Name: optimizing the setup and conditions for ex vivo electroretinogram to study retina function in small and large eyes
Uploaded: 2022-06-27T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Optimizing the Setup and Conditions for Ex Vivo Electroretinogram to Study Retina Function in Small and Large Eyes at JoVE.com

Эта работа была поддержана грантами Национального института глаз EY02665 и EY031706 и Международным фондом исследований сетчатки доктору Винбергу, основным грантом Национальных институтов здравоохранения (EY014800) и неограниченным грантом от исследований по предотвращению слепоты, Нью-Йорк, нью-йорк, департаменту офтальмологии и визуальных наук Университета штата Юта. Д-р Франс Винберг также является лауреатом исследования по предотвращению слепоты / Dr. H. James and Carole Free Career Development Award, а д-р Силке Беккер - гранта ARVO EyeFind. Мы благодарим д-ра Энн Ханнекен из Научно-исследовательского института Скриппса за предоставление донорского глаза, используемого для записей, показанных на рисунке 2E.

Все эксперименты с использованием мышей проводились в соответствии с Руководством NIH по уходу и использованию лабораторных животных и были одобрены Институциональным комитетом по изучению животных в Университете штата Юта. Глаза свиней для демонстрации этого видео были получены пос?...

<ol>
	<li>Perlman, I., Kolb, H., Fernandez, E., Nelson, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Webvision: The Organization of the Retina and Visual System. , (1995).</li><li>Bonezzi, P. J., Tarchick, M. J., Renna, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ex+vivo+electroretinograms+made+easy:+performing+ERGs+using+3D+printed+components.">Ex vivo electroretinograms made easy: performing ERGs using 3D printed components.</a> Journal of Physiology. 598 (21), 4821-4842 (2020).</li><li>Vinberg, F., Kefalov, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simultaneous+ex+vivo+functional+testing+of+two+retinas+by+in+vivo+electroretinogram+system.">Simultaneous ex vivo functional testing of two retinas by in vivo electroretinogram system.</a> Journal of Visualized Experiments. (99), e52855 (2015).</li><li>Heckenlively, J. R., Arden, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Principles and Practice of Clinical Electrophysiology of Vision. , (2006).</li><li>Vinberg, F., Kolesnikov, A. V., Kefalov, V. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ex+vivo+ERG+analysis+of+photoreceptors+using+an+in+vivo+ERG+system.">Ex vivo ERG analysis of photoreceptors using an in vivo ERG system.</a> Vision Research. 101, 108-117 (2014).</li><li>Winkler, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Calcium+and+the+fast+and+slow+components+of+P3+of+the+electroretinogram+of+the+isolated+rat+retina.">Calcium and the fast and slow components of P3 of the electroretinogram of the isolated rat retina.</a> Vision Research. 14 (1), 9-15 (1974).</li><li>Green, D. G., Kapousta-Bruneau, N. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+dissection+of+the+electroretinogram+from+the+isolated+rat+retina+with+microelectrodes+and+drugs.">A dissection of the electroretinogram from the isolated rat retina with microelectrodes and drugs.</a> Visual Neuroscience. 16 (4), 727-741 (1999).</li><li>Abbas, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Revival+of+light+signalling+in+the+postmortem+mouse+and+human+retina.">Revival of light signalling in the postmortem mouse and human retina.</a> Nature. , (2022).</li><li>Becker, S., Carroll, L. S., Vinberg, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diabetic+photoreceptors:+Mechanisms+underlying+changes+in+structure+and+function.">Diabetic photoreceptors: Mechanisms underlying changes in structure and function.</a> Visual Neuroscience. 37, (2020).</li><li>Kantola, L., Piccolino, M., Wade, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+action+of+light+on+the+retina:+Translation+and+commentary+of+Holmgren+(1866).">The action of light on the retina: Translation and commentary of Holmgren (1866).</a> Journal of the History of the Neurosciences. 28 (4), 399-415 (2019).</li><li>Frank, R. N., Dowling, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rhodopsin+photoproducts:+effects+on+electroretinogram+sensitivity+in+isolated+perfused+rat+retina.">Rhodopsin photoproducts: effects on electroretinogram sensitivity in isolated perfused rat retina.</a> Science. 161 (3840), 487-489 (1968).</li><li>Hamasaki, D. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+sodium+ion+concentration+on+the+electroretinogram+of+the+isolated+retina+of+the+frog.">The effect of sodium ion concentration on the electroretinogram of the isolated retina of the frog.</a> Journal of Physiology. 167 (1), 156-168 (1963).</li><li>Granit, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+components+of+the+retinal+action+potential+in+mammals+and+their+relation+to+the+discharge+in+the+optic+nerve.">The components of the retinal action potential in mammals and their relation to the discharge in the optic nerve.</a> Journal of Physiology. 77 (3), 207-239 (1933).</li><li>Donner, K., Hemila, S., Koskelainen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temperature-dependence+of+rod+photoresponses+from+the+aspartate-treated+retina+of+the+frog+(Rana+temporaria).">Temperature-dependence of rod photoresponses from the aspartate-treated retina of the frog (Rana temporaria).</a> Acta Physiologica Scandinavica. 134 (4), 535-541 (1988).</li><li>Green, D. G., Kapousta-Bruneau, N. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+properties+of+a+new+isolated+rat+retina+preparation.">Electrophysiological properties of a new isolated rat retina preparation.</a> Vision Research. 39 (13), 2165-2177 (1999).</li><li>Luke, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+isolated+perfused+bovine+retina--a+sensitive+tool+for+pharmacological+research+on+retinal+function.">The isolated perfused bovine retina--a sensitive tool for pharmacological research on retinal function.</a> Brain Research Protocols. 16 (1-3), 27-36 (2005).</li><li>Becker, S., Carroll, L. S., Vinberg, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rod+phototransduction+and+light+signal+transmission+during+type+2+diabetes.">Rod phototransduction and light signal transmission during type 2 diabetes.</a> BMJ Open Diabetes Research and Care. 8 (1), 001571 (2020).</li><li>Nymark, S., Haldin, C., Tenhu, H., Koskelainen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+method+for+measuring+free+drug+concentration:+retinal+tissue+as+a+biosensor.">A new method for measuring free drug concentration: retinal tissue as a biosensor.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 47 (6), 2583-2588 (2006).</li><li>Winkler, B. S., Kapousta-Bruneau, N., Arnold, M. J., Green, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+inhibiting+glutamine+synthetase+and+blocking+glutamate+uptake+on+b-wave+generation+in+the+isolated+rat+retina.">Effects of inhibiting glutamine synthetase and blocking glutamate uptake on b-wave generation in the isolated rat retina.</a> Visual Neuroscience. 16 (2), 345-353 (1999).</li></ol>

Первоначально разработанный в 1865 году Холмгреном для измерения световых реакций сетчатки от амфибиисетчатки 10, технические ограничения первоначально препятствовали широкому использованию ERG. Тем не менее, основополагающие исследования Рагнара Гранита и других выявили ?...

Электроретинография измеряет функцию сетчатки в ответ на свет1. Это неотъемлемая часть изучения физиологии и патофизиологии сетчатки, а также измерения успеха терапии заболеваний сетчатки. In vivo ERG широко используется для оценки функции сетчатки у интактных организмов, но имеет значительные ограничения 2,3. Среди них количественный анализ отдельных типов клеток сетчатки в IN VIVO ERG затруднен, поскольку он регистрирует сумму потенциальных изменений и, следовательно, наложение ответов от всех клеток сетчатки к световым стимулам4. Кроме того, он не позволяет добавлять лекарства к сетчатке, уязвим к системным воздействиям и имеет относительно низкое отношение сигнал/шум. Эти недостатки устраняются в ex vivo ERG, который исследует функцию изолированной сетчатки 2,3,5,6. EX vivo ERG позволяет регистрировать большие и стабильные ответы от конкретных типов клеток сетчатки путем добавления фармакологических ингибиторов и легкой оценки терапевтических агентов, которые могут быть добавлены к суперфузату. В то же время он устраняет влияние системных эффектов и устраняет физиологический шум (например, сердцебиение или дыхание).
В EX VIVO ERG сетчатку или образцы сетчатки изолируют и устанавливают фоторецепторной стороной вверх на куполе держателя образца 3,5. Держатель образца собирается, подключается к перфузионной системе, которая снабжает сетчатку нагретой, насыщенной кислородом средой, и помещается на сцену микроскопа, который был модифицирован для доставки управляемых компьютером световых стимулов. Для записи откликов, вызванных светом, держатель образца подключается к усилителю, дигитайзеру и системе записи (рисунок 1). Этот метод позволяет выделить ответы от палочковых и колбочек фоторецепторов, ON-биполярных клеток и глии Мюллера путем изменения параметров световых раздражителей и добавления фармакологических агентов.
Существующий зажим или многоэлектродный массив (MEA) может быть преобразован для записи ex vivo ERG либо в сочетании с коммерчески доступным адаптером ex vivo ERG, либо с пользовательским поликарбонатным держателем для образцов с числовым программным управлением (ЧПУ) для измерения световых реакций в сетчатке от моделей мелких животных, таких как мыши. Данная модификация повышает доступность ex vivo ERG при минимизации потребности в специализированном оборудовании. Конструкция держателя образца упрощает технику монтажа и интегрирует электроды, устраняя необходимость манипуляций с микроэлектродами по сравнению с ранее сообщенными трансретинальными методами ex vivo ERG7. Скорость перфузии и температура внутри держателя образца являются важными факторами, которые влияют на свойства ответа фоторецепторов и ON-биполярных клеток. Регулируя эти условия, EX VIVO ERG может быть надежно зарегистрирован из изолированной сетчатки мыши в течение длительных периодов времени. Оптимизированные экспериментальные условия позволяют записывать EX VIVO ERG в удары сетчатки от более крупных сетчаток, включая большие глаза животных и глаза донора человека8.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>2 mm socket</td>
			<td>WPI</td>
			<td>2026-10</td>
			<td>materials to prepare electrode</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ag/AgCl Electrode</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>EP1</td>
			<td>materials to prepare electrode</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ames&#39; medium</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A1420</td>
			<td>perfusion media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>barium chloride</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>B0750</td>
			<td>potassium channel blocker</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DL-AP4</td>
			<td>Tocris</td>
			<td>0101</td>
			<td>broad spectrum glutamatergic antagonist</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OcuScience Ex Vivo ERG Adapter</td>
			<td>OcuScience</td>
			<td>n/a</td>
			<td>ex vivo ERG specimen holder</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Threaded luer connector</td>
			<td>McMaster-Carr</td>
			<td>51525K222 or 51525K223</td>
			<td>materials to prepare electrode</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

optimizing the setup and conditions for ex vivo electroretinogram to study retina function in small and large eyes

Измерения световых реакций нейронов сетчатки имеют решающее значение для исследования физиологии здоровой сетчатки, определения патологических изменений при заболеваниях сетчатки и тестирования терапевтических вмешательств. Электроретинограмма ex vivo (ERG) позволяет количественно оценить вклад отдельных типов клеток в изолированной сетчатке путем добавления специфических фармакологических агентов и оценки тканевых изменений независимо от системных воздействий. Световые реакции сетчатки могут быть измерены с помощью специализированного держателя образца ex vivo ERG и записывающей установки, модифицированной из существующего зажима патча или микроэлектродного массива. В частности, изучение ON-биполярных клеток, а также фоторецепторов было затруднено медленным, но прогрессирующим снижением световых реакций в EX VIVO ERG с течением времени. Повышенная скорость перфузии и регулировка температуры перфузата улучшают функцию сетчатки ex vivo и максимизируют амплитуду и стабильность отклика. Ex vivo ERG уникально позволяет изучать отдельные типы нейрональных клеток сетчатки. Кроме того, улучшения для максимизации амплитуд отклика и стабильности позволяют исследовать световые реакции в образцах сетчатки от крупных животных, а также в глазах доноров человека, что делает ex vivo ERG ценным дополнением к репертуару методов, используемых для исследования функции сетчатки.

Ex vivo ERG позволяет регистрировать воспроизводимые и стабильные световые реакции фоторецепторов и ON-биполярных клеток, например, от сетчатки мыши (рисунок 2A-C). Регистрация реакций фоторецепторов от донорской сетчатки человека возможна при посмерт?...

Watch this Scientific Journal Video about Optimizing the Setup and Conditions for Ex Vivo Electroretinogram to Study Retina Function in Small and Large Eyes at JoVE.com

Optimizing the Setup and Conditions for Ex Vivo Electroretinogram to Study Retina Function in Small and Large Eyes

Модификация существующего многоэлектродного массива или патч-зажимного оборудования делает электроретинограмму ex vivo более доступной. Улучшенные методы регистрации и поддержания световых реакций ex vivo облегчают изучение функции фоторецепторов и ON-биполярных клеток в здоровой сетчатке, животных моделей глазных заболеваний и донорской сетчатки человека.

Оптимизация установки и условий для электроретинограммы Ex Vivo для изучения функции сетчатки в маленьких и больших глазах

Measurements of retinal neuronal light responses are critical to investigating the physiology of the healthy retina, determining pathological changes in ...

Этот протокол демонстрирует условия, необходимые для поддержания функции сетчатки в ex vivo ERG, особенно чрезвычайно чувствительной волны B, продуцируемой ON-биполярными клетками. С помощью ex vivo ERG мы можем измерить функцию различных типов нейронов сетчатки с высоким соотношением сигнал/шум, обеспечивая при этом легкое введение фармакологических агентов. Этот метод особенно поддается количественной оценке эффективности фармакологических средств на функцию сетчатки и заболевания.Для начала преобразуйте установку многоэлектродной матрицы, подключив держатель образца ex vivo ERG к дифференциальному усилителю через головную ступень. Усилитель должен быть подключен к аналоговому входу интерфейсной платы многоэлектродной системы. Используйте записывающее программное обеспечение для многоэлектродной матрицы для записи и хранения входных данных от ex vivo ERG.Установите коэффициент усиления дифференциального усилителя на 100 и добавьте дополнительное 10-кратное усиление напряжения, в зависимости от спецификаций дигитайзера. Установите фильтр нижних частот на 100 герц. В качестве альтернативы, чтобы преобразовать установку патч-зажима, подключите держатель образца ex vivo ERG через головную ступень к дифференциальному усилителю, который должен быть подключен к головной ступени усилителя патч-зажима.Используйте системное программное обеспечение patch clamp и дигитайзер для записи и хранения входных данных из ex vivo ERG. Задайте параметры, как показано выше. Подключите светодиоды с соответствующими длинами волн к микроскопу.Для управления световыми раздражителями используйте светодиодный драйвер, управляемый аналоговыми выходами дигитайзера. Управляйте светодиодами с помощью записывающего программного обеспечения, которое позволит запускать световые стимулы. Затем откалибруйте светоотдачу светодиодов в положении сетчатки в держателе образца с помощью фотодиода.При необходимости вставьте фильтры нейтральной плотности, чтобы приглушить интенсивность света в световом контуре. Чтобы подготовить электрод, вставьте гранулированный электрод из хлорида серебра в резьбовой разъем приманки. Заполните внутреннюю часть соединителя приманки горячим клеем и вставьте двухмиллиметровое гнездо в горячий клей с нерезной стороны.Припаяйте серебряную проволоку электрода EP-1 к двухмиллиметровому разъему. Вкрутите готовый электрод с уплотнительным кольцом на резьбе в электродные порты держателя образца ex vivo ERG. Для больших глаз, в том числе человеческих донорских глаз, очистите шар от оставшейся соединительной ткани и удалите передний сегмент и хрусталик.Используйте скальпель, чтобы сделать разрез примерно в трех миллиметрах от лимбуса. Вставьте изогнутые ножницы для рассечения в разрез и разрезайте вдоль лимбуса, чтобы удалить переднюю часть глаза с помощью хрусталика. Получение образцов сетчатки для электроретинографии ex vivo с трех-шестимиллиметровым одноразовым биопсийным перфоратором.Чтобы закрепить ткань на держателе образца, поместите нижнюю половину держателя образца в большую чашку Петри и заполните ее насыщенной кислородом средой Эймса таким образом, чтобы купол держателя образца был просто погружен. Осторожно захватите край сетчатки тонкими щипцами и перенесите сетчатку на купол держателя образца ex vivo, стороной фоторецептора лицом вверх. Поднимите держатель образца из раствора Эймса, заботясь о том, чтобы сетчатка оставалась на месте.Полностью высушите пластину держателя образца, чтобы свести к минимуму шум, электрические перекрестные помехи и маневрирование сигнала. Затем соберите обе половины держателя образца четырьмя винтами и соедините перфузионную линию. Введите электрод в нижнюю половину держателя образца и подключите анодный кабель к внутренней стороне сетчатки, а катодный кабель со стороны фоторецептора.Перфьюируйте держатель образца по меньшей мере одним миллилитром в минуту насыщенной кислородом среды Эймса в течение 10-20 минут, чтобы световые реакции стабилизировались. Ex vivo ERG позволил регистрировать световые реакции фоторецепторов и ON-биполярных клеток от сетчатки мыши. Запись реакций фоторецепторов от донорской сетчатки человека была возможна с посмертной задержкой энуклеации до пяти часов и задержкой менее 20 минут для реакций ON-биполярных клеток.В идеальных условиях амплитуды ответа и кинетика в обоих типах клеток были относительно стабильными с течением времени, но показали медленное снижение через 40-45 минут после того, как сетчатка была установлена на держателе образца. Снижение температуры в держателе образца значительно замедлило кинетику как фоторецепторов, так и ON-биполярных клеток. Однако он уменьшил амплитуду волны B, но не волны A.И наоборот, замедление скорости перфузии уменьшало амплитуды как фоторецепторов, так и реакций ON-биполярных клеток, но не влияло на неявное время волны А или В. Прекращение перфузии в течение 10 минут с последующей реперфузией приводило к полной потере функции ON-биполярных клеток с сохраненными реакциями фоторецепторов. Достаточная скорость перфузии и физиологическая температура имеют решающее значение для получения стабильных реакций, в частности, от ON-биполярных клеток в EX VIVO ERG.Этот протокол позволяет углубленно исследовать различия в функции фоторецепторов в макулярной и периферии человека, отвечая на вопросы, которые ранее могли быть выполнены только у нечеловеческих приматов.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Optimizing the Setup and Conditions for Ex Vivo Electroretinogram to Study Retina Function in Small and Large Eyes

Genetic Manipulation of Cerebellar Granule Neurons In Vitro and In Vivo to Study Neuronal Morphology and Migration

Genetic Manipulation of Cerebellar Granule Neurons In Vitro and In Vivo to Study Neuronal Morphology and Migration

Генетических манипуляций мозжечка Granule нейронов<em&gt; Экстракорпоральное</em&gt; И<em&gt; В Vivo</em&gt; По изучению нейронных Морфология и миграция

Developmental events in the brain including neuronal morphogenesis and migration are highly orchestrated processes. In vitro and in vivo analyses allow ...

Mouse Hindbrain Ex Vivo Culture to Study Facial Branchiomotor Neuron Migration

Mouse Hindbrain Ex Vivo Culture to Study Facial Branchiomotor Neuron Migration

Мышь Hindbrain<em&gt; Экс Vivo</em&gt; Культура учиться на лице миграции Branchiomotor Neuron

Embryonic neurons are born in the ventricular zone of the brain, but subsequently migrate to new destinations to reach appropriate targets. Deciphering ...

Ex Vivo Preparations of the Intact Vomeronasal Organ and Accessory Olfactory Bulb

Ex Vivo Preparations of the Intact Vomeronasal Organ and Accessory Olfactory Bulb

Экс Vivo Препараты неповрежденной вомероназального органа и аксессуаров обонятельная луковица

The mouse accessory olfactory system (AOS) is a specialized sensory pathway for detecting nonvolatile social odors, pheromones, and kairomones. The first ...

The Olfactory System as a Model to Study Axonal Growth Patterns and Morphology In Vivo

The Olfactory System as a Model to Study Axonal Growth Patterns and Morphology In Vivo

Обонятельная система как модель для изучения характера роста аксонов и морфология<em&gt; В Vivo</em

The olfactory system has the unusual capacity to generate new neurons throughout the lifetime of an organism. Olfactory stem cells in the basal portion of ...

Using the Electroretinogram to Assess Function in the Rodent Retina and the Protective Effects of Remote Limb Ischemic Preconditioning

Использование электроретинограммы чтобы оценить функцию в грызунов Retina и защитные эффекты дистанционного конечностей ишемического прекондиционирования

The ERG is the sum of all retinal activity. The ERG is usually recorded from the cornea, which acts as an antenna that collects and sums signals from the ...

Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System

Simultaneous ex vivo Functional Testing of Two Retinas by in vivo Electroretinogram System

Одновременный<em&gt; Экс естественных условиях</em&gt; Функциональное тестирование двух сетчатки по<em&gt; В естественных условиях</em&gt; Система электроретинограммы

An In vivo electroretinogram (ERG) signal is composed of several overlapping components originating from different retinal cell types, as well as noise ...

Rabies Necropsy Techniques in Large and Small Animals

Методы бешенства некропсии у больших и малых животных

The New York State Department of Health (NYSDOH) Rabies Laboratory receives between 6,000 to 9,000 specimens annually and performs rabies testing for the ...

Transpupillary Two-Photon In Vivo Imaging of the Mouse Retina

Транспупиллярная двухфотонная визуализация сетчатки мыши In vivo

The retina transforms light signals from the environment into electrical signals that are propagated to the brain. Diseases of the retina are prevalent ...

In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

В городе Виво Методы оценки функции и структуры ганглиозных клеток сетчатки и зрительного нерва у крупных животных

The optic nerve collects axons signals from the retinal ganglion cells and transmits visual signal to the brain. Large animal models of optic nerve injury ...

In Vivo Vascular Injury Readouts in Mouse Retina to Promote Reproducibility

In Vivo Vascular Injury Readouts in Mouse Retina to Promote Reproducibility

In vivo Показания сосудистых повреждений в сетчатке мыши для повышения воспроизводимости

Advancements in ophthalmic imaging tools offer an unprecedented level of access to researchers working with animal models of neurovascular injury. To ...