Name: temperature-controlled assembly and characterization of a droplet interface bilayer
Uploaded: 2021-04-19T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Temperature-Controlled Assembly and Characterization of a Droplet Interface Bilayer at JoVE.com

Økonomisk støtte ble gitt av National Science Foundation Grant CBET-1752197 og Air Force Office of Scientific Research Grant FA9550-19-1-0213.

1. Klargjøring av oppvarmet armatur
<ol><li>Samle 2 stykker av 1 mm tykk isolasjonsgummi trimmet til henholdsvis 25 mm x 40 mm i bredde og lengde, 2 deler av en 6 mm tykk gummi som også er 25 mm x 40 mm, en forberedt aluminiumsbasearmaturmontering og et akryloljereservoar som passer i visningsvinduet til aluminiumsbasearmaturen (se figur S1, S2 og S3 for detaljer om fabrikasjon og en eksplodert visning av montering). Forbered aluminiumsarmaturen først ved å feste til bunnen av armaturen et glassdek...

Protokollen som er beskrevet her, gir instruksjoner for montering og drift av et eksperimentelt system for å kontrollere temperaturen på oljen og dråpene som brukes til å danne DIBer. Det er spesielt gunstig for å muliggjøre DIB-dannelse ved hjelp av lipider som har smeltetemperaturer over RT. Videre, ved nøyaktig å variere temperaturen i oljereservoaret, kan bilayertemperaturen manipuleres for å studere effekten av forhøyede temperaturer på ulike membranegenskaper og egenskaper, inkludert kapasitans, område,...

Cellulære membraner er selektivt gjennomtrengelige barrierer som består av tusenvis av lipidtyper1, proteiner, karbohydrater og steroler som innkapsler og deler opp alle levende celler. Forstå hvordan deres komposisjoner påvirker deres funksjoner og avdekke hvordan naturlige og syntetiske molekyler samhandler med, holder seg til, forstyrrer og omfordeler cellulære membraner, er derfor viktige forskningsområder med vidtrekkende implikasjoner innen biologi, medisin, kjemi, fysikk og materialteknikk.
Disse målene for oppdagelse drar direkte nytte av velprøvde teknikker for montering, manipulering og studier av modellmembraner – inkludert lipid-bilayere samlet fra syntetiske eller naturlig forekommende lipider – som etterligner sammensetningen, strukturen og transportegenskapene til sine cellulære kolleger. I de senere år har dråpegrensesnittet bilayer (DIB) metode2,3,4 for å konstruere en planar lipidbilayer mellom lipidbelagte vanndråper i olje fått betydelig oppmerksomhet5,6,7,8,9,10,11,12,13,14,15,16,17,18,19,20,21,22,23, og har vist praktiske fordeler i forhold til andre tilnærminger for modellmembrandannelse: DIB-metoden er enkel å utføre, krever ingen sofistikert fabrikasjon eller forberedelse (f.eks. "maleri") av et substrat for å støtte membranen, gir konsekvent membraner med overlegen levetid, muliggjør standard elektrofysiologimålinger, og forenkler dannelsen av modellmembraner med asymmetriske brosjyresammensetninger3. Fordi bilayer dannes spontant mellom dråper og hver dråpe kan skreddersys i posisjon og sminke, DIB-teknikken har også tiltrukket seg betydelig interesse for å utvikle celleinspirerte materialsystemer som bygger på bruk av stimuli-responsive membraner18,24,25,26,27,28,29, balansert oppdeling og transport14,30,31og vevlignende materialer17,23,32,33,34,35 , 35 , 35 , 35 , 35 , 35 , 35 , 35 , 35 , 35 , 35 , 35 , 35 ,35.
De fleste publiserte eksperimenter på modellmembraner, inkludert de med DIB, har blitt utført ved romtemperatur (RT, ~ 20-25 °C) og med en håndfull syntetiske lipider (f.eks. DOPC, DPhPC, etc.). Denne praksisen begrenser omfanget av biofysiske spørsmål som kan studeres i modellmembraner, og basert på observasjon kan det også begrense hvilke typer lipider som kan brukes til å montere DIB. For eksempel monterer ikke en syntetisk lipid som DPPC, som har en smeltetemperatur på 42 °C, tettpakkede monolagre eller danner DIBer ved RT37. DIB-dannelse ved romtemperatur har også vist seg vanskelig for naturlige ekstrakter, for eksempel de fra pattedyr (f.eks. hjernetotal lipidekstrakt, BTLE)38 eller bakterier (f.eks. Escherichia coli total lipidekstrakt, ETLE)37, som inneholder mange forskjellige typer lipider og stammer fra celler som ligger ved forhøyede temperaturer (37 °C). Å muliggjøre studier av ulike komposisjoner gir dermed muligheter til å forstå membranmediert prosess under biologisk relevante forhold.
Å øke temperaturen på oljen kan tjene to formål: det øker kinetikken til monolayermontering, og det kan føre til at lipider gjennomgår en smeltende overgang for å nå en væskeforstyrrelsesfase. Begge konsekvensene hjelper i monolayer montering39, en forutsetning for en DIB. I tillegg til oppvarming for bilayerdannelse, kan kjøling av membranen etter formasjonen brukes til å identifisere termotrope overganger i enkle lipidbilayers38, inkludert de i naturlige lipidblandinger (f.eks. BTLE) som kan være vanskelig å oppdage ved hjelp av kalorimetri. Bortsett fra å vurdere termotrope overganger av lipider, kan nøyaktig varierende temperaturen på DIB brukes til å studere temperaturinduserte endringer imembranstruktur 38 og undersøke hvordan lipidsammensetning og fluiditet påvirker kinetikken til membranaktive arter (f.eks. poredannende peptider og transmembranproteiner37), inkludert pattedyr og bakterielle modellmembraner ved en fysiologisk relevant temperatur (37 °C).
Heri vil en beskrivelse av hvordan man monterer et modifisert DIB-oljereservoar og bruker en feedback-temperaturregulator for å muliggjøre monolayermontering og bilayerdannelse ved temperaturer høyere enn RT forklares. Skiller seg fra en tidligere protokoll40, er eksplisitt detalj inkludert om integrering av instrumentering som trengs for å måle og kontrollere temperaturen parallelt med montering og karakterisering av DIB i oljebeholderen. Prosedyren vil dermed gjøre det mulig for en bruker å anvende denne metoden for å danne og studere DIBer på tvers av en rekke temperaturer i en rekke vitenskapelige sammenhenger. Videre gir de representative resultatene konkrete eksempler på hvilke typer målbare endringer i både membranstruktur og iontransport som kan oppstå etter hvert som temperaturen varierer. Disse teknikkene er viktige tillegg til de mange biofysiske studiene som kan utformes og utføres effektivt i DIBer, inkludert å studere kinetikken til membranaktive arter i forskjellige membransammensetninger.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr >
			<td >25 mm x 40 mm x 1 mm insulative rubber (x2)</td>
			<td >Any</td>
			<td ></td>
			<td >Insulates the bottom of the aluminum fixture from the stage of the microscope</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >25 mm x 40 mm x 6 mm insulative rubber (x2)</td>
			<td >Any</td>
			<td ></td>
			<td >Protects heating elements from being damaged by the microscope stage clips and insulates the top of the heating elements.</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >3-(N-morpholino) propanesulfonic acid&#160;</td>
			<td >Sigma Aldrich</td>
			<td>M3183</td>
			<td >Buffering agent for lipid solution</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Acrylic substrate</td>
			<td >Fabricated in house</td>
			<td >HTD_STG_2</td>
			<td >~1000 uL acrylic well with a poka-yoke exterior profile to fix orientation</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Aluminum fixture</td>
			<td >Fabricated in house</td>
			<td >HTD_STG_1</td>
			<td >Base fixture with an oil well that holds the acylic fixture and includes two flat pads adjacent to the oil well for the heating elements&#160;</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Brain Total Lipid Extract</td>
			<td >Avanti</td>
			<td>131101C-100mg</td>
			<td >25 mg/mL porcine lipid extract&#160;</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Compact DAQ Chassis (cDAQ)</td>
			<td>National Instruments&#160;</td>
			<td>cDAQ-9174&#160;</td>
			<td >Chassis to house multiple types of sensor measurement or output modules</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Data Acquisition System (DAQ)</td>
			<td >Molecular Devices&#160;</td>
			<td>Digidata 1440A&#160;</td>
			<td >High resolution analog to digital converter</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Fixed gain amplifier/power supply</td>
			<td >Hewlitt Packard</td>
			<td >HP 6826A</td>
			<td >Amplifies DC voltage output from the voltage output module</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Glass Cover Slip</td>
			<td >Corning</td>
			<td>CLS284525</td>
			<td >Seals bottom of aluminum base and allows for optical characterization of the bilayer</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Heating element (x2)</td>
			<td >Omega</td>
			<td >KHLV-101/5</td>
			<td >25 mm x 25 mm polymide film kapton heating element with a 5 watt power limit.&#160;</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >M3 Stainless Steel Screw</td>
			<td >McMaster Carr</td>
			<td >90116A150</td>
			<td >Secures thermocouple to aluminum fixture</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Patch clamp amplifier</td>
			<td >Molecular Devices&#160;</td>
			<td>AxoPatch 200B&#160;</td>
			<td >Measures current and outputs voltage to the headstage</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Personal computer</td>
			<td >Any</td>
			<td></td>
			<td >Computer with mulitiple high speed usb ports and a minimum of 6 Gb of ram</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Potassium Chloride</td>
			<td >Sigma Aldrich</td>
			<td>P3911</td>
			<td >Electrolyte solution of dissociated ions</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Temperature input module</td>
			<td >National Instruments&#160;</td>
			<td >NI 9211</td>
			<td >Enables open and cold junction thermocouple measurements for the cDAQ chassis</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Thermocouple</td>
			<td >Omega</td>
			<td>JMTSS-020U-6&#160;</td>
			<td >U-type thermocouple with a diameter of 0.02 inches and 6 inches in length</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >UV Curable Adhesive</td>
			<td >Loctite</td>
			<td>19739</td>
			<td >Secures glass coverslip to aluminum base fixture</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Voltage output module</td>
			<td >National Instruments&#160;</td>
			<td >NI 9263</td>
			<td >Analog voltage output module for use with the cDAQ chassis</td>
		</tr>
		<tr >
			<td >Waveform generator</td>
			<td >Agilent</td>
			<td>33210A&#160;</td>
			<td >Used to output a 10 mV 10 Hz sinusoidal waveform</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

temperature-controlled assembly and characterization of a droplet interface bilayer

Dråpegrensesnittet bilayer (DIB) metode for montering av lipid bilayers (dvs. DIBs) mellom lipidbelagte vandige dråper i olje gir viktige fordeler i forhold til andre metoder: DIBer er stabile og ofte langvarige, bilayerområdet kan justeres reversibelt, brosjyreasymmetri kontrolleres lett via dråpesammensetninger, og vevslignende nettverk av bilayers kan oppnås ved å tilstøte mange dråper. Forming av DIBer krever spontan montering av lipider i lipidmonolayers med høy tetthet på overflatene av dråpene. Selv om dette skjer lett ved romtemperatur for vanlige syntetiske lipider, klarer ikke en tilstrekkelig monolayer eller stabil bilayer å danne seg under lignende forhold for lipider med smeltepunkter over romtemperatur, inkludert noen cellulære lipidekstrakter. Denne atferden har sannsynligvis begrenset sammensetningene – og kanskje den biologiske relevansen – av DIBer i modellmembranstudier. For å løse dette problemet presenteres en eksperimentell protokoll for å forsiktig varme oljereservoaret som er vert for DIB-dråper og karakterisere effekten av temperatur på lipidmembranen. Spesielt viser denne protokollen hvordan du bruker en termisk ledende aluminiumsarmatur og resistive varmeelementer styrt av en tilbakemeldingssløyfe for å foreskrive forhøyede temperaturer, noe som forbedrer monolayermontering og bilayerdannelse for et bredere sett med lipidtyper. Strukturelle egenskaper av membranen, samt de termotrope faseovergangene til lipidene som består av bilayeren, kvantifiseres ved å måle endringene i elektrisk kapasitans av DIB. Sammen kan denne prosedyren bidra til å evaluere biofysiske fenomener i modellmembraner over ulike temperaturer, inkludert å bestemme en effektiv smeltetemperatur (TM) for lipidblandinger med flere komponenter. Denne evnen vil dermed muliggjøre nærmere replikering av naturlige faseoverganger i modellmembraner og oppmuntre til dannelse og bruk av modellmembraner fra en bredere svor av membranbestanddeler, inkludert de som bedre fanger heterogeniteten til sine cellulære kolleger.

Figur 1 viser hvordan aluminiumsarmaturen og akryloljereservoaret fremstilles på mikroskopstadiet for DIB-dannelse. Monteringstrinn 1.2-1.4 tjener til å isolere armaturen termisk fra scenen for mer effektiv oppvarming. Trinn 1.5-1.7 viser hvordan du fester termoelementet riktig til armaturen og plasserer oljebeholderen, og trinn 1,8 -1,9 viser anbefalte steder for dispensering av olje i disse stykkene.
Figur 2 skisserer komponentene...

Watch this Scientific Journal Video about Temperature-Controlled Assembly and Characterization of a Droplet Interface Bilayer at JoVE.com

Temperature-Controlled Assembly and Characterization of a Droplet Interface Bilayer

Denne protokollen beskriver bruken av et feedback temperaturkontrollert varmesystem for å fremme lipid monolayer montering og dråpe grensesnitt bilayer formasjon for lipider med forhøyede smeltetemperaturer, og kapasitansmålinger for å karakterisere temperaturdrevne endringer i membranen.

Temperaturkontrollert montering og karakterisering av et dråpegrensesnitt Bilayer

The droplet interface bilayer (DIB) method for assembling lipid bilayers (i.e., DIBs) between lipid-coated aqueous droplets in oil offers key benefits ...

Denne protokollen gjør det mulig for forskere å nøyaktig varme opp et dråpegrensesnitt bilayer, eller DIB, modellmembran, som gjør det mulig å studere en rekke temperaturrelaterte effekter som oppstår i cellulære miljøer. Kjernefordelen stammer fra evnen til lokalt å måle og kontrollere badetemperaturen i et lavvolumreservoar uten å hindre tilgang til de elektriske eller optiske karakteriseringene av DIB. Evnen til å nøyaktig varme opp væskebadet låser opp muligheten til å studere transport- og signalegenskapene i DIBer dannet av et mye bredere utvalg av membranbestanddeler, inkludert naturlige cellulære ekstrakter.Dette er en flertrinnsprotokoll som utnytter flere utstyr som må følges nøye for å oppnå tilstrekkelig eksperimentell nøyaktighet, og dermed kan enhver tvetydighet i den skriftlige prosessen avklares via visuell demonstrasjon. For å begynne å samle to stykker av en millimeter tykk isolasjonsgummi trimmet til 25 x 40 millimeter i lengde, to stykker av en seks millimeter tykk gummi som også er 25 x 40 millimeter, en forberedt aluminiumsbasearmaturmontering og et akryloljereservoar som passer i visningsvinduet til aluminiumsbasearmaturen. Plasser de tynnere gummistykkene på mikroskopets stadium slik at den lange kanten på hvert stykke er tangensielt til sceneåpningen.Plasser aluminiumsbasearmaturen på toppen av de isolerende putene med visningsvinduet til armaturen sentrert over objektivlinsen. Plasser et tykkere stykke gummi på toppen av hvert resistivt varmeelement, og bruk deretter et mikroskoptrinnklemme for å holde det på plass for å beskytte varmeelementene mot skade forårsaket av sceneklemmene og for å isolere mot utilsiktet elektrisk kortslutning. Bøy forsiktig måleenden av en termokobling for å oppnå en 90-graders vinkel på omtrent fire millimeter fra enden.Sett den bøyde spissen av termoelementet inn i nedre venstre hjørne av aluminiumsarmaturen og fest den forsiktig med en låseskrue. Plasser akrylbeholderen i brønnen på aluminiumsarmaturen før du tilsetter heksadekanolje i brønnen på aluminiumsarmaturen for å minimere risikoen for å fange luftbobler mellom visningsvinduet og bunnen av akrylbeholderen. Dispenser ca. 1000 mikroliter heksadekanolje i brønnen på aluminiumsarmaturen for å gi et maksimalt overflateareal for varmeoverføring, samtidig som det ikke tillater olje å søle over kantene på armaturen på mikroskopstadiet eller objektivlinsen.Dispenser ca. 1000 mikroliter heksadekanolje i akrylbeholderen uten å overfylle den. Mål den nominelle kapasitansen av membranen mens du senker temperaturen på oljebadet fra et settpunkt som tillater bilayerdannelse å identifisere termotrope faseoverganger av lipidene i membranen. Høyreklikk temperaturgrafen på gui og tøm visningsdataene for å sikre at tilstrekkelig plass i bufferen er tilgjengelig for etterfølgende opptak.Bruk bølgeformgeneratoren som er koblet til patchklemmeforsterkeren, påfør en trekantet spenningsbølgeform over dråpegrensesnittet bilayer, eller DIB, elektroder og registrer den induserte strømresponsen gjennom bilayeren. Avkjøl bilayeren ved å redusere innstilt temperatur i femgraders intervaller, og vent minst fem minutter ved den nye steady-state-temperaturen mellom temperaturendringer til ønsket temperatur oppnås. Etter oljebadet og kjøling av bilayeren til ønsket minimumstemperatur, høyreklikker du temperaturgrafen i GUI igjen og eksporterer temperaturdataene kontra tid til en regnearkprogramvare.Stopp gjeldende innspilling. Fra den målte strømmen beregner du den nominelle kapasitansen til kvadratbølgestrømresponsen kontra tiden i avkjølingsperioden. Plott nominell kapasitans versus temperatur for å observere hvordan membranka kapasitansen endret seg, og finn deretter ikke-monotoniske endringer i kapasitans kontra temperatur for å identifisere smeltetemperatur.På samme måte kan du vurdere den kvasi statisk-spesifikke kapasitansen til bilayeren ved faste temperaturer ved å øke temperaturen på oljebadet og bilayerområdet. Endre innstilte punkttemperatur i trinn på 10 grader celsius ved hjelp av GUI og la systemet likevekte til den nye temperaturen. Utfør tidligere beskrevne trinn for å starte målingen av kapasitiv strøm og opptak.Endre bilayerområdet ved å justere elektrodenes posisjoner nøye ved hjelp av mikromanipulatorene. La den firkantede bølgestrømmen nå en steady state amplitude og samle bilder av DIB for å muliggjøre beregning av membranområde kontra tid. Bruk et kamera montert på mikroskopet for å avbilde bilayeren sett fra blenderåpningen.Legg samtidig til en digital tagg i gjeldende innspillingsprogramvare for å markere det tilsvarende tidspunktet for bildesamling. Få totalt fem DIB-bilder og steady-state-regioner med bilayerstrøm, tilbakestill deretter temperaturen og gjenta bildet. Analyser gjeldende opptak og DIB-bilder på de taggede tidspunktene som tilsvarer steady state bilayer-områder, trekk ut bilayer kapasitans og område for hver temperatur.Plott kapasitans kontra areal for hver temperatur og beregn hellingen av den første ordreregresjonen, som representerer den spesifikke kapasitansen til bilayeren ved hver temperatur. Deretter plott verdier av spesifikk kapasitans versus deres respektive temperaturer. Undersøk den spesifikke kapasitansen kontra temperaturdata for ikke-monotoniske variasjoner for å identifisere smeltetemperaturer.Vurder dynamikken i spenningsavhengig ionkanaldannelse ved å generere en DC spenningstrinninngang over bilayeren. Sett startspenningen til ønsket trinnverdi i millivolt og den endelige spenningen og trinnstørrelsen til en verdi som er høyere enn ønsket trinn. Angi ønsket varighetstid for trinninngangen i sekunder, og velg deretter ønsket polaritet for trinninngangen.Bytt patchklemmeforsterkeren for å sende kommandospenningen som stammer fra laboratorievisning eller spenningsutgangsmodul til hodetrinnet, slå på spenningen og registrer den induserte strømresponsen, som skal hemme en S-formet respons på en kritisk spenning. Oppnå dynamiske strømspenningsforhold separat for en membran ved ønskede temperaturer for å avdekke spenningsavhengige forhold som ionkanaloppførsel. Bytt patchklemmeforsterkeren for å sende kommandospenningen som stammer fra bølgeformgeneratoren til hodetrinnet og start strømopptak.På bølgeformgeneratoren sender du ut en kontinuerlig sinusformet bølgeform med ønsket amplitude, offset og frekvens. Registrer den induserte gjeldende responsen over en eller flere sykluser, og gjenta etter ønske for forskjellige sinusbølgeamplituder, frekvenser og temperaturer. Temperaturkontrollsystemet ble brukt til å vise frem temperaturavhengigheten til en DIB dannet av hjernens totale lipidekstrakt, eller BTLE, lipider.Målinger av kapasitiv strøm og temperatur kontra tid vises under en oppvarmingssyklus fra romtemperatur til ca. 60 grader Celsius. Endringer i nominell kapasitans versus temperatur over en komplett kjøle-/varmesyklus, etter første bilayerformasjon ved 60 grader Celsius, ble dokumentert. Kvasi-statiske målinger av spesifikk kapasitans ved forskjellige temperaturer kan brukes til å identifisere lipidsmeltingstemperatur.Plotting kapasitans av en bilayer versus bilayer område tillater en lineær regresjon, hvor skråningen representerer verdien av spesifikk kapasitans. DIB-bildet viser at når temperaturen er under smeltetemperaturen, vedtar membranen en svært klebende tilstand, selv under spenning fra strakte dråper forårsaket av godt separerte elektroder. Strømmen versus spenningssporene som ble vist ble oppnådd ved å bruke sinusformede membranspenninger, og målte den induserte strømmen ved to forskjellige temperaturer.Pilene og etterfølgende tall bidrar til å visualisere de etterfølgende kvartalene av sinusformet spenning med hensyn til tid. Den målte strømtettheten for en monazomycin-dopet BTLE-membran på samme spenningsnivå og to forskjellige temperaturer er vist her. Det er avgjørende å dispensere hexadekanoljen i brønnen på aluminiumsarmaturen riktig.Hvis dette gjøres ut av rekkefølge eller ikke nøye, vil luftbobler dannes under akrylbrønnen, noe som vil hindre nedenfra-og-opp-visningen av DIB. Brukeren må også huske å tømme databufferen i temperaturkontrollprogramvaren før hver måling for å sikre full registrering. Denne prosedyren gjør det mulig å karakterisere biomimetiske membraner over en rekke temperaturer, som er nødvendig for å studere temperaturavhengighet av membranstruktur og transport.I tillegg kan denne evnen brukes til å avdekke nanoskalaeffekter av andre membranaktive arter, for eksempel biologiske ionkanaler og konstruerte nanomaterialer.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Synthesis, Assembly, and Characterization of Monolayer Protected Gold Nanoparticle Films for Protein Monolayer Electrochemistry

Colloidal gold nanoparticles protected with alkanethiolate ligands called monolayer protected gold clusters (MPCs) are synthesized and subsequently ...

Lipid Bilayer Vesicle Generation Using Microfluidic Jetting

Lipidbllag Vesikkel Generation Bruke Microfluidic Spyling

Bottom-up synthetic biology presents a novel approach for investigating and reconstituting biochemical systems and, potentially, minimal organisms. This ...

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer (SALB) Method

Biomembrane Fabrication by the Solvent-assisted Lipid Bilayer SALB Method

Biomembranen Fabrication av Løsemiddel assistert lipidbilag (SalB) Metode

In order to mimic cell membranes, the supported lipid bilayer (SLB) is an attractive platform which enables in vitro investigation of membrane-related ...

Fluorescence Recovery after Merging a Droplet to Measure the Two-dimensional Diffusion of a Phospholipid Monolayer

Fluorescens Recovery etter Flette en Droplet Mål To-dimensjonal Diffusion of et fosfolipid med ett lag

We introduce a new method to measure the lateral diffusivity of a surfactant monolayer at the fluid-fluid interface, called fluorescence recovery after ...

Automated Lipid Bilayer Membrane Formation Using a Polydimethylsiloxane Thin Film

Automatisert lipid bilaget Membran Dannelse Ved hjelp av en Polydimethylsiloxane Thin Film

An artificial lipid bilayer, or black lipid membrane (BLM), is a powerful tool for studying ion channels and protein interactions, as well as for ...

Micropatterning and Assembly of 3D Microvessels

Micropatterning og montering av 3D microvessels

In vitro platforms to study endothelial cells and vascular biology are largely limited to 2D endothelial cell culture, flow chambers with polymer or glass ...

Ligand Nano-cluster Arrays in a Supported Lipid Bilayer

Ligand Nano-gruppe Arrays i et støttet lipidbilag

Currently there is considerable interest in creating ordered arrays of adhesive protein islands in a sea of passivated surface for cell biological ...

Fabrication and Characterization of Optical Tissue Phantoms Containing Macrostructure

Fabrikasjon og karakterisering av optisk vev Phantoms som inneholder Macrostructure

The rapid development of new optical imaging techniques is dependent on the availability of low-cost, customizable, and easily reproducible standards. By ...

Detection of Endotoxin in Nano-formulations Using Limulus Amoebocyte Lysate (LAL) Assays

Detection of Endotoxin in Nano-formulations Using Limulus Amoebocyte Lysate LAL Assays

Deteksjon av Endotoxin i Nano-formuleringer bruker Limulus Amoebocyte Lysate (LAL) analyser

When present in pharmaceutical products, a Gram-negative bacterial cell wall component endotoxin (often also called lipopolysaccharide) can cause ...

Assembly and Characterization of Biomolecular Memristors Consisting of Ion Channel-doped Lipid Membranes

Montering og karakterisering av Biomolecular Memristors bestående av Ion kanal-dopet Lipid membraner

The ability to recreate synaptic functionalities in synthetic circuit elements is essential for neuromorphic computing systems that seek to emulate the ...