Name: assessing agrochemical risk to mated honey bee queens
Uploaded: 2021-03-03T14:30:00
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Vielen Dank an Dr. Amy Cash-Ahmed, Nathanael J. Beach und Alison L. Sankey für ihre Unterstützung bei der Durchführung dieser Arbeit. Die Erwähnung von Handelsnamen oder kommerziellen Produkten in dieser Veröffentlichung dient ausschließlich der Bereitstellung spezifischer Informationen und impliziert keine Empfehlung oder Billigung durch das US-Landwirtschaftsministerium. USDA ist ein Anbieter von Chancengleichheit und Arbeitgeber. Diese Forschung wurde durch ein Stipendium der Defense Advanced Research Projects Agency # HR0011-16-2-0019 an Gene E. Robinson und Huimin Zhao, das USDA-Projekt 2030-21000-001-00-D und die Phänotypic Plasticity Research Experience für Community College-Studenten an der University of Illinois in Urbana Champaign unterstützt.

1. QMC-Montage
<ol><li>Montieren Sie QMCs aus Teilen (Abbildung 1A) mit einer einzigen Eiablageplatte (ELP), die wie in Abbildung 1Bgezeigt eingefügt wird. Fügen Sie feeder Tubes erst hinzu, nachdem die Arbeiter in den Käfig gegeben wurden. Bedecken Sie die 4 Einzugslöcher vorübergehend mit Klebeband in Laborqualität.</li>
	<li>Führen Sie den Königinnenausschluss und die Tür der Futterkammer über die Futterkammer ein, um zu verhindern, dass die Köni...

Die Fruchtbarkeit weiblicher Solitärinsekten sowie Von Königinnen in eusozialen Insektenkolonien kann durch abiotische Stressoren wie Agrochemikalien25,28,29,30,33beeinflusst werden . Bei Honigbienen können die Auswirkungen von Agrochemikalien auf Königinnen indirekt sein, da sie durch Veränderungen in ihrer Pflege und Fütterung durch Arbeiterbienen auft...

Aufgrund der weltweit gestiegenen Nachfrage nach landwirtschaftlichen Erzeugnissen erfordern moderne landwirtschaftliche Praktiken häufig den Einsatz von Agrochemikalien zur Bekämpfung zahlreicher Schädlinge, von denen bekannt ist, dass sie die Ernteerträge verringern oder schädigen1. Gleichzeitig verlassen sich die Erzeuger vieler Obst-, Gemüse- und Nusskulturen auf die Bestäubungsdienste kommerzieller Honigbienenvölker, um reichlich Ernteerträge zu erzielen2. Diese Praktiken können dazu führen, dass Bestäuber, einschließlich Honigbienen (Apis mellifera), schädlichen Pestizidrückständen ausgesetzt sind3. Gleichzeitig erfordert das weit verbreitete Vorhandensein von parasitärem Varroa destructor Milbenbefall in Honigbienenvölkern häufig, dass Imker ihre Bienenstöcke mit Mitiziden behandeln, was sich auch negativ auf die Gesundheit und Langlebigkeit der Kolonie auswirken kann4,5,6. Um die schädlichen Auswirkungen agrochemischer Produkte zu reduzieren und zu mildern, ist es notwendig, ihre Sicherheit für Honigbienen vor ihrer Umsetzung vollständig zu bewerten, damit Empfehlungen für ihre Verwendung zum Schutz nützlicher Insekten abgegeben werden können.
Derzeit stützt sich die Environmental Protection Agency (EPA) auf eine abgestufte Risikobewertungsstrategie für die Pestizidexposition gegenüber Honigbienen, die Labortests an erwachsenen Bienen und manchmal Honigbienenlarven umfasst7. Wenn Labortests der unteren Ebene die Bedenken hinsichtlich der Toxizität nicht ausräumen, können Feld- und Halbfeldtests auf höherer Ebene empfohlen werden. Während diese Labortests wertvolle Einblicke in die möglichen Auswirkungen von Agrochemikalien auf die Langlebigkeit der Arbeiter liefern, sind sie nicht unbedingt prädiktiv für ihre Auswirkungen auf Königinnen, die sich biologisch signifikant von Arbeiterinnen unterscheiden8 und verhaltensmäßig9. Darüber hinaus gibt es zahlreiche potenzielle Auswirkungen von Agrochemikalien auf Insekten über die Mortalität hinaus, die erhebliche Folgen für soziale Insekten haben können, die auf koordinierte Verhaltensweisen angewiesen sind, um als Kolonieeinheit zu fungieren10,11.
Obwohl die Mortalität die am häufigsten in Betracht gezogene Wirkung von agrochemischen Pestiziden ist12, können diese Produkte eine breite Palette von Auswirkungen sowohl auf Ziel- als auch auf Nichtzielarthropodenhaben,einschließlich verändertem Verhalten13,14 , 15,16, Abstoßung oder Attraktivität17,18,19, Veränderungen der Fütterungsmuster20,21,22 , und erhöhte oder verminderte Fruchtbarkeit20,21,22,23,24,25. Für soziale Insekten können diese Effekte die Interaktionen und Funktionen der Kolonien systemisch stören11. Von diesen Funktionen kann die Fortpflanzung, die stark von einer einzigen eierlegenden Königin abhängig ist, die vom Rest der Kolonieeinheit9unterstützt wird, besonders anfällig für Störungen aufgrund von Pestizidexposition sein.
Studien, die an unreifen Königinnen durchgeführt wurden, haben gezeigt, dass die Entwicklungsexposition gegenüber Mitiziden das Verhalten, die Physiologie und das Überleben der erwachsenen Königin beeinflussen kann26,27. In ähnlicher Weise haben Studien mit vollen oder reduzierten Kolonien gezeigt, dass Agrochemikalien erwachsene Honigbienenköniginnen beeinflussen können, indem sie den Paarungserfolg28verringern, die Eiablage29verringern und die Lebensfähigkeit der produzierten Eier verringern25,30,31. Diese Phänomene waren bisher ohne den Einsatz ganzer Kolonien schwer zu beobachten, was vor allem auf einen Mangel an verfügbaren Labormethoden zurückzuführen war. Eine Methode zur Untersuchung der Eiablage von Königinnen unter streng kontrollierten Laborbedingungen unter Verwendung von Queen Monitoring Cages (QMC)32 wurde jedoch kürzlich angepasst, um die Auswirkungen von Agrochemikalien auf die Fruchtbarkeit der Königin zu untersuchen33. Hier werden diese Techniken zusammen mit zusätzlichen Methoden zur Messung und Verfolgung des Nahrungsverbrauchs der Arbeitnehmer in QMCs ausführlich beschrieben.
Diese Methoden sind vorteilhafter als Experimente, die Kolonien in voller Größe erfordern, da sie die Verabreichung präziser Dosen von Agrochemikalien an eine stark reduzierte Anzahl von Arbeitern im Vergleich zu den Zehntausenden ermöglichen, die typischerweise in einer Kolonie34vorhanden sind, die dann die Königin versorgen. Diese Expositionstechnik spiegelt die Exposition aus zweiter Hand wider, die Königinnen in realen Szenarien erleben würden, da sich Königinnen innerhalb einer Kolonie nicht selbst ernähren und sich auf Arbeiter verlassen, um sie mit Diät zu versorgen9. Ebenso verlassen Königinnen den Bienenstock im Allgemeinen nicht, außer während der Koloniereproduktion (Schwärmen) für Paarungsflüge35. Gepaarte Honigbienenköniginnen können von kommerziellen Königinnenzüchtern gekauft und über Nacht verschickt werden. Typischerweise verkaufen Königinnenzüchter Königinnen direkt, nachdem sie bestätigt haben, dass sie mit der Eiablage begonnen haben, was als Hinweis auf eine erfolgreiche Paarung angesehen wird. Wenn genauere Informationen über das Alter oder die Verwandtschaft der Königin benötigt werden, können sich die Forscher vor der Bestellung mit dem Königinzüchter beraten.
QMCs ermöglichen eine genaue Beobachtung und Quantifizierung der Eiablage von Honigbienenköniginnen und der Brutraten von Eiern32,33, was wertvolle Daten über die Auswirkungen der agrochemischen Exposition auf die Fruchtbarkeit der Königin liefert. Die hier vorgestellten repräsentativen Ergebnisse beschreiben ein Experiment zur Quantifizierung von Eiablage, Diätkonsum und Embryonenlebensfähigkeit in QMCs unter chronischer Exposition gegenüber feldrelevanten Konzentrationen des systemischen Neurotoxikanten Neonicotinoid-Pestizids Imidacloprid36. Einmal aufgetragen, transloziert Imidacloprid in Pflanzengewebe37, und Rückstände wurden die Pollen und der Nektar zahlreicher bienenbestäubter Pflanzen38,39,40nachgewiesen . Die Exposition gegenüber Imidacloprid kann eine breite Palette von schädlichen Auswirkungen auf Honigbienen haben, einschließlich einer beeinträchtigten Futtersuche16,einer beeinträchtigten Immunfunktion41und einer verringerten Rate der Kolonieausdehnung und des Überlebens42,43. Hier wurde Imidacloprid für die Verwendung als Testsubstanz ausgewählt, da Feldexperimente gezeigt haben, dass es die Eiablage der Honigbienenkönigin beeinflussen kann29

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Fluon</td>
			<td>BioQuip, Rancho Dominguez, CA</td>
			<td>2871A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Honey bee queens</td>
			<td>Olivarez Honey Bees, Orland, CA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imidacloprid</td>
			<td>Sigma-Aldritch, St. Louis, MO</td>
			<td>37894</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MegaBee Powder</td>
			<td>MegaBee, San Dieago, CA</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microcentrifuge tubes 2 mL</td>
			<td>ThermoFisher Scientific, Waltham, MA</td>
			<td>02-682-004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needles 20 gauge</td>
			<td>W. W. Grainger, Lake Forest, IL</td>
			<td>5FVK4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potassium Sulfate</td>
			<td>Sigma-Aldritch, St. Louis, MO</td>
			<td>P0772</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Queen Monitoring Cages</td>
			<td>University of Illinois Urbana-Champaign</td>
			<td></td>
			<td>Patent application number: 20190350175</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sucrose</td>
			<td>Sigma-Aldritch, St. Louis, MO</td>
			<td>S8501</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Universal Microplate Lids</td>
			<td>ThermoFisher Scientific, Waltham, MA</td>
			<td>5500</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

assessing agrochemical risk to mated honey bee queens

Aktuelle Risikobewertungsstrategien für Honigbienen stützen sich stark auf Labortests, die an erwachsenen oder unreifen Arbeitsbienen durchgeführt wurden, aber diese Methoden erfassen möglicherweise nicht genau die Auswirkungen der agrochemischen Exposition auf Honigbienenköniginnen. Als einzige Produzentin von befruchteten Eiern in einer Honigbienenkolonie ist die Königin wohl das wichtigste Einzelmitglied einer funktionierenden Kolonieeinheit. Daher sollte das Verständnis, wie sich Agrochemikalien auf die Gesundheit und Produktivität von Königinnen auswirken, als kritischer Aspekt der Risikobewertung von Pestiziden angesehen werden. Hier wird eine angepasste Methode vorgestellt, um Honigbienenköniginnen und Arbeiterköniginnen Begleitern agrochemischen Stressoren auszusetzen, die durch eine Arbeiterdiät verabreicht werden, gefolgt von der Verfolgung der Eierproduktion im Labor und der Beurteilung der ersten Instar-Eklosion mit einem speziellen Käfig, der als Queen Monitoring Cage bezeichnet wird. Um den Verwendungszweck der Methode zu veranschaulichen, werden die Ergebnisse eines Experiments beschrieben, in dem Arbeiterinnenbegleiterinnen mit subletalen Dosen von Imidacloprid gefüttert und die Auswirkungen auf Königinnen überwacht wurden.

Die Produktion von Eiern wurde in QMCs überwacht, die wie oben beschrieben zusammengestellt und aufrechterhalten wurden, mit einmal täglichen Beobachtungen der Eierproduktion und 15 Käfigen pro Behandlungsgruppe. Neu gepaarte Königinnen von hauptsächlich krainer Beständen wurden gekauft und über Nacht von einem Königinnenzüchter verschifft, und Honigbienenarbeiter wurden aus 3 Kolonien gewonnen, die nach kommerziellen Standardmethoden in der Bienenforschungseinrichtung der Universität von Illinois Urbana-Champa...

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Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens

Dieses Protokoll wurde entwickelt, um das Verständnis dafür zu verbessern, wie Agrochemikalien die Reproduktion von Honigbienen (Apis mellifera) beeinflussen, indem Methoden etabliert werden, um Honigbienenköniginnen und ihre Arbeiterpfleger in einer kontrollierten Laborumgebung Agrochemikalien auszusetzen und ihre relevanten Reaktionen sorgfältig zu überwachen.

Bewertung des agrochemischen Risikos für gepaarte Honigbienenköniginnen

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not ...

Agrochemische Exposition kann große Auswirkungen auf alle Mitglieder einer Honigbienenkolonie haben, einschließlich des wichtigsten Mitglieds, Königinnen. Aber bis vor kurzem waren nur wenige Werkzeuge verfügbar, um diese Effekte zu untersuchen. Diese Technik ermöglicht es Forschern, Königinnen unter kontrollierten Bedingungen Agrochemikalien auszusetzen, die Bedingungen simulieren, die sie im Feld erleben könnten.Es ist ziemlich einfach, das Eiablageverhalten der Honigbienenkönigin zu stören, daher ist es wichtig, beim Umgang mit Arbeiterinnen und Königinnen vor und während des Experiments vorsichtig zu sein. Amy Floyd und Eliza Litsey, Labortechniker an der Invasive Species and Pollinator Health Research Unit, Honeybee Research Lab, werden diese Verfahren demonstrieren. Bauen Sie zunächst Königinnenüberwachungskäfige oder QMCs zusammen, indem Sie die Türverkleidungen einsetzen, und führen Sie dann den Königinnenausschluss in die Tür der Futterkammer über der Fütterungskammer ein, um zu verhindern, dass die Königin die behandelte Diät betritt und kontaktiert.Fügen Sie eine einzelne ELP ein. Fügen Sie erst dann Zuführröhrchen hinzu, nachdem die Arbeiter in den Käfig gegeben wurden, und bedecken Sie die vier Zuführlöcher vorübergehend mit Klebeband in Laborqualität. Nachdem Sie die Wachswabenrahmen mit der gekappten Arbeiterbrut aus Honigbienenvölkern gesammelt und inkubiert haben, bürsten Sie die geschlossenen Bienen in einen offenen Behälter ab, der mit einer Insektenbarrierefarbe ausgekleidet ist, um zu verhindern, dass die Bienen herauskriechen.Fügen Sie mindestens 50 Bienen nach Gewicht in die Eiablagekammer jedes QMC. Um sicherzustellen, dass ein vielfältiger genetischer Pool eingeführt wird, erhalten Sie eine ähnliche Anzahl von Arbeitsbienen aus mindestens drei Kolonien und lassen Sie sie mischen, bevor Sie Bienen zu den QMCs hinzufügen.Verwenden Sie Königinnen, die von einem kommerziellen Züchter gekauft wurden, innerhalb von 48 Stunden nach Erhalt. Während sich die Königin noch im Versandkäfig befindet, legen Sie sie in eine durchsichtige Plastiktüte. Legen Sie dann ein Ende eines Kunststoffrohrs, das mit einem Kohlendioxidgaskanister verbunden ist, in den Beutel und öffnen Sie vorsichtig das Kanisterventil, damit das Kohlendioxidgas fließen kann.Wenn der Beutel mit Gas aufgeblasen wurde, schließen Sie gleichzeitig das Kanisterventil und halten Sie den Beutel geschlossen, um das Gas im Inneren einzufangen. Halten Sie den Beutel 30 Sekunden lang geschlossen oder bis sich die Königin nicht mehr bewegt. Entfernen Sie die Königin, indem Sie den Versandkäfig öffnen, sobald beobachtet wird, dass die Königin bewusstlos ist.Öffnen Sie teilweise die Tür zur Eierlegekammer, legen Sie die bewusstlose Königin vorsichtig hinein und schließen Sie den Deckel. Fügen Sie jedem QMC den zweiten ELP hinzu. Legen Sie ein Stück Laborband über die Oberseite der beiden ELPs, um zu verhindern, dass sie sich vom QMC-Rahmen trennen, und verhindern, dass Arbeiter den Käfig verlassen.Stellen Sie die Käfige in einen dunklen Inkubator mit stabilen Umgebungsbedingungen von 34 bis 35 Grad Celsius und 50-70% relativer Luftfeuchtigkeit. Um die mit Agrochemikalien versetzte Diät zu verabreichen, bereiten Sie die Stammlösungen von Agrochemikalien in einem geeigneten Lösungsmittel wie Aceton in einer Konzentration vor, die der Diät zugesetzt werden kann, um die gewünschte Endkonzentration der Agrochemikalie von Interesse zu erreichen. Verabreichen Sie die agrochemischen Behandlungen in einer Saccharoselösung, einem kommerziellen Pollenpräparat oder beidem.Bereiten Sie die experimentelle Diät für die Verwendung am selben Tag vor, indem Sie eine geeignete Menge Stammlösung zu gekühlter oder Raumtemperatur, 50% Saccharoselösung, hinzufügen. Mischen Sie gründlich, indem Sie mit mittlerer Geschwindigkeit wirbeln. Für Pollenpräparate fügen Sie eine berechnete Menge agrochemischer Stammlösung zur Saccharoselösung hinzu und wirbeln Sie gründlich, bevor Sie sie zu pulverförmigem Präparat hinzufügen.Geben Sie Futter zu Feeder-Röhrchen hinzu und notieren Sie die Feeder-Gewichte, bevor Sie sie in den QMC legen. Um die Eiablage zu quantifizieren, entfernen Sie zunächst QMCs aus dem Inkubator. Untersuchen Sie die Rückseiten der durchsichtigen ELPs, wenn Eier vorhanden sind, entfernen Sie die Türverkleidung vor der Platte von Interesse.Entfernen Sie das Klebeband von der anderen Seite der ELPs und schieben Sie die Türverkleidung zwischen dem ELP und den Bienen im QMC. Entfernen Sie bei eingeschalteter Türverkleidung das ELP und zählen und notieren Sie die Anzahl der Eier in den ELP-Zellen. Entfernen Sie die Eier, indem Sie auf den Rand des ELP mit der offenzelligen Seite nach unten auf eine harte Oberfläche klopfen.Sobald die Eier herausfallen, ersetzen Sie das leere ELP im QMC. Entfernen und ersetzen Sie vorsichtig die Türverkleidung hinter dem ELP an der Außenseite des QMC. Wiederholen Sie dies bei Bedarf mit dem zweiten ELP und setzen Sie das Band nach Abschluss des QMC wieder ein.Um den Lebensmittelverbrauch zu überwachen, ersetzen Sie das Essen alle zwei Tage durch eine frisch zubereitete Diät. Bereiten Sie neue Futterröhrchen vor und wiegen Sie sie, bevor Sie mit der Überwachung der Eierproduktion beginnen. Tauschen Sie alte Rohre gegen neue aus und wiegen Sie alte Rohre, bevor Sie sie entsorgen.Vergleichen Sie das Endgewicht der Feeder-Sonde und der nicht verbrauchten Diät mit dem Gewicht derselben Tube, um den Futterverbrauch zu schätzen. Überprüfen Sie einmal täglich, ob die Feeder niemals leer sind. Wenn eine Feeder-Tube leer oder fast leer ist, entfernen Sie sie, füllen Sie sie auf, notieren Sie das Gewicht der Tube vorher und nachher und addieren Sie die Differenz zum zweitägigen Diätverbrauch für den QMC.Entfernen Sie an einem ausgewählten Punkt während eines QMC-Experiments die ELPs, die frisch gelegte Eier enthalten, wie zuvor beschrieben aus dem QMC, aber entfernen Sie die Eier nicht aus dem ELP. Bedecken Sie das ELP zuerst mit einer PCR-Plattendichtung und dann einem universellen Mikroplattendeckel und legen Sie es mit einer gesättigten Kaliumsulfatlösung in einen Exsikkator. Bewerten Sie die Schlüpfraten etwa 78 Stunden nach dem Entfernen von ELPs aus dem QMC.Eine C-förmige Larve im Boden der Zelle weist auf ein erfolgreiches Schlüpfereignis hin. Wenn die QMCs mit überschüssigen Arbeitskräften bevölkert waren, nehmen Sie die Arbeiterbienen zu einem ausgewählten Zeitpunkt während des Experiments ab, um die behandlungsinduzierten Veränderungen in ihrer Physiologie zu beurteilen. Platzieren Sie vor der Probenahme eine Türverkleidung zwischen einem ELP und dem Inneren des QMC und entfernen Sie das ELP.Heben Sie die Türverkleidung vorsichtig etwa 0,5 Zentimeter von der Basis des Käfigs an und entfernen Sie eine Arbeitsbiene mit einer federleichten Pinzette aus dem Inneren des QMC. Für die Genexpressionsanalyse frieren Sie die Bienen in flüssigem Stickstoff ein und lagern sie bei 80 Grad Celsius. Bewahren Sie die gesammelte Biene für die Folgeanalyse auf und wiederholen Sie diesen Vorgang, bis die gewünschte Anzahl von Proben gesammelt wurde.Diätbedingte Imidacloprid-Behandlungsänderungen der täglichen Eizellenzahl wurden durch implementierung einer linearen verallgemeinerten Poisson-Log-Schätzgleichung mit einer autoregressiven Korrelationsmatrix bewertet. Die tägliche Eierproduktion war in QMCs signifikant niedriger, wenn Pollenergänzung und Saccharose mit 50 Teilen pro Milliarde Imidacloprid verabreicht wurden. Es wurde ein dosisabhängiger Effekt auf die Gesamtzahl der eier beobachtet, die in jedem QMC für Imidacloprid-Behandlungen produziert wurden, die sowohl in Saccharose als auch in Pollenpräparat verabreicht wurden.Mit der größten beobachteten Reduktion der QMCs wurden 50 Teile pro Milliarde Imidacloprid gespeist, gefolgt von 10 Teilen pro Milliarde Pollenzusatz plus Saccharose. Es wurde kein Unterschied in den insgesamt produzierten Eiern zwischen Kontroll- und QMCs beobachtet, die allein mit 10 Teilen pro Milliarde Imidacloprid und Pollenzusatz gefüttert wurden. Pollenergänzung, Wasser- und Saccharoseverbrauch wurden alle 48 Stunden für 10 oder 12 Tage aufgezeichnet.Die täglichen Raten des Saccharosekonsums stiegen im Laufe des Experiments signifikant an, aber die Raten des Pollenergänzungskonsums sanken. Höhere Raten des Pollenkonsums wurden beobachtet, wenn 10 Teile pro Milliarde Imidacloprid allein in Pollenergänzung verabreicht wurden. Und die Rate sank, wenn 10 oder 50 Teile pro Milliarde in Pollenergänzung und Saccharoselösung zusammen verabreicht wurden.Die Verwendung von Eintagsbienen ist entscheidend, um die Akzeptanz der Königin zu gewährleisten und die Reaktivierung von Arbeiterinnen zu reduzieren. Ebenfalls entscheidend ist der sorgsame Umgang mit der Königin und die Käfige in einer stabilen Umgebung zu halten.

Research

JoVE Journal

Biology

In vivo Ca2+- Imaging of Mushroom Body Neurons During Olfactory Learning in the Honey Bee

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In vivo Ca 2 + - Imaging von Pilzkörper Neuronen während olfaktorischen Lernen in der Honigbiene

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Forschung

Biologie

Changes in Mammary Gland Morphology and Breast Cancer Risk in Rats

Änderungen der Brustdrüsen Morphologie und Breast Cancer Risk in Ratten

Studies in rodent models of breast cancer show that exposures to dietary/hormonal factors during the in utero and pubertal periods, when the mammary gland ...

A Noninvasive Hair Sampling Technique to Obtain High Quality DNA from Elusive Small Mammals

Ein nicht-invasives Haar Sampling-Technik, um High Quality DNA aus Elusive Kleinsäuger erhalten

Noninvasive genetic sampling approaches are becoming increasingly important to study wildlife populations. A number of studies have reported using ...

Heart Dissection in Larval, Juvenile and Adult Zebrafish, Danio rerio

Heart Dissection in Larval, Juvenile and Adult Zebrafish, Danio rerio

Herz Dissection in Larven, juvenile und adulte Zebrafisch, Danio rerio</em

Zebrafish have become a beneficial and practical model organism for the study of embryonic heart development (see recent reviews1-6), however, work ...

Using RNA-mediated Interference Feeding Strategy to Screen for Genes Involved in Body Size Regulation in the Nematode C. elegans

Using RNA-mediated Interference Feeding Strategy to Screen for Genes Involved in Body Size Regulation in the Nematode C. elegans

Mit RNA-Interferenz Feeding Strategy to Screen for Genes in Body Größe der Rechtsetzung in der Nematode Beteiligte<em&gt; C. elegans</em

Double-strand RNA-mediated interference (RNAi) is an effective strategy to knock down target gene expression1-3. It has been applied to many model systems ...

Obtaining Specimens with Slowed, Accelerated and Reversed Aging in the Honey Bee Model

Beziehen Proben mit verlangsamt, Beschleunigte und Umge Aging in der Honig-Bienen-Modell

Societies of highly social animals feature vast lifespan differences between closely related individuals. Among social insects, the honey bee is the best ...

Methods for Comparing Nutrients in Beebread Made by Africanized and European Honey Bees and the Effects on Hemolymph Protein Titers

Methoden zum Vergleich der Nährstoffe in Bienenbrot Hergestellt von Africanized und europäischen Honigbienen und die Auswirkungen auf die Hämolymphe Protein Titer

Honey bees obtain nutrients from pollen they collect and store in the hive as beebread. We developed methods to control the pollen source that bees ...

Dissection and Observation of Honey Bee Dorsal Vessel for Studies of Cardiac Function

Dissection und Beobachtung von Honey Bee Dorsal Schiff für Untersuchungen der Herzfunktion

The European honey bee, Apis mellifera L., is a valuable agricultural and commercial resource noted for producing honey and providing crop pollination ...

A Protocol for Using Gene Set Enrichment Analysis to Identify the Appropriate Animal Model for Translational Research

Ein Protokoll für die Verwendung von Gen Set Anreicherung Analyse zur Ermittlung von geeigneten Tiermodell für die translationale Forschung

Recent studies that compared transcriptomic datasets of human diseases with datasets from mouse models using traditional gene-to-gene comparison ...

Monitoring Colony-level Effects of Sublethal Pesticide Exposure on Honey Bees

Überwachung der Kolonie-Ebene Auswirkungen der subletalen Schädlingsbekämpfungsmittelbelichtung auf Honigbienen

The effects of sublethal pesticide exposure to honey bee colonies may be significant but difficult to detect in the field using standard visual assessment ...