Name: an in vivo mouse model of total intravenous anesthesia during cancer resection surgery
Uploaded: 2021-06-08T14:30:00
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Die Autoren danken Mitgliedern des Cancer Neural-Immune Laboratory und Dr. Cameron Nowell vom Monash Institute of Pharmaceutical Sciences, Monash University, Parkville. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse des National Health and Medical Research Council 1147498, der National Breast Cancer Foundation IIRS-20-025, des Australian and New Zealand College of Anaesthetists (ANZCA), Perpetual und CTC for Cancer Therapeutics unterstützt.

Alle Tierversuche wurden mit Genehmigung des Institutional Animal Care and Use Committee an der Monash University durchgeführt. In dieser Studie wurden weibliche Balb/c-Mäuse im Alter von 6-8 Wochen verwendet.
1. Krebszellen vorbereiten
<ol><li>Tumorzellen im Medium kultivieren. Kultur 66cl4 muriner Brustkrebszellen in alpha-MEM, die 10% FBS und 200 mM Glutamin enthalten. Zellen sollten negativ für Mykoplasmen texten. OPTIONAL: Verwenden Sie Zellen, die stabil transduziert werden, um Glü...

<ol>
	<li>Sullivan, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+cancer+surgery:+delivering+safe,+affordable,+and+timely+cancer+surgery.">Global cancer surgery: delivering safe, affordable, and timely cancer surgery.</a> Lancet Oncology. 16 (11), 1193-1224 (2015).</li><li>Lim, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+propofol+and+sevoflurane+on+cancer+cell,+natural+killer+cell,+and+cytotoxic+T+lymphocyte+function+in+patients+undergoing+breast+cancer+surgery:+an+in+vitro+analysis.">The effect of propofol and sevoflurane on cancer cell, natural killer cell, and cytotoxic T lymphocyte function in patients undergoing breast cancer surgery: an in vitro analysis.</a> BMC Cancer. 18 (1), 159 (2018).</li><li>Pandit, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=5th+National+Audit+Project+(NAP5)+on+accidental+awareness+during+general+anesthesia:+protocol,+methods,+and+analysis+of+data.">5th National Audit Project (NAP5) on accidental awareness during general anesthesia: protocol, methods, and analysis of data.</a> British Journal of Anaesthesia. 113 (4), 540-548 (2014).</li><li>Yap, A., Lopez-Olivo, M. 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T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retrospective+analysis+of+1-year+mortality+after+gastric+cancer+surgery:+Total+intravenous+anesthesia+versus+volatile+anesthesia.">Retrospective analysis of 1-year mortality after gastric cancer surgery: Total intravenous anesthesia versus volatile anesthesia.</a> Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 63 (9), 1169-1177 (2019).</li><li>Lai, H. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Propofol-based+total+intravenous+anesthesia+is+associated+with+better+survival+than+desflurane+anesthesia+in+hepatectomy+for+hepatocellular+carcinoma:+a+retrospective+cohort+study.">Propofol-based total intravenous anesthesia is associated with better survival than desflurane anesthesia in hepatectomy for hepatocellular carcinoma: a retrospective cohort study.</a> British Journal of Anaesthesia. 123 (2), 151-160 (2019).</li><li>Hong, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anesthetics+and+long-term+survival+after+cancer+surgery-total+intravenous+versus+volatile+anesthesia:+a+retrospective+study.">Anesthetics and long-term survival after cancer surgery-total intravenous versus volatile anesthesia: a retrospective study.</a> BMC Anesthesiology. 19 (1), 233 (2019).</li><li>Flecknell, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Special+Techniques.">Special Techniques.</a> Laboratory Animal Anaesthesia. Fourth edition. , (2015).</li><li>Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anesthesia+protocols+in+laboratory+animals+used+for+scientific+purposes.">Anesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes.</a> Acta Biomedica. 89 (3), 337-342 (2018).</li><li>Sloan, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+sympathetic+nervous+system+induces+a+metastatic+switch+in+primary+breast+cancer.">The sympathetic nervous system induces a metastatic switch in primary breast cancer.</a> Cancer Research. 70 (18), 7042-7052 (2010).</li><li>Al-Hashimi, M., Scott, S. W. M., Thompson, J. P., Lambert, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Opioids+and+immune+modulation:+more+questions+than+answers.">Opioids and immune modulation: more questions than answers.</a> British Journal of Anaesthesia. 111 (1), 80-88 (2013).</li><li>DeMarco, G. J., Nunamaker, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Review+of+the+effects+of+pain+and+analgesia+on+immune+system+function+and+inflammation:+relevance+for+preclinical+studies.">A Review of the effects of pain and analgesia on immune system function and inflammation: relevance for preclinical studies.</a> Comparative Medicine. 69 (6), 520-534 (2019).</li><li>Hiller, J. G., Perry, N. J., Poulogiannis, G., Riedel, B., Sloan, E. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Perioperative+events+influence+cancer+recurrence+risk+after+surgery.">Perioperative events influence cancer recurrence risk after surgery.</a> Nature Reviews Clinical Oncology. 15 (4), 205-218 (2018).</li></ol>

Diese Studie berichtet über ein Protokoll zur Verabreichung einer intravenösen Vollanästhesie (TIVA) mit Propofol in einem Mausmodell für Brustkrebs, das wichtige Aspekte der klinischen Praxis für TIVA bei Patientinnen repliziert, die eine Krebsoperation benötigen. Das Protokoll ermöglicht die Untersuchung sowohl kurzfristiger als auch langfristiger klinisch relevanter Ergebnisse nach Krebsoperationen in einem Mausmodell der Krebsprogression, einschließlich der Messung der Zytokinspiegel und des Wiederauftretens ...

Mehr als 60% der Krebspatienten erhalten eine Anästhesie für die chirurgische Resektion1. Derzeit gibt es keine spezifischen klinischen Richtlinien, die die Wahl der Anästhesie bei Krebspatienten bestimmen. Umfragen unter Anästhesisten zeigen eine Präferenz für flüchtige Anästhesie, auch während Krebsoperationen 2,3. Es gibt jedoch immer mehr Hinweise darauf, dass die Anwendung einer Propofol-basierten intravenösen Vollanästhesie (TIVA) während einer Krebsoperation im Vergleich zur flüchtigen Anästhesie mit verbesserten postoperativen Ergebnissen (progressionsfreies Überleben, Gesamtüberleben) einhergehen kann4. Nachfolgende klinische Studien berichten weiterhin widersprüchliche Ergebnisse 5,6,7,8. Diese Ergebnisse unterstützen die Notwendigkeit präklinischer Studien, um die mechanistischen Auswirkungen verschiedener Anästhetika auf krebsbedingte Ergebnisse besser zu verstehen.
In In-vivo-Studien , die Krebsoperationen modellieren, ist die Anästhesie jedoch häufig ein zufälliger Teil des Verfahrens. Die Begründung für die Wahl der Anästhesie steht oft nicht im Mittelpunkt des experimentellen Designs, und ihre Auswirkungen auf krebsbedingte Endpunkte werden möglicherweise nicht bewertet. Zum Beispiel verwenden In-vivo-Studien , die eine Aufrechterhaltung der Anästhesie für Krebsoperationen erfordern, am häufigsten inhalative flüchtige Anästhesie9. Wenn Propofol in In-vivo-Studien verwendet wurde, wurde es durch einmalige Bolusdosierung mit intraperitonealer Verabreichung verabreicht, die klinische Onko-Anästhesie-Protokolle nicht repliziert10. Dieser Ansatz der Propofol-Verabreichung induziert eine leichte Anästhesie, die für schnelle Verfahren geeignet ist. Es erlaubt jedoch keine Aufrechterhaltung der Anästhesie, die für eine Krebsresektionsoperation erforderlich ist, die langwierig sein kann. Darüber hinaus unterscheidet sich die Absorptionskinetik der intraperitonealen Verabreichung von klinischen Verabreichungsmethoden.
Ein Modell von Propofol-basiertem TIVA für die Krebsresektionschirurgie wurde entwickelt, um diesem Bedarf gerecht zu werden. Ein Protokoll für die anhaltende Aufrechterhaltung der Anästhesie mit Titration des Anästhetikums, um eine Reaktion auf den chirurgischen Reiz zu ermöglichen, wurde entwickelt, um Schlüsselaspekte der Anästhesieabgabe bei Patienten mit Krebsoperationen zu replizieren. Das resultierende Protokoll wird mit einem Mausmodell von Krebs verwendet, um TIVA während der Krebsresektion zu liefern. Die Auswirkungen auf kurz- und langfristige krebsbedingte Ergebnisse werden bewertet.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.9% saline</td>
			<td>Fresnius Kabi</td>
			<td>AUST R 197198</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Artery forceps</td>
			<td>Proscitech</td>
			<td>TS1322-140</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>Temgesic</td>
			<td>TEMG I</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heated surgical mat</td>
			<td>Custom</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hypodermic needle (30 G, 1 mL insulin syringe)</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>NN3013R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IVIS Lumina</td>
			<td>PerkinElmer</td>
			<td>126274</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luciferin</td>
			<td>Promega</td>
			<td>P1041/2/3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyurethane catheter</td>
			<td>Intramedic</td>
			<td>427401</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Povidone Iodine</td>
			<td>Betadine</td>
			<td>AUST R 29562</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propofol Lipuro, 2%</td>
			<td>Braun</td>
			<td>3521490</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sevoflurane</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>ANZ2L9117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sevoflurane vaporiser</td>
			<td>Vetquip</td>
			<td>VQ1334</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile gauze</td>
			<td>Multigate Medical Products</td>
			<td>11-600A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical scissors</td>
			<td>Proscitech</td>
			<td>TS1044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sutures, 5-0 nylon</td>
			<td>Dynek</td>
			<td>V504</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe pump</td>
			<td>Harvard Apparatus</td>
			<td>70-4500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringes (1 mL)</td>
			<td>Terumo</td>
			<td>SS+01T</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

an in vivo mouse model of total intravenous anesthesia during cancer resection surgery

Anästhesie ist ein routinemäßiger Bestandteil der Krebsbehandlung, der für diagnostische und therapeutische Verfahren verwendet wird. Die Anästhesietechnik wurde kürzlich mit der Beeinflussung langfristiger Krebsergebnisse in Verbindung gebracht, möglicherweise durch Modulation von adrenerg-entzündlichen Reaktionen, die das Verhalten von Krebszellen und die Funktion von Immunzellen beeinflussen. Neue Erkenntnisse deuten darauf hin, dass Propofol-basierte intravenöse Vollanästhesie (TIVA) im Vergleich zu inhalativer flüchtiger Anästhesie für langfristige Krebsergebnisse von Vorteil sein kann. Die verfügbaren klinischen Befunde sind jedoch widersprüchlich. Präklinische Studien, die die zugrunde liegenden Mechanismen identifizieren, sind von entscheidender Bedeutung, um das Design klinischer Studien zu leiten, die die Erkenntnisse beschleunigen. Die meisten präklinischen Modelle der Anästhesie wurden aus der Verwendung von Anästhesie in der In-vivo-Forschung extrapoliert und sind nicht optimal darauf ausgelegt, die Auswirkungen der Anästhesie selbst als primären Endpunkt zu untersuchen. Dieses Papier beschreibt eine Methode zur Verabreichung von Propofol-TIVA-Anästhesie in einem Mausmodell der Brustkrebsresektion, das wichtige Aspekte der klinischen Verabreichung bei Krebspatientinnen repliziert. Das Modell kann verwendet werden, um Wirkungsmechanismen der Anästhesie auf Krebsergebnisse bei verschiedenen Krebsarten zu untersuchen und kann auf andere Nicht-Krebsbereiche der präklinischen Anästhesieforschung extrapoliert werden.

Diese Methode beschreibt ein Modell der totalen intravenösen Anästhesie (TIVA) mit Propofol während der Krebsresektionsoperation bei Mäusen. Propofol wird in diesem Mausmodell über einen intravenösen Katheter unter Verwendung einer Spritzenpumpe (Abbildung 1A,B) verabreicht, um die Verabreichung von TIVA im klinischen Umfeld der Anästhesie für Krebsoperationen zu replizieren. Die Verwendung der Spritzenpumpe minimiert die Exposition gegenüber flüchtiger Anästhesie...

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An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery

Dieser Artikel beschreibt eine Methode zur Modellierung der intravenösen Totalanästhesie (TIVA) während der Krebsresektion bei Mäusen. Ziel ist es, Schlüsselmerkmale der Anästhesieabgabe an Krebspatienten zu replizieren. Die Methode ermöglicht es zu untersuchen, wie sich die Anästhesietechnik auf das Wiederauftreten von Krebs nach einer Resektionsoperation auswirkt.

Ein In-vivo-Mausmodell der intravenösen Vollnarkose während der Krebsresektion

Anesthesia is a routine component of cancer care that is used for diagnostic and therapeutic procedures. The anesthetic technique has recently been ...

Dieses neuartige Protokoll beschreibt die chirurgische Anästhesie bei Mäusen unter Propofol-Anästhesie. Die Methode ermöglicht die Erforschung der Propofol-Anästhesie in Mausmodellen von Krankheiten. Das Protokoll ermöglicht die Beurteilung der totalen intravenösen Anästhesie und vermeidet die Verwendung von flüchtiger Anästhesie.Das Protokoll kann verwendet werden, um zu untersuchen, wie sich die Propofol-Anästhesie auf krankheitsbezogene Ergebnisse auswirkt. Zum Beispiel bewerten wir hier kurz- und langfristige Krebsergebnisse nach der Operation, um den Tumor zu entfernen. Zu Beginn kultivieren Sie 66 CL4 Mirai-Mammakrebszellen, die stabil transduziert werden, um Glühwürmchen-Luciferase in alpha-MEM-Medium zu exprimieren, das 10% FBS und 200 Millimolares Glutamin enthält.Inkubieren Sie die Zellen bei 37 Grad Celsius, aber 5% Kohlendioxid. Subkultur der Zellen, wenn die Zellen etwa 80% Konfluenz erreichen. Wenn sich die Zellen in einer logarithmischen Wachstumsphase mit zwei Milliliter Tropfen in EDTA-Lösung befinden, heben Sie die adhärenten Zellen an und zählen Sie die Zellen mit einem Hämozytometer.Dann verdünnen Sie die Zellen in PBS und halten Sie die verdünnte Zellsuspension auf Eis, bis die Maus für die Injektion bereit ist. Sobald die Maus vollständig betäubt ist, wischen Sie den vierten linken Brustfettpolsterbereich mit einem Einweg-Alkoholtupfer ab, um die Injektionsstelle vorzubereiten. Füllen Sie eine 25-Mikroliter-Hamilton-Spritze, die an einer sterilen 27-Gauge-Injektionsnadel befestigt ist, mit Krebszellsuspension.Verwenden Sie eine Pinzette, um die Haut anzuheben und zu sichern. Injizieren Sie einmal 10 in die fünfte Zelle und 20 Mikroliter PBS in das vierte linke Brustfettpolster, etwa einen Millimeter von der Brustwarze entfernt. Wenn die Zellen mit Luciferase markiert sind, injizieren Sie 100 Mikroliter D-Luciferin in die laterale Schwanzvene der anästhesierten Maus mit einer 0,5-Milliliter-Insulinspritze mit einer 30-Gauge-Injektionsnadel.Zwei Minuten nach der Injektion legen Sie die Maus in ein Biolumineszenz-Bildgebungssystem mit dem Brustfettpolster nach oben und nehmen Sie das Bild für 10 Sekunden auf. Legen Sie die Maus nach der Bildgebung in den sauberen Käfig und lassen Sie sie sich von der Narkose erholen. Überwachen Sie das Wachstum des Primärtumorwachstums mit einem Messschieber.Berechnen Sie das Tumorvolumen und resezieren Sie den Tumor, wenn der Primärtumor 80 bis 90 Kubikmillimeter Volumen erreicht. Richten Sie die automatisierte Spritzenpumpe mit einer 30-Gauge-Ein-Milliliter-Insulinspritze ein, die zwei Prozent Propofol-Formulierung enthält. Induktion der Anästhesie in einer Induktionskammer mit drei Prozent Sevofluran oder Isofluran.Dann die betäubte Maus auf ein Heizkissen bei 37 Grad Celsius übertragen und die Narkose mit zwei bis drei Prozent Sevofluran oder Isofluran mit einem Nasenkegel aufrechterhalten. Passen Sie die Abgabe von Sevofluran während der intravenösen Kanülierung nach Bedarf an, um eine stabile Anästhesietiefe aufrechtzuerhalten, die durch den Verlust des Pedalreflexes und der Atemfrequenz von weniger als 100 Atemzügen pro Minute nachgewiesen wird. Tragen Sie wässriges Gleitmittel auf die Augen auf, um ein Austrocknen der Hornhaut zu verhindern, und injizieren Sie dann 0,05 Milligramm pro Kilogramm Buprenorphin subkutan.Um die Propofol-basierte intravenöse Vollnarkose zu verabreichen, kanülieren Sie die laterale Schwanzvene mit einer sterilen 30-Gauge-Injektionsnadel, die an einem sterilen Polyurethankatheter befestigt ist. Bestätigen Sie die korrekte Platzierung durch Blutrückblende in den Katheter. Verabreichen Sie zwei Prozent Propofol als anfänglichen Bolus von 27 Milligramm pro Kilogramm über eine Minute, um eine vollständige intravenöse Anästhesie zu beginnen.Beenden Sie die Verabreichung von Sevofluran. Halten Sie die Propofol-Infusion mit einer Rate von 2,2 bis 4,0 Milligramm pro Kilogramm pro Minute aufrecht, um eine stabile Anästhesietiefe während der Operation beizubehalten. Rasieren Sie die Bauchregion und desinfizieren Sie den Operationsbereich mit Povidon-Jodlösung.Machen Sie einen einen Zentimeter langen Einschnitt unterhalb des Tumors im linken vierten Brustfettpolster. Verwenden Sie eine Pinzette und eine Schere, um den Tumor und den linken Leistenlymphknoten zu sezieren. Wenn Luciferase-markierte Tumorzellen verwendet werden, injizieren Sie d-Luciferin in die laterale Schwanzvene, wie gezeigt, und nehmen Sie die Bilder für 60 Sekunden auf, um klare Ränder zu erhalten.Wenn ein Resttumor identifiziert wird, resezieren Sie zusätzliches Gewebe aus dem Brustfettpolster. Sobald die Hämostase an der Operationsstelle erreicht ist, schließen Sie die Haut mit 5-0-Nylonnähten. Wischen Sie die Wunde mit Povidon-Jod-Lösung ab.Beenden Sie nach Abschluss der Operation die Anästhesie und legen Sie die Maus in einen sauberen Käfig auf einem Heizkissen, damit sie sich von der Narkose erholen kann. Überwachen Sie die Maus alle 15 Minuten, bis die Maus wieder normal wachsam ist. Dann überwachen und analgesiechen alle 12 Stunden für 48 Stunden nach der Operation.Zur Beurteilung eines Primärtumors oder eines Fernrezidivs sollten die Mäuse einmal pro Woche überwacht werden, beginnend in der Woche nach der Operation mit einem Biolumineszenz-Bildgebungssystem. Die Biolumineszenz-Bildgebung wurde verwendet, um das entfernte Tumorrezidiv in der Lunge nach Resektion des Primärtumors zu identifizieren. Dieses Modell kann verwendet werden, um Ereignisse zu bewerten, die während der perioperativen Phase aufgetreten sind.24 Stunden nach der Krebsoperation unter Propofol wurden zirkulierende Plasmazytokine ausgewertet. Praktiken, die erforderlich sind, um die laterale Schwanzvene schnell zu kanülieren und die Dauer der Sevofluran-Exposition zu minimieren. Das Sevofluran sollte allmählich heruntertitriert werden, da der Propofolbolus verabreicht wird, um eine Übersedierung zu verhindern.Diese Methode kann verwendet werden, um die Auswirkungen der Propofol-Anästhesie in Mausmodellen für Herzchirurgie oder kritische Erkrankungen wie Sepsis zu untersuchen.

Research

JoVE Journal

Medicine

An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery

Quantitative Analysis of Cancer Metastasis using an Avian Embryo Model

Quantitative Analyse von Krebs Metastasen mit einem Vogelembryo Modell

During metastasis cancer cells disseminate from the primary tumor, invade into surrounding tissues, and spread to distant organs. Metastasis is a complex ...

Forschung

Medizin

Multi-photon Imaging of Tumor Cell Invasion in an Orthotopic Mouse Model of Oral Squamous Cell Carcinoma

Multi-Photonen-Imaging der Tumorzellinvasion in einem orthotopen Mausmodell des oralen Plattenepithelkarzinoms

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient ...

Combination Radiotherapy in an Orthotopic Mouse Brain Tumor Model

Kombination Strahlentherapie in einem orthotopen Maus Brain Tumor-Modell

Glioblastoma multiforme (GBM) are the most common and aggressive adult primary brain tumors1. In recent years there has been substantial progress in the ...

An Ex vivo Model to Study Hormone Action in the Human Breast

An Ex vivo Model to Study Hormone Action in the Human Breast

Ein<em&gt; Ex-vivo-</em&gt; Modell um die Hormonwirkung in der menschlichen Brust Studieren

The study of hormone action in the human breast has been hampered by lack of adequate model systems. Upon in vitro culture, primary mammary epithelial ...

An Orthotopic Mouse Model of Spontaneous Breast Cancer Metastasis

Ein orthotopen Mausmodell des Spontan Metastasierung von Brustkrebs

Metastasis is the primary cause of mortality of breast cancer patients. The mechanism underlying cancer cell metastasis, including breast cancer ...

Depletion of Mouse Cells from Human Tumor Xenografts Significantly Improves Downstream Analysis of Target Cells

Depletion von Maus-Zellen aus menschlichem Tumorxenografte deutlich verbessert Downstream-Analyse von Zielzellen

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic ...

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Eine Anästhesie, Chirurgie und Ernteverfahren zur Bewertung von transpedikulären Schrauben mit einem<em&gt; In vivo</em&gt; Schwein Lendenwirbelsäule Modell

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