Name: a protocol for roux-en-y gastric bypass in rats using linear staplers
Uploaded: 2021-08-21T15:00:00
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Diese Studie wurde vom American Society for Metabolic and Bariatric Surgery Research Award finanziert. Ethicon lieferte gnädig Nähte, Hefter und Clips. Die Doktorarbeit des Hauptautors wurde vom University of Alberta Clinician Investigator Program und dem Alberta Innovates Clinician Fellowship finanziert. Wir möchten uns auch bei Michelle Tran für ihre medizinische Illustration der RYGB-Anatomie bedanken.

Tierverwendungsprotokolle wurden vom Health Science Animal Care and Use Committee an der University of Alberta (AUP00003000) genehmigt. In Abbildung 1 finden Sie ein Diagramm, das die RYGB-Anatomie demonstriert.
1. Roux-en-Y Magenbypass
<ol><li>Vorbereitung der Tiere und operativer Aufbau<ol>
<li>Versorgen Sie die Ratten eine Woche vor der Operation zusätzlich zu ihrer festen Ernährung und Wasser mit oraler Rehydratationstherapie und flüssiger Diät, um sie a...

<ol>
	<li>Courcoulas, A. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three-year+outcomes+of+bariatric+surgery+vs+lifestyle+intervention+for+type+2+diabetes+mellitus+treatment.">Three-year outcomes of bariatric surgery vs lifestyle intervention for type 2 diabetes mellitus treatment.</a> JAMA Surgery. 15213 (10), 1-9 (2015).</li><li>Ardestani, A., Rhoads, D., Tavakkoli, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insulin+cessation+and+diabetes+remission+after+bariatric+surgery+in+adults+with+insulin-treated+type+2+diabetes.">Insulin cessation and diabetes remission after bariatric surgery in adults with insulin-treated type 2 diabetes.</a> Diabetes Care. 38 (4), 659-664 (2015).</li><li>Casella, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ten-year+duration+of+type+2+diabetes+as+prognostic+factor+for+remission+after+sleeve+gastrectomy.">Ten-year duration of type 2 diabetes as prognostic factor for remission after sleeve gastrectomy.</a> Surgery for Obesity and Related Diseases. 7 (6), 697-702 (2011).</li><li>Panunzi, S., De Gaetano, A., Carnicelli, A., Mingrone, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Predictors+of+remission+of+diabetes+mellitus+in+severely+obese+individuals+undergoing+bariatric+surgery.">Predictors of remission of diabetes mellitus in severely obese individuals undergoing bariatric surgery.</a> Annals of Surgery. 261 (3), 459-467 (2015).</li><li>Edelman, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+type+2+diabetes+after+1+year+of+laparoscopic+adjustable+gastric+banding+in+the+helping+evaluate+reduction+in+obesity+(HERO)+study.">Control of type 2 diabetes after 1 year of laparoscopic adjustable gastric banding in the helping evaluate reduction in obesity (HERO) study.</a> Diabetes, Obesity and Metabolism. 16 (10), 1009-1015 (2014).</li><li>Mingrone, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metabolic+surgery+versus+conventional+medical+therapy+in+patients+with+type+2+diabetes:+10-year+follow-up+of+an+open-label,+single-centre,+randomised+controlled+trial.">Metabolic surgery versus conventional medical therapy in patients with type 2 diabetes: 10-year follow-up of an open-label, single-centre, randomised controlled trial.</a> The Lancet. 397 (10271), 293-304 (2021).</li><li>Thaler, J. P., Cummings, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Minireview:+Hormonal+and+metabolic+mechanisms+of+diabetes+remission+after+gastrointestinal+surgery.">Minireview: Hormonal and metabolic mechanisms of diabetes remission after gastrointestinal surgery.</a> Endocrinology. 150 (6), 2518-2525 (2009).</li><li>Mingrone, G., Castagneto-Gissey, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanisms+of+early+improvement+/+resolution+of+type+2+diabetes+after+bariatric+surgery.">Mechanisms of early improvement / resolution of type 2 diabetes after bariatric surgery.</a> Diabetes and Metabolism. 35 (6), 518-523 (2009).</li><li>Arapis, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remodeling+of+the+residual+gastric+mucosa+after+Roux-en-Y+gastric+bypass+or+vertical+sleeve+gastrectomy+in+diet-induced+obese+rats.">Remodeling of the residual gastric mucosa after Roux-en-Y gastric bypass or vertical sleeve gastrectomy in diet-induced obese rats.</a> PloS One. 10 (3), 012414 (2015).</li><li>Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+models+of+Roux-en-Y+gastric+bypass+surgery+and+sleeve+gastrectomy+in+rats+and+mice.">Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice.</a> Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).</li><li>Bueter, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Roux-en-Y+gastric+bypass+operation+in+rats+protocol.">Roux-en-Y gastric bypass operation in rats protocol.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. (64), (2012).</li><li>Stevenson, M., Lee, J., Lau, R. G., Brathwaite, C. E. M., Ragolia, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+mouse+models+of+vertical+sleeve+gastrectomy+and+Roux-en+Y+gastric+bypass:+a+Review.">Surgical mouse models of vertical sleeve gastrectomy and Roux-en Y gastric bypass: a Review.</a> Obesity Surgery. , (2019).</li><li>Hao, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reprogramming+of+defended+body+weight+after+Roux-En-Y+gastric+bypass+surgery+in+diet-induced+obese+mice.">Reprogramming of defended body weight after Roux-En-Y gastric bypass surgery in diet-induced obese mice.</a> Obesity. 24 (3), 654-660 (2016).</li><li>Adult rodent anesthesia SOP. UBC Animal Care Guidelines Available from: <a target="_blank" href="https://animalcare.ubc.ca/sites/default/files/documents/ACC-01-2017_Anesthesia.pdf">https://animalcare.ubc.ca/sites/default/files/documents/ACC-01-2017_Anesthesia.pdf</a> (2017)</li><li>Sotocinal, S. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Rat+Grimace+Scale:+a+partially+automated+method+for+quantifying+pain+in+the+laboratory+rat+via+facial+expressions.">The Rat Grimace Scale: a partially automated method for quantifying pain in the laboratory rat via facial expressions.</a> Molecular pain. , 1-10 (2011).</li><li>Elder, K. A., Wolfe, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bariatric+surgery:+A+review+of+procedures+and+outcomes.">Bariatric surgery: A review of procedures and outcomes.</a> Gastroenterology. 132 (6), 2253-2271 (2007).</li><li>Bariatric procedures for the management of severe obesity: Descriptions. UpToDate Available from: <a target="_blank" href="https://www.uptodate.com/">https://www.uptodate.com/</a> (2017)</li></ol>

RYGB beinhaltet die Schaffung eines kleinen Magenbeutels (weniger als 30 ml) und die Schaffung eines biliopankreatischen Glieds und eines Roux-Glieds (Abbildung 1). Beim Menschen ist die biliopankreatische Extremität typischerweise 30 bis 50 cm groß und transportiert Sekrete aus dem Magenrest, der Leber und der Bauchspeicheldrüse. Das Roux-Glied ist typischerweise 75 bis 150 cm lang und ist der primäre Kanal für die Aufnahme von Nahrung. Der gemeinsame Kanal ist der verbleibende Dünnda...

Fettleibigkeit und Typ-2-Diabetes sind zu weltweiten Epidemien geworden1. Obwohl medizinische Gewichtsabnahme Diabetes bei Patienten verbessern kann, profitieren diejenigen mit schwerem Diabetes am meisten von bariatrischen Operationen. Bariatrische Chirurgie hat sich als sicher und wirksam bei der Gewichtsabnahme und Verbesserung oder Heilung von Typ-2-Diabetes2,3erwiesen, auch bei Menschen mit langjähriger Krankheit4. Metabolische bariatrische Verfahren, wie die aktuelle Goldstandard-Roux-en-Y-Magenbypass-Operation (RYGB), induzieren schnelle und anhaltende Verbesserungen der Glukose-Homöostase und reduzieren gleichzeitig den Bedarf an Diabetikern5,6,7.
Nach RYGB tritt die Verbesserung der Glukose-Homöostase schnell auf und ist unabhängig vom Gewichtsverlust8. Zwei Haupttheorien wurden vorgeschlagen, um die metabolischen Veränderungen im Zusammenhang mit der Diabetes-Remission zu erklären, die nach einer metabolischen Operation auftreten. Erstens postuliert die Hinterdarmhypothese, dass nach dem Bypass höhere Konzentrationen unverdauter Nährstoffe in den distalen Darm gelangen und die Freisetzung von Hormonen wie GLP-1 verstärken. Auf der anderen Seite legt die Vordarmhypothese nahe, dass die Umgehung des proximalen Darms die Sekretion von Anti-Inkretin-Hormonen reduziert. Beide Effekte könnten zu einer frühzeitigen Verbesserung des Glukosestoffwechsels führen9.
Tiermodelle haben das Potenzial, ein leistungsfähiges Werkzeug zu sein, um diese Mechanismen zu untersuchen. Ein großes Hindernis bei der Verwendung von Maus- oder Rattenmodellen ist jedoch die technische Schwierigkeit bei der Durchführung dieser Verfahren. Die meisten Studien stützten sich auf Maus- oder Rattenmodelle10,11,12. Mausmodelle waren schwierig, da der Mausmagen zu klein ist, um Heftgeräte11zu verwenden, und die Sterblichkeitsraten sind inakzeptabel hoch und liegen zwischen 17 und 52%13. Bei Ratten bleiben einige Protokolle aufgrund der komplexen Ligatur der Magengefäße vor der Teilung des Magens technisch schwierig durchzuführen12,14. Andere Modelle teilen den Magen mit einem Hefter, lassen aber einen großen Beutel, der nicht mit der menschlichen Anatomie nach RYGBübereinstimmt 11. In diesem Modell bieten wir detaillierte Anweisungen zur Durchführung von RYGB mit linearen Heftern in einem Rattenmodell, was zu einem Magenbeutel führt, der der menschlichen Anatomie besser entspricht. Insgesamt war dieses Verfahren mit hervorragenden Überlebensraten und metabolischen Ergebnissen verbunden.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>2-0 Silk Sutures</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>K533</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 Vicryl Sutures</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>J219H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% Isoflurane</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5% Dextrose and 0.9% Sodium Chloride Solution - 1000 mL</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>2B1064</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL Conical Centrifuge Tubes</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>14-432-22</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-0 Prolene Sutures</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>8805H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anesthetic Machine</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Animal Hair Shaver</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine Solution</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Castrojievo Needle Holder with lock 14 cm (smooth curved)</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>503258</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ECHELON FLEX Articulating Endoscopic Linear Cutter</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>EC45A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Economy Tweezers #4</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>501978</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ENDOPATH ETS Articulating Linear Cutter 45mm Reloads</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>6R45B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Far Infrared Warming Pad Controller with warming pad (15.2 cm W x 20.3 cm L), pad temperature probe, and 10 disposable, non-sterile sleeve protectors</td>
			<td>Kent Scientific</td>
			<td>RT-0515</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Large Rat Elizabethan Collar</td>
			<td>Kent Scientific</td>
			<td>EC404VL-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liquid Diet Feeding Tube (150 mL)</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>9007</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liquid Diet Feeding Tube Holder (short adjustable)</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>9015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Mosquito Forceps</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>500452</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro Scissors</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>503365</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse Diet, High Fat Fat Calories (60%), Soft Pellets</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>S3282</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>No. 11 Blade and Scalpel Handle</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OPMI Vario Surgical Microscope</td>
			<td>ZEISS</td>
			<td>S88</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Raised Floor Grid</td>
			<td>Tecniplast</td>
			<td>GM500150 Raised Floor Grid</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rodent Liquid Diet, Lieber-DeCarli &#39;82, Control, 4 Liters/Bag</td>
			<td>Bio-Serv</td>
			<td>F1259</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium Chloride Irrigation 0.9% Solution - 500 mL</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>JF7633</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Cotton Swabs</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Drape</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Towel</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermal Cautery Unit</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>501293</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a protocol for roux-en-y gastric bypass in rats using linear staplers

Roux-en-Y Magenbypass (RYGB) wird häufig zur Behandlung von schwerer Fettleibigkeit und Typ-2-Diabetes durchgeführt. Der Mechanismus der Gewichtsabnahme und metabolische Veränderungen sind jedoch nicht gut verstanden. Es wird angenommen, dass mehrere Faktoren eine Rolle spielen, darunter eine reduzierte Kalorienaufnahme, eine verminderte Nährstoffaufnahme, ein erhöhtes Sättigungsgefühl, die Freisetzung von sättigungsfördernden Hormonen, Verschiebungen im Gallensäurestoffwechsel und Veränderungen in der Darmmikrobiota.
Das Ratten-RYGB-Modell bietet einen idealen Rahmen, um diese Mechanismen zu untersuchen. Frühere Arbeiten an Mausmodellen hatten hohe Sterblichkeitsraten, die zwischen 17 und 52% lagen, was ihre Akzeptanz einschränkte. Rattenmodelle zeigen eine mehr physiologische Reserve gegenüber chirurgischen Reizen und sind technisch einfacher zu übernehmen, da sie die Verwendung von chirurgischen Heftern ermöglichen. Eine Herausforderung bei chirurgischen Heftern ist jedoch, dass sie oft einen großen Magenbeutel hinterlassen, der nicht repräsentativ für RYGB beim Menschen ist. 
In diesem Protokoll präsentieren wir ein RYGB-Protokoll bei Ratten, das zu einem kleinen Magenbeutel mit chirurgischen Heftern führt. Mit zwei Hefterfeuern, die den Voromach der Ratte entfernen, erhalten wir einen kleineren Magenbeutel, der dem eines typischen menschlichen RYGB ähnelt. Chirurgisches Heften führt auch zu einer besseren Hämostase als scharfe Teilung. Darüber hinaus enthält der Voromach der Ratte keine Drüsen und seine Entfernung sollte die Physiologie von RYGB nicht verändern.
Gewichtsverlust und metabolische Veränderungen in der RYGB-Kohorte waren im Vergleich zur Scheinkohorte signifikant, mit signifikant niedrigerer Glukosetoleranz nach 14 Wochen. Darüber hinaus hat dieses Protokoll ein ausgezeichnetes Überleben von 88,9% nach RYGB. Die in diesem Protokoll beschriebenen Fähigkeiten können ohne vorherige mikrochirurgische Erfahrung erworben werden. Einmal gemeistert, wird dieses Verfahren ein reproduzierbares Werkzeug zur Untersuchung der Mechanismen und Auswirkungen von RYGB bieten.

Tiere und Unterbringung 36 männliche Wistar-Ratten wurden paarweise untergebracht und ab einem Alter von sechs Wochen mit 60% steriler Nagetier-Fettreicher diät gefüttert(Abbildung 2). Im Alter von 16 Wochen unterzogen sie sich einer RYGB- oder Scheinoperation. Nach der ersten postoperativen Woche wurden die Ratten wieder fettreich ernährt. Die Hälfte der Ratten wurde nach 2 Wochen postoperativ eingeschläfert und die andere Hälfte nach 14 Wochen postoperativ einges...

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A Protocol for Roux-en-Y Gastric Bypass in Rats using Linear Staplers

Roux-en-Y Magenbypass (RYGB) wird zur Behandlung von Fettleibigkeit und Diabetes durchgeführt. Die Mechanismen, die der Wirksamkeit von RYGB zugrunde liegen, sind jedoch nicht vollständig verstanden, und die Studien sind durch technische Schwierigkeiten begrenzt, die zu einer hohen Mortalität in Tiermodellen führen. Dieser Artikel enthält Anweisungen zur Durchführung von RYGB bei Ratten mit hohen Erfolgsraten.

Ein Protokoll für Roux-en-Y Magenbypass bei Ratten mit linearen Heftern

Roux-en-Y gastric bypass (RYGB) is commonly performed for the treatment of severe obesity and type 2 diabetes. However, the mechanism of weight loss and ...

Roux-en-Y Magenbypass ist ein häufig durchgeführtes Verfahren zur Behandlung von schwerer Fettleibigkeit und Typ-2-Diabetes. Die genauen Mechanismen, die zur Gewichtsabnahme und metabolischen Verbesserung beitragen, sind jedoch nicht gut verstanden und es wird angenommen, dass mehrere Faktoren eine Rolle spielen. Das Roux-en-Y-Magenbypass-Modell der Ratte bietet einen hervorragenden Rahmen, um diese Mechanismen zu untersuchen. Protokoll.Vorbereitung der Tiere und operative Einrichtung. Reinigen Sie den Bauch mit einer Povidon-Jod-Lösung. Lassen Sie die Lösung trocknen und wechseln Sie sie in sterile Handschuhe.Drapieren Sie die Ratte mit einer Öffnung im Vorhang, um den Bauch freizulegen. Instrumente, Nähte, Wattestäbchen und eine 10-Milliliter-Spritze werden an einem Ort platziert, der einen einfachen Zugang während des Eingriffs ermöglicht. Mediane Laparotomie.Machen Sie einen drei Zentimeter großen Schnitt in der oberen Mittellinie des Abdomens mit einem Skalpell, direkt unter dem Xiphoid-Prozess als Orientierungsmerkmal. Teilen Sie mit einer Schere die Faszie und das Peritoneum, wobei Sie darauf achten, die Mittellinie auf der Linea alba zu halten, um Blutungen aus dem Rektus abdominis zu reduzieren. Wenn es Blutungen gibt, kontrollieren Sie es mit Thermischer oder Elektrokauterie.Mobilisierung des Magens. Sezieren Sie mit zwei nassen Wattestäbchen stumpf Magenaufsätze. Wenn Sie auf dichte Adhäsionen stoßen, verwenden Sie thermische Kauter, um Magenansätze zu teilen, mit Sorgfalt, um eine Kauterisierung des Magens zu vermeiden.Teilen Sie das Band scharf zwischen dem Magen und dem akzessozierenden Leberlappen, um das Risiko eines Leberrisses bei Magenmobilisierung zu reduzieren. Für größere Blutgefäße, insbesondere an den kurzen Magenarterien, ligatieren Sie mit 6-0 Polypropylen. Erstellen Sie ein Fenster auf der rechten distalen Seite der Speiseröhre, aber proximal zur linken Magenarterie.Stellen Sie sicher, dass ein Wattestäbchen nachdreicht in diesen Bereich gelangen kann. Der Magen wird ausreichend mobilisiert, wenn er außerhalb des Bauches äußerlich gemacht werden kann. Identifiziere und teile das Jejunem.Identifizieren Sie das Band von Treitz, indem Sie dem Jejunum proximal folgen, bis Es seine Bindung an das Quermesokolon beobachtet. Messen Sie sieben Zentimeter distal, identifizieren Sie einen Ort zwischen Mesenterigefäßen und teilen Sie den Darm mit einer Mikroschere. Vermeiden Sie Peyers Flecken, wenn Sie den Darm teilen.Achten Sie darauf, nur den Darm und nicht das Mesentery zu teilen. Legen Sie einen sauberen, salzgetränkten Schwamm, bevor Sie den Darm teilen, um die Kontamination zu minimieren. Ein kleines Kreuzungsgefäß ist typischerweise im Mesenterium an der Grenze des Dünndarms vorhanden und wird mit Kauter geteilt, um Blutungen zu vermeiden.Teilen Sie das Mesentery weiterhin einen Zentimeter in Richtung der Mesenteric-Basis. Identifizieren Sie das proximale und distale Jejunem. Legen Sie das proximale Jejunum unter eine nasse Gaze auf der rechten Seite der Ratte und das distale Jejunum auf der linken Seite der Ratte.Den Magen heften. Setzen Sie einen linearen 45-Millimeter-Schneidhefter mit einer Stapelhöhe von 3,5 Millimetern über die weiße Linie des Vormalers ein, um einen kleineren Beutel zu erstellen. Warten Sie 10 Sekunden, bevor Sie den Hefter abfeuern.Drücken Sie eine Minute lang mit Gaze auf die Klammerleitungen, um eine Hämostase zu gewährleisten. Wenn die Hämostase nicht allein mit Druck erreicht wird, wird die Blutung entlang der Stapellinie mit 6-0 Polypropylen-Achternähten übergenäht. Ein zweites Klammerfeuer wird dann über den Magen in das zuvor erstellte Fenster durchgeführt.Warten Sie 10 Sekunden, bevor Sie den Hefter abfeuern. Der Druck wird entlang der Klammerlinie gehalten, um sicherzustellen, dass Hämostase und Übernähen erforderlich sind. Gastrojejunostomie. Eine Gastrotomie wird unmittelbar nach dem Heften des Magens durchgeführt.Verzögerungen können magenössernen und aspirationen verursachen, da der Magen nach dem zweiten Magenklammern diskontinuierlich ist. Erstellen Sie mit einem 11-Klingen-Skalpell eine Gastrotomie am distalen Beutel. Drücken Sie Mageninhalt durch die Gastrotomie aus.Dies ist wichtig, um Magendehnung und Aspiration zu verhindern. Verlängern Sie diese Gastrotomie mit einer Mikroschere auf etwa fünf Millimeter. Drücken Sie Mageninhalt durch die Gastrotomie aus.Mobilisieren Sie das distale Ende des Jejunums neben der Gastrotomie und platzieren Sie es so, dass das Mesenterium nicht verdreht wird. Stellen Sie beim Nähen der Anastomose sicher, dass der Darm feucht gehalten wird, indem Sie ihn mit salzgetränkter Gaze bedecken und regelmäßig Kochsalzlösung auftragen. Mit 6-0 Polydioxanon oder Polypropylen-Naht eine Bleibsnähte am unteren Rand der Anastomose platzieren und mit einem Schnappschuss vorsichtig zurückziehen.Krawatte mit drei Knoten. Legen Sie eine Aufenthaltsnähte am oberen Rand der Anastomose und ziehen Sie sich vorsichtig mit einem Schnappschuss zurück. Krawatte mit sechs Knoten.Nähen Sie die vordere Seite der Anastomose kontinuierlich mit Bissen, die einen Millimeter breit und einen Millimeter auseinander liegen, mit Sorgfalt, um zu vermeiden, dass die Rückseite genommen wird. Sobald die Naht die untere Haltenäht erreicht hat, binden Sie diese mit weiteren sechs Knoten zusammen. Sobald die vordere Seite fertig ist, drehen Sie den Darm und den Magen um und passieren Sie die minderwertige Bleibnähte durch den Mesenteraldefekt.Ziehen Sie den Snap erneut an und ziehen Sie ihn minderwertig zurück. Für die hintere Seite der Anastomose legen Sie die 6-0-Nähte in voller Dicke einen Millimeter breit und einen Millimeter auseinander, um eine Rückenseite zu vermeiden. Diese sind mit jeweils sechs Knoten gebunden.Beachten Sie, dass die vordere Seite der Anastomose kontinuierlich vernäht wird, während die hintere Seite unterbrochen wird. Dies verhindert eine mögliche Striktur oder Stenose, die mit einem umlaufenden kontinuierlichen Verschluss verbunden ist. Überprüfen Sie auf Leckagen, indem Sie den Luminalinhalt sanft über die Anastomose drücken.Wenn es Bereiche mit Leckagen gibt, verstärken Sie sie vorsichtig mit unterbrochenen Nähten. Achten Sie darauf, die Rückwand nicht zu nehmen, wenn Sie mit zusätzlichen Nähten verstärken. Jejunojejunostomie. Von der Gastrojejunostomie, messen Sie 20 Zentimeter distally.Erstellen Sie eine Jejunotomie auf der zeitsenterischen Seite mit dem 11-Klingen-Skalpell. Vermeiden Sie es, die Jejunotomie über Peyers Patches zu machen. Verlängern Sie diese Jejunotomie mit einer Mikroschere, so dass sie die gleiche Größe wie die biliopankreatische Extremität hat.Stellen Sie sicher, dass ein Wattestäbchen einfach hineinpasst. Legen Sie das biliopankreatische Glied so, dass es keine Verdrehung des Mesenterys gibt. Führen Sie die Anastomose ähnlich wie die Gastrojejunostomie mit 6-0-Nähten auf der oberen und unteren Seite durch.Die vordere Seite wird mit kontinuierlichen Nähten durchgeführt, während die hintere Seite mit unterbrochenen Nähten durchgeführt wird. Stellen Sie sicher, dass der Darm während dieser Anastomose mit Kochsalzlösung feucht gehalten wird. Überprüfen Sie auf Leckagen, indem Sie den Luminalinhalt sanft durch die Anastomose drücken.Wenn es Bereiche mit Leckagen gibt, verstärken Sie sie mit unterbrochenen Nähten. Positionieren Sie Den Darm und den Magen neu. Stellen Sie sicher, dass der Beutel, der Restmagen oder die Leber nicht verdreht werden.Stellen Sie sicher, dass der linke Leberlappen vor dem Magen liegt und nicht hinter dem Beutel eingeschlossen ist, da dies zu kompressiver Leberischämie führen kann. Bauchverschluss. Schließen Sie die Faszie kontinuierlich mit 3-0 Polyglactin.3-0 Polydioxanon kann ebenfalls verwendet werden. Schließen Sie die Haut mit 2-0 Seide in einer kontinuierlichen Weise. Befund. Alle Kohorten hatten eine signifikante Gewichtszunahme präoperativ.Ratten, die sich einem Roux-en-Y-Magenbypass unterzogen, hatten bei einer fettreichen Diät ein geringeres postoperatives Gewicht als Ratten, die sich einer Scheinoperation unterzogen. Die postoperative Gewichtsveränderung bei einer fettreichen Diät war zu allen Zeitpunkten postoperativ statistisch signifikant. Es gab eine verbesserte Glukosetoleranz nach Roux-en-Y-Magenbypass mit einem niedrigeren Bereich unter der Kurve während intraperitonealer Glukosetoleranztests im Vergleich zu einer Scheinoperation. Schlussfolgerung.Dieses Verfahren verwendet lineare Hefter in einem Rattenmodell, um einen Roux-en-Y-Magenbypass durchzuführen, der zu einem Magenbeutel führt, der der menschlichen Anatomie besser entspricht. Insgesamt war dieses Verfahren mit hervorragenden Überlebensraten und signifikanten Gewichtsverlust und metabolischen Effekten verbunden.

Research

JoVE Journal

Medicine

Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Roux-en-Y-Magenbypass Operation in Ratten

Currently, the most effective therapy for the treatment of morbid obesity to induce significant and maintained body weight loss with a proven mortality ...

Forschung

Medizin

Cell-based Assay Protocol for the Prognostic Prediction of Idiopathic Scoliosis Using Cellular Dielectric Spectroscopy

Zellbasierte Assay-Protokoll für die prognostische Prognose der idiopathischen Skoliose Mit Cellular dielektrischer Spektroskopie

This protocol details the experimental and analytical procedure for a cell-based assay developed in our laboratory as a functional test to predict the ...

A Detailed Protocol for Perspiration Monitoring Using a Novel, Small, Wireless Device

Ein detailliertes Protokoll für Transpiration Überwachung eines neuartigen Verwendung, Klein, Wireless Device

Perspiration monitoring can be utilized for the detection of certain diseases, such as thermoregulation and mental disorders, particularly when the ...

Vein Interposition Model: A Suitable Model to Study Bypass Graft Patency

Vein Interposition Modell: ein geeignetes Modell zur Untersuchung Bypass Graft Durchgängigkeit

Bypass grafting is an established treatment method for coronary artery disease. Graft patency continues to be the Achilles heel of saphenous vein grafts. ...

Techniques of Sleeve Gastrectomy and Modified Roux-en-Y Gastric Bypass in Mice

Techniken der Schlauchmagen-Operation und Modified Roux-en-Y-Magenbypass bei Mäusen

Obesity is a major public health issue, with a prevalence of 4 to 28% for men and 6.2 to 36.5% for women in Europe (from 2003 to 2008). Morbid obesity is ...

Cardiopulmonary Bypass in a Mouse Model: A Novel Approach

Kardiopulmonalen Bypass in einem Mausmodell: ein neuer Ansatz

As prolonged cardiopulmonary bypass becomes more essential during cardiac interventions, an increasing clinical demand arises for procedure optimization ...

One-anastomosis Gastric Bypass (OAGB) in Rats

One-anastomosis Gastric Bypass OAGB in Rats

Eine Anastomose Magenbypass (OAGB) bei Ratten

The goal of this protocol is to set up a preclinical model of bariatric surgery and, more specifically, OAGB in obese rats. Based on this preclinical ...

Use of a Linear Accelerator for Conducting In Vitro Radiobiology Experiments

Einsatz eines Linearbeschleunigers zur Durchführung von In-Vitro-Radiobiologieexperimenten

Radiation therapy remains one of the cornerstones of cancer management. For most cancers, it is the most effective, nonsurgical therapy to debulk tumors. ...

Using a Chemical Biopsy for Graft Quality Assessment

Verwendung einer chemischen Biopsie zur Graft-Qualitätsbewertung

Kidney transplantation is a life-saving treatment for a large number of people with end-stage renal dysfunction worldwide. The procedure is associated ...

Segmentation and Linear Measurement for Body Composition Analysis using Slice-O-Matic and Horos

Segmentierung und lineare Messung zur Analyse der Körperzusammensetzung mit Slice-O-Matic und Horos

Body composition is associated with risk of disease progression and treatment complications in a variety of conditions. Therefore, quantification of ...