Name: a protocol for roux-en-y gastric bypass in rats using linear staplers
Uploaded: 2021-08-21T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Protocol for Roux-en-Y Gastric Bypass in Rats using Linear Staplers at JoVE.com

Cette étude a été financée par l’American Society for Metabolic and Bariatric Surgery Research Award. Ethicon a gracieusement fourni des sutures, des agrafeuses et des clips. La recherche doctorale de l’auteur principal a été financée par le programme de cliniciens-chercheurs de l’Université de l’Alberta et la bourse de cliniciens Alberta Innovates. Nous tenons également à remercier Michelle Tran pour son illustration médicale de l’anatomie RYGB.

Les protocoles d’utilisation des animaux ont été approuvés par le Health Science Animal Care and Use Committee de l’Université de l’Alberta (AUP00003000). Voir la figure 1 pour un diagramme illustrant l’anatomie du RYGB.
1. Pontage gastrique de Roux-en-Y
<ol><li>Préparation des animaux et installation opératoire<ol>
<li>Une semaine avant la chirurgie, fournir aux rats une thérapie de réhydratation orale et un régime liquide en plus de leur régi...

<ol>
	<li>Courcoulas, A. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-year+outcomes+of+bariatric+surgery+vs+lifestyle+intervention+for+type+2+diabetes+mellitus+treatment.">Three-year outcomes of bariatric surgery vs lifestyle intervention for type 2 diabetes mellitus treatment.</a> JAMA Surgery. 15213 (10), 1-9 (2015).</li><li>Ardestani, A., Rhoads, D., Tavakkoli, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insulin+cessation+and+diabetes+remission+after+bariatric+surgery+in+adults+with+insulin-treated+type+2+diabetes.">Insulin cessation and diabetes remission after bariatric surgery in adults with insulin-treated type 2 diabetes.</a> Diabetes Care. 38 (4), 659-664 (2015).</li><li>Casella, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ten-year+duration+of+type+2+diabetes+as+prognostic+factor+for+remission+after+sleeve+gastrectomy.">Ten-year duration of type 2 diabetes as prognostic factor for remission after sleeve gastrectomy.</a> Surgery for Obesity and Related Diseases. 7 (6), 697-702 (2011).</li><li>Panunzi, S., De Gaetano, A., Carnicelli, A., Mingrone, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Predictors+of+remission+of+diabetes+mellitus+in+severely+obese+individuals+undergoing+bariatric+surgery.">Predictors of remission of diabetes mellitus in severely obese individuals undergoing bariatric surgery.</a> Annals of Surgery. 261 (3), 459-467 (2015).</li><li>Edelman, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+type+2+diabetes+after+1+year+of+laparoscopic+adjustable+gastric+banding+in+the+helping+evaluate+reduction+in+obesity+(HERO)+study.">Control of type 2 diabetes after 1 year of laparoscopic adjustable gastric banding in the helping evaluate reduction in obesity (HERO) study.</a> Diabetes, Obesity and Metabolism. 16 (10), 1009-1015 (2014).</li><li>Mingrone, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metabolic+surgery+versus+conventional+medical+therapy+in+patients+with+type+2+diabetes:+10-year+follow-up+of+an+open-label,+single-centre,+randomised+controlled+trial.">Metabolic surgery versus conventional medical therapy in patients with type 2 diabetes: 10-year follow-up of an open-label, single-centre, randomised controlled trial.</a> The Lancet. 397 (10271), 293-304 (2021).</li><li>Thaler, J. P., Cummings, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Minireview:+Hormonal+and+metabolic+mechanisms+of+diabetes+remission+after+gastrointestinal+surgery.">Minireview: Hormonal and metabolic mechanisms of diabetes remission after gastrointestinal surgery.</a> Endocrinology. 150 (6), 2518-2525 (2009).</li><li>Mingrone, G., Castagneto-Gissey, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanisms+of+early+improvement+/+resolution+of+type+2+diabetes+after+bariatric+surgery.">Mechanisms of early improvement / resolution of type 2 diabetes after bariatric surgery.</a> Diabetes and Metabolism. 35 (6), 518-523 (2009).</li><li>Arapis, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remodeling+of+the+residual+gastric+mucosa+after+Roux-en-Y+gastric+bypass+or+vertical+sleeve+gastrectomy+in+diet-induced+obese+rats.">Remodeling of the residual gastric mucosa after Roux-en-Y gastric bypass or vertical sleeve gastrectomy in diet-induced obese rats.</a> PloS One. 10 (3), 012414 (2015).</li><li>Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+models+of+Roux-en-Y+gastric+bypass+surgery+and+sleeve+gastrectomy+in+rats+and+mice.">Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice.</a> Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).</li><li>Bueter, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Roux-en-Y+gastric+bypass+operation+in+rats+protocol.">Roux-en-Y gastric bypass operation in rats protocol.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. (64), (2012).</li><li>Stevenson, M., Lee, J., Lau, R. G., Brathwaite, C. E. M., Ragolia, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+mouse+models+of+vertical+sleeve+gastrectomy+and+Roux-en+Y+gastric+bypass:+a+Review.">Surgical mouse models of vertical sleeve gastrectomy and Roux-en Y gastric bypass: a Review.</a> Obesity Surgery. , (2019).</li><li>Hao, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reprogramming+of+defended+body+weight+after+Roux-En-Y+gastric+bypass+surgery+in+diet-induced+obese+mice.">Reprogramming of defended body weight after Roux-En-Y gastric bypass surgery in diet-induced obese mice.</a> Obesity. 24 (3), 654-660 (2016).</li><li>Adult rodent anesthesia SOP. UBC Animal Care Guidelines Available from: <a target="_blank" href="https://animalcare.ubc.ca/sites/default/files/documents/ACC-01-2017_Anesthesia.pdf">https://animalcare.ubc.ca/sites/default/files/documents/ACC-01-2017_Anesthesia.pdf</a> (2017)</li><li>Sotocinal, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Rat+Grimace+Scale:+a+partially+automated+method+for+quantifying+pain+in+the+laboratory+rat+via+facial+expressions.">The Rat Grimace Scale: a partially automated method for quantifying pain in the laboratory rat via facial expressions.</a> Molecular pain. , 1-10 (2011).</li><li>Elder, K. A., Wolfe, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bariatric+surgery:+A+review+of+procedures+and+outcomes.">Bariatric surgery: A review of procedures and outcomes.</a> Gastroenterology. 132 (6), 2253-2271 (2007).</li><li>Bariatric procedures for the management of severe obesity: Descriptions. UpToDate Available from: <a target="_blank" href="https://www.uptodate.com/">https://www.uptodate.com/</a> (2017)</li></ol>

Le RYGB implique la création d’une petite poche gastrique (moins de 30 mL) et la création d’un membre biliopancréatique et d’un membre Roux (Figure 1). Chez l’homme, le membre biliopancréatique mesure généralement de 30 à 50 cm et transporte les sécrétions du reste gastrique, du foie et du pancréas. Le membre de Roux mesure généralement de 75 à 150 cm de long et constitue le principal canal d’ingéré. Le canal commun est l’intestin grêle restant distal à l’endro...

L’obésité et le diabète de type 2 sont devenus des épidémies mondiales1. Bien que la perte de poids médicale puisse améliorer le diabète chez les patients, ceux atteints de diabète sévère bénéficient le plus de la chirurgie bariatrique. La chirurgie bariatrique s’est avérée sûre et efficace pour perdre du poids et améliorer ou guérir le diabète de type2 2,3,même chez les personnes atteintes d’une maladie de longue date4. Les procédures bariatriques métaboliques, telles que la chirurgie de pontage gastrique Roux-en-Y (RYGB) de référence actuelle, induisent des améliorations rapides et soutenues de l’homéostasie du glucose tout en réduisant le besoin de médicaments diabétiques5,6,7.
Après RYGB, l’amélioration de l’homéostasie du glucose se produit rapidement et est indépendante de la perte de poids8. Deux théories importantes ont été proposées pour expliquer les changements métaboliques liés à la remise de diabète qui se produisent après chirurgie métabolique. D’abord, l’hypothèse de hindgut postule que, après déviation, des concentrations plus élevées des éléments nutritifs non digérés atteignent l’intestin distal augmentant la libération des hormones telles que GLP-1. D’autre part, l’hypothèse de foregut suggère que le contournement de l’intestin proximal réduise la sécrétion des hormones d’anti-incrétine. Ces deux effets pourraient conduire à une amélioration précoce du métabolisme du glucose9.
Les modèles animaux ont le potentiel d’être un outil puissant pour étudier ces mécanismes. Cependant, un obstacle majeur à l’utilisation de modèles de souris ou de rats est la difficulté technique à effectuer ces procédures. La plupart des études se sont appuyées sur des modèles de souris ou de rat10,11,12. Les modèles murins ont été difficiles car l’estomac de souris est trop petit pour utiliser des dispositifs d’agrafeuse11, et les taux de mortalité sont inacceptablement élevés, allant de 17 à 52%13. Chez le rat, certains protocoles restent techniquement difficiles à réaliser en raison d’une ligature complexe des vaisseaux gastriques avant de diviser l’estomac12,14. D’autres modèles divisent l’estomac à l’aide d’une agrafeuse mais laissent une grande poche non conforme à l’anatomie humaine post RYGB11. Dans ce modèle, nous fournissons des instructions détaillées sur la façon d’effectuer RYGB à l’aide d’agrafeuses linéaires dans un modèle de rat résultant en une poche gastrique plus conforme à celle de l’anatomie humaine. Dans l’ensemble, cette procédure a été associée à d’excellents taux de survie et résultats métaboliques.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>2-0 Silk Sutures</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>K533</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 Vicryl Sutures</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>J219H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% Isoflurane</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5% Dextrose and 0.9% Sodium Chloride Solution - 1000 mL</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>2B1064</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL Conical Centrifuge Tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-432-22</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 Prolene Sutures</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>8805H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anesthetic Machine</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Animal Hair Shaver</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine Solution</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Castrojievo Needle Holder with lock 14 cm (smooth curved)</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>503258</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ECHELON FLEX Articulating Endoscopic Linear Cutter</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>EC45A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Economy Tweezers #4</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>501978</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ENDOPATH ETS Articulating Linear Cutter 45mm Reloads</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>6R45B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Far Infrared Warming Pad Controller with warming pad (15.2 cm W x 20.3 cm L), pad temperature probe, and 10 disposable, non-sterile sleeve protectors</td>
			<td>Kent Scientific</td>
			<td>RT-0515</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Large Rat Elizabethan Collar</td>
			<td>Kent Scientific</td>
			<td>EC404VL-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liquid Diet Feeding Tube (150 mL)</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>9007</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liquid Diet Feeding Tube Holder (short adjustable)</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>9015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Mosquito Forceps</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>500452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Scissors</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>503365</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse Diet, High Fat Fat Calories (60%), Soft Pellets</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>S3282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>No. 11 Blade and Scalpel Handle</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OPMI Vario Surgical Microscope</td>
			<td>ZEISS</td>
			<td>S88</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Raised Floor Grid</td>
			<td>Tecniplast</td>
			<td>GM500150 Raised Floor Grid</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rodent Liquid Diet, Lieber-DeCarli &#39;82, Control, 4 Liters/Bag</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>F1259</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Chloride Irrigation 0.9% Solution - 500 mL</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>JF7633</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Cotton Swabs</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Drape</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Towel</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermal Cautery Unit</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>501293</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a protocol for roux-en-y gastric bypass in rats using linear staplers

Le pontage gastrique de Roux-en-Y (RYGB) est couramment effectué pour le traitement de l’obésité sévère et du diabète de type 2. Cependant, le mécanisme de perte de poids et les changements métaboliques ne sont pas bien compris. On pense que de multiples facteurs jouent un rôle, y compris la réduction de l’apport calorique, la diminution de l’absorption des nutriments, l’augmentation de la satiété, la libération d’hormones favorisant la satiété, les changements dans le métabolisme des acides biliaires et les altérations du microbiote intestinal.
Le modèle RYGB de rat présente un cadre idéal pour étudier ces mécanismes. Les travaux antérieurs sur les modèles murins ont eu des taux de mortalité élevés, allant de 17 à 52%, limitant leur adoption. Les modèles de rat démontrent plus de réserve physiologique au stimulus chirurgical et sont techniquement plus faciles à adopter car ils permettent l’utilisation d’agrafeuses chirurgicales. Un défi avec les agrafeuses chirurgicales, cependant, est qu’elles laissent souvent une grande poche gastrique qui n’est pas représentative de RYGB chez l’homme. 
Dans ce protocole, nous présentons un protocole de RYGB chez les rats qui ont comme conséquence une petite poche gastrique utilisant les agrafeuses chirurgicales. En utilisant deux feux d’agrafeuse qui enlèvent le forestomach du rat, nous obtenons une poche gastrique plus petite similaire à celle suivant un RYGB humain typique. L’agrafage chirurgical a également comme conséquence une meilleure hémostase que la division pointue. De plus, le séestomaque du rat ne contient pas de glandes et son élimination ne devrait pas altérer la physiologie du RYGB.
La perte de poids et les changements métaboliques dans la cohorte de RYGB étaient significatifs comparés à la cohorte de feinte, avec la tolérance sensiblement inférieure de glucose à 14 semaines. En outre, ce protocole a une excellente survie de 88,9% après RYGB. Les qualifications décrites dans ce protocole peuvent être acquises sans expérience microsurgical précédente. Une fois maîtrisée, cette procédure fournira un outil reproductible pour étudier les mécanismes et les effets du RYGB.

Animaux et logement 36 rats Wistar mâles ont été logés par paires et ont reçu un régime alimentaire riche en graisses à 60 % de rongeurs stériles à partir de l’âge de six semaines(figure 2). À l’âge de 16 semaines, ils ont subi une chirurgie RYGB ou feinte. Après la première semaine postopératoire, des rats ont été repris sur un régime à haute teneur en graisses. La moitié des rats ont été euthanasiés à 2 semaines postopératoires et l’autre ...

Watch this Scientific Journal Video about A Protocol for Roux-en-Y Gastric Bypass in Rats using Linear Staplers at JoVE.com

A Protocol for Roux-en-Y Gastric Bypass in Rats using Linear Staplers

Le pontage gastrique de Roux-en-Y (RYGB) est effectué pour traiter l’obésité et le diabète. Cependant, les mécanismes sous-jacents à l’efficacité du RYGB ne sont pas entièrement compris, et les études sont limitées par des difficultés techniques conduisant à une mortalité élevée chez les modèles animaux. Cet article fournit des instructions sur la façon d’exécuter RYGB chez les rats avec des taux de réussite élevés.

Un protocole pour le pontage gastrique de Roux-en-Y chez le rat à l’aide d’agrafeuses linéaires

Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) is commonly performed for the treatment of severe obesity and type 2 diabetes. However, the mechanism of weight loss and ...

La déviation gastrique de Roux-en-Y est une procédure généralement exécutée pour le traitement de l’obésité sévère et du type - le diabète 2. Cependant, les mécanismes exacts contribuant à la perte de poids et à l’amélioration métabolique ne sont pas bien compris et de multiples facteurs sont censés jouer un rôle. Le modèle gastrique de déviation de rat Roux-en-Y présente un excellent cadre pour étudier ces mécanismes. Protocole.Préparation des animaux et installation opératoire. Nettoyez l’abdomen avec une solution de povidone-iode. Laissez la solution sécher et changez-la en gants stériles.Draper le rat avec une ouverture dans le drapé pour exposer l’abdomen. Les instruments, les sutures, les cotons-tiges et une seringue de 10 millilitres sont placés dans un endroit qui permet un accès facile pendant la procédure. Laparotomie médiane.Faites une incision de trois centimètres dans la ligne médiane supérieure de l’abdomen à l’aide d’un scalpel, juste en dessous du processus xiphoïde comme point de repère. À l’aide de ciseaux, divisez le fascia et le péritoine, en prenant soin de rester à mi-ligne sur la linea alba pour réduire les saignements du rectus abdominis. S’il y a un saignement, contrôlez-le avec de la thermocautérisation ou de l’électrocautérisation.Mobiliser l’estomac. À l’aide de deux cotons-tiges humides, disséquer carrément les attaches gastriques. Lorsque vous rencontrez des adhérences denses, utilisez la cautérisation thermique pour diviser les attachements gastriques, en faisant attention à éviter de cautériser l’estomac.Divisez brusquement le ligament entre l’estomac et le lobe hépatique accessoire pour réduire le risque de déchirure du foie avec la mobilisation de l’estomac. Pour les vaisseaux sanguins plus gros, en particulier au niveau des artères gastriques courtes, ligate en utilisant du polypropylène 6-0. Créez une fenêtre sur le côté distal droit de l’œsophage mais proximale à l’artère gastrique gauche.Assurez-vous qu’un coton-tige peut atteindre cette zone par la suite. L’estomac est adéquatement mobilisé lorsqu’il peut être extériorisé à l’extérieur de l’abdomen. Identifiez et divisez le jéjunem.Identifier le ligament de Treitz en suivant le jéjunum proximalement jusqu’à observer sa fixation au mésocolon transversal. Mesurer sept centimètres distalement, identifier un emplacement entre les vaisseaux mésentériques, et diviser l’intestin avec des micro ciseaux. Évitez les plaques de Peyer lors de la division de l’intestin.Prenez soin de ne diviser que l’intestin et non le mésentère. Placez une éponge propre et imbibée de solution saline avant de diviser l’intestin afin de minimiser la contamination. Un petit navire de croisement est typiquement présent dans le mesentery à la frontière des petites entrailles et ceci est divisé avec la cautérisation pour éviter le saignement.Continuer à diviser le mésentère d’un centimètre vers la base mésentérique. Identifier le jéjunem proximal et distal. Placez le jéjunum proximal sous une gaze humide à droite du rat et le jéjunum distal à gauche du rat.Agrafer l’estomac. Insérez une agrafeuse linéaire de coupe de 45 millimètres avec une hauteur d’agrafe de 3,5 millimètres à travers la ligne blanche du boisaomaque pour créer une pochette plus petite. Attendez 10 secondes avant de tirer l’agrafeuse.Placez une pression à l’aide de gaze sur les lignes d’agrafe pendant une minute pour assurer l’hémostase. Si l’hémostase n’est pas atteinte avec la pression seule, le saignement le long de la ligne d’agrafe est suressé à l’aide de 6-0 sutures de figure-de-huit de polypropylène. Un deuxième feu d’agrafe est ensuite effectué à travers l’estomac dans la fenêtre créée précédemment.Attendez 10 secondes avant de tirer l’agrafeuse. La pression est maintenue le long de la ligne d’agrafe pour s’assurer que l’hémostase et l’oversewing peuvent être nécessaires. Gastrojejunostomy. Une gastrotomie est faite immédiatement après l’agrafage de l’estomac.Les retards dans ceci peuvent causer la distension gastrique et l’aspiration pendant que l’estomac est discontinu après le deuxième agrafe gastrique. À l’aide d’un scalpel à 11 lames, créez une gastrotomie au niveau de la poche distale. Exprimez le contenu gastrique par la gastrotomie.Ceci est important pour prévenir la distension gastrique et l’aspiration. Allonger cette gastrotomie à l’aide de micro ciseaux à environ cinq millimètres. Exprimez le contenu gastrique par la gastrotomie.Mobiliser l’extrémité distale du jéjunum à côté de la gastrotomie et placer de telle sorte que le mésentère ne soit pas tordu. Tout en suturant l’anastomose, assurez-vous que l’intestin est maintenu humide en le recouvrant de gaze imbibée de solution saline et en réappliquez régulièrement une solution saline. À l’aide de la suture polydioxanone ou polypropylène 6-0, placez une suture de séjour à la marge inférieure de l’anastomose et rétractez doucement à l’aide d’un claquement.Attachez à trois nœuds. Placez une suture de séjour à la marge supérieure de l’anastomose et rétractez doucement à l’aide d’un claquement. Attachez à six nœuds.Suturer le côté antérieur de l’anastomose de manière continue en prenant des piqûres d’un millimètre de large et d’un millimètre de distance avec soin pour éviter de prendre le dos. Une fois que la suture a atteint la suture inférieure, attachez-les ensemble avec six nœuds supplémentaires. Une fois que le côté antérieur est complet, retournez les entrailles et l’estomac et passez la suture inférieure de séjour par le défaut mésentérique.Réappliquez l’accrochage et rétractez-le de manière inférieure. Pour la face postérieure de l’anastomose, placez des sutures de pleine épaisseur, interrompues de 6-0 d’un millimètre de large et espacées d’un millimètre avec soin pour éviter de prendre le dos. Ceux-ci sont attachés avec six nœuds chacun.Notez que le côté antérieur de l’anastomose est suturée de manière continue tandis que le côté postérieur est fait de manière interrompue. Ceci empêche la restriction ou la sténose potentielle liée à une fermeture continue circonférentielle. Vérifiez s’il y a des fuites en poussant doucement le contenu luminal à travers l’anastomose.S’il y a des zones avec des fuites, renforcez-les soigneusement avec des sutures interrompues. Prenez soin d’éviter de prendre le mur arrière lors du renforcement avec des sutures supplémentaires. Jejunojejunostomy. À partir de la gastrojejunostomie, mesurer 20 centimètres distalement.Créez une jéjunotomie du côté antimesentérique à l’aide du scalpel à 11 lames. Évitez de faire la jéjunotomie sur peyer' patchs de s. Prolongez cette jéjunotomie à l’aide de micro-ciseaux de sorte qu’elle soit de la même taille que le membre biliopancréatique.Assurez-vous qu’un coton-tige s’adapte parfaitement à l’intérieur. Placez le membre biliopancréatique de manière à ce qu’il n’y ait pas de torsion du mésentère. Effectuer l’anastomose de la même manière que la gastrojejunostomy avec des sutures de séjour 6-0 sur les côtés supérieurs et inférieurs.Le côté antérieur est effectué avec des sutures continues tandis que le côté postérieur est effectué avec des sutures interrompues. Assurez-vous que l’intestin est maintenu humide avec une solution saline pendant cette anastomose. Vérifiez s’il y a fuite en poussant doucement le contenu luminal à travers l’anastomose.S’il y a des zones avec des fuites, renforcez-les avec des sutures interrompues. Repositionnez l’intestin et l’estomac. Assurez-vous qu’il n’y a pas de torsion de la poche, de l’estomac ou du foie.Assurez-vous que le lobe gauche du foie est antérieur à l’estomac et non piégé derrière la poche, car cela peut provoquer une ischémie hépatique compressive. Fermeture abdominale. Fermez le fascia avec de la polyglactine 3-0 de manière continue.La polydioxanone 3-0 peut également être utilisée. Fermez la peau avec de la soie 2-0 de manière continue. Résultats. Toutes les cohortes ont eu le gain de poids significatif preoperatively.Les rats subissant la déviation gastrique de Roux-en-y ont eu le poids postopératoire inférieur sur un régime à haute teneur en graisses comparé aux rats subissant la chirurgie de feinte. Le changement postopératoire de poids sur un régime à haute teneur en matières grasses était statistiquement significatif à tous les points de temps postopératoirement. Il y avait tolérance améliorée de glucose après déviation gastrique de Roux-en-y avec un secteur inférieur sous la courbe pendant l’essai intrapéritonéal de tolérance de glucose comparé à la chirurgie de feinte. Conclusion.Ce procédé utilise des agrafeuses linéaires dans un modèle de rat pour exécuter la déviation gastrique de Roux-en-Y ayant pour résultat une poche gastrique plus conforme à celle de l’anatomie humaine. Dans l’ensemble, cette procédure a été associée à d’excellents taux de survie et à une perte de poids significative et à des effets métaboliques.

Research

JoVE Journal

Medicine

Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Roux-en-Y Opération Bypass gastrique chez le rat

Currently, the most effective therapy for the treatment of morbid obesity to induce significant and maintained body weight loss with a proven mortality ...

Recherche

Médecine

Cell-based Assay Protocol for the Prognostic Prediction of Idiopathic Scoliosis Using Cellular Dielectric Spectroscopy

Protocole de dosage à base de cellules pour la prédiction du pronostic de la scoliose idiopathique de l&#39;aide Cellular Spectroscopie Diélectrique

This protocol details the experimental and analytical procedure for a cell-based assay developed in our laboratory as a functional test to predict the ...

A Detailed Protocol for Perspiration Monitoring Using a Novel, Small, Wireless Device

Un protocole détaillé pour Transpiration surveillance utilisant un roman, petit appareil sans fil

Perspiration monitoring can be utilized for the detection of certain diseases, such as thermoregulation and mental disorders, particularly when the ...

Vein Interposition Model: A Suitable Model to Study Bypass Graft Patency

Vein Interposition Modèle: un modèle approprié pour étudier Bypass Graft Patency

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. ...

Techniques of Sleeve Gastrectomy and Modified Roux-en-Y Gastric Bypass in Mice

Techniques de sleeve gastrectomie et modification Roux-en-Y bypass gastrique chez la souris

Obesity is a major public health issue, with a prevalence of 4 to 28% for men and 6.2 to 36.5% for women in Europe (from 2003 to 2008). Morbid obesity is ...

Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach

Circulation extracorporelle dans un modèle murin : une nouvelle approche

As prolonged cardiopulmonary bypass becomes more essential during cardiac interventions, an increasing clinical demand arises for procedure optimization ...

One-anastomosis Gastric Bypass (OAGB) in Rats

One-anastomosis Gastric Bypass OAGB in Rats

Un-anastomose pontage gastrique (OAGB) chez le rat

The goal of this protocol is to set up a preclinical model of bariatric surgery and, more specifically, OAGB in obese rats. Based on this preclinical ...

Use of a Linear Accelerator for Conducting In Vitro Radiobiology Experiments

Utilisation d'un accélérateur linéaire pour la réalisation d'expériences de radiobiologie in vitro

Radiation therapy remains one of the cornerstones of cancer management. For most cancers, it is the most effective, nonsurgical therapy to debulk tumors. ...

Using a Chemical Biopsy for Graft Quality Assessment

Utilisation d’une biopsie chimique pour l’évaluation de la qualité de la greffe

Kidney transplantation is a life-saving treatment for a large number of people with end-stage renal dysfunction worldwide. The procedure is associated ...

Segmentation and Linear Measurement for Body Composition Analysis using Slice-O-Matic and Horos

Segmentation et mesure linéaire pour l’analyse de la composition corporelle à l’aide de Slice-O-Matic et Horos

Body composition is associated with risk of disease progression and treatment complications in a variety of conditions. Therefore, quantification of ...