Name: temperature-controlled assembly and characterization of a droplet interface bilayer
Uploaded: 2021-04-19T14:00:00
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Le soutien financier a été fourni par la subvention CBET-1752197 de la National Science Foundation et la subvention FA9550-19-1-0213 du Bureau de la recherche scientifique de la Force aérienne.

1. Préparation des appareils chauffés
<ol><li>Rassemblez 2 pièces de caoutchouc isolant de 1 mm d’épaisseur garnies de 25 mm x 40 mm de largeur et de longueur, respectivement, 2 pièces d’un caoutchouc de 6 mm d’épaisseur qui sont également de 25 mm x 40 mm, un ensemble de fixation de base en aluminium préparé et un réservoir d’huile acrylique qui s’insère dans la fenêtre d’observation de l’appareil de base en aluminium (voir les figures S1, S2 et S3 pour plus de détails sur l...

Le protocole décrit ici fournit des instructions pour l’assemblage et l’exploitation d’un système expérimental pour contrôler la température de l’huile et des gouttelettes utilisées pour former des DIB. Il est particulièrement bénéfique pour permettre la formation de DIB en utilisant des lipides qui ont des températures de fusion supérieures à RT. De plus, en faisant varier précisément la température du réservoir d’huile, la température bicouche peut être manipulée pour étudier les effets de...

Les membranes cellulaires sont des barrières sélectivement perméables composées de milliers de lipides de types1,de protéines, de glucides et de stérols qui encapsulent et subdivisent toutes les cellules vivantes. Comprendre comment leurs compositions affectent leurs fonctions et révéler comment les molécules naturelles et synthétiques interagissent avec, adhèrent, perturbent et transfèrent les membranes cellulaires sont, par conséquent, des domaines de recherche importants avec de vastes implications en biologie, médecine, chimie, physique et génie des matériaux.
Ces objectifs de découverte bénéficient directement de techniques éprouvées d’assemblage, de manipulation et d’étude de membranes modèles, y compris des bicouches lipidiques assemblées à partir de lipides synthétiques ou naturels, qui imitent la composition, la structure et les propriétés de transport de leurs homologues cellulaires. Ces dernières années, la méthode2,3,4 de la bicouche d’interface gouttelettes (DIB) pour la construction d’une bicouche lipidique plane entre des gouttelettes d’eau recouvertes de lipides dans l’huile a fait l’objet d’une attention significative5,6,7,8,9,10,11, 12,13,14, 15,16, 17, 18,19,20,21,22,23,et a démontré des avantages pratiques par rapport à d’autres approches pour la formation de membranes modèles: la méthode DIB est simple à réaliser, ne nécessite aucune fabrication ou préparation sophistiquée (par exemple, « peinture ») d’un substrat pour soutenir la membrane, donne constamment des membranes avec des membranes supérieures longévité, permet des mesures électrophysiologiques standard, et simplifie la formation de membranes modèles avec des compositions de feuillets asymétriques3. Parce que la bicouche se forme spontanément entre les gouttelettes et que chaque gouttelette peut être adaptée en position et en maquillage, la technique DIB a également suscité un intérêt considérable pour le développement de systèmes de matériaux inspirés des cellules qui s’appuient sur l’utilisation de membranes sensibles auxstimuli18,24,25, 26,27, 28,29,compartimentation et transport équilibrés14,30,31,et de matériaux tissulaires17,23,32,33,34,35,36.
La majorité des expériences publiées sur des membranes modèles, y compris celles avec des DIB, ont été réalisées à température ambiante (RT, ~20-25 °C) et avec une poignée de lipides synthétiques (p. ex. DOPC, DPhPC, etc.). Cette pratique limite la portée des questions biophysiques qui peuvent être étudiées dans les membranes modèles et, sur la base de l’observation, elle peut également restreindre les types de lipides qui peuvent être utilisés pour assembler les DIB. Par exemple, un lipide synthétique tel que dppc, qui a une température de fusion de 42 °C, n’assemble pas de monocouches serrées ni ne forme de DIB à RT37. La formation de DIB à température ambiante s’est également avérée difficile pour les extraits naturels, tels que ceux des mammifères (par exemple, l’extrait lipidique total du cerveau, BTLE)38 ou des bactéries (par exemple, l’extrait lipidique total d’Escherichia coli, ETLE)37, qui contiennent de nombreux types différents de lipides et proviennent de cellules qui résident à des températures élevées (37 ° C). L’étude de diverses compositions offre ainsi des occasions de comprendre les processus à médiation membranaire dans des conditions biologiquement pertinentes.
L’élévation de la température de l’huile peut servir à deux fins: elle augmente la cinétique de l’assemblage monocouche et elle peut provoquer une transition de fusion des lipides pour atteindre une phase de désordre liquide. Les deux conséquences facilitent l’assemblagemonocouche 39,un pré-requis pour un DIB. En plus du chauffage pour la formation de bicouches, le refroidissement de la membrane après la formation peut être utilisé pour identifier les transitions thermotropes dans les bicouches lipidiques simples38,y compris celles dans les mélanges lipidiques naturels (par exemple, BTLE) qui peuvent être difficiles à détecter en utilisant la calorimétrie. En plus d’évaluer les transitions thermotropes des lipides, la variation précise de la température du DIB peut être utilisée pour étudier les changements induits par la température dans la structure de la membrane38 et examiner comment la composition lipidique et la fluidité affectent la cinétique des espèces membranaires actives (par exemple, les peptides formant des pores et les protéines transmembranaires37),y compris les membranes modèles mammifères et bactériennes à une température physiologiquement pertinente (37 °C).
Ici, une description de la façon d’assembler un réservoir d’huile DIB modifié et de faire fonctionner un contrôleur de température de rétroaction pour permettre l’assemblage monocouche et la formation de bicouche à des températures supérieures à RT sera expliquée. À la différence d’un protocole précédent40,des détails explicites sont inclus concernant l’intégration de l’instrumentation nécessaire à la mesure et au contrôle de la température parallèlement à l’assemblage et à la caractérisation du DIB dans le réservoir d’huile. La procédure permettra ainsi à un utilisateur d’appliquer cette méthode pour former et étudier des DIB à travers une gamme de températures dans une variété de contextes scientifiques. De plus, les résultats représentatifs fournissent des exemples précis pour les types de changements mesurables dans la structure de la membrane et le transport des ions qui peuvent se produire lorsque la température varie. Ces techniques sont des ajouts importants aux nombreuses études biophysiques qui peuvent être conçues et réalisées efficacement dans les DIB, y compris l’étude de la cinétique des espèces membranaires actives dans différentes compositions membranaires.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr >
			<td >25 mm x 40 mm x 1 mm insulative rubber (x2)</td>
			<td >Any</td>
			<td ></td>
			<td >Insulates the bottom of the aluminum fixture from the stage of the microscope</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >25 mm x 40 mm x 6 mm insulative rubber (x2)</td>
			<td >Any</td>
			<td ></td>
			<td >Protects heating elements from being damaged by the microscope stage clips and insulates the top of the heating elements.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >3-(N-morpholino) propanesulfonic acid&#160;</td>
			<td >Sigma Aldrich</td>
			<td>M3183</td>
			<td >Buffering agent for lipid solution</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Acrylic substrate</td>
			<td >Fabricated in house</td>
			<td >HTD_STG_2</td>
			<td >~1000 uL acrylic well with a poka-yoke exterior profile to fix orientation</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Aluminum fixture</td>
			<td >Fabricated in house</td>
			<td >HTD_STG_1</td>
			<td >Base fixture with an oil well that holds the acylic fixture and includes two flat pads adjacent to the oil well for the heating elements&#160;</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Brain Total Lipid Extract</td>
			<td >Avanti</td>
			<td>131101C-100mg</td>
			<td >25 mg/mL porcine lipid extract&#160;</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Compact DAQ Chassis (cDAQ)</td>
			<td>National Instruments&#160;</td>
			<td>cDAQ-9174&#160;</td>
			<td >Chassis to house multiple types of sensor measurement or output modules</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Data Acquisition System (DAQ)</td>
			<td >Molecular Devices&#160;</td>
			<td>Digidata 1440A&#160;</td>
			<td >High resolution analog to digital converter</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Fixed gain amplifier/power supply</td>
			<td >Hewlitt Packard</td>
			<td >HP 6826A</td>
			<td >Amplifies DC voltage output from the voltage output module</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Glass Cover Slip</td>
			<td >Corning</td>
			<td>CLS284525</td>
			<td >Seals bottom of aluminum base and allows for optical characterization of the bilayer</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Heating element (x2)</td>
			<td >Omega</td>
			<td >KHLV-101/5</td>
			<td >25 mm x 25 mm polymide film kapton heating element with a 5 watt power limit.&#160;</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >M3 Stainless Steel Screw</td>
			<td >McMaster Carr</td>
			<td >90116A150</td>
			<td >Secures thermocouple to aluminum fixture</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Patch clamp amplifier</td>
			<td >Molecular Devices&#160;</td>
			<td>AxoPatch 200B&#160;</td>
			<td >Measures current and outputs voltage to the headstage</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Personal computer</td>
			<td >Any</td>
			<td></td>
			<td >Computer with mulitiple high speed usb ports and a minimum of 6 Gb of ram</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Potassium Chloride</td>
			<td >Sigma Aldrich</td>
			<td>P3911</td>
			<td >Electrolyte solution of dissociated ions</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Temperature input module</td>
			<td >National Instruments&#160;</td>
			<td >NI 9211</td>
			<td >Enables open and cold junction thermocouple measurements for the cDAQ chassis</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Thermocouple</td>
			<td >Omega</td>
			<td>JMTSS-020U-6&#160;</td>
			<td >U-type thermocouple with a diameter of 0.02 inches and 6 inches in length</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >UV Curable Adhesive</td>
			<td >Loctite</td>
			<td>19739</td>
			<td >Secures glass coverslip to aluminum base fixture</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Voltage output module</td>
			<td >National Instruments&#160;</td>
			<td >NI 9263</td>
			<td >Analog voltage output module for use with the cDAQ chassis</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Waveform generator</td>
			<td >Agilent</td>
			<td>33210A&#160;</td>
			<td >Used to output a 10 mV 10 Hz sinusoidal waveform</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

temperature-controlled assembly and characterization of a droplet interface bilayer

La méthode de bicouche d’interface de gouttelettes (DIB) pour assembler des bicouches lipidiques (c’est-à-dire des DIB) entre des gouttelettes aqueuses enrobées de lipides dans l’huile offre des avantages clés par rapport à d’autres méthodes: les DIB sont stables et souvent durables, la zone de la bicouche peut être réglée de manière réversible, l’asymétrie des feuillets est facilement contrôlée via des compositions de gouttelettes et des réseaux de bicouches ressemblant à des tissus peuvent être obtenus en attenant de nombreuses gouttelettes. La formation de DIB nécessite l’assemblage spontané de lipides en monocouches lipidiques de haute densité à la surface des gouttelettes. Bien que cela se produise facilement à température ambiante pour les lipides synthétiques courants, une monocouche suffisante ou une bicouche stable ne parvient pas à se former dans des conditions similaires pour les lipides avec des points de fusion au-dessus de la température ambiante, y compris certains extraits lipidiques cellulaires. Ce comportement a probablement limité les compositions — et peut-être la pertinence biologique — des DIB dans les études de membrane de modèle. Pour résoudre ce problème, un protocole expérimental est présenté pour chauffer soigneusement le réservoir d’huile hébergeant des gouttelettes DIB et caractériser les effets de la température sur la membrane lipidique. Plus précisément, ce protocole montre comment utiliser un appareil en aluminium thermoconducteur et des éléments chauffants résistifs contrôlés par une boucle de rétroaction pour prescrire des températures élevées, ce qui améliore l’assemblage monocouche et la formation de bicouche pour un ensemble plus large de types de lipides. Les caractéristiques structurelles de la membrane, ainsi que les transitions de phase thermotrope des lipides composant la bicouche, sont quantifiées en mesurant les changements de capacité électrique du DIB. Ensemble, cette procédure peut aider à évaluer les phénomènes biophysiques dans les membranes modèles à différentes températures, y compris la détermination d’une température de fusion efficace(TM)pour les mélanges lipidiques multicomposants. Cette capacité permettra ainsi une réplication plus étroite des transitions de phase naturelles dans les membranes modèles et encouragera la formation et l’utilisation de membranes modèles à partir d’une plus grande bande de constituants membranaires, y compris ceux qui capturent mieux l’hétérogénéité de leurs homologues cellulaires.

La figure 1 montre comment le luminaire en aluminium et le réservoir d’huile acrylique sont préparés sur l’étage du microscope pour la formation de DIB. Les étapes d’assemblage 1.2 à 1.4 servent à isoler thermiquement le luminaire de la scène pour un chauffage plus efficace. Les étapes 1.5 à 1.7 montrent comment fixer correctement le thermocouple au luminaire et positionner le réservoir d’huile, et les étapes 1.8 à 1.9 montrent les emplacements recommandés pour la distr...

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Temperature-Controlled Assembly and Characterization of a Droplet Interface Bilayer

Ce protocole détaille l’utilisation d’un système de chauffage à température contrôlée par rétroaction pour promouvoir l’assemblage de monocouche lipidique et la formation de bicouches d’interface de gouttelettes pour les lipides avec des températures de fusion élevées, ainsi que des mesures de capacité pour caractériser les changements induits par la température dans la membrane.

Ensemble à température contrôlée et caractérisation d’une bicouche d’interface de gouttelettes

The droplet interface bilayer (DIB) method for assembling lipid bilayers (i.e., DIBs) between lipid-coated aqueous droplets in oil offers key benefits ...

Ce protocole permet aux chercheurs de chauffer avec précision une membrane modèle à interface gouttelettes, ou DIB, qui permet d’étudier une variété d’effets liés à la température qui se produisent dans les environnements cellulaires. L’avantage fondamental provient de la capacité de mesurer et de contrôler localement la température du bain dans un réservoir à faible volume sans obstruer l’accès pour les caractérisations électriques ou optiques du DIB. La capacité de chauffer précisément le bain de fluide ouvre la possibilité d’étudier les propriétés de transport et de signalisation dans les DIB formés à partir d’une variété beaucoup plus large de constituants de la membrane, y compris des extraits cellulaires naturels.Il s’agit d’un protocole en plusieurs étapes tirant parti de plusieurs équipements qui doivent être suivis de près pour atteindre une précision expérimentale suffisante, de sorte que toute ambiguïté dans le processus écrit peut être clarifiée par une démonstration visuelle. Pour commencer, rassemblez deux morceaux de caoutchouc isolant d’un millimètre d’épaisseur garnis de 25 par 40 millimètres de longueur, deux morceaux d’un caoutchouc de six millimètres d’épaisseur qui mesurent également 25 par 40 millimètres, un ensemble de fixation de base en aluminium préparé et un réservoir d’huile acrylique qui s’insère dans la fenêtre d’observation du luminaire de base en aluminium. Placez les morceaux de caoutchouc les plus minces sur l’étage du microscope de sorte que le long bord de chaque pièce soit tangent à l’ouverture de l’étage.Placez le luminaire de base en aluminium sur les coussinets isolants avec la fenêtre de visualisation du luminaire centrée au-dessus de l’objectif. Placez un morceau de caoutchouc plus épais sur chaque élément chauffant résistif, puis utilisez un clip d’étage de microscope pour le maintenir en place afin de protéger les éléments chauffants des dommages causés par les clips de l’étage et d’isoler contre le court-circuit électrique accidentel. Pliez soigneusement l’extrémité de mesure d’un thermocouple pour obtenir un angle de 90 degrés à environ quatre millimètres de l’extrémité.Insérez la pointe pliue du thermocouple dans le coin inférieur gauche du luminaire en aluminium et fixez-le doucement avec une vis de verrouillage. Placez le réservoir acrylique dans le puits de l’appareil en aluminium avant d’ajouter de l’huile d’hexadécane au puits de l’appareil en aluminium afin de minimiser le risque de piégeage des bulles d’air entre la fenêtre d’observation et le fond du réservoir d’acrylique. Distribuez environ 1 000 microlitres d’huile d’hexadécane dans le puits de l’appareil en aluminium afin de fournir une surface maximale pour le transfert de chaleur tout en ne permettant pas à l’huile de déborder sur les bords de l’appareil sur l’étage du microscope ou la lentille de l’objectif.Distribuer environ 1 000 microlitres d’huile d’hexadécane dans le réservoir acrylique sans le remplir trop. Mesurer la capacité nominale de la membrane tout en abaissant la température du bain d’huile à partir d’un point de réglage qui permet la formation de bicouche pour identifier les transitions de phase thermotrope des lipides dans la membrane. Cliquez avec le bouton droit sur le graphique de température sur l’interface graphique et effacez les données d’affichage pour vous assurer que suffisamment d’espace dans la mémoire tampon est disponible pour les enregistrements suivants.À l’aide du générateur de forme d’onde connecté à l’amplificateur de serrage de raccordement, appliquez une forme d’onde de tension triangulaire à travers les électrodes de la bicouche d’interface gouttelette, ou DIB, et enregistrez la réponse de courant induite à travers la bicouche. Refroidissez la bicouche en réduisant la température de réglage par incréments de cinq degrés, en attendant un minimum de cinq minutes à la nouvelle température d’équilibre entre les changements de température jusqu’à ce que la température souhaitée soit atteinte. Après le bain d’huile et le refroidissement de la bicouche à la température minimale souhaitée, cliquez à nouveau avec le bouton droit sur le graphique de température dans l’interface graphique et exportez les données de température en fonction du temps vers un tableur.Arrêtez l’enregistrement en cours. À partir du courant mesuré, calculer la capacité nominale de la réponse du courant d’onde carrée en fonction du temps pendant la période de refroidissement. Tracez la capacité nominale par rapport à la température pour observer comment la capacité de la membrane a changé, puis localisez les changements non monotones de la capacité par rapport à la température pour identifier la température de fusion.De même, évaluez la capacité quasi statique spécifique de la bicouche à des températures fixes en incrémentant successivement la température du bain d’huile et de la zone bicouche. Modifiez la température de point de réglage par incréments de 10 degrés Celsius à l’aide de l’interface graphique et permettez au système de s’équilibrer à la nouvelle température. Effectuez les étapes décrites précédemment pour lancer la mesure du courant capacitif et l’enregistrement.Modifiez la zone bicouche en ajustant soigneusement les positions des électrodes à l’aide des micro manipulateurs. Permettre au courant d’onde carré d’atteindre une amplitude stable et collecter des images du DIB pour permettre le calcul de la surface de la membrane en fonction du temps. Utilisez une caméra montée au microscope pour imager la bicouche vue de l’ouverture.Ajoutez simultanément une balise numérique au logiciel d’enregistrement actuel pour marquer le point temporel correspondant pour la collecte d’images. Obtenez un total de cinq images DIB et des régions stables de courant bicouche, puis réinitialisez la température et répétez l’imagerie. Analyser les enregistrements actuels et les images DIB aux points de temps marqués correspondant aux zones bicouches à l’état stationnaire, extraire la capacité et la zone de la bicouche pour chaque température.Tracez la capacité en fonction de la surface pour chaque température et calculez la pente de la régression de premier ordre, qui représente la capacité spécifique de la bicouche à chaque température. Tracez ensuite les valeurs de capacité spécifique par rapport à leurs températures respectives. Examinez les données spécifiques de capacité par rapport à la température pour les variations non monotones afin d’identifier les températures de fusion.Évaluer la dynamique de la formation de canaux ioniques dépendant de la tension en générant une entrée de pas de tension continue à travers la bicouche. Réglez la tension initiale sur la valeur de pas souhaitée en millivolts et la tension finale et la taille de pas à une valeur supérieure à l’étape souhaitée. Définissez une durée souhaitée pour l’entrée pas à pas en secondes, puis choisissez la polarité souhaitée pour l’entrée pas à pas.Changez l’amplificateur de serrage de patch pour envoyer la tension de commande provenant de la vue de laboratoire ou du module de sortie de tension à l’étage principal, allumez la tension et enregistrez la réponse de courant induite, ce qui devrait inhiber une réponse en forme de S à une tension critique. Obtenir séparément des relations de tension de courant dynamique pour une membrane aux températures souhaitées pour révéler les relations dépendantes de la tension telles que les comportements des canaux ioniques. Changez l’amplificateur de serrage de patch pour envoyer la tension de commande provenant du générateur de forme d’onde à l’étage principal et lancer des enregistrements de courant.Sur le générateur de forme d’onde, extrayez une forme d’onde sinusoïdale continue avec une amplitude, un décalage et une fréquence souhaités. Enregistrez la réponse de courant induite sur un ou plusieurs cycles et répétez-la comme vous le souhaitez pour différentes amplitudes, fréquences et températures d’ondes sinusoïdales. Le système de contrôle de la température a été utilisé pour mettre en valeur la dépendance à la température d’un DIB formé à partir d’extrait lipidique total du cerveau, ou BTLE, lipides.Les mesures du courant capacitif et de la température en fonction du temps sont montrées au cours d’un cycle de chauffage allant de la température ambiante à environ 60 degrés Celsius. Les changements de capacité nominale par rapport à la température au cours d’un cycle complet de refroidissement/chauffage, après la formation initiale de la bicouche à 60 degrés Celsius, ont été documentés. Des mesures quasi statiques de la capacité spécifique à différentes températures peuvent être utilisées pour identifier la température de fusion des lipides.Le traçage de la capacité d’une zone bicouche par rapport à une zone bicouche permet une régression linéaire, où la pente représente la valeur de la capacité spécifique. L’image DIB montre que, lorsque la température est inférieure à la température de fusion, la membrane adopte un état hautement adhésif, même sous la tension des gouttelettes étirées causées par des électrodes bien séparées. Les traces de courant par rapport à tension montrées ont été obtenues en appliquant des tensions sinusoïdales de membrane, en mesurant le courant induit à deux températures différentes.Les flèches et les nombres suivants aident à visualiser les quarts successifs de la tension sinusoïdale par rapport au temps. La densité de courant mesurée pour une membrane BTLE dorment à la monazomycine au même niveau de tension et à deux températures différentes est indiquée ici. Il est crucial de distribuer correctement l’huile d’hexadécane dans le puits du luminaire en aluminium.Si cela se fait hors séquence ou pas soigneusement, des bulles d’air se formeront sous le puits acrylique, ce qui obstruera la vue ascendante du DIB. L’utilisateur doit également se rappeler d’effacer le tampon de données dans le logiciel de contrôle de la température avant chaque mesure pour assurer un enregistrement complet. Cette procédure permet de caractériser les membranes biomimétiques à travers une gamme de températures, ce qui est nécessaire pour étudier la dépendance à la température de la structure et du transport de la membrane.En outre, cette capacité pourrait être utilisée pour révéler les effets à l’échelle nanométrique d’autres espèces membranaires actives, telles que les canaux ioniques biologiques et les nanomatériaux manufacturés.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Synthesis, Assembly, and Characterization of Monolayer Protected Gold Nanoparticle Films for Protein Monolayer Electrochemistry

Synthèse, l&#39;Assemblée, et caractérisation des nanoparticules Monocouche protégées Films d&#39;or pour Electrochimie monocouche de protéines

Colloidal gold nanoparticles protected with alkanethiolate ligands called monolayer protected gold clusters (MPCs) are synthesized and subsequently ...

Recherche

Bio-ingénierie

Lipid Bilayer Vesicle Generation Using Microfluidic Jetting

Bicouche lipidique des vésicules génération utilisant microfluidique jets

Bottom-up synthetic biology presents a novel approach for investigating and reconstituting biochemical systems and, potentially, minimal organisms. This ...

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer (SALB) Method

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method

Biomembrane Fabrication par le solvant assistée bicouche lipidique (SALB) Méthode

In order to mimic cell membranes, the supported lipid bilayer (SLB) is an attractive platform which enables in vitro investigation of membrane-related ...

Fluorescence Recovery after Merging a Droplet to Measure the Two-dimensional Diffusion of a Phospholipid Monolayer

Récupération de fluorescence après Fusionner une Droplet mesurer la Diffusion bidimensionnelle d&#39;une monocouche de phospholipides

We introduce a new method to measure the lateral diffusivity of a surfactant monolayer at the fluid-fluid interface, called fluorescence recovery after ...

Automated Lipid Bilayer Membrane Formation Using a Polydimethylsiloxane Thin Film

Formation automatisée Lipid bicouche Membrane Utilisation d&#39;un Thin Film Polydiméthylsiloxane

An artificial lipid bilayer, or black lipid membrane (BLM), is a powerful tool for studying ion channels and protein interactions, as well as for ...

Micropatterning and Assembly of 3D Microvessels

Micromodelage et l&#39;Assemblée des microvaisseaux 3D

In vitro platforms to study endothelial cells and vascular biology are largely limited to 2D endothelial cell culture, flow chambers with polymer or glass ...

Ligand Nano-cluster Arrays in a Supported Lipid Bilayer

Nano-Ligand Arrays cluster dans un pris en charge Lipid bicouches

Currently there is considerable interest in creating ordered arrays of adhesive protein islands in a sea of passivated surface for cell biological ...

Fabrication and Characterization of Optical Tissue Phantoms Containing Macrostructure

Fabrication et caractérisation des fantômes de tissu optique contenant la Macrostructure

The rapid development of new optical imaging techniques is dependent on the availability of low-cost, customizable, and easily reproducible standards. By ...

Detection of Endotoxin in Nano-formulations Using Limulus Amoebocyte Lysate (LAL) Assays

Detection of Endotoxin in Nano-formulations Using Limulus Amoebocyte Lysate LAL Assays

Détection d’endotoxines dans les Nano-formulations utilisant la Limulus Amébocytes Lysate (LAL)

When present in pharmaceutical products, a Gram-negative bacterial cell wall component endotoxin (often also called lipopolysaccharide) can cause ...

Assembly and Characterization of Biomolecular Memristors Consisting of Ion Channel-doped Lipid Membranes

Assembly and Characterization of Biomolecular Memristors consistant en des Membranes lipidiques dopé au canal ionique

The ability to recreate synaptic functionalities in synthetic circuit elements is essential for neuromorphic computing systems that seek to emulate the ...