Name: multi-system monitoring for identification of seizures, arrhythmias and apnea in conscious restrained rabbits
Uploaded: 2021-03-27T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Multi-system Monitoring for Identification of Seizures, Arrhythmias and Apnea in Conscious Restrained Rabbits at JoVE.com

著者らは、この研究が米国心臓協会、米国てんかん学会、SUNYアップステート薬理学省からの助成金によって支持されたことを認めている。

すべての実験は、国立衛生研究所(NIH)ガイドラインおよびアップステート医科大学施設動物ケアおよび使用委員会(IACUC)に従って行われました。また、このプロトコルの概要を 図 1に示します。
1. 録音機器の準備
<ol><li>コンピュータを64ピンヘッドボックスでアンプに接続します。 注:各動物は、頭部の4象限からのEEG用の4つのまっす?...

<ol>
	<li>Kaese, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ECG+in+cardiovascular-relevant+animal+models+of+electrophysiology.">The ECG in cardiovascular-relevant animal models of electrophysiology.</a> Herzschrittmacherther Elektrophysiology. 24 (2), 84-91 (2013).</li><li>Pogwizd, S. M., Bers, D. 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この実験的なセットアップは、特に心臓および/または神経疾患のモデルにおいて、ウサギにおける詳細な同時ビデオ-EEG-ECG-オキシメトリー-カプノグラフィーの記録および分析を促進する。この記事の結果は、この方法が発作や不整脈を検出し、それらを電図アーティファクトから区別することができることを示しています。ウサギにプロコンバルサントを与えたときに期待される結果が得?...

心電図(ECG)は、心臓電気伝導のダイナミクスと電気活性化回復プロセスを評価するために臨床現場で日常的に使用されています。ECGは、不整脈、虚血、梗塞のリスクを検出、局所化、評価するために重要です。典型的には、電極は、心臓の立体的なビューを提供するために、患者の胸部、腕および脚に付設される。心筋脱分極の方向が電極に向かう場合に正の偏向が生じ、心筋脱分極の方向が電極から離れているときに負の偏向が生じる。心周期の電解成分には、心房脱分極(P波)、心房心室伝導(P-R間隔)、心室興奮(QRS複合体)、心室リポーラリゼーション(T波)が含まれる。ECGには、人間、ウサギ、イヌ、モルモット、ブタ、ヤギ、馬1、2、3など、多くの哺乳類に対して、行動の可能性のある対策が大きく類似しています。
ウサギは心臓翻訳研究に理想的なモデルです。ウサギの心臓は、イオンチャネル組成の点で人間の心臓に似ており、作用電位特性2、4、5。ウサギは、心臓病2、4、6、7、8の遺伝的、獲得、および薬物誘発モデルの生成に使用されてきた。心臓心電図と行動の薬物に対する反応の可能性は、人間7、10、11に大きな類似点があります。
心拍数と心臓電気活性化回復プロセスは、ウサギ、ヒト、および他の大きな哺乳類12、13、14と比較して、げっ歯類では非常に異なっています。げっ歯類の心臓は人間の10倍の速さで鼓動する。これに対し、ヒトおよびウサギのECGにおける等電動STセグメントに対して、げっ歯類14、15、16にはSTセグメントはない。また、げっ歯類は、逆T波14、15、16を持つQRS-r波形を有する。QT間隔の測定値は、げっ歯類と人間とウサギの14、15、16で非常に異なっています。さらに、正常なECG値は、げっ歯類12、15、16との人間で大きく異なる。心電図波形のこれらの違いは、心臓再分極9,14を駆動する作用電位形態とイオンチャネルの違いに起因する可能性がある。一過性外向きカリウム電流はげっ歯類における短い(非ドーム)心行動電位形態の主要な再分極電流であるが、ヒトおよびウサギでは、作用電位に大きな相2ドームがあり、遅滞性整流カリウム電流(IKrおよびIKs)はヒトおよびウサギ4,17の主要な再分極電流である。重要なことに、IKrおよびIKsの発現はげっ歯類において存在しない/最小限であり、そしてIKrおよびI Ksの時間的活性化運動学のために、それは心行動電位形態9、13において役割を持たない。このように、ウサギは、薬物誘発、取得、および遺伝したECG異常および不整脈4、7、13のメカニズムを評価するためのより翻訳的なモデルを提供する。次に、多くの研究が、初発心臓(長いQT症候群18、19、20)または神経疾患(てんかん21、22、23、24)における神経および心臓の両方の電気異常の存在を示しているように、ヒト生理学を密接に再現する動物モデルの基礎的メカニズムを研究することが重要である。げっ歯類は人間の脳をモデル化するのに十分かもしれませんが、げっ歯類はヒト心臓生理学7の理想的なモデルではありません。
脳波(EEG)は、通常頭皮または内部に置かれた電極を使用して、皮質の電気機能を記録します。これらの電極は、大脳皮質25における近傍錐型ニューロン群の焼成速度およびシンクロニシティの変化を検出できる。この情報は、脳機能と覚醒/睡眠状態を評価するために使用することができます。また、EEGはてんかんの活性を局所化し、てんかん発作を非てんかん事象(例えば、心因性非てんかん活動および心原性事象)と区別するのに有用である。てんかんの種類、誘発因子、および発作の起源を診断するために、てんかん患者は発作をもたらす可能性のある様々な操縦を受ける。様々な方法は、過換気、photic刺激、および睡眠不足を含む。このプロトコルは、ウサギ26、27、28、29におけるEEG収差および発作を誘発する感知刺激の使用を示す。
同時ビデオ-EEG-ECG記録は、ヒトおよびげっ歯類において、イクタル前、イクタル状態、およびイクタル状態30の間の行動、神経、および心臓活動を評価するために広く使用されている。いくつかの研究がウサギ4、31、32、33で個別にEEGとECG記録を行っているが、意識的に拘束されたウサギの同時ビデオ-EEG-ECGを取得および分析するためのシステムは34を確立していない。本論文では、神経心の電気機能と呼吸機能を評価するために、意識的なウサギに同時にビデオ-EEG-ECG-カプノグラフィーオキシメトリーデータを記録できるプロトコルの設計と実装について述べる。この方法から収集された結果は、不整脈、発作、呼吸障害、および身体的症状の間の感受性、引き金、ダイナミクスおよび一体性を示すことができる。実験システムの利点は、鎮静剤を必要とせずに意識的な録音を取得することです。ウサギは、最小限の動きで≥5時間の拘束剤に残ります。麻酔薬は神経細胞、心臓、呼吸、自律神経機能を摂動するので、意識状態の間の記録は最も生理学的なデータを提供する。
この記録システムは、最終的には、てんかんにおける突然の予期せぬ死(SUDEP)に対する神経学的、心臓および呼吸機構の理解を進めるための詳細な洞察を提供するかもしれない。上記の神経学的および心臓モニタリングに加えて、最近の証拠は、発作35、36後の突然死への潜在的な貢献として呼吸不全の役割を支持している。ウサギの呼吸状態を監視するために、発作の前後の呼吸器系の状態を評価するためにオキシメトリーおよびカプノグラフィーを実施した。ここで提示されるプロトコルは、薬理学的および感電誘発性ウサギの発作の閾値を評価することを目的として設計された。このプロトコルは、物理的な症状を引き起こす可能性のある微妙なEEGおよびECG異常を検出することができる。さらに、この方法は、心臓の安全性と新しい薬剤やデバイスの抗不整脈効果検査に使用することができます。

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	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% Sodium Chloride Irrigation, USP - Flexible Container</td>
			<td>PFIZER (HOSPIRA)</td>
			<td>7983-09</td>
			<td>Dilutant</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10cc Luer Lock syringe with 20G x 1&#34; Needle</td>
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			<td>SS-10L2025</td>
			<td>Used as a flush after drug injection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4x4 gauze sponges</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>22-415-469</td>
			<td>Rolled in a tube to splint ear with angiocatheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Apple Sauce</td>
			<td>Kirkland</td>
			<td>897971</td>
			<td>Vehicle for oral medications</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Computer</td>
			<td>Dell</td>
			<td>Optiplex 5040</td>
			<td>Acquisition computer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>E-4031</td>
			<td>Tocris</td>
			<td>1808</td>
			<td>Agent known to prolong the QT interval</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ECG Electrode</td>
			<td>RhythmLink</td>
			<td>RLSND116-2.5</td>
			<td>13mm 35-degree bent (0.4 mm diameter) subdermal pin electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EEG Electrode</td>
			<td>RhythmLink</td>
			<td>RLSP513</td>
			<td>5-twist 13mm straight (0.4mm diameter) subdermal pin electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EEGLAB (2020)</td>
			<td>Swartz Center for Computational Neuroscience</td>
			<td>Open Access</td>
			<td>Can perform spectral analysis of EEG</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethernet-to-ethernet adapter</td>
			<td>Linksys</td>
			<td>USB3G16</td>
			<td>Adapter for connecting the camera to the computer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Euthanasia-III Solution</td>
			<td>Med-Pharmex</td>
			<td>ANADA 200-280</td>
			<td>Contains pentobarbital sodium and phenytoin sodium, controlled substance</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Foam padding</td>
			<td>Generic</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Reduces pressure applied to the neck of small rabbits by the restrainer in order to prevent the adverse cardiorespiratory effects of neck compression</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin Lock Flush</td>
			<td>Medline</td>
			<td>EMZ50051240</td>
			<td>To maintain patency of angiocatheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IR Light</td>
			<td>Bosch</td>
			<td>EX12LED-3BD-8W</td>
			<td>Facilitates recordings in the dark</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LabChart Pro (2019, Version 8.1.16)</td>
			<td>ADInstruments</td>
			<td>N/A</td>
			<td>ECG Analysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>JELCO PROTECTIV Safety I.V. Catheters, 25 gauge</td>
			<td>Smiths Medical</td>
			<td>3060</td>
			<td>Used to catherize marginal ear vein</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MATLAB (R2019b, Update 5)</td>
			<td>MathWorks</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Required to run EEGLAB</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microphone</td>
			<td>Sony Stereo</td>
			<td>ECM-D570P</td>
			<td>Recording of audible manifestions of seizures</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micropore Medical Tape, Paper, White</td>
			<td>3M</td>
			<td>1530-1</td>
			<td>Used to secure wires and create ear splint</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Natus NeuroWorks</td>
			<td>Natus</td>
			<td>LC101-8</td>
			<td>Acquisition and review software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pentylenetetrazol (1 - 10 mg/kg always in 1mL volume)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>88580</td>
			<td>Dilutions prepared in saline</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Photic Stimulator</td>
			<td>Grass</td>
			<td>PS22</td>
			<td>Stimulator to control frequency, delay, duration, intensity of the light pulses</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plastic wire organizer / bundler</td>
			<td>12Vwire.com</td>
			<td>LM-12-100-BLK</td>
			<td>Bundle wires to cut down on noise</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PS 22 Photic Stimulator</td>
			<td>Grass Instruments</td>
			<td>BZA641035</td>
			<td>Strobe light with adjustable flash frequency, delay, and intensity</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe</td>
			<td>Generic</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Prevents small rabbits from kicking their hind legs and causing spinal injury</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Quantum Amplifier</td>
			<td>Natus</td>
			<td>13926</td>
			<td>Amplifier / digitizer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Quantum HeadBox Amplifier</td>
			<td>Natus</td>
			<td>22134</td>
			<td>64-pin breakout box</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rabbit Restrainer</td>
			<td>Plas-Labs</td>
			<td>501-TC</td>
			<td>Various size rabbit restrainers are available. 6&#34; x 18&#34; x 6&#34; in this study.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rubber pad (booster)</td>
			<td>Generic</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Raises small rabbits up in the restrainer to prevent neck compression</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SpO2 ear clip</td>
			<td>NONIN</td>
			<td>61000</td>
			<td>PureSAT/SpO2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SpO2 sensor adapter</td>
			<td>NONIN</td>
			<td>13931</td>
			<td>XPOD PureSAT/SpO2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SRG-X120 1080p PTZ Camera with HDMI, IP &#38; 3G-SDI Output</td>
			<td>Sony</td>
			<td>SRG-X120</td>
			<td>Impela Camera</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Terumo Sur-Vet Tuberculin Syringe 1cc 25G X 5/8&#34; Regular Luer</td>
			<td>Sur-Vet</td>
			<td>13882</td>
			<td>Used to inject intravenous medications</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Veterinary Injection Plug Luer Lock</td>
			<td>Sur-Vet</td>
			<td>SRIP2V</td>
			<td>Injection plug for inserting the needle for intravenous medication</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Webcol Alcohol Prep, Sterile, Large, 2-ply</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>5110</td>
			<td>To prepare ear vein before catheterization</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

multi-system monitoring for identification of seizures, arrhythmias and apnea in conscious restrained rabbits

イオンチャネル症の患者は、発作および致命的な心臓不整脈を発症する危険性が高い。てんかん患者(すなわちてんかんの心臓)には心臓病や不整脈の有病率が高い。さらに、発作を取り巻く心臓および自律神経障害が報告されている。1:1,000てんかん患者/年はてんかん(SUDEP)で突然の予期せぬ死で死亡する。SUDEP のメカニズムは、完全には理解されていません。脳波(EEG)と心電図(ECG)は、発作や不整脈の基質/トリガーを検出して研究するために臨床現場で日常的に使用される2つの技術です。この方法論の多くの研究と記述はげっ歯類にありますが、心臓の電気的活動は人間とは大きく異なります。この記事では、意識的なウサギの同時ビデオ-脳脳-EEG-ECG-オキシメトリーカポノグラフィーを記録するための非侵襲的な方法の説明を提供します。心臓の電気機能はウサギとヒトで類似しているので、ウサギは翻訳診断および治療研究の優れたモデルを提供する。データ収集の方法論を概説するほか、ウサギの神経心の電気機能や病理を調べる分析手法についても議論する。これには、不整脈検出、EEGのスペクトル分析、および抑制されたウサギのために開発された発作スケールが含まれます。

上記の方法は、呼吸障害だけでなく、脳や心臓の電気伝導系の異常を検出することができる。データ取得ソフトウェアは、ECG形態を評価し、異常な心拍数、伝導障害、または心電図リズム(心房/心室異所性拍、および徐脈性不整脈)を検出するために使用される(図6)。ECGの形態を視覚化することに加えて、トレースは、RR間隔、心拍数、PR間隔、P?...

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Multi-system Monitoring for Identification of Seizures, Arrhythmias and Apnea in Conscious Restrained Rabbits

同時ビデオ-EEG-ECG-オキシメトリー-カプノグラフィーを用いて、ウサギモデルの感受性を評価し、引き起こされた不整脈および発作を発症する方法論を開発した。この新しい記録システムは、治療薬の有効性と安全性をテストするプラットフォームを確立し、突然死に至るマルチシステムイベントの複雑なカスケードをキャプチャすることができます。

意識的に拘束されたウサギにおける発作、不整脈および無呼吸の識別のためのマルチシステムモニタリング

Patients with ion channelopathies are at a high risk of developing seizures and fatal cardiac arrhythmias. There is a higher prevalence of heart disease ...

心臓および呼吸機能障害は、発作後の突然死に寄与する。そこで、この現象を研究するために、ウサギモデルに多系統アプローチを適用した。この技術により、発作、不整脈、および先行死を取り巻く複数のウサギの神経学的、心臓、呼吸機能を同時に監視し、後で分析することができます。病気は主に神経または心臓であるかもしれないが、それは脳と心臓の両方の電気的障害を含むかもしれない, 発作や不整脈など, 呼吸機能障害.後ろ足の強さのためにウサギと一緒に働くのは難しいかもしれません。ウサギを動かすときに、モニターを取り付けるときには、落ち着くように注意してください。まず、コンピュータを64ピンヘッドボックスでアンプに接続します。ヘッドボックスの8番ピンをリファレンスにするには、リファレンス電極を独立に設定します。ECG電極の移植のために、研究者の膝の頭で、その体の残りの部分よりも低い頭で、うなぎの位置にウサギを固定します。第二の研究者が下層の皮膚を露出させるために毛皮を広げて、下皮は各腋窩に35度の角度曲がった電極を挿入する。胸にリードを置き、右と左前肢の後部。そして腹部には、左後肢の前部。次に、腹部の右後肢に接地ピン電極を前置きします。すべてのECGリードが適切に配置されたら、動物の下に後肢を持つ適切なサイズの拘束剤でウサギを固定します。45度の角度アプローチを使用して、皮下ストレートピン電極を頭皮に挿入します。右前部、左前頭、右後頭部、左後頭部領域に1本のEEGリードを配置します。他の 4 つのリードの間の中央点に中央参照リードを配置します。耳の間にワイヤーを実行し、ゆるやかに頭の後ろの拘束者にそれらをテザー。実験中の呼吸を監視するには、パルスオキシメーターを限界耳静脈の上の片耳に取り付け、動物の口と鼻の上にカプノグラフィーチューブでフェイスマスクを静かに固定します。次に、チューブのもう一方の端をバイタルサインモニターに取り付けます。ビデオEEG-ECGを記録するには、適切な市販のEEGソフトウェアプログラムを開き、すべてのウサギが視野内で観察されるようにビデオを調整します。最低10〜20分間、または心拍数が少なくとも5分間毎分200〜250拍に安定するまで、動物のベースライン記録を行う。低周波数フィルタを 1 ヘルツに、高周波フィルタを 59 ヘルツに設定します。リアルタイムでタイムロックされたメモを追加して、介入のタイミング、神経心臓イベント、およびモーターまたは研究者のアーティファクトを示します。フォティック刺激の場合、目の高さで、目の高さで、目の高さで、目の前に円形反射器を持つ光源を配置し、最大に設定します。そして、頭の両側に2つの鏡を置き、1つの鏡をウサギの後ろに置き、光がウサギの目に入るようにします。調整可能なレート、強度、および持続時間を持つコントローラにライトを取り付けます。フォティック刺激装置を1ヘルツに設定し、フラッシュをオンにして、応答を30秒間記録します。マスクでウサギの目を覆い、目の閉鎖をシミュレートしたり、引き起こしたりして、さらに30秒間刺激します。各周波数で目を開けて目を閉じた応答を記録した後、30秒間フォティック刺激器をオフにし、コントローラを次の周波数設定に設定します。各周波数で2ヘルツ間隔で1~25ヘルツまで60秒間録画した後、5ヘルツ刻みで60ヘルツから25ヘルツの周波数を下げ、目を開けて30秒間、目を閉じて30秒間記録します。実験の最後に、ウサギからEEGとECGのリードを取り除き、畜産スタッフによる日常的なケアのために動物を自宅のケージに戻します。薬を投与する前に、実証したように、未処理のウサギからベースラインEEG-ECGビデオの10〜20分を収集します。関心のある薬の経口投与のために、食品グレードのリンゴソースの3ミリリットルに関心のある薬物の1キログラム当たり0.3ミリグラムを混合し、3ミリリットル経口注射器に混合物をロードします。ウサギの上唇をそっと持ち上げ、注射器の先端をウサギの歯に塞がらない口の側面にスライドさせ、薬物補充リンゴソースの全容をウサギの口に注入する。その後、定期的なケアのためにそのホームケージにウサギを返す前に、EEG-ECGビデオデータの2時間を収集します。静脈内投薬投与に対するEEG-ECG応答を記録する前に、ウサギの耳の後面を剃り、70%エタノールを使用してサイトを消毒し、限界耳静脈を拡張する。慎重に、25ゲージの血管カテーテルで限界耳静脈をカニューレートし、カテーテルの端に注入プラグを置きます。3つのロールガーゼから作成された副木を耳にテープで貼り付け、カテーテルを所定の位置に固定し、耳を直立に保持します。カテーテル特許を維持するために、ヘパリン化生理食塩水のミリリットルあたり10 USP単位の1ミリリットルを注入します。ベースライン記録が終了したら、 10 分に 1 回カテーテルに関心のある薬の 1 キログラムあたり 1 0 ミリグラムを補充した生理焼菌を注入します。.各用量の後、ビデオ脳G-ECG、オキシメトリーカプノグラフィー、任意の神経、心臓、電気および呼吸器の異常またはてんかん活動の視覚的証拠を注意深く監視する。これらの変更は、リアルタイムで、またポスト分析中に注意してください。心電図ビデオを分析するには、適切な市販のソフトウェアを使用して、心電図データ内の頻脈、小線源、異所性拍動、またはその他の不整脈の期間を同定します。レビューするデータの量を減らすために、タコグラムを作成して、頻脈、徐脈、またはRR間隔の不規則性の期間を容易にする。薬物投与実験後のビデオEEG分析では、EEGトレースを視覚的にスクロールして、薬物の各用量の後に少なくとも1分間、てんかんと非てんかんの動きを区別します。感光刺激実験後のビデオEEG解析では、適切なEEG解析ソフトウェアプログラムでスペクトル解析プロットを作成します。次に、後頭部駆動リズムの有無について、EEGの後頭部を解析する。後頭部の駆動リズムは、感知刺激子の周波数に対応するスペクトル解析でピークを作り出します。心電図形態の評価は異常な心拍数、伝導および心電図波の形態の検出を可能にする。また、このトレースは、心拍数、RR間隔、PR間隔、P期間、QRS間隔、QT間隔、QTc、JT間隔、T-ピークからT終了間隔の数値を定量化するためにも使用できます。後頭部のEEGリードからの記録は、通常、正面リードデータに対して観測されたものよりも高い振幅を示す。そして、すべてのリードの支配的な周波数は、一般的にデルタ範囲で測定されます。ここでは、代表的なウサギ実験からの睡眠スピンドル波が示されている。睡眠の1期間の複数の脳波モンタージュは、これらの波が人間の発見と一致する頭部の中心から生じることを示しています。通常のEEG変化に加えて、これらのデータをてんかんの排出物と区別するために使用できるベースライン記録中に、様々な意識的で非てんかんウサギの動きが観察される。ECGリードを皮膚にしっかりと入れて、ワイヤーを脚から遠ざけ、ウサギを拘束剤に移すときに電極が取り付けられたままにすることが重要です。この多系統記録装置は、今後の薬剤の安全性・有効性の研究を可能にし、様々な病気の獲得・遺伝性疾患を総合的に理解することを可能にします。この技術は、発作後に致命的な多臓器機能不全の可能性を捉え、SUDEPのメカニズムをよりよく理解する。

Research

JoVE Journal

Medicine

Hyperinsulinemic-Euglycemic Clamp in the Conscious Rat

覚醒ラットにおける高インスリン血症、正常血糖クランプ

Type 2 diabetes (T2D) is rapidly rising in prevalence. Characterized by either inadequate insulin production or the inability to utilize insulin produced, ...

Methods for ECG Evaluation of Indicators of Cardiac Risk, and Susceptibility to Aconitine-induced Arrhythmias in Rats Following Status Epilepticus

心電図心臓のリスクの指標の評価、およびてんかん重積状態後のラットにおけるアコニチン誘発性不整脈に対する感受性のための方法

Lethal cardiac arrhythmias contribute to mortality in a number of pathological conditions. Several parameters obtained from a 
non-invasive, easily ...

Hyperinsulinemic-euglycemic Clamps in Conscious, Unrestrained Mice

意識、無拘束マウスにおける高インスリン血症、正常血糖クランプ

Type 2 diabetes is characterized by a defect in insulin action. The hyperinsulinemic-euglycemic clamp, or insulin clamp, is widely considered the "gold ...

Production of Apolipoprotein C-III Knockout Rabbits using Zinc Finger Nucleases

ジンクフィンガーヌクレアーゼを使用して、アポリポタンパク質C-IIIのノックアウトウサギの生産

Apolipoprotein (Apo) C-III (ApoCIII) resides on the surface of plasma chylomicron (CM), very low density lipoprotein (VLDL) and high density lipoproteins ...

Transcutaneous Assessment of Renal Function in Conscious Rodents

コンシャスげっ歯類における腎機能の経皮評価

Glomerular filtration rate (GFR) is the gold standard to assess overall kidney function. However, traditional methods to evaluate GFR are cumbersome and ...

A Step by Step Protocol for Subretinal Surgery in Rabbits

ウサギにおける網膜下手術のためのステッププロトコルによってステップ

Age related macular degeneration (AMD), retinitis pigmentosa, and other RPE related diseases are the most common causes for irreversible loss of vision in ...

Preclinical Model of Hind Limb Ischemia in Diabetic Rabbits

糖尿病性ウサギにおける後肢虚血の前臨床モデル

Peripheral vascular disease is a widespread clinical problem that affects millions of patients worldwide. A major consequence of peripheral vascular ...

Blind Endotracheal Intubation in Neonatal Rabbits

新生児ウサギにおける盲目の気管内挿管

The newborn rabbit is a useful animal model for various pathologies and procedures. Airway management of the rabbit is complex due to its anatomical ...

Implantation of Combined Telemetric ECG and Blood Pressure Transmitters to Determine Spontaneous Baroreflex Sensitivity in Conscious Mice

意識のあるマウスにおける自発的な圧反射感受性を決定するための遠隔ECGと血圧伝達器の組み合わせの埋め込み

Blood pressure (BP) and heart rate (HR) are both controlled by the autonomic nervous system (ANS) and are closely intertwined due to reflex mechanisms. ...

Analyzing Long-Term Electrocardiography Recordings to Detect Arrhythmias in Mice

マウスの不整脈を検出するための長期心電図記録の分析

Arrhythmias are common, affecting millions of patients worldwide. Current treatment strategies are associated with significant side effects and remain ...