Name: visualization and quantification of brown and beige adipose tissues in mice using [18f]fdg micro-pet/mr imaging
Uploaded: 2021-07-01T14:00:00
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Nous remercions le soutien de la National Natural Science Foundation of China (NSFC) - Excellent Young Scientists Fund (Hong Kong et Macao) (81922079), hongkongais Research Grants Council General Research Fund (GRF 17121520 et 17123419) et Hong Kong Research Grants Council Collaborative Research Fund (CRF C7018-14E) pour les expériences d’imagerie de petits animaux.

Le protocole décrit ci-dessous suit les directives de soins aux animaux de l’Université de Hong Kong. Les animaux utilisés dans l’étude étaient des souris C57BL/6J âgées de 8 semaines.
1. Interventions chirurgicales chez les animaux et provocation au froid
<ol><li>Effectuer une dissection interscapulaire BAT (iBAT).<ol>
<li>Anesthésier les souris par injection intrapéritonéale de kétamine/xylazine (100 mg/kg de kétamine au poids corporel et 10 mg/kg de xylazine au poids corpo...

<ol>
	<li>Rosen, E. D., Spiegelman, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=What+we+talk+about+when+we+talk+about+fat.">What we talk about when we talk about fat.</a> Cell. 156 (1-2), 20-44 (2014).</li><li>Cannon, B., Brown Nedergaard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=adipose+tissue:+function+and+physiological+significance.">adipose tissue: function and physiological significance.</a> Physiological Review. 84 (1), 277-359 (2004).</li><li>Jal Wu, ., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beige+adipocytes+are+a+distinct+type+of+thermogenic+fat+cell+in+mouse+and.">Beige adipocytes are a distinct type of thermogenic fat cell in mouse and.</a> 150 (2), 366-376 (2012).</li><li>Cypess, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activation+of+human+brown+adipose+tissue+by+a+beta3-adrenergic+receptor+agonist.">Activation of human brown adipose tissue by a beta3-adrenergic receptor agonist.</a> Cell Metabolism. 21 (1), 33-38 (2015).</li><li>Ishibashi, J., Seale, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beige+can+be+slimming.">Beige can be slimming.</a> Science. 328 (5982), 1113-1114 (2010).</li><li>Jal Schulz, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brown-fat+paucity+due+to+impaired+BMP+signalling+induces+compensatory+browning+of+white+fat.">Brown-fat paucity due to impaired BMP signalling induces compensatory browning of white fat.</a> Nature. 495 (7441), 379-383 (2013).</li><li>Pal Cohen, ., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ablation+of+PRDM16+and+beige+adipose+causes+metabolic+dysfunction+and+a+subcutaneous+to+visceral+fat+switch.">Ablation of PRDM16 and beige adipose causes metabolic dysfunction and a subcutaneous to visceral fat switch.</a> Cell. 156 (1-2), 304-316 (2014).</li><li>Mal Cypess, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+and+importance+of+brown+adipose+tissue+in+adult+humans.">Identification and importance of brown adipose tissue in adult humans.</a> New England Journal of Medicine. 360 (15), 1509-1517 (2009).</li><li>Aal vander Lans, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cold+acclimation+recruits+human+brown+fat+and+increases+nonshivering+thermogenesis.">Cold acclimation recruits human brown fat and increases nonshivering thermogenesis.</a> Journal of Clinical Investigation. 123 (8), 3395-3403 (2013).</li><li>Jal Hanssen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Short-term+cold+acclimation+improves+insulin+sensitivity+in+patients+with+type+2+diabetes+mellitus.">Short-term cold acclimation improves insulin sensitivity in patients with type 2 diabetes mellitus.</a> Nature Medicine. 21 (8), 863-865 (2015).</li><li>Wang, X., Minze, L. J., Shi, Z. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+imaging+of+brown+fat+in+mice+with+18F-FDG+micro-PET/CT.">Functional imaging of brown fat in mice with 18F-FDG micro-PET/CT.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. 69, (2012).</li><li>Greenwood, H. E., Nyitrai, Z., Mocsai, G., Hobor, S., Witney, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+PET/CT+imaging+using+a+multiple-mouse+imaging+system.">High-throughput PET/CT imaging using a multiple-mouse imaging system.</a> Journal of Nuclear Medicine: Official Publication, Scoiety of Nuclear Medicine. 61 (2), 292-297 (2020).</li><li>Carter, L. M., Henry, K. E., Platzman, A., Lewis, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=3D-printable+platform+for+high-throughput+small-animal+imaging.">3D-printable platform for high-throughput small-animal imaging.</a> Journal of Nuclear Medicine: Official Publication, Scoiety of Nuclear Medicine. 61 (11), 1691-1692 (2020).</li><li>Jal Andersson, ., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimating+the+cold-induced+brown+adipose+tissue+glucose+uptake+rate+measured+by+(18)F-FDG+PET+using+infrared+thermography+and+water-fat+separated+MRI.">Estimating the cold-induced brown adipose tissue glucose uptake rate measured by (18)F-FDG PET using infrared thermography and water-fat separated MRI.</a> Scientific Reports. 9 (18), 12358 (2019).</li><li>Eal Lundstrom, ., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brown+adipose+tissue+estimated+with+the+magnetic+resonance+imaging+fat+fraction+is+associated+with+glucose+metabolism+in+adolescents.">Brown adipose tissue estimated with the magnetic resonance imaging fat fraction is associated with glucose metabolism in adolescents.</a> Pediatric Obesity. 14 (9), (2019).</li><li>Eal Lundstrom, ., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnetic+resonance+imaging+cooling-reheating+protocol+indicates+decreased+fat+fraction+via+lipid+consumption+in+suspected+brown+adipose+tissue.">Magnetic resonance imaging cooling-reheating protocol indicates decreased fat fraction via lipid consumption in suspected brown adipose tissue.</a> PLoS One. 10 (4), 0126705 (2015).</li><li>Nakamura, Y., Yanagawa, Y., Morrison, S. F., Nakamura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Medullary+reticular+neurons+mediate+neuropeptide+Y-induced+metabolic+inhibition+and+mastication.">Medullary reticular neurons mediate neuropeptide Y-induced metabolic inhibition and mastication.</a> Cell Metabolism. 25 (2), 322-334 (2017).</li><li>Jal Fueger, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+animal+handling+on+the+results+of+18F-FDG+PET+studies+in+mice.">Impact of animal handling on the results of 18F-FDG PET studies in mice.</a> Journal of Nuclear Medicine: Official Publication, Scoiety of Nuclear Medicine. 47 (6), 999-1006 (2006).</li><li>Vines, D. C., Green, D. E., Kudo, G., Keller, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+mouse+tail-vein+injections+both+qualitatively+and+quantitatively+on+small-animal+PET+tail+scans.">Evaluation of mouse tail-vein injections both qualitatively and quantitatively on small-animal PET tail scans.</a> Journal of Nuclear Medicine Technology. 39 (4), 264-270 (2011).</li></ol>

Dans cette étude, une imagerie et une quantification basées sur la TEP/IRM du tissu adipeux brun et beige fonctionnel chez un petit animal ont été décrites. Cette méthode utilise l’analogue du glucose non métabolisable [18F]FDG comme biomarqueur d’imagerie afin d’identifier les tissus adipeux à forte demande en glucose de manière non invasive. L’IRM offre un bon contraste des tissus mous et peut mieux différencier les tissus adipeux des tissus mous et des muscles voisins. Lorsqu’il est comb...

En réponse à l’évolution des besoins nutritionnels, le tissu adipeux sert de cache énergétique pour adopter soit le mode de stockage des lipides, soit le mode de mobilisation pour répondre aux besoins du corps1. De plus, le tissu adipeux joue également un rôle clé dans la thermorégulation, via un processus appelé thermogenèse non frissonnante, également appelée thermogenèse facultative. Ceci est généralement réalisé par le tissu adipeux brun (BAT), qui exprime un niveau abondant de protéine de découplage de la protéine membranaire mitochondriale 1 (UCP1). En tant que vecteur de protons, UCP1 génère de la chaleur en découplant le transport de protons et la production d’ATP2. Lors de la stimulation par le froid, la thermogenèse dans les MTD est déclenchée par l’activation du système nerveux sympathique (SNS), suivie de la libération de noradrénaline (NE). NE se lie aux récepteurs adrénergiques β3 et conduit à une élévation de l’AMP cyclique intracellulaire (AMPc). En conséquence, l’engagement dépendant de l’AMPc/PKA du CREB (cAMP response element-binding protein) stimule la transcription Ucp1 via une liaison directe sur les éléments de réponse CREB (CRE)2. En plus des BAT, les adipocytes bruns se trouvent également dans le tissu adipeux blanc et sont donc appelés cellules beiges ou brite (brun-en-blanc)1,3. En réponse à des stimuli spécifiques (tels que le froid), ces cellules beiges autrement quiescentes sont remodelées pour présenter de multiples caractéristiques brunes, y compris des gouttelettes lipidiques multiloculaires, des mitochondries densément emballées et une expression augmentée d’UCP13,4,5.
Des études animales ont démontré que les adipocytes bruns et beiges possèdent de multiples avantages métaboliques au-delà de son effet de réduction des graisses, y compris la sensibilisation à l’insuline, l’abaissement des lipides, l’anti-inflammation et l’anti-athérosclérose6,7. Chez l’homme, la quantité de graisse beige/brune est inversement corrélée à l’âge, à l’indice de résistance à l’insuline et aux troubles cardiométaboliques8. De plus, l’activation des adipocytes beiges/bruns chez l’homme par acclimatation au froid ou par agoniste des récepteurs adrénergiques β3 confère une protection contre une série de troubles métaboliques4,9,10. Ces éléments de preuve indiquent collectivement que l’induction du tissu adipeux brun et beige est une stratégie thérapeutique potentielle pour la prise en charge de l’obésité et de ses complications médicales connexes8.
Fait intéressant, bien qu’ils partagent une fonction similaire, les adipocytes beiges et bruns classiques sont dérivés de précurseurs différents et activés par des mécanismes qui se chevauchent mais sont distincts1. Par conséquent, l’imagerie in vivo et la quantification des adipocytes bruns et beiges sont essentielles pour mieux comprendre le contrôle moléculaire de ces tissus adipeux. Actuellement, la tomographie par émission de positons (TEP) 18F-fluorodésoxyglucose ([18F]FDG) combinée à la tomodensitométrie (TDM) reste la référence en matière de caractérisation des cellules thermogéniques brunes et beiges dans les études cliniques8. L’imagerie par résonance magnétique (IRM) utilise de puissants champs magnétiques et des impulsions de radiofréquence pour produire des structures anatomiques détaillées. Par rapport à la tomodensitométrie, l’IRM génère des images d’organes et de tissus mous avec une résolution plus élevée. Voici un protocole de visualisation et de quantification des adiposes fonctionnelles brunes et beiges dans des modèles murins après acclimatation à l’exposition au froid, un moyen courant et le plus fiable d’induire un brunissement adipeux. Cette méthode peut être appliquée pour caractériser les dépôts adipeux thermogéniques dans des modèles de petits animaux avec une grande précision.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% sterile saline</td>
			<td>BBraun</td>
			<td></td>
			<td>0.9% sodium chloride intravenous infusion, 500 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 mL syringe</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SS05L</td>
			<td>5 mL syringe Luer Lock</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dose Calibrator</td>
			<td>Biodex</td>
			<td></td>
			<td>Atomlab 500</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye lubricant</td>
			<td>Alcon Duratears</td>
			<td></td>
			<td>Sterile ocular lubricant ointment, 3.5 g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin syringe</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>10ME2913</td>
			<td>1 mL insulin syringe with needle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>InterView Fusion software</td>
			<td>Mediso</td>
			<td>Version 3.03</td>
			<td>Post-processing and image analysis software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Chanelle Pharma</td>
			<td></td>
			<td>Iso-Vet, inhalation anesthetic, 250 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine</td>
			<td>Alfasan International B.V.</td>
			<td>HK-37715</td>
			<td>Ketamine 10% injection solution, 10 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medical oxygen</td>
			<td>Linde HKO</td>
			<td>101-HR</td>
			<td>compressed gas, 99.5% purity</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Metacam</td>
			<td>Boehringer Ingelheim</td>
			<td></td>
			<td>5 mg/mL Meloxicam solution for injection for dogs and cats, 10 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>nanoScan PET/MR Scanner</td>
			<td>Mediso</td>
			<td></td>
			<td>3 Tesla MR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nucline nanoScan software</td>
			<td>Mediso</td>
			<td>Version 3.0</td>
			<td>Scanner operating software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wound clips</td>
			<td>Reflex 7</td>
			<td>203-100</td>
			<td>7mm Stainless steel wound clips, 20 clips</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine</td>
			<td>Alfasan International B.V.</td>
			<td>HK-56179</td>
			<td>Xylazine 2% injection solution, 30 mL</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

visualization and quantification of brown and beige adipose tissues in mice using [18f]fdg micro-pet/mr imaging

Les adipocytes bruns et beiges sont maintenant reconnus comme des cibles thérapeutiques potentielles pour l’obésité et les syndromes métaboliques. Les méthodes d’imagerie moléculaire non invasives sont essentielles pour fournir des informations essentielles sur ces dépôts adipeux thermogéniques. Ici, le protocole présente une méthode basée sur l’imagerie TEP/IRM pour évaluer l’activité des adipocytes bruns et beiges dans le tissu adipeux brun interscapulaire (iBAT) de souris et le tissu adipeux blanc sous-cutané inguinal (iWAT). La visualisation et la quantification des dépôts adipeux thermogéniques ont été réalisées en utilisant [18F]FDG, l’analogue du glucose non métabolisable, comme radiotraceur, lorsqu’ils sont combinés avec les informations anatomiques précises fournies par imagerie par résonance magnétique. L’imagerie TEP/RM a été réalisée 7 jours après l’acclimatation au froid et la quantification du signal [18F]FDG dans différents dépôts adipeux a été réalisée pour évaluer la mobilisation relative des tissus adipeux thermogéniques. L’élimination de l’iBAT a considérablement augmenté l’absorption de [18F]FDG évoquée par le froid dans l’iWAT des souris.

Trois groupes de souris (n = 3 par groupe) ont subi une imagerie micro-TEP/IRM dans cette étude, où elles ont été logées à la thermoneutralité (30 °C) ou au froid (6 °C) pendant 7 jours. Un groupe de souris (n = 3) a vu son iBAT retiré (iBATx) avant le traitement par le froid (Figure 1A). Cette méthode a conduit à une altération de l’activité du tissu adipeux blanc chez les trois souris. En particulier, une augmentation remarquable de l’absorption de [18F]FDG a ?...

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Visualization and Quantification of Brown and Beige Adipose Tissues in Mice using [18F]FDG Micro-PET/MR Imaging

Imagerie fonctionnelle et quantification des dépôts adipeux thermogéniques chez la souris à l’aide d’une approche basée sur l’imagerie micro-TEP/IRM.

Visualisation et quantification des tissus adipeux bruns et beiges chez la souris à l’aide de l’imagerie micro-PET/MR [18F]FDG

Brown and beige adipocytes are now recognized as potential therapeutic targets for obesity and metabolic syndromes. Non-invasive molecular imaging methods ...

L’imagerie TEP/RM permet des mesures qualitatives et quantitatives sur ces adipocytes bruns et beiges métaboliquement actifs chez des animaux vivants afin que l’activité de ces adipocytes dits thermogéniques puisse être mesurée sur une base fonctionnelle. Le principal avantage de cette technique est qu’elle permet l’acquisition et la combinaison de TEP et d’IRM sur le même sujet, permettant ainsi l’acquisition précise et simultanée d’adipocytes thermogéniques dans différents dépôts du petit animal. Cette méthode peut être facilement transférée dans n’importe quel système préclinique ou modifiée dans un format à haut débit en imageant simultanément plusieurs souris, augmentant ainsi la puissance statistique des données d’imagerie à un coût et un temps réduits.Pour prélever le tissu adipeux brun interscapulaire, placez une souris C57 Black 6 anesthésiée de 8 semaines sur un coussin chauffant et faites une incision de 2 centimètres le long de la ligne médiane dorsale. Retirez les tampons iBAT de la région interscapulaire. Une fois le saignement arrêté, utilisez des clips de plaie en acier inoxydable de 7 millimètres pour fermer l’incision.Lorsque tous les iBAT ont été collectés, hébergez les souris dans une unité de soins intensifs pendant 14 jours. Administrer 5 milligrammes par kilogramme de méloxicam aux souris pendant six jours et retirer les clips dès que la plaie est guérie. Pour activer les scans TEP/MR séquentiels automatisés avant la session d’imagerie, réglez le niveau de discrimination sur 400 à 600 kiloélectrons-volts, le mode de confiance sur 1-3, le temps de balayage sur 20 minutes et l’isotope de l’étude sur F-18 pour définir le flux de travail pour l’acquisition PET.Pour acquérir une résonance magnétique pondérée T1 pour la correction de l’atténuation, définissez les paramètres Gradient Echo-3D. Pour acquérir la résonance magnétique pondérée T2 comme référence anatomique, définissez les paramètres Fast-spin Echo 2D. Pour permettre la reconstruction des images PET, utilisez l’algorithme 3D Tera-Tomo avec le mode coïncidence défini sur 1-3 et avec les corrections de désintégration, de temps mort, aléatoires, d’atténuation et de dispersion définies pour créer des images avec une taille globale de voxel de 0,3 millimètre cube.Un jour avant le début de l’étude d’imagerie pour vérifier la précision de la quantification du PET, mettez l’EPI approprié et remplissez une seringue de 5 millilitres avec du F18-FDG tel que recommandé par le fabricant. Utilisez un calibrateur de dose pour enregistrer l’activité de la seringue et noter l’heure de la mesure. Dans le logiciel, utilisez le retour sur investissement de l’ellipse interpolée pour tirer un volume d’intérêt sur l’image reconstruite de la seringue et comparer l’activité récupérée à la valeur mesurée à l’aide de l’étalonneur de dose.Le jour de l’expérience d’imagerie, utilisez des pinces pour placer soigneusement le flacon de base 18F-FDG derrière un bouclier de table en bloc L et diluer une aliquote de radio-isotope dans 100 à 150 microlitres de solution saline stérile à une concentration d’activité totale de 200 à 250 microcuries. Aspirer la solution de 18F-FDG dans une seringue de 1 millilitre équipée d’une aiguille et mesurer la radioactivité avec l’étalonneur de dose comme démontré. Enregistrez le poids de la souris à imager avant d’injecter la solution 18F-FDG dans une veine caudale.Prenez note du temps d’injection et de la radioactivité résiduelle de la seringue pour permettre la correction de la carie. Replacez ensuite la souris dans sa cage pendant 60 minutes. Pour calculer l’activité 18F-FDG injectée, soustrayez l’activité dans la seringue avant l’injection de l’activité mesurée après l’injection.À la fin de la période d’absorption des radio-isotopes, allumez le réchauffeur d’air pour le lit de souris du scanner micro-PET/MR. Placez la souris anesthésiée injectée de FDG sur une coussinet respiratoire dans le lit du scanner et effectuez une vue éclaireuse pour déterminer la position de la souris. Ajustez la position du lit de souris de manière à ce que tout le corps puisse être observé, en veillant à ce que le centre du champ de vision de l’IRM coïncide avec le centre du corps.Sous Acquisition PET, sélectionnez Plage de balayage lors de l’acquisition précédente pour utiliser la position de vue scout et cliquez sur Préparer pour déplacer le lit d’animaux de MR à PET. Sélectionnez OK pour lancer l’analyse TEP. Enregistrez la dose d’injection et le temps mesurés avant et après l’administration de 18F-FDG dans l’éditeur radiopharmaceutique et entrez le poids de la souris dans le menu Informations sur le sujet.Une fois la TEP terminée, sélectionnez Préparer le passage à l’imagerie par résonance magnétique et terminer toutes les acquisitions par RM dans la fenêtre de la liste d’études. Sélectionnez OK pour démarrer les analyses MR. Une fois l’ensemble du flux de travail terminé, évaluez brièvement la qualité des images MR acquises dans le logiciel de post-traitement et cliquez sur Accueil pour déplacer le lit de la souris de MR à la position d’origine.Lorsque toutes les souris ont été imagées, pour reconstruire les données dans le menu Raw Scan, sélectionnez PET Acquisition pour charger la TEP terminée et sélectionnez Acquisition MR pondérée T1 pour permettre la création d’une carte de matériau. Utilisez ensuite l’algorithme 3D Tera-Tomo pour reconstruire les données comme démontré. L’élimination de l’iBAT avant le traitement par le froid modifie l’activité de l’iWAT, comme l’indique l’augmentation remarquable de l’absorption de 18F-FDG observée dans l’iWAT par imagerie micro-PET/MR.En outre, les adipocytes multiloculaires, qui sont typiquement observés dans le tissu adipeux beige, sont plus prononcés dans l’iWAT de souris après l’ablation de l’iBAT par rapport à la morphologie adipocytaire observée dans l’iWAT chez les animaux opérés par simulacre. Les souris opérées à froid et opérées par simulacre présentent une absorption nettement élevée de 18F-FDG dans l’iBAT. Les souris dont l’iBAT a été retiré avant le traitement par le froid présentent l’absorption la plus élevée de 18F-FDG dans l’iWAT.En effet, l’exposition au froid entraîne une multiplication par sept de l’absorption de 18F-FDG dans l’iBAT des souris opérées par simulacre, tandis que l’élimination de l’iBAT chez les souris induites par le froid entraîne une multiplication par huit de l’absorption de 18F-FDG par rapport aux souris thermo-neutres chez lesquelles seule une augmentation modeste de deux fois est observée. Lorsque vous tentez cette procédure, il est important de placer chaque souris dans la même position pour chaque acquisition TEP/IRM afin d’améliorer la visualisation et la quantification des adipocytes bruns et beiges dans différentes régions. En utilisant cette méthode et avec d’autres méthodes d’IRM, telles que la diffusion par imagerie ou thermométrie, plus d’informations sur la distribution spatiale et la prévalence des adipocytes bruns et beiges chez la souris peuvent commencer, ce qui peut potentiellement être traduit chez l’homme.Cette méthode permet aux chercheurs d’étudier la fonction de ces adipocytes thermogéniques bruns et beiges. Par conséquent, ils sont particulièrement puissants lors de l’étude des voies thermogéniques non cliniques dans lesquelles ces marqueurs classiques ne sont pas modifiés ou régulés à la hausse.

Research

JoVE Journal

Biology

Visualization and Quantification of Brown and Beige Adipose Tissues in Mice using [18F]FDG Micro-PET/MR Imaging

Functional Imaging of Brown Fat in Mice with 18F-FDG micro-PET/CT

Functional Imaging of Brown Fat in Mice with 18F-FDG micro-PET/CT

Imagerie fonctionnelle de la graisse brune chez les souris avec FDG micro-PET/CT

Brown adipose tissue (BAT) differs from white adipose  tissue (WAT) by its discrete location and a brown-red color due to rich  vascularization and high ...

Recherche

Biologie

Visualization and Quantification of Mesenchymal Cell Adipogenic Differentiation Potential with a Lineage Specific Marker

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A Comprehensive Protocol for Acinetobacter Biofilm Quantification, Assessment, and Visualization (Video) | JoVE

Stratégies de quantification, d’évaluation de la viabilité et de visualisation des biofilms d’Acinetobacter

Acinetobacter causes nosocomial infections and its biofilm formation can contribute to the survival on dry surfaces such as hospital environments. Thus, ...