Name: human subcutaneous adipose tissue sampling using a mini-liposuction technique
Uploaded: 2021-09-27T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Human Subcutaneous Adipose Tissue Sampling Using a Mini-Liposuction Technique at JoVE.com

Les auteurs n’ont aucun financement à déclarer.

REMARQUE: Le NHS, Invasive, ou Comité de recherche clinique de l’Université de Stirling a approuvé la procédure de biopsie décrite ci-dessous. Toutes les études de recherche utilisant cette procédure doivent être approuvées par le comité d’éthique indépendant approprié. Le biopsie doit avoir suivi une formation officielle sur la technique décrite conformément aux exigences de son établissement. En règle générale, cela implique d’observer une démonstration de la technique de biopsie du tissu adip...

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	<li>Beynen, A. C., Katan, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+sampling+and+long-term+storage+of+subcutaneous+adipose-tissue+biopsies+for+determination+of+fatty+acid+composition.">Rapid sampling and long-term storage of subcutaneous adipose-tissue biopsies for determination of fatty acid composition.</a> American Journal of Clinical Nutrition. 42 (2), 317-322 (1985).</li><li>Moran, C. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+diabetes+family+history+and+exercise+training+on+the+expression+of+adiponectin+and+leptin+and+their+receptors.">Effects of diabetes family history and exercise training on the expression of adiponectin and leptin and their receptors.</a> Metabolism. 60 (2), 206-214 (2011).</li><li>Jialal, I., Devaraj, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subcutaneous+adipose+tissue+biology+in+metabolic+syndrome.">Subcutaneous adipose tissue biology in metabolic syndrome.</a> Hormone Molecular Biology and Clinical Investigation. 33 (1), (2018).</li><li>WHO Guidelines on hand hygiene in health care: a summary. World Health Organization Available from: <a target="_blank" href="https://www.who.int/gpsc/5may/tools/who_guidelines-handhygiene_summary.pdf">https://www.who.int/gpsc/5may/tools/who_guidelines-handhygiene_summary.pdf</a> (2009)</li><li>Kettwich, L. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+device+technologies+for+subcutaneous+fat+biopsy.">New device technologies for subcutaneous fat biopsy.</a> Amyloid. 19 (2), 66-73 (2012).</li><li>Preston, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aseptic+technique:+evidence-based+approach+for+patient+safety.">Aseptic technique: evidence-based approach for patient safety.</a> British Journal of Nursing. 14 (10), 540-546 (2005).</li><li>Handiyani, H., Meily Kurniawidjaja, L., Irawaty, D., Damayanti, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effective+needle+stick+injury+prevention+strategies+for+nursing+students+in+the+clinical+settings:+a+literature+review.">The effective needle stick injury prevention strategies for nursing students in the clinical settings: a literature review.</a> Enfermeria Clinica. 28, 167-171 (2018).</li><li>Raggio, B. S., Barton, B. M., Kandil, E., Friedlander, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Association+of+continued+preoperative+aspirin+use+and+bleeding+complications+in+patients+undergoing+thyroid+surgery.">Association of continued preoperative aspirin use and bleeding complications in patients undergoing thyroid surgery.</a> JAMA Otolaryngology-Head &amp; Neck Surgery. 144, 335 (2018).</li><li>Cartwright, I. J., Pockley, A. G., Galloway, J. H., Greaves, M., Preston, F. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+dietary+omega-3+polyunsaturated+fatty+acids+on+erythrocyte+membrane+phospholipids,+erythrocyte+deformability+and+blood+viscosity+in+healthy+volunteers.">The effects of dietary omega-3 polyunsaturated fatty acids on erythrocyte membrane phospholipids, erythrocyte deformability and blood viscosity in healthy volunteers.</a> Atherosclerosis. 55 (3), 267-281 (1985).</li><li>Hemmrich, K., Denecke, B., Paul, N. E., Hoffmeister, D., Pallua, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNA+isolation+from+adipose+tissue:+an+optimized+procedure+for+high+RNA+yield+and+integrity.">RNA isolation from adipose tissue: an optimized procedure for high RNA yield and integrity.</a> Laboratory Medicine. 41 (2), 104-106 (2010).</li><li>Chachopoulos, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+for+subcutaneous+abdominal+adipose+tissue+biopsy+via+a+non-diathermy+method.">A technique for subcutaneous abdominal adipose tissue biopsy via a non-diathermy method.</a> Journal of Visual Experiments: JoVE. (127), e55593 (2017).</li><li>Civelek, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+regulation+of+human+adipose+microRNA+expression+and+its+consequences+for+metabolic+traits.">Genetic regulation of human adipose microRNA expression and its consequences for metabolic traits.</a> Human Molecular Genetics. 22 (15), 3023-3037 (2013).</li><li>Chen, Y. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeding+influences+adipose+tissue+responses+to+exercise+in+overweight+men.">Feeding influences adipose tissue responses to exercise in overweight men.</a> American Journal of Physiology Endocrinology and Metabolism. 313 (1), 84-93 (2017).</li><li>Mendham, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exercise+training+results+in+depot-specific+adaptations+to+adipose+tissue+mitochondrial+function.">Exercise training results in depot-specific adaptations to adipose tissue mitochondrial function.</a> Scientific Reports. 10 (1), 3785 (2020).</li><li>Carswell, K. A., Lee, M. J., Fried, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Culture+of+isolated+human+adipocytes+and+isolated+adipose+tissue.">Culture of isolated human adipocytes and isolated adipose tissue.</a> Methods in Molecular Biology. 806, 203-214 (2012).</li><li>Arner, P., Andersson, D. P., Backdahl, J., Dahlman, I., Ryden, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Weight+gain+and+impaired+glucose+metabolism+in+women+are+predicted+by+inefficient+subcutaneous+fat+cell+lipolysis.">Weight gain and impaired glucose metabolism in women are predicted by inefficient subcutaneous fat cell lipolysis.</a> Cell Metabolism. 28 (1), 45-54 (2018).</li><li>Mutter, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+frozen+and+RNALater+solid+tissue+storage+methods+for+use+in+RNA+expression+microarrays.">Comparison of frozen and RNALater solid tissue storage methods for use in RNA expression microarrays.</a> BMC genomics. 5, 88 (2004).</li><li>Coleman, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+fat+grafting:+more+than+a+permanent+filler.">Structural fat grafting: more than a permanent filler.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 118, 108-120 (2018).</li></ol>

Le protocole décrit et la vidéo associée fournissent un aperçu étape par étape d’une technique de mini-liposuccion pour obtenir des échantillons de tissu adipeux sous-cutané de la région abdominale. Ce groupe de recherche a effectué un total de 124 biopsies sur une période de 19 mois sans effets indésirables chez les participants. La procédure est sûre et associée à un risque minimal pour les participants ou l’équipe de biopsie, à condition que les mesures de sécurité décrites soient suivies. La ...

Le tissu adipeux peut fournir des informations utiles sur la fonction métabolique des humains. Le tissu adipeux sous-cutané humain est facilement accessible. Une technique d’extraction sous-cutanée du tissu adipeux a été décrite pour la première fois au milieu des années 801; Depuis lors, le protocole initial a été amélioré pour augmenter le rendement et améliorer la tolérance des participants à l’étude. Le tissu adipeux sous-cutané peut être obtenu à partir de nombreux sites, le plus souvent à partir du fessier1 et de la région abdominale2. Les échantillons de ces derniers peuvent être plus souhaitables car ils fournissent des informations plus précieuses dans les contextes liés aux maladies métaboliques3.
La biopsie sous-cutanée du tissu adipeux à l’aide de la méthode de mini-liposuccion peut être réalisée de manière sûre et efficace dans un cadre non clinique. Après une formation appropriée dispensée par un médecin certifié par le conseil d’administration et en utilisant une technique aseptique stricte, les chercheurs peuvent effectuer régulièrement ces biopsies avec un risque minimal pour les participants et les investigateurs. L’équipe de biopsie doit être composée d’au moins 2 personnes : la personne qui effectuera la biopsie et un assistant.
La personne responsable de la biopsie est chargée de confirmer l’identité du participant, de vérifier que le participant peut subir la procédure en toute sécurité (voir les étapes du protocole 2.1-2.4 ci-dessous), de s’assurer que le participant est à l’aise tout au long de la procédure, de s’assurer que la technique stérile est maintenue tout au long de la procédure, d’effectuer la procédure et de fournir au participant des procédures de suivi verbales et écrites. Le rôle de l’assistant est de manipuler et de traiter rapidement le tissu adipeux obtenu pour une analyse ultérieure et/ou un stockage. L’assistant aide également en étant les « mains non stériles » et en veillant à ce que le participant soit à l’aise tout au long de la procédure. Le but de cette vidéo et de cet article est de décrire la procédure de biopsie étape par étape pour obtenir en toute sécurité du tissu adipeux sous-cutané de la région abdominale.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Item: 14 G needle 
			14 G x 3 1/8&#34; 210 mm x 80 mm</td>
			<td>B Braun</td>
			<td>4665473</td>
			<td>Per biopsy: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: 21 G needle 
			21 G x 1 1/2&#34; 0.8 mm x 38 mm</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>AN*2138R1</td>
			<td>Per biopsy: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: 26 G&#160; needle 
			26 G x 1/2&#34; microlance needle 0.45 mm x 13 mm</td>
			<td>BD</td>
			<td>303800</td>
			<td>Per biopsy: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: 5 mL syringe 
			5 mL luer</td>
			<td>DB plastipak</td>
			<td>302187</td>
			<td>Per biopsy: 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Adhesive wound dressing 
			Opsite Post-Op Dressing 9.5 x 8.5</td>
			<td>Smith &#38; Nephew</td>
			<td>6600709</td>
			<td>Per biopsy: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Disposable sterile scalpel 
			Disposable Scalpel Sterile Blade no. 10</td>
			<td>Swann Morton</td>
			<td>/0501</td>
			<td>Per biopsy: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Icepack 
			BlueDot Reusable Hot/Cold Pack 26.5 cm x 13.0 cm</td>
			<td>NuCare</td>
			<td>F711</td>
			<td>Per biopsy: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Iodine based antiseptic 
			Videne antiseptic solution</td>
			<td>Ecolab Videne</td>
			<td>3030440</td>
			<td>Per biopsy: q.s</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Lidocaine 2% w/o epinephrine 
			Lidocaine 2% injection 5 mL</td>
			<td>B Braun</td>
			<td>3558553</td>
			<td>Per biopsy: 5 mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Non-sterile gloves 
			Starguard sensitive powder free nitrile gloves</td>
			<td>Starguard</td>
			<td>SG-N-S</td>
			<td>Per biopsy: pair</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Sodium chloride 0.9% 
			Sodium chlride 0.9% w/v intravenous infusion BP</td>
			<td>BBraun</td>
			<td>S8004-5384</td>
			<td>Per biopsy: q.s.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Stabilization solution* 
			RNAlater Stabilization Solution</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>AM7020</td>
			<td>Per biopsy: q.s</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Sterile forceps 
			Sterile forceps</td>
			<td>Rocialle</td>
			<td>RML109-006</td>
			<td>Per biopsy: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Sterile gauze swabs 
			Non woven swabs sterile 7.5 x 7.5 cm</td>
			<td>Prestige</td>
			<td>1860</td>
			<td>Per biopsy: 5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Sterile gloves 
			Prestige soft vinyl sterile powder free medical gloves</td>
			<td>Prestige</td>
			<td>S: P4301 
			M:P3302 
			L:P3301</td>
			<td>Per biopsy: pair</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Sterile Microcentrifuge tubes 
			1.5 mL Sterile Microcentrifuge Tubes</td>
			<td>StarLab</td>
			<td>I1415-5510</td>
			<td>Per biopsy: q.s</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Sterile sheet 
			Paper plain white 90 x 90 cm</td>
			<td>Rocialle</td>
			<td>RML 126-216</td>
			<td>Per biopsy: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Item: Weighing boat 
			Diamond shape weigh boats</td>
			<td>Heathrow Scientific</td>
			<td>HS1427C</td>
			<td>Per biopsy: 1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>* denotes optional materials</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

human subcutaneous adipose tissue sampling using a mini-liposuction technique

Les études sur le tissu adipeux sont utiles pour comprendre les conditions métaboliques et autres. Le tissu adipeux sous-cutané humain est accessible. Avec une formation appropriée et le strict respect de la technique aseptique, les échantillons adipeux sous-cutanés peuvent être obtenus de manière sûre et efficace dans un cadre non clinique par les chercheurs. Après l’administration d’un anesthésique local latéral à l’ombilic, une aiguille de 14 G fixée à une seringue de 5 ou 10 ml est insérée à travers la peau dans le tissu sous-cutané. Sous aspiration, la seringue est déplacée dans un mouvement alternatif de tranchage pour isoler des fragments de tissu adipeux. Le retrait du piston suffit à garantir que les fragments de tissu adipeux sont aspirés à travers l’aiguille dans la seringue. Une seule biopsie peut recueillir environ 200 mg de tissu. Cette technique de biopsie est très sécuritaire pour les participants et le personnel de recherche. Après la biopsie, les participants peuvent reprendre la plupart des activités quotidiennes, bien qu’ils doivent éviter de nager et les activités trop intenses pendant 48 heures pour éviter des saignements excessifs. Les participants peuvent subir en toute sécurité 2 biopsies en une seule journée, ce qui signifie que la technique peut être appliquée dans les études d’intervention aiguë avant-après.

La procédure de biopsie du tissu adipeux décrite est une technique efficace et à faible risque pour les chercheurs afin d’obtenir des échantillons de tissu adipeux sous-cutané de volontaires humains. Nous avons effectué 39 biopsies sous-cutanées du tissu adipeux en utilisant la procédure décrite chez 11 femmes en bonne santé de poids normal (âge, 27,4 ± 3,3 ans ; indice de masse corporelle (IMC), 22,6 ± 1,5 kg.m2). Tous les participants se sont rendus au laboratoire entre 07h00 et 10h00 après u...

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Human Subcutaneous Adipose Tissue Sampling Using a Mini-Liposuction Technique

Le manuscrit et la vidéo associée démontrent une technique de biopsie percutanée pour obtenir des échantillons de tissu adipeux sous-cutané dans les zones entourant l’ombilic. Cette méthode est un moyen efficace et à faible risque d’étudier une gamme de paramètres (par exemple, l’expression des gènes ou des protéines, l’activité enzymatique, la teneur en lipides) dans le tissu adipeux.

Prélèvement de tissu adipeux sous-cutané humain à l’aide d’une technique de mini-liposuccion

Studies on adipose tissue are useful in understanding metabolic and other conditions. Human subcutaneous adipose tissue is accessible. With appropriate ...

Cette technique est particulièrement bien adaptée à toute étude qui met en œuvre un plan d’étude avant et après ou qui veut caractériser une population spécifique et ne nécessite pas de quantités excessives de tissu corporel. Les principaux avantages sont que la technique est relativement rentable et presque sans douleur. Vous pouvez effectuer plusieurs biopsies sur le même participant le même jour.Cette technique peut aider à la compréhension de la physiologie du tissu adipeux, en particulier la compréhension de la maladie et de la fonction métabolique. Pour commencer, assurez-vous que le laboratoire dispose d’une salle privée appropriée avec des surfaces propres et non poreuses, et un lit propre et confortable sur lequel le participant peut s’allonger en décubitus dorsal. Ensuite, en utilisant un spray à 70% d’éthanol et des serviettes en papier propres, nettoyez toutes les surfaces requises pour la procédure de biopsie.Ensuite, placez les bacs jetables et les sacs de taille pour objets pointus ou tranchants appropriés à portée de main de la zone où la biopsie sera effectuée et de la personne qui effectue la biopsie. Avant l’arrivée du participant dans le laboratoire, installez l’équipement nécessaire à la procédure sur un chariot de médecine générale fraîchement nettoyé. Après avoir obtenu le consentement éclairé écrit, demandez au participant de remplir un questionnaire écrit pour vous assurer qu’il n’est pas allergique aux matériaux utilisés dans cette procédure.Après avoir confirmé verbalement l’identité du participant, assurez-vous que le participant comprend la procédure à effectuer et les effets secondaires potentiels, y compris les ecchymoses, la douleur et l’infection. En plus du consentement éclairé écrit, prenez également le consentement verbal du participant. Ensuite, décrivez la procédure au participant en insistant sur la façon dont l’administration de l’anesthésique et de la biopsie peut se sentir.Assurez-vous également que le participant est à l’aise de continuer. Encore une fois, assurez-vous que le participant n’a pas d’allergies à l’anesthésique local, à certains métaux et aux mollusques et crustacés et qu’il ne prend aucune forme d’anticoagulant. Une fois que le participant est couché en décubitus dorsal, identifiez le site de biopsie à environ cinq à 10 centimètres latéralement à l’ombilic.Ensuite, lavez-vous les mains avec du savon et de l’eau tiède conformément aux directives médicales standard. Et placez une feuille stérile sur le chariot ou la zone de travail propre en prenant soin de ne toucher que les bords extérieurs de la feuille. Mettez des gants chirurgicaux stériles en utilisant une technique d’asepsie appropriée.Ensuite, demandez à l’assistant d’ouvrir le reste de l’équipement de manière à ce qu’il tombe sur la feuille stérile préparée sans aucun contact ou contamination. Assurez-vous que l’assistant ne touche pas les articles lorsqu’il les retire de leur emballage stérile. Ensuite, demandez à l’assistant de distribuer une petite quantité de solution à base d’iode sur une gaze stérile.Ensuite, désinfectez la peau dans un mouvement en spirale se déplaçant vers l’extérieur du site de biopsie proposé. Enlevez l’excès de liquide, le cas échéant, en essuyant avec de la gaze stérile fraîche. Confirmez verbalement le contenu et la date de péremption du flacon d’anesthésique local avec l’assistant.Demandez ensuite à l’assistant de tenir le flacon ouvert à l’envers. Et à l’aide d’une aiguille de calibre 21, prélever cinq millilitres d’anesthésique local dans une seringue. Jetez l’aiguille dans l’essorage tranchant et assurez-vous que la seringue est exempte de bulles d’air.Ensuite, appliquez une aiguille de calibre 26 sur la seringue et expulsez les bulles d’air. Ensuite, pincez doucement la peau abdominale et le tissu adipeux en l’éloignant de la paroi abdominale et insérez l’aiguille horizontalement dans le tissu sous-cutané à un angle ne dépassant pas 10 degrés par rapport à la surface de la peau. Ensuite, retirez le piston de la seringue et 0,5 millilitre supplémentaire.Si du sang apparaît dans la seringue, retirez et réinsérez l’aiguille sous un angle différent, puis soulevez un bulle de deux à quatre millimètres de diamètre pour anesthésier la zone d’insertion. Avancez l’aiguille dans le tissu sous-cutané et administrez un millilitre de lidocaïne en forme d’éventail. Retirez et jetez l’aiguille de calibre 26.Ensuite, appliquez une aiguille de calibre 21 sur la seringue et administrez les quatre millilitres restants de lidocaïne en forme d’éventail. Après cinq minutes à l’aide d’un scalpel stérile, poussez doucement la zone de biopsie pour vous assurer que l’anesthésique local a fait effet et identifier les limites de la zone anesthésiée. Ensuite, attendez une minute ou deux de plus et réévaluez.Une fois que vous êtes convaincu que l’anesthésie fonctionne, pincez doucement la peau et le tissu adipeux et faites une petite ponction d’un à deux millimètres dans la peau. Ensuite, appliquez une aiguille de calibre 14 sur une seringue de cinq ou 10 millilitres. Ensuite, tout en pinçant doucement la peau et le tissu adipeux, insérez doucement l’aiguille à travers la ponction dans le tissu adipeux approximativement au centre de la zone anesthésiée à un angle ne dépassant pas 10 degrés par rapport à la surface de la peau.Appliquez l’aspiration en retirant le piston jusqu’à environ 2,5 millilitres. Ensuite, prélevez la biopsie en déplaçant l’aiguille dans un mouvement rapide, d’avant en arrière pour trancher des fragments de tissu adipeux. Après 30 secondes, tournez l’aiguille et la seringue à 90 degrés et répétez cette procédure pour briser les fragments de tissu adipeux qui sont ensuite aspirés dans la seringue par aspiration.Après environ une minute, retirez l’aiguille et videz le contenu de la seringue sur une couche de gaze recouvrant un bateau en déclin en veillant à ce que la lumière de l’aiguille soit orientée vers le bas pour éviter les éclaboussures de sang potentielles. Répétez la procédure de prélèvement de biopsie au maximum trois fois comme démontré et vérifiez que le participant est satisfait de procéder avant de répéter la procédure à chaque fois. Lors de la collecte des échantillons supplémentaires, demandez à l’assistant de traiter et de préparer les échantillons précédemment prélevés pour analyse ou stockage.Lors du prélèvement d’échantillons satisfaisants, placez une à deux couches de gaze stérile sur la plaie perforante. Ensuite, placez un sac de glace et appliquez fermement une pression pendant environ 10 minutes pour induire l’homéostasie. Une fois l’homéostasie effectuée, essuyez toute solution à base d’iode ou sang séché avec de la gaze stérile, appliquez un pansement adhésif avec un tampon absorbant sur le site.Après avoir vérifié que le participant se sent bien, fournissez des instructions verbales et écrites sur le suivi du site de biopsie, en soulignant que les participants présenteront probablement des ecchymoses au cours des prochains jours. Éliminez les objets tranchants usagés et les matériaux contaminés dans des objets tranchants ou des contenants de déchets cliniques désignés, puis nettoyez toutes les surfaces utilisées dans la procédure de biopsie en utilisant de l’éthanol à 70 % et placez les articles jetables et non jetables de literie dans des sacs cliniques appropriés ou dans des sacs d’élimination ou de nettoyage appropriés, respectivement. Dans cette étude, 39 biopsies de tissu adipeux sous-cutané ont été réalisées chez 11 femmes de poids normal en bonne santé.En utilisant cette procédure, une moyenne de 192 milligrammes d’échantillon a été obtenue. Le choix d’un site de biopsie trop près de l’ombilic peut entraîner des ecchymoses inutilement étendues. Une liste des complications vécues par les participants à la suite de biopsies du tissu adipeux est résumée ici.Assurez-vous que la peau est pincée en tout temps pour éviter que l’aiguille ne perfore la couche profonde du muscle ou ne perfore l’autre côté de la peau. La pratique permet de s’assurer que la formation est effectuée par un médecin qualifié avant de l’essayer sur des participants réels. Et lors de l’insertion de l’aiguille pour briser le tissu adipeux, assurez-vous que la personne qui fait la biopsie est suffisamment certaine pour briser l’échantillon.

Research

JoVE Journal

Medicine

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Recherche

Médecine

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