			<td>EMZ50051240</td>
			<td>To maintain patency of angiocatheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IR Light</td>
			<td>Bosch</td>
			<td>EX12LED-3BD-8W</td>
			<td>Facilitates recordings in the dark</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LabChart Pro (2019, Version 8.1.16)</td>
			<td>ADInstruments</td>
			<td>N/A</td>
			<td>ECG Analysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>JELCO PROTECTIV Safety I.V. Catheters, 25 gauge</td>
			<td>Smiths Medical</td>
			<td>3060</td>
			<td>Used to catherize marginal ear vein</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MATLAB (R2019b, Update 5)</td>
			<td>MathWorks</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Required to run EEGLAB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microphone</td>
			<td>Sony Stereo</td>
			<td>ECM-D570P</td>
			<td>Recording of audible manifestions of seizures</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micropore Medical Tape, Paper, White</td>
			<td>3M</td>
			<td>1530-1</td>
			<td>Used to secure wires and create ear splint</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Natus NeuroWorks</td>
			<td>Natus</td>
			<td>LC101-8</td>
			<td>Acquisition and review software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pentylenetetrazol (1 - 10 mg/kg always in 1mL volume)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>88580</td>
			<td>Dilutions prepared in saline</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Photic Stimulator</td>
			<td>Grass</td>
			<td>PS22</td>
			<td>Stimulator to control frequency, delay, duration, intensity of the light pulses</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic wire organizer / bundler</td>
			<td>12Vwire.com</td>
			<td>LM-12-100-BLK</td>
			<td>Bundle wires to cut down on noise</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PS 22 Photic Stimulator</td>
			<td>Grass Instruments</td>
			<td>BZA641035</td>
			<td>Strobe light with adjustable flash frequency, delay, and intensity</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe</td>
			<td>Generic</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Prevents small rabbits from kicking their hind legs and causing spinal injury</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Quantum Amplifier</td>
			<td>Natus</td>
			<td>13926</td>
			<td>Amplifier / digitizer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Quantum HeadBox Amplifier</td>
			<td>Natus</td>
			<td>22134</td>
			<td>64-pin breakout box</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rabbit Restrainer</td>
			<td>Plas-Labs</td>
			<td>501-TC</td>
			<td>Various size rabbit restrainers are available. 6&#34; x 18&#34; x 6&#34; in this study.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber pad (booster)</td>
			<td>Generic</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Raises small rabbits up in the restrainer to prevent neck compression</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SpO2 ear clip</td>
			<td>NONIN</td>
			<td>61000</td>
			<td>PureSAT/SpO2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SpO2 sensor adapter</td>
			<td>NONIN</td>
			<td>13931</td>
			<td>XPOD PureSAT/SpO2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SRG-X120 1080p PTZ Camera with HDMI, IP &#38; 3G-SDI Output</td>
			<td>Sony</td>
			<td>SRG-X120</td>
			<td>Impela Camera</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terumo Sur-Vet Tuberculin Syringe 1cc 25G X 5/8&#34; Regular Luer</td>
			<td>Sur-Vet</td>
			<td>13882</td>
			<td>Used to inject intravenous medications</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Veterinary Injection Plug Luer Lock</td>
			<td>Sur-Vet</td>
			<td>SRIP2V</td>
			<td>Injection plug for inserting the needle for intravenous medication</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Webcol Alcohol Prep, Sterile, Large, 2-ply</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>5110</td>
			<td>To prepare ear vein before catheterization</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

multi-system monitoring for identification of seizures, arrhythmias and apnea in conscious restrained rabbits

Patienten mit Ionenkanalopathien haben ein hohes Risiko, Anfälle und tödliche Herzrhythmusstörungen zu entwickeln. Es gibt eine höhere Prävalenz von Herzerkrankungen und Arrhythmien bei Menschen mit Epilepsie (dh epileptischem Herz). Darüber hinaus wurden Herz- und autonome Störungen im Zusammenhang mit Anfällen berichtet. 1:1.000 Epilepsiepatienten/Jahr sterben an plötzlichem unerwartetem Tod bei Epilepsie (SUDEP). Die Mechanismen für SUDEP bleiben unvollständig verstanden. Elektroenzephalogramme (EEG) und Elektrokardiogramme (EKG) sind zwei Techniken, die routinemäßig im klinischen Umfeld eingesetzt werden, um die Substrate / Auslöser für Anfälle und Arrhythmien zu erkennen und zu untersuchen. Während viele Studien und Beschreibungen dieser Methodik bei Nagetieren sind, unterscheidet sich ihre elektrische Herzaktivität signifikant von der des Menschen. Dieser Artikel besteht eine nicht-invasive Methode zur Aufzeichnung der simultanen Video-EEG-EKG-Oximetrie-Kapnographie bei bewussten Kaninchen. Da die elektrische Herzfunktion bei Kaninchen und Menschen ähnlich ist, bieten Kaninchen ein hervorragendes Modell für translationale diagnostische und therapeutische Studien. Neben der Methodik zur Datenerfassung diskutieren wir die analytischen Ansätze zur Untersuchung der neuroherzialen elektrischen Funktion und Pathologie bei Kaninchen. Dazu gehören die Arrhythmieerkennung, die Spektralanalyse des EEG und eine Anfallsskala, die für zurückhaltende Kaninchen entwickelt wurde.

Die oben beschriebene Methode ist in der Lage, Anomalien im elektrischen Leitungssystem des Gehirns und des Herzens sowie Atemstörungen zu erkennen. Eine Datenerfassungssoftware wird verwendet, um die EKG-Morphologie zu beurteilen und abnormale Herzfrequenzen, Leitungsstörungen oder EKG-Rhythmen (vorhofe / ventrikuläre ektopische Schläge und Brady- / Tachy-Arrhythmien) zu erkennen (Abbildung 6). Zusätzlich zur Visualisierung der EKG-Morphologie werden di...

Watch this Scientific Journal Video about Multi-system Monitoring for Identification of Seizures, Arrhythmias and Apnea in Conscious Restrained Rabbits at JoVE.com

Multi-system Monitoring for Identification of Seizures, Arrhythmias and Apnea in Conscious Restrained Rabbits

Mit simultaner Video-EEG-Oximetrie-Kapnographie entwickelten wir eine Methodik zur Bewertung der Anfälligkeit von Kaninchenmodellen für die Entwicklung provozierter Arrhythmien und Krampfanfälle. Dieses neuartige Aufzeichnungssystem schafft eine Plattform, um die Wirksamkeit und Sicherheit von Therapeutika zu testen und kann die komplexe Kaskade von Multisystemereignissen erfassen, die in einem plötzlichen Tod gipfeln.

Multisystem-Monitoring zur Identifizierung von Anfällen, Arrhythmien und Apnoe bei bewusst zurückhaltenden Kaninchen

Patients with ion channelopathies are at a high risk of developing seizures and fatal cardiac arrhythmias. There is a higher prevalence of heart disease ...

Herz- und Atemfunktionsstörungen tragen zum plötzlichen Tod nach einem Anfall bei. Um dieses Phänomen zu untersuchen, wurde daher ein Multisystemansatz auf ein Kaninchenmodell angewendet. Diese Technik ermöglicht die gleichzeitige Überwachung und spätere Analyse der neurologischen, kardialen und respiratorischen Funktion mehrerer Kaninchen im Zusammenhang mit Anfällen, Arrhythmien und vorhergehendem Tod.Während eine Krankheit in erster Linie neuronal oder kardial sein kann, kann sie elektrische Störungen sowohl im Gehirn als auch im Herzen umfassen, wie Krampfanfälle und Arrhythmien sowie Atemfunktionsstörungen. Es kann schwierig sein, mit Kaninchen wegen ihrer Hinterbeinstärke zu arbeiten. Achten Sie darauf, die Kaninchen ruhig zu halten, wenn Sie sie bewegen und die Monitore anbringen.Verbinden Sie den Computer zunächst mit einem 64-poligen Aufwärtsgeteil an einen Verstärker. Um jeden achten Pin am Kopfkasten zu einer Referenz zu machen, stellen Sie die Referenzelektrode auf unabhängig. Für die Implantation der EKG-Elektroden befestigen Sie ein Kaninchen in Rückenlage mit dem Kopf an den Knien des Prüfers und niedriger als der Rest seines Körpers.Mit einem zweiten Forscher, der das Fell ausbreitet, um die darunter liegende Haut freizulegen, führen Sie subdermal 35-Grad-Winkel gebogene Elektroden in jede Achselhöhle ein. Legen Sie die Leinen auf die Brust, nach rechts und links auf die Vordergliedmaßen. Und auf dem Bauch, vorne an der linken Hintergliedmaße.Legen Sie dann eine Bodenstiftelektrode vor der rechten Hintergliedmaße auf den Bauch. Wenn alle EKG-Leitungen richtig platziert wurden, befestigen Sie das Kaninchen in einem entsprechend großen Rückhaltegerät mit den Hintergliedmaßen unter dem Tier. Führen Sie mit einem 45-Grad-Winkelansatz subdermale Elektroden mit geradem Stift in die Kopfhaut ein.Platzieren Sie ein EEG-Blei auf den rechten vorderen, linken vorderen, rechten Okzipital- und linken Okzipitalbereich des Kopfes. Und platzieren Sie eine zentrale Referenzleitung an der zentralen Stelle zwischen den anderen vier Leitungen. Führen Sie die Drähte zwischen den Ohren durch und binden Sie sie locker an den Rückhaltegurt hinter dem Kopf.Um die Atmung während des Experiments zu überwachen, befestigen Sie ein Pulsoximeter an einem Ohr über der Randohrvene und befestigen Sie vorsichtig eine Gesichtsmaske mit Kapnographieschlauch über Mund und Nase des Tieres. Befestigen Sie dann das andere Ende des Schlauchs am Vitalparametermonitor. Um Video-EEG-EKG aufzunehmen, öffnen Sie ein entsprechendes handelsübliches EEG-Softwareprogramm und passen Sie das Video so an, dass alle Kaninchen im Sichtfeld beobachtet werden können.Führen Sie eine Basislinienaufzeichnung für das Tier für mindestens 10 bis 20 Minuten durch oder bis sich die Herzfrequenz für mindestens fünf Minuten auf 200 bis 250 Schläge pro Minute stabilisiert hat. Stellen Sie den Niederfrequenzfilter auf ein Hertz und den Hochfrequenzfilter auf 59 Hertz ein. Fügen Sie zeitgebundene Notizen in Echtzeit hinzu, um den Zeitpunkt von Interventionen, neuroherzialen Ereignissen und motorischen oder Prüferartefakten anzuzeigen.Zur photischen Stimulation platzieren Sie eine Lichtquelle mit einem kreisförmigen Reflektor 30 Zentimeter vor dem Kaninchen auf Augenhöhe, wobei die Blitzintensität auf das Maximum eingestellt ist. Und platzieren Sie zwei Spiegel auf jeder Seite des Kopfes und einen Spiegel hinter dem Kaninchen, so dass das Licht in die Augen des Kaninchens eindringt. Befestigen Sie das Licht an einem Controller mit einer einstellbaren Rate, Intensität und Dauer.Wenn der photische Stimulator auf ein Hertz eingestellt ist und der Blitz eingeschaltet ist, zeichnen Sie die Reaktion für 30 Sekunden auf. Bedecken Sie die Augen des Kaninchens mit einer Maske, um den Augenverschluss zu simulieren oder zu verursachen und für weitere 30 Sekunden zu stimulieren. Nachdem Sie die Augen geöffnet und die Augen bei jeder Frequenz geschlossen haben, schalten Sie den photischen Stimulator für 30 Sekunden aus und stellen Sie den Controller auf die nächste Frequenzeinstellung ein.Nachdem Sie 60 Sekunden lang bei jeder Frequenz von einem bis 25 Hertz in zwei Hertz-Intervallen aufgezeichnet haben, verringern Sie die Frequenz von 60 auf 25 Hertz in Fünf-Hertz-Schritten und zeichnen Sie 30 Sekunden lang mit geöffneten Augen und 30 Sekunden mit geschlossenen Augen auf. Entfernen Sie am Ende des Experiments die EEG- und EKG-Leitungen vom Kaninchen und bringen Sie die Tiere zur routinemäßigen Pflege durch das Haltungspersonal in ihre Heimkäfige zurück. Sammeln Sie vor der Verabreichung des Medikaments 10 bis 20 Minuten EEG-EKG-Ausgangsvideo vom unbehandelten Kaninchen, wie gezeigt.Für die orale Verabreichung eines interessanten Medikaments mischen Sie 0,3 Milligramm pro Kilogramm des interessierenden Arzneimittels in drei Milliliter Apfelmus in Lebensmittelqualität und laden Sie die Mischung in eine drei Milliliter Spritze zum Einnehmen. Heben Sie vorsichtig die Oberlippe des Kaninchens an, schieben Sie die Spitze der Spritze in die Seite des Mundes, die von den Zähnen des Kaninchens nicht behindert wird, und injizieren Sie das gesamte Volumen an mit Medikamenten ergänztem Apfelmus in den Mund des Kaninchens. Sammeln Sie dann zwei Stunden EEG-EKG-Videodaten, bevor Sie das Kaninchen zur Routinepflege in seinen Heimkäfig zurückverenden.Bevor Sie die EEG-EKG-Reaktion auf die intravenöse Medikamentenverabreichung aufzeichnen, rasieren Sie die hintere Oberfläche des Kaninchenohrs und verwenden Sie 70% Ethanol, um die Stelle zu desinfizieren und die marginale Ohrvene zu erweitern. Kanulieren Sie vorsichtig die marginale Ohrvene mit einem 25-Gauge-Angiokatheter und legen Sie einen Injektionsstopfen an das Ende des Katheters. Kleben Sie eine schiene aus drei gerollten Gazestücken auf das Ohr, um den Katheter an Ort und Stelle zu sichern und das Ohr aufrecht zu halten.Injizieren Sie einen Milliliter von 10 USP-Einheiten pro Milliliter heparinisierter Kochsalzlösung, um das Katheterpatent zu halten. Wenn die Baseline-Aufzeichnung abgeschlossen ist, injizieren Sie Kochsalzlösung mit einem bis 10 Milligramm pro Kilogramm des interessierenden Arzneimittels einmal alle 10 Minuten in den Katheter. Überwachen Sie nach jeder Dosis sorgfältig das Video-EEG-EKG, die Oximetrie-Kapnographie, auf Neuro-, Herz-, elektrische und respiratorische Anomalien oder visuelle Hinweise auf epileptiforme Aktivität.Notieren Sie diese Änderungen in Echtzeit sowie während der Nachanalyse. Um das EKG-Video zu analysieren, verwenden Sie eine geeignete kommerziell erhältliche Software, um Perioden von Tachykardie, Brachykardie, ektopischen Schlägen oder anderen Arrhythmien innerhalb der EKG-Daten zu identifizieren. Um die zu überprüfende Datenmenge zu reduzieren, erstellen Sie ein Tachogramm, um die Leichtigkeit zu erhöhen, mit der Perioden von Tachykardie, Bradykardie oder Unregelmäßigkeiten des RR-Intervalls identifiziert werden können.Für die Video-EEG-Analyse nach einem Arzneimittelverabreichungsexperiment scrollen Sie visuell durch die EEG-Verfolgung, um epileptische und nicht-epileptische Bewegungen für mindestens eine Minute nach jeder Dosis des Arzneimittels zu unterscheiden. Für die Video-EEG-Analyse nach einem photischen Stimulationsexperiment erstellen Sie ein Spektralanalysediagramm in einem geeigneten EEG-Analyse-Softwareprogramm. Analysieren Sie dann die okzipitalen Leitungen des EEG auf das Vorhandensein und Fehlen des okzipitalen Fahrrhythmus.Der okzipitale Fahrrhythmus erzeugt einen Peak in der Spektralanalyse, der der Frequenz des photischen Stimulators entspricht. Die Beurteilung der EKG-Morphologie ermöglicht die Erkennung abnormaler Herzfrequenzen, Leitungs- und EKG-Wellenformen. Die Spuren können auch verwendet werden, um die Herzfrequenz, das RR-Intervall, das PR-Intervall, die P-Dauer, das QRS-Intervall, das QT-Intervall, das QTc-, das JT-Intervall und das T-Peak-zu-T-End-Intervall zu quantifizieren.Aufzeichnungen von den okzipitalen EEG-Leitungen weisen typischerweise eine höhere Amplitude auf als die für frontale Bleidaten beobachtete. Und die dominante Frequenz in allen Leitungen wird üblicherweise im Delta-Bereich gemessen. Hier werden Schlafspindelwellen aus einem repräsentativen Kaninchenexperiment gezeigt.Mehrere EEG-Montagen einer Schlafperiode zeigen, dass diese Wellen aus dem Zentrum des Kopfes entstehen, was mit menschlichen Erkenntnissen übereinstimmt. Neben normalen EEG-Veränderungen können bei Baseline-Aufnahmen auch verschiedene bewusste, nicht-epileptische Kaninchenbewegungen beobachtet werden, mit denen diese Daten von epileptiformen Entladungen unterschieden werden können. Es ist wichtig, die EKG-Leitung sicher in die Haut zu legen, um die Drähte von den Beinen fernzuhalten und darauf zu achten, dass die Elektroden beim Einbringen von Kaninchen in den Rückhalteer befestigt bleiben.Dieses Multisystem-Aufzeichnungsgerät wird zukünftige Studien zur Arzneimittelsicherheit und -wirksamkeit ermöglichen und ein umfassendes Verständnis verschiedener erworbener und vererbter Krankheiten ermöglichen. Diese Technik erfasst den Verlauf einer potenziell tödlichen Multiorganfunktionsstörung nach einem Anfall, was zu einem besseren Verständnis des Mechanismus von SUDEP führt.

Research

JoVE Journal

Medicine

Hyperinsulinemic-Euglycemic Clamp in the Conscious Rat

Hyperinsulinämische-euglykämische Clamp in der Conscious Rat

Type 2 diabetes (T2D) is rapidly rising in prevalence. Characterized by either inadequate insulin production or the inability to utilize insulin produced, ...

Forschung

Medizin

Methods for ECG Evaluation of Indicators of Cardiac Risk, and Susceptibility to Aconitine-induced Arrhythmias in Rats Following Status Epilepticus

Methoden zur EKG-Auswertung der Indikatoren des Cardiac Risk, und die Anfälligkeit für Aconitin-induzierten Arrhythmien in Ratten nach Status epilepticus

Lethal cardiac arrhythmias contribute to mortality in a number of pathological conditions. Several parameters obtained from a 
non-invasive, easily ...

Hyperinsulinemic-euglycemic Clamps in Conscious, Unrestrained Mice

Hyperinsulinämische-euglykämische Schellen in dem Bewusstsein, Unrestrained Mäuse

Type 2 diabetes is characterized by a defect in insulin action. The hyperinsulinemic-euglycemic clamp, or insulin clamp, is widely considered the "gold ...

Production of Apolipoprotein C-III Knockout Rabbits using Zinc Finger Nucleases

Die Produktion von Apolipoprotein C-III-Knockout Kaninchen mit Zink-Finger-Nukleasen

Apolipoprotein (Apo) C-III (ApoCIII) resides on the surface of plasma chylomicron (CM), very low density lipoprotein (VLDL) and high density lipoproteins ...

Transcutaneous Assessment of Renal Function in Conscious Rodents

Transkutane Beurteilung der Nierenfunktion in Conscious Nagetiere

Glomerular filtration rate (GFR) is the gold standard to assess overall kidney function. However, traditional methods to evaluate GFR are cumbersome and ...

A Step by Step Protocol for Subretinal Surgery in Rabbits

Eine Schritt für Schritt-Protokoll für Subretinale Chirurgie in Kaninchen

Age related macular degeneration (AMD), retinitis pigmentosa, and other RPE related diseases are the most common causes for irreversible loss of vision in ...

Preclinical Model of Hind Limb Ischemia in Diabetic Rabbits

Präklinische Modell von Hind Limb Ischemia in diabetischen Kaninchen

Peripheral vascular disease is a widespread clinical problem that affects millions of patients worldwide. A major consequence of peripheral vascular ...

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

Blinde Endotrachealintubation bei neonatalen Kaninchen

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

Implantation of Combined Telemetric ECG and Blood Pressure Transmitters to Determine Spontaneous Baroreflex Sensitivity in Conscious Mice

Implantation von kombinierten telemetrischen EKG- und Blutdrucktransmittern zur Bestimmung der spontanen Baroreflexsensitivität bei bewussten Mäusen

Blood pressure (BP) and heart rate (HR) are both controlled by the autonomic nervous system (ANS) and are closely intertwined due to reflex mechanisms. ...

Analyzing Long-Term Electrocardiography Recordings to Detect Arrhythmias in Mice

Analyse von Langzeit-Elektrokardiographie-Aufnahmen zum Nachweis von Arrhythmien bei Mäusen

Arrhythmias are common, affecting millions of patients worldwide. Current treatment strategies are associated with significant side effects and remain ...