Name: nuclear migration in the drosophila oocyte
Uploaded: 2021-05-13T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Nuclear Migration in the Drosophila Oocyte at JoVE.com

ونحن ممتنون للغاية لجان أنطوان Lepesant ونيكولاس تيسو الذي وضع أصلا البروتوكول وتقاسم بعض العناصر الرسومية من الشكل 3 معنا. نشكر فاني رولاند جوسلين التي التقطت صور الشكل 4. كما نشكر أعضاء المختبر الآخرين على المناقشات المفيدة التي ساهمت في تحسين هذه التقنية وناثانيل هينيمان على تعليقاته التي ساعدت على تحسين هذه المخطوطة. نحن نعترف بالمنشأة الأساسية ImagoSeine التابعة لمعهد جاك مونود، عضو مؤسسة فرنسا للتصوير الحيوي (ANR-10-INBS-04). تدعم Maëlys Loh زمالة دكتوراه من وزارة البحوث الفرنسية (MESRI). تم دعم أنطوان غيشيه وفريد برنارد من قبل ARC (غرانت PJA20181208148) وجمعية Entreprises contre le Cancer (غرانت جيفلوك 2020 #221366) ومنحة ظهور من جامعة IdEx في باريس (ANR-18-IDEX-0001).

1. التصوير إعداد المتوسطة
<ol><li>إعداد وسائل الإعلام الطازجة في يوم الاستخدام. Pipette 200 ميكرولتر من شنايدر المتوسطة (تحتوي على L-الجلوتامين و 0.40 غرام / لتر من NaHCO3 تكملها 10٪ حرارة تعطيل مصل العجل الجنيني، 100 U/mL من البنسلين، و 100 ملغم / مل من الستريبتوميسين).</li>
	<li>تكملة مع 30 ميكرولتر من الأنسو?...

<ol>
	<li>Merkle, J. A., Wittes, J., Sch&#252;pbach, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Signaling+between+somatic+follicle+cells+and+the+germline+patterns+the+egg+and+embryo+of+Drosophila.">Signaling between somatic follicle cells and the germline patterns the egg and embryo of Drosophila.</a> Current Topics in Developmental Biology. 140, 55-86 (2020).</li><li>Roth, S., Lynch, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Symmetry+breaking+during+drosophila+oogenesis.">Symmetry breaking during drosophila oogenesis.</a> Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 1 (2), 001891 (2009).</li><li>Bernard, F., Lepesant, J. -. A., Guichet, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nucleus+positioning+within+Drosophila+egg+chamber.">Nucleus positioning within Drosophila egg chamber.</a> Seminars in Cell and Developmental Biology. 82, 25-33 (2017).</li><li>Koch, E. A., Spitzer, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+effects+of+colchicine+on+oogenesis+in+Drosophila:+Induced+sterility+and+switch+of+potential+oocyte+to+nurse-cell+developmental+pathway.">Multiple effects of colchicine on oogenesis in Drosophila: Induced sterility and switch of potential oocyte to nurse-cell developmental pathway.</a> Cell and Tissue Research. 228 (1), 21-32 (1983).</li><li>Januschke, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+centrosome-nucleus+complex+and+microtubule+organization+in+the+Drosophila+oocyte.">The centrosome-nucleus complex and microtubule organization in the Drosophila oocyte.</a> Development. 133, 129-139 (2006).</li><li>Tissot, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+molecular+cues+ensure+a+robust+microtubule-dependent+nuclear+positioning+in+the+Drosophila+oocyte.">Distinct molecular cues ensure a robust microtubule-dependent nuclear positioning in the Drosophila oocyte.</a> Nature Communications. 8, 15168 (2017).</li><li>Cetera, M., Horne-Badovinac, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Round+and+round+gets+you+somewhere:+collective+cell+migration+and+planar+polarity+in+elongating+Drosophila+egg+chambers.">Round and round gets you somewhere: collective cell migration and planar polarity in elongating Drosophila egg chambers.</a> Current Opinion in Genetics &amp; Development. 32, 10-15 (2015).</li><li>Hudson, A. M., Petrella, L. N., Tanaka, A. J., Cooley, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mononuclear+muscle+cells+in+Drosophila+ovaries+revealed+by+GFP+protein+traps.">Mononuclear muscle cells in Drosophila ovaries revealed by GFP protein traps.</a> Developmental Biology. 314, 329-340 (2008).</li><li>Gervais, L., Claret, S., Januschke, J., Roth, S., Guichet, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PIP5K-dependent+production+of+PIP2+sustains+microtubule+organization+to+establish+polarized+transport+in+the+Drosophila+oocyte.">PIP5K-dependent production of PIP2 sustains microtubule organization to establish polarized transport in the Drosophila oocyte.</a> Development. 135 (23), 3829-3838 (2008).</li><li>Vill&#225;nyi, Z., Debec, A., Timinszky, G., Tiri&#225;n, L., Szabad, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long+persistence+of+importin-+b+explains+extended+survival+of+cells+and+zygotes+that+lack+the+encoding+gene+'+n+Villa.">Long persistence of importin- b explains extended survival of cells and zygotes that lack the encoding gene ' n Villa.</a> Mechanisms of Development. 3-4 (125), 196-206 (2008).</li><li>Schindelin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fiji:+An+open-source+platform+for+biological-image+analysis.">Fiji: An open-source platform for biological-image analysis.</a> Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).</li><li>Prasad, M., Jang, A. C. C., Starz-Gaiano, M., Melani, M., Montell, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+protocol+for+culturing+drosophila+melanogaster+stage+9+egg+chambers+for+live+imaging.">A protocol for culturing drosophila melanogaster stage 9 egg chambers for live imaging.</a> Nature Protocols. 2 (10), 2467-2473 (2007).</li><li>Weil, T. T., Parton, R. M., Davis, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preparing+individual+Drosophila+egg+chambers+for+live+imaging.">Preparing individual Drosophila egg chambers for live imaging.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (60), (2012).</li><li>Chanet, S., Huynh, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Collective+cell+sorting+requires+contractile+cortical+waves+in+germline+cells.">Collective cell sorting requires contractile cortical waves in germline cells.</a> Current Biology. 30 (21), 4213-4226 (2020).</li><li>Zhao, T., Graham, O. S., Raposo, A., St Johnston, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Growing+microtubules+push+the+oocyte+nucleus+to+polarize+the+drosophila+dorsal-ventral+axis.">Growing microtubules push the oocyte nucleus to polarize the drosophila dorsal-ventral axis.</a> Science. 336 (6084), 999-1003 (2012).</li><li>Legent, K., Tissot, N., Guichet, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+7+Oogenesis+using+fixed+and+live+imaging.">Chapter 7 Oogenesis using fixed and live imaging.</a> Drosophila Oogenesis: Methods and Protocols. 1328, 99-112 (2015).</li></ol>

بروتوكولات أخرى تصف كيفية إعداد وثقافة Drosophila البيض غرف ex vivo لتصوير حية المقايسة12,13. حداثة هذا البروتوكول هو استخدام غرفة التصوير التي شيدت باستخدام شريحة الألومنيوم مجوفة، وأغطية، وغشاء نفاذية O2/ CO2. الميزة الرئيسية لهذا الإعداد هو الحد من ...

لعدة سنوات، ظهرت البويضات دروسوفيلا كنظام نموذجي لدراسة الهجرة النووية. تتطور البويضات الدروسوفيليا في بنية متعددة الخلايا تسمى غرفة البيض. تشمل غرف البيض 16 خلية جرثومية (15 خلية ممرضة والبويضات) محاطة بطبقة ظهارية من الخلايا الجسدية الجريبية. تم تقسيم تطوير غرفة البيض إلى 14 مرحلة(الشكل 1A)، والتي خلالها تنمو البويضات وتتراكم الاحتياطيات اللازمة للتطور المبكر للجنين. أثناء التطوير ، عند إعادة تنظيم microtubule والنقل غير المتماثل للمحددات الأمومية ، تستقطب البويضات على طول المحاور الأمامية الظهرية والبطينية الظهرية. تحدد هذه المحاور محاور القطبية اللاحقة للجنين والبالغ الناشئة عن تخصيب هذه البويضة1. خلال تكوين الخلايا، تعتمد النواة وضعا غير متماثل في البويضات. في المرحلة 6، يتمركز النواة في الخلية. عند إشارة لم يتم تحديدها بعد المنبعثة من الخلايا الجريبية الخلفية التي تتلقاها البويضات ، تهاجر النواة نحو التقاطع بين أغشية البلازما الأمامية والظرية في المرحلة 7 (الشكل 1B)2،3. هذا الموقف غير المتماثل مطلوب للحث على تحديد المحور الظهري البطني.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62688/62688fig1v2.jpg"> الشكل 1: Drosophila melanogaster غرف البيض. (أ) ovariole الثابتة من الذباب المعدلة وراثيا التعبير عن FS(2) كيت-GFP أن التسميات المغلفات النووية وubi-PH-RFP التي تسمي أغشية البلازما. ويتكون ovariole من تطوير غرف البيض في مراحل مختلفة. يزداد النضج على طول المحور الأمامي الخلفي مع الجرثومة في الطرف الأمامي (يسار) حيث تتواجد الخلية الجذعية الجرثومية والمرحلة القديمة في الطرف الخلفي (يمين). (ب) Z-إسقاط غرفة البيض الحية عن طريق الغزل القرص المجهري confocal في المرحلة 6 من oogenesis (يسار)، والتي تركزت النواة في البويضات. سوف تهاجر النواة لاعتماد وضع غير متماثل في المرحلة 7 (يمين) ملامسة غشاء البلازما الأمامي (بين البويضات وخلية الممرضة) وغشاء البلازما الجانبي (بين البويضات والخلايا الجريبية). هذا الموقف سوف تحفز على تحديد الجانب الظهري، وبالتالي، محور الظهر البطني من غرفة البيض. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62688/62688fig01large.jpg" target="_blank">يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
وقد درست هذه الهجرة النووية على مدى عقود عديدة على الأنسجة الثابتة عن طريق التثابت المناعي. وقد جعل هذا النهج بشكل ملحوظ من الممكن إثبات أن هذه العملية تعتمد على شبكة كثيفة من microtubules4،5. في الآونة الأخيرة ، وضعنا بروتوكولا يقدم شروطا متوافقة مع التصوير الحي للبويضات خلال عدة ساعات مما يجعل من الممكن دراسة هذه العملية ديناميكيا6.
ومن ثم، لأول مرة، تمكنا من وصف أن النواة لها مسارات تفضيلية ومميزة أثناء هجرتها، واحدة على طول غشاء البلازما الأمامي (APM) وأخرى على طول غشاء البلازما الجانبي (LPM) للبويضة (الشكل 2). وتؤكد هذه النتائج الأخيرة أهمية بروتوكولات التصوير الحي عند دراسة العمليات الدينامية مثل الهجرة النووية.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62688/62688fig02.jpg"> الشكل 2:تمثيل تخطيطي لمسارات الترحيل المختلفة للنواة. في المرحلة 6 من تكوين البويضات هي خلية كبيرة مع نواة مركزية. في هذه المرحلة ، يتم تعيين محور القطبية الأمامي الخلفي مع غشاء البلازما الخلفي / الجانبي للبويضة في اتصال مع الخلايا الجريبية وغشاء البلازما الأمامي (باللون الأصفر) على اتصال مع الخلايا الممرضة2. وقد سبق أن ذكرت أن النواة يمكن أن تهاجر إما على طول غشاء البلازما الأمامي (APM)، على طول غشاء البلازما الجانبي (LPM)، أو من خلال السيتوبلازم (STAD، مباشرة إلى القشرة الأمامية الظهرية)6. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62688/62688fig02large.jpg" target="_blank">يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
هجرة نواة البويضات هي ظاهرة تبلغ حوالي 3 ح6، وحتى الآن ، فإن الحدث الذي يؤدي إلى بدء الهجرة الفعلية غير معروف. كما يمكن تأخير بدء الهجرة بسبب طفرات البروتين المستخدمة لدراسة هذه الآلية. هذه المتغيرات غير معروفة حفزتنا على الحصول على الصور على مدى فترات زمنية طويلة (10-12 ساعة). لذلك ، من المهم ضمان بقاء البويضات على قيد الحياة. كما تتطور غرفة البيض، فإنه elongates على طول المحور الأمامي الخلفي من كروية إلى شكل بيضاوي الشكل. هذا الاستطالة مدفوع بتدوير الخلايا الجريبية ، والذي يحدث من المرحلة 1 إلى المرحلة 8 ، عموديا على المحور الأمامي الخلفي7. بالإضافة إلى ذلك ، يحيط غمد أنبوبي من العضلات مع خاصية pulsatile بغرف البيض. وظيفتها الفسيولوجية هي دفع بصيلات النامية نحو oviduct باستمرار8. من أجل الحد من الحركات التي تحفز التذبذبات من غرف البيض بعد تشريحها، قمنا بتصميم غرفة صغيرة مراقبة قياس 150 ميكرومتر في الارتفاع(الشكل 3A). هذا الارتفاع أعلى بشكل هامشي من حجم الجريب في المرحلتين 10 و 11. يحد بشكل كبير من الحركات الرأسية للعينة مع الحفاظ على دوران غرفة البيض ، مما يؤدي إلى عيوب محدودة في تطور الجريبات. ثم نقوم بإجراء التصوير الحي لمدة 12 ساعة على غرف البيض تشريحها عن طريق عمليات الاستحواذ متعددة المواقع الفاصل الزمني باستخدام المجهر confocal الغزل القرص. هنا نصف بروتوكولنا لدراسة الهجرة النووية البويضات بين المرحلتين 6 و 7.
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62688/62688fig3v3.jpg"> الشكل 3:التمثيل التخطيطي لغرفة المراقبة. (A) (العرض العلوي) الأبعاد الدقيقة لشريحة الألومنيوم مع الارتفاعات (A') والمحيط (A') من البئر المحفور في منتصف الشريحة. (ب)(عرض أسفل) يتم إغلاق غطاء حجب البئر إلى الشريحة مع الشحوم السيليكون. (ج) (أعلى عرض) تشريح ovarioles تطوير في وسيلة التصوير التي تغطيها غشاء نفاذية الغاز. يستخدم زيت الهالوكربون لتثبيت الغشاء. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62688/62688fig03large.jpg" target="_blank">يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>
من أجل متابعة الهجرة النووية وتقييم المسارات بدقة في البويضات ، هناك حاجة إلى علامات لكل من المغلف النووي وغشاء البلازما. ولهذا الغرض، تم اختيار اثنين من المتحولين جنسيا التي لديها نسبة إشارة عالية / الضوضاء ولا تتلاشى على مدار التصوير الحي. لتسمية غشاء البلازما، ينصح باستخدام P [ubi-PH-RFP] الذي يشفر مجال Pleckstrin Homology (PH) من فوسفوليباز C الإنسان ∂1 (PLC∂1) تنصهر في RFP. هذا المجال PH يربط إلى PH الفوسفوينوسيتيد PI(4,5)P2 موزعة على طول غشاء البلازما من البويضات9. للمغلف النووي، P [PPT-un1]Fs(2) كيت-GFP البروتين فخ سلالة حيث يتم إدراج GFP داخل ترميز الجين وDrosophila ß-importin يعرض إشارة متجانسة ومكثفة10. يتم وضع الذباب الصغير (1-2 أيام من العمر) في قوارير طازجة تحتوي على الخميرة الجافة 24-48 ساعة قبل تشريح المبيض.
لهذا الفحص التصوير الحي، قطعة سميكة 1 ملم من الألومنيوم، وهو غير تفاعلي للعينة، وقد قطعت في أبعاد شريحة المجهر. لديها ثقب قطره 16 ملم في وسط الشريحة التي تم counterbored إلى 0.85 ملم. هذا كونتربور لديه ثقب قطره 6 مم إضافية مع عمق 150 ميكرومتر (الشكل 3A). يتم لصقها على غطاء مع الشحوم السيليكون (خامل للعينة) في الجزء السفلي من غرفة الألومنيوم (الشكل 3B). بعد وضع العينات في البئر المتوسطة الملء ، يتم وضع غشاء نفاذية إلى O2/ CO2 تبادل على المتوسط وتحيط بها زيت الهالوكربون(الشكل 3C).
لتشريح، فمن المستحسن استخدام ملقط الفولاذ المقاوم للصدأ مع البعد تلميح من 0.05 × 0.02 ملم، والإبر قطرها 0.20 ملم لفصل ovarioles (الشكل 4B،C). يتم تصوير النوى المهاجرة على المجهر المقلوب الغزل القرص CSU-X1 مجهزة بكاميرا. تم الحصول على صور متعددة المواقع عن طريق الفاصل الزمني كل 15 دقيقة عند 24 درجة مئوية. يسمح الفاصل الزمني لمدة 15 دقيقة بإجراء عمليات الاستحواذ متعددة المواقع مع bleaching محدودة من البروتينات الفلورية والسمية الضوئية للعينات. وعلاوة على ذلك، فإن قصر الفترة لن يوفر بيانات أكثر إفادة بكثير لاتباع المسارات النووية. تتم معالجة الأفلام وتحليلها عبر برنامج فيجي11.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Anesthetize CO2 pad</td>
			<td>Dutscher</td>
			<td>789060</td>
			<td>Anesthetize flies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslip (24x50 mm)</td>
			<td>Knittel Glass</td>
			<td>VD12450Y100A</td>
			<td>Observation-chamber preparation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps Dumont #5</td>
			<td>Carl Roth</td>
			<td>K342.1</td>
			<td>Dissection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless steel needles</td>
			<td>Entosphinx</td>
			<td>20</td>
			<td>Dissection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heat-inactivated fetal calf serum</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH</td>
			<td>F7524</td>
			<td>Imaging medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin solution bovine pancreas</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH</td>
			<td>10516 - 5ml</td>
			<td>Imaging medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicilin/Streptomycin solution</td>
			<td>SIGMA-ALDRICH</td>
			<td>P0781</td>
			<td>Imaging medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Permeable membrane</td>
			<td>Leica</td>
			<td>11521746</td>
			<td>Observation-chamber preparation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Schneider Medium</td>
			<td>Pan Biotech</td>
			<td>P04-91500</td>
			<td>Imaging medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Silicon grease</td>
			<td>BECKMAN COULTER</td>
			<td>335148</td>
			<td>Observation-chamber preparation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spinning disk confocal</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>CSU-X1</td>
			<td>Nuclear migration observation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Voltalef oil 10S</td>
			<td>VWR</td>
			<td>24627 - 188</td>
			<td>Observation-chamber preparation</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

nuclear migration in the drosophila oocyte

التصوير بالخلايا الحية ضروري بشكل خاص لفهم الآليات الخلوية والجزيئية التي تنظم حركات العضيات ، وإعادة ترتيب الهيكل الخلوي ، أو نقش القطبية داخل الخلايا. عند دراسة تحديد مواقع نواة البويضات ، تعد تقنيات التصوير الحي ضرورية لالتقاط الأحداث الديناميكية لهذه العملية. غرفة البيض Drosophila هو هيكل متعدد الخلايا ونظام نموذج ممتاز لدراسة هذه الظاهرة بسبب حجمها الكبير وتوافر العديد من الأدوات الوراثية. خلال Drosophila منتصف oogenesis ، تهاجر النواة من موقع مركزي داخل البويضات لاعتماد موقف غير متماثل بوساطة القوى المولدة من microtubule. هذه الهجرة وتحديد المواقع من النواة ضرورية لتحديد محاور القطبية للجنين وذبابة الكبار اللاحقة. إحدى خصائص هذه الهجرة هي أنها تحدث في ثلاثة أبعاد (ثلاثية الأبعاد) ، مما يخلق ضرورة للتصوير الحي. وهكذا، لدراسة الآليات التي تنظم الهجرة النووية، قمنا بتطوير بروتوكول لتنمية غرف البيض تشريح وإجراء التصوير الحي لمدة 12 ساعة عن طريق الاستحواذ الفاصل الزمني باستخدام المجهر الكونفوجال الغزل القرص. وعموما، تسمح لنا ظروفنا بالحفاظ على غرف بيض دروسوفيلا حية لفترة طويلة من الزمن، مما يمكن من تصور إتمام الهجرة النووية في عدد كبير من العينات ثلاثية الأبعاد.

قبل الهجرة، تكون النواة ديناميكية وتتأرجح حول موقع مركزي خلال فترة تعرف بأنها ما قبل الهجرة. تعكس هذه الحركات الصغيرة توازنا بين قوى الدفع والسحب التي تحافظ على التوازن في منتصف البويضات. ومن خلال تحديد مسارات النوى، أظهرنا أن مساري APM وLPM كان لديهما نسب مماثلة. نحن نحدد طبيعة المسار من خلا...

Watch this Scientific Journal Video about Nuclear Migration in the Drosophila Oocyte at JoVE.com

Nuclear Migration in the Drosophila Oocyte

في Drosophila، تخضع نواة البويضات لهجرة تعتمد على الميكروتبول أثناء تكوين الخلايا. هنا، ونحن نصف البروتوكول الذي تم تطويره لمتابعة الهجرة من خلال إجراء التصوير الحي على غرف البيض السابق فيفو. يحافظ إجراءنا على غرف البيض على قيد الحياة لمدة 12 ساعة للحصول على أفلام متعددة المواقع ثلاثية الأبعاد بفاصل زمني باستخدام المجهر confocal القرص الغزل.

الهجرة النووية في كريات الدم البيضاء Drosophila

Live cell imaging is particularly necessary to understand the cellular and molecular mechanisms that regulate organelle movements, cytoskeleton ...

هذه التقنية تجعل من الممكن مراقبة العمليات البيولوجية الطويلة في غرف بيض دروسوفيلا المتشرذم ، مثل الهجرة النووية البويضات ، باستخدام المجهر التصوير الحي. يصف هذا البروتوكول كيفية الحفاظ على غرف البيض المتشريح على قيد الحياة لمدة 12 ساعة لإجراء المجهر التصوير الحي. للبدء، ماصة 200 ميكرولتر من شنايدر المتوسطة وتكملة مع 30 ميكرولتر من 10 ملليغرام لكل ملليلتر الأنسولين، ثم إضافة أربعة ميكرولترات من الحرارة المعطل مصل العجل الجنين.استخدام طرف ماصة لتطبيق كمية صغيرة من الشحوم السيليكون في جميع أنحاء حفرة على الجانب السفلي من الشريحة ثقب. ضع غطاء، واستخدم الطرف العريض من طرف ماصة للضغط على غطاء الغطاء لتسطيح شحوم السيليكون لإنشاء حلقة سيليكون داخلية على الشريحة. نقل الذباب الأنثوي المخدر إلى بئر التشريح الذي يحتوي على 150 ميكرولتر من وسيط التصوير.لتشريح الأنثى، استخدم ملقط للاستيلاء على الصدر وقرصة كفاح البطن الظهري مع زوج ثان من ملقط. إزالة الرحم، أوفيدوكت، وغمد العضلات بعناية. عزل وفصل زوج من المبيضين مرئية على فتحة لطيف.ضع قطرة من 10 إلى 15 ميكرولتر من وسيط التصوير على المبيضين، ونقل مبيض واحد إلى غرفة التصوير. لفصل المبيضين، استخدم الإبرة لعقد النهاية الخلفية للمبيض. استخدام إبرة أخرى لسحب بعناية الجرثومة لإغاظة ovarioles وبصرف النظر.عقد غمد مع إبرة واحدة وسحب ovariole من خلال غرف أكبر مع إبرة أخرى لإزالة غمد العضلات المتبقية على غرف البيض. السماح للovariole غير المورثة تغرق والاتصال coverlip. إزالة المراحل المتأخرة وبقية المبيضين من غرفة النوم الدقيقة باستخدام ملقط.استخدام الإبر لمسافة بعناية ovarioles لتسهيل عملية الاستحواذ. قطع صغيرة 10 في 10 ملليمتر مربع من الغشاء نفاذية. تطبيق بعناية الغشاء على الجزء العلوي من وسيلة التصوير لطرد أي فقاعات الهواء.ثم ختم بإحكام الغرفة مع طبقة رقيقة من زيت الهالوكربون حول البئر على كفاف الغشاء. ضع إعداد التصوير على حامل الشريحة للمجهر المقلوب واستخدم هدف 40X. تم التقاط هجرة نواة البويضات لغرفة بيض من النوع البري باستخدام المجهر التصوير الحي.تصل النواة إما إلى غشاء البلازما الأمامي أو غشاء البلازما الجانبي قبل الانزلاق على طول المسارات للوصول إلى موقعها النهائي عند تقاطع غشاءي البلازما. تشوهات الأغشية، والخلايا الجريبية غير المنظمة، وتوقف الخلايا، والنوى تقلصت هي العلامات الأولى لغرف البيض الموت. لا يتم الكشف عن البويضات المتحللة قبل ثماني ساعات من التصوير عادة.ومع ذلك ، فإن الحالات النادرة من الانحطاط المبكر ترجع إلى مشاكل أثناء التشريح أو الخطوات المتصاعدة. إتلاف غرف البيض يعرض بقاءهم للخطر. تشريح دقيق اليد الدقيقة جدا وإعداد غرفة الميكروشامبر هي ذات أهمية قصوى.سمح لنا هذا الإجراء بتصور أن نواة البويضات يمكن أن تتخذ ثلاثة مسارات مختلفة أثناء هجرتها وتنظم العضيات المختلفة هذه المسارات داخل البويضات.

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Nuclear Migration in the Drosophila Oocyte

Optimization of the Wound Scratch Assay to Detect Changes in Murine Mesenchymal Stromal Cell Migration After Damage by Soluble Cigarette Smoke Extract

تعظيم الاستفادة من الفحص الجرح خدش للكشف عن تغيرات في الفئران الوسيطة اللحمية الهجرة الخلية بعد الأضرار التي كتبها القابلة للذوبان استخراج دخان السجائر

Cell migration is vital to many physiological and pathological processes including tissue development, repair, and regeneration, cancer metastasis, and ...

Functional Cloning Using a Xenopus Oocyte Expression System

Functional Cloning Using a Xenopus Oocyte Expression System

الاستنساخ وظيفية باستخدام<em&gt; القيطم</em&gt; نظام التعبير البويضة

Identification of genes responsible for embryonic induction poses a number of challenges; to name a few, secreted molecules of interest may be low in ...

Multi-target Chromogenic Whole-mount In Situ Hybridization for Comparing Gene Expression Domains in Drosophila Embryos

Multi-target Chromogenic Whole-mount In Situ Hybridization for Comparing Gene Expression Domains in Drosophila Embryos

متعددة الهدف اللونية الجامع جبل<em&gt; في الموقع</em&gt; التهجين لمقارنة الجينات مجالات التعبير في<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; الأجنة

To analyze gene regulatory networks active during embryonic development and organogenesis it is essential to precisely define how the different genes are ...

Methods to Study Mrp4-containing Macromolecular Complexes in the Regulation of Fibroblast Migration

أساليب لدراسة Mrp4 تحتوي على المجمعات ضخم في تنظيم الخلايا الليفية الهجرة

Multidrug resistance protein 4 (MRP4) is a member of the ATP-binding cassette family of membrane transporters and is an endogenous efflux transporter of ...

Methods to Examine the Lymph Gland and Hemocytes in Drosophila Larvae

Methods to Examine the Lymph Gland and Hemocytes in Drosophila Larvae

طرق لفحص الليمفاوية الغدة وHemocytes في<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; يرقات

Many parallels exist between the Drosophila and mammalian hematopoietic systems, even though Drosophila lack the lymphoid lineage that characterize ...

Functional Manipulation of Maternal Gene Products Using In Vitro Oocyte Maturation in Zebrafish

Functional Manipulation of Maternal Gene Products Using In Vitro Oocyte Maturation in Zebrafish

التلاعب وظيفي من الأم جين المنتجات التي تستخدم<em&gt; في المختبر</em&gt; نضوج البويضة في الزرد

Cellular events that take place during the earliest stages of animal embryonic development are driven by maternally derived gene products deposited into ...

Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains

Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains

تشريح وتلطيخ إيممونوفلوريسسينت للفطر الجسم وعلم الخلايا العصبية في أدمغة البالغين melanogaster المورفولوجية

Nervous system development involves a sequential series of events that are coordinated by several signaling pathways and regulatory networks. Many of the ...

Cell Aggregation Assays to Evaluate the Binding of the Drosophila Notch with Trans-Ligands and its Inhibition by Cis-Ligands

Cell Aggregation Assays to Evaluate the Binding of the Drosophila Notch with Trans-Ligands and its Inhibition by Cis-Ligands

خلية "التجميع فحوصات" لتقييم ربط الشق المورفولوجية مع ترانس-يغاندس وتثبيط عن طريق رابطة الدول المستقلة-يغاندس

Notch signaling is an evolutionarily conserved cell-cell communication system used broadly in animal development and adult maintenance. Interaction of the ...

Visualization of Tangential Cell Migration in the Developing Chick Optic Tectum

التصور للهجرة الخلية عرضية في تيكتوم الألياف الضوئية النامية في الفرخ

Time-lapse imaging is a powerful method to analyze migrating cell behavior. After fluorescent cell labeling, the movement of the labeled cells in culture ...

Thawing, Culturing, and Cryopreserving Drosophila Cell Lines

Thawing, Culturing, and Cryopreserving Drosophila Cell Lines

ذوبان الجليد واستزراع كريوبريسيرفينج خطوط الخلايا المورفولوجية

There are currently over 160 distinct Drosophila cell lines distributed by the Drosophila Genomics Resource Center (DGRC). With genome engineering, the ...