Name: in vivo quantification of hip arthrokinematics during dynamic weight-bearing activities using dual fluoroscopy
Uploaded: 2021-07-02T14:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Quantification of Hip Arthrokinematics during Dynamic Weight-bearing Activities using Dual Fluoroscopy at JoVE.com

Cette recherche a été soutenue par les National Institutes of Health (NIH) sous les numéros de subvention S10 RR026565, R21 AR063844, F32 AR067075, R01 R077636, R56 AR074416, R01 GM083925. Le contenu relève de la seule responsabilité des auteurs et ne représente pas nécessairement les points de vue officiels du NIH.

Les procédures décrites dans ce protocole ont été approuvées par le Conseil d’examen institutionnel de l’Université de l’Utah.
1. Imagerie par arthrogramme CT
<ol><li>Arthrogramme18<ol>
<li>Demandez à un radiologue musculo-squelettique qualifié d’effectuer l’arthrogramme directement avant l’imagerie CT programmée.</li>
		<li>Positionner le participant sur la table avec la hanche d’intérêt dans le champ de vision d’un fluoroscope clinique. Pl...

La double fluoroscopie est un outil puissant pour l’étude de la cinématique in vivo, en particulier pour la hanche, qui est difficile à mesurer avec précision à l’aide de la capture de mouvement optique traditionnelle. Cependant, l’équipement de fluoroscopie est spécialisé, dans lequel une configuration de système unique peut être nécessaire lors de l’imagerie d’autres articulations du corps humain. Par exemple, plusieurs modifications ont été apportées au montage des intensificateurs d?...

Le nombre total d’interventions d’arthroplastie de la hanche (THA) effectuées chez des adultes âgés de 45 à 64 ans souffrant d’arthrose de la hanche (OA) a plus que doublé entre 2000 et 20101. Sur la base de l’augmentation des procédures THA de 2000 à 2014, une étude récente a prédit que le nombre total de procédures annuelles pourrait tripler au cours des vingt prochaines années2. Ces fortes augmentations des procédures THA sont alarmantes étant donné que les coûts actuels du traitement dépassent 18 milliards de dollars par an aux États-Unis seulement3.
La dysplasie développementale de la hanche (DDH) et le syndrome d’impingement fémoro-acétabliculaire (FAIS), qui décrivent respectivement une hanche sous-contrainte ou sur-contrainte, sont considérés comme la principale étiologie de l’arthrose de la hanche4. La forte prévalence de ces déformations structurelles de la hanche chez les personnes subissant une THA a été décrite pour la première fois il y a plus de trois décennies5. Pourtant, la relation entre l’anatomie anormale de la hanche et l’arthrose n’est pas bien comprise. L’un des défis à relever pour améliorer la compréhension pratique du rôle des déformations dans le développement de l’arthrose de la hanche est que la morphologie anormale de la hanche est très fréquente chez les adultes asymptomatiques. Notamment, des études ont observé la morphologie associée au FAIS de type cam chez environ 35% de la population générale6,83% des athlètes seniors7, et plus de 95% des athlètes masculins collégiaux8. Dans une autre étude portant sur des athlètes collégiales féminines, 60% des participantes avaient des preuves radiographiques de CAM FAIS, et 30% avaient des preuves de DDH9.
Des études démontrant une prévalence élevée de déformations chez les personnes sans douleur à la hanche indiquent la possibilité que la morphologie couramment associée au FAIS et à la DDH puisse être une variante naturelle qui ne devient symptomatique que dans certaines conditions. Cependant, l’interaction entre l’anatomie de la hanche et la biomécanique de la hanche n’est pas bien comprise. Notamment, il existe des difficultés connues avec la mesure du mouvement de l’articulation de la hanche à l’aide de la technologie de capture de mouvement optique traditionnelle. Tout d’abord, l’articulation est relativement profonde dans le corps, de sorte que l’emplacement du centre de l’articulation de la hanche est difficile à identifier et à suivre dynamiquement à l’aide de la capture de mouvement de marqueur de peau optique, avec des erreurs du même ordre de grandeur que le rayon de la tête fémorale10,11. Deuxièmement, l’articulation de la hanche est entourée d’un gros volume de tissus mous, y compris la graisse et le muscle sous-cutanés, qui se déplacent par rapport à l’os sous-jacent, ce qui entraîne un artefact des tissus mous12,13,14. Enfin, en utilisant le suivi optique des marqueurs cutanés, la cinématique est évaluée par rapport à l’anatomie généralisée et ne fournit donc pas d’informations sur la façon dont les différences morphologiques subtiles pourraient affecter la biomécanique de l’articulation.
Pour remédier au manque de cinématique précise en combinaison avec la morphologie osseuse spécifique au sujet, des systèmes de fluoroscopie simple et double ont été développés pour analyser d’autres systèmes articulaires naturels15,16,17. Cependant, cette technologie n’a été appliquée que récemment à l’articulation native de la hanche, probablement en raison de la difficulté d’acquérir des images de haute qualité à travers les tissus mous entourant la hanche. La méthodologie permettant de mesurer avec précision le mouvement in vivo de l’articulation de la hanche et d’afficher ce mouvement par rapport à l’anatomie osseuse spécifique au sujet est décrite ici. L’arthrokinématique qui en résulte offre une capacité inégalée à étudier l’interaction subtile entre la morphologie osseuse et la biomécanique.
Ici, les procédures d’acquisition et de traitement des images de double fluoroscopie de la hanche pendant les activités de la vie quotidienne ont été décrites. En raison du désir de capturer la cinématique du corps entier avec le suivi des marqueurs optiques simultanément avec deux images de fluoroscopie, le protocole de collecte de données nécessite une coordination entre plusieurs sources de données. L’étalonnage du système de double fluoroscopie utilise des structures en plexiglas implantées avec des perles métalliques qui peuvent être directement identifiées et suivies en tant que marqueurs. En revanche, le mouvement dynamique des os est suivi à l’aide d’un suivi sans marqueur, qui utilise uniquement la densité radiographique des os basée sur la totmétrie pour définir l’orientation. Le mouvement dynamique est ensuite suivi simultanément à l’aide de données de double fluoroscopie et de capture de mouvement qui sont synchronisées spatialement et temporellement.
Les systèmes sont synchronisés spatialement pendant l’étalonnage grâce à l’imagerie simultanée d’un cube avec des marqueurs réfléchissants et des perles métalliques implantées et la génération d’un système de coordonnées commun. Les systèmes sont synchronisés temporellement pour chaque activité ou capture grâce à l’utilisation d’un déclencheur électronique fractionné, qui envoie un signal pour mettre fin à l’enregistrement des deux caméras de fluoroscopie et interrompt une entrée constante de 5 V au système de capture de mouvement. Ce protocole coordonné permet de quantifier la position des segments du corps qui se situent en dehors du champ de vision combiné du système de double fluoroscopie, l’expression des résultats cinématiques par rapport aux événements normalisés par la marche et la caractérisation de la déformation des tissus mous autour du fémur et du bassin.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Amira Software</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>Version 6.0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calibration Cube</td>
			<td></td>
			<td>Custom</td>
			<td>36 steel beads (3 mm diameter, spacing 6.35 cm, uncertainty 0.0036 mm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calibration Wand</td>
			<td>Vicon</td>
			<td>Active Wand</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CT Scanner</td>
			<td>Siemens AG</td>
			<td colspan="2">SOMATOM Definition 128 CT</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Distortion Correction Grid</td>
			<td></td>
			<td>Custom</td>
			<td>Acrylic plate with a grid of steel beads spaced 10 mm and 31 beads across the diameter (2 mm diameter)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dynamic Calibration Plate</td>
			<td></td>
			<td>Custom</td>
			<td>Acrylic plate with 3 steel beads spaced 30 mm (2 mm diameter, uncertainty 0.0013 mm)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Emitter (2)</td>
			<td>Varian Interay; remanufactured by Radiological Imaging Services</td>
			<td>Housing B-100/Tube A-142</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Epinephrine</td>
			<td>Hospira</td>
			<td>Injection, USP 10 mg/mL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FEBioStudio Software</td>
			<td>FEBio.org</td>
			<td>Version 1.3</td>
			<td>Mesh processing and kinematic visualization</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graphical Processing Unit</td>
			<td>Nvidia</td>
			<td>Tesla</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hare Traction Splint</td>
			<td>DynaMed</td>
			<td>Trac-III, Model No. 95201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-speed Camera (2)</td>
			<td>Vision Research, Inc.</td>
			<td>Phantom Micro 3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Image Intensifier (2)</td>
			<td>Dunlee, Inc.; remanufactured by Radiological Imaging Services</td>
			<td>T12964P/S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Iohexol injection</td>
			<td>GE Healthcare</td>
			<td>Omnipaque 240 mgI/mL</td>
			<td>517.7 mg iohexol, 1.21 mg tromethamine, 0.1 mg edetate calcium disodium per mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ImageJ</td>
			<td>National Institutes of Health and Laboratory for Optical and Computational Instrumentation</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidocaine HCl</td>
			<td>Hospira</td>
			<td>Injection, USP 10 mg/mL</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laser and Mirror Alignment System</td>
			<td></td>
			<td>Custom</td>
			<td>Three lasers adhered to acrylic plate that attaches to emitter, mirror attaches to face of image intensifier</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Markless Tracking Workbench</td>
			<td>Henry Ford Hospital, Custom Software</td>
			<td>Custom</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MATLAB Software</td>
			<td>Mathworks, Inc.</td>
			<td>Version R2017b</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Motion Capture Camera (10)</td>
			<td>Vicon</td>
			<td>Vantage</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nexus Software</td>
			<td>Vicon</td>
			<td>Version 2.8</td>
			<td>Motion capture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phantom Camera Control (PCC) Software</td>
			<td>Vision Research, Inc.</td>
			<td>Version 1.3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pre-tape Spray Glue</td>
			<td>Mueller Sport Care</td>
			<td>Tuffner</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Retroreflective Spherical Skin Markers</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>14 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Split Belt Fully Instrumented Treadmill</td>
			<td>Bertec Corporation</td>
			<td>Custom</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Visual3D Software</td>
			<td>C-Motion Inc.</td>
			<td>Version 6.01</td>
			<td>Kinematic processing</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vivo quantification of hip arthrokinematics during dynamic weight-bearing activities using dual fluoroscopy

Plusieurs pathologies de la hanche ont été attribuées à une morphologie anormale avec une hypothèse sous-jacente de biomécanique aberrante. Cependant, les relations structure-fonction au niveau articulaire restent difficiles à quantifier en raison des difficultés à mesurer avec précision le mouvement dynamique des articulations. Les erreurs d’artefact des tissus mous inhérentes à la capture optique du mouvement des marqueurs cutanés sont exacerbées par la profondeur de l’articulation de la hanche dans le corps et la grande masse de tissus mous entourant l’articulation. Ainsi, la relation complexe entre la forme osseuse et la cinématique de l’articulation de la hanche est plus difficile à étudier avec précision que dans d’autres articulations. Ici, un protocole incorporant la tomodensitométrie (CT), la reconstruction tridimensionnelle (3D) d’images volumétriques, la double fluoroscopie et la capture de mouvement optique pour mesurer avec précision le mouvement dynamique de l’articulation de la hanche est présenté. Les études techniques et cliniques qui ont appliqué la double fluoroscopie pour étudier les relations forme-fonction de la hanche à l’aide de ce protocole sont résumées, et les étapes spécifiques et les considérations futures pour l’acquisition, le traitement et l’analyse des données sont décrites.

En utilisant la double fluoroscopie comme étalon de référence, la précision des estimations basées sur des marqueurs cutanés du centre de l’articulation de la hanche et l’effet de l’artefact des tissus mous sur les mesures cinématiques et cinétiques ont été quantifiées22,23,24. La précision supérieure de la double fluoroscopie a ensuite été utilisée pour identifier des différences subtiles dans la cinémat...

Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Quantification of Hip Arthrokinematics during Dynamic Weight-bearing Activities using Dual Fluoroscopy at JoVE.com

In Vivo Quantification of Hip Arthrokinematics during Dynamic Weight-bearing Activities using Dual Fluoroscopy

La double fluoroscopie capture avec précision le mouvement dynamique in vivo des articulations humaines, qui peut être visualisé par rapport à l’anatomie reconstruite (par exemple, l’arthrococinematique). Ici, un protocole détaillé pour quantifier l’arthrocinématique de la hanche pendant les activités portantes de la vie quotidienne est présenté, y compris l’intégration de la double fluoroscopie avec la capture de mouvement traditionnelle du marqueur cutané.

In vivo Quantification de l’arthrokinématique de la hanche pendant les activités de port de poids dynamiques à l’aide de la double fluoroscopie

Several hip pathologies have been attributed to abnormal morphology with an underlying assumption of aberrant biomechanics. However, structure-function ...

Ce protocole combine la mesure de la cinématique de la hanche in vivo avec la capture de mouvement du corps entier pour perdre le rôle de la biomécanique dans la dégénérescence de la hanche. Par rapport aux méthodes traditionnelles de suivi du mouvement de la hanche, la double fluoroscopie a amélioré la précision, ce qui permet d’examiner la relation subtile entre la forme de la hanche et les modèles de mouvement. Pour les activités de pivot, demandez au participant de faire pivoter ou de traduire ses pieds de manière à ce que le bassin soit tourné vers l’avant sur le tapis roulant.Et la hanche d’intérêt se trouve au milieu du champ de vision combiné sur les fluoroscopes à la fin du pivot. Une fois la position optimisée, demandez au participant d’effectuer le pivot lors de l’imagerie par double fluoroscopie. Et enregistrez toutes les images où le fémur et le bassin sont visibles dans les deux vues de caméra de fluoroscopie.Capturer autant de pivot que possible. Lors des exercices de marche, informez le participant avant de commencer la ceinture de tapis roulant. Accélérez la vitesse du tapis roulant jusqu’à la vitesse de marche appropriée.Et laissez la démarche des participants normalisée avant de collecter des images. Pour l’activité de marche inclinée, demandez aux participants de descendre du tapis roulant. Déverrouillez le tapis roulant, réglez l’inclinaison à cinq degrés et relancez le tapis roulant.Avant que le participant ne remonte sur le tapis roulant pour effectuer l’activité. Pour l’activité d’adduction d’enlèvement, demandez au participant de se tenir dans le champ de vision des fluoroscopes. Et soulevez la jambe d’intérêt d’environ 45 degrés vers le haut et vers le côté sans déplacer le torse.Pour l’activité dynamique du centre de l’articulation de la hanche ou de la voûte plantaire en étoile, demandez au participant de se tenir dans le champ de vision du système de double fluoroscopie et de le lever, puis d’abaisser sa jambe antérieurement par incréments de 45 degrés jusqu’à 180 degrés. Avant de remettre sa jambe sur le sol, demandez au participant de circonduire sa jambe et de revenir à une position debout. Pour le placement du marqueur, appliquez de la colle pulvérisée sur le côté de la peau de la sangle en tissu de chacune des cinq plaques de marquage.Et enroulez-les étroitement autour du participant. Vérifiez auprès d’un participant que les sangles sont serrées, mais qu’ils ne sont pas inconfortables. Placez ensuite les plaques de marquage sur les bandes de tissu.Après avoir nettoyé les mains pour enlever tout excès de colle pulvérisée et mis des gants pour protéger les marqueurs, appliquez les cinq marqueurs utilisés uniquement pour l’étalonnage sur les genoux médiaux de la clavicule et le malléolaire médial. Ensuite, appliquez les 16 marqueurs de suivi aux épines iliaques supérieures, aux épines iliaques supérieures postérieures, au trochanter supérieur supérieur du fémur imagé, aux épaules, au sternum, aux genoux latéraux, au malléolaire latéral et aux pieds. Pour l’identification du repère du repère du repère, ouvrez le fémur proximal en tant que fichier de modèle, puis ouvrez la barre d’outils et le panneau de données pour ajouter un champ standard de courbure de premier principe.Sélectionnez une lissage de 10 et cliquez sur Appliquer. Ensuite, sélectionnez les faces de la tête fémorale. Dans le panneau d’édition, cliquez sur Sélectionner une plage pour inclure uniquement la courbure négative.Déterminez le centre de la tête fémorale à l’aide de cet outil d’ajustement de sphère à partir de l’outil de mesure. Exportez cette surface de tête fémorale en tant que maillage de surface au format k. De même, appliquez le premier principe de courbure au fémur distal avec une cuillère de cinq.Cliquez à nouveau sur Sélectionner une plage pour inclure uniquement les faces à courbure négative. Exportez cette surface de condyle fémoral pour un ajustement de cylindre afin de déterminer l’axe latéral médial. Ensuite, appliquez le deuxième principe de courbure au fémur distal en utilisant une douceur de trois.Mettez en surbrillance les crêtes de l’épicondyle et cliquez sur Sélectionner la plage. Appliquer une limite supérieure de 0,1 négatif. Exportez ces faces pour générer un plan et utilisez-le pour isoler les faces du condyle postérieur pour l’ajustement du cylindre.Pour un suivi sans marqueur, sélectionnez une image dans la plage souhaitée avec une bonne visualisation de l’os. Et orientez manuellement la radiographie numérique reconstruite sur la base de la totographie de l’os d’intérêt en utilisant les six degrés de liberté disponibles dans le logiciel. Une fois que la radiographie reconstruite numériquement de l’os apparaît bien alignée dans les deux vues, enregistrez la solution en cliquant sur le bouton manuel du panneau des solutions.Ensuite, dans le panneau des solutions, cliquez sur le bouton DHS pour appliquer l’étape d’optimisation de la recherche d’hession diagonale et examiner le résultat. Si le résultat optimisé est préféré, passez à l’image suivante, sinon effectuez les ajustements nécessaires et rééregistrez en cliquant sur le bouton manuel dans le panneau des solutions. Pour effectuer le premier passage de suivi, utilisez la plage de bouton LP plus DHS dans le panneau des solutions.Dans la fenêtre, entrez l’ensemble des cadres à suivre et les deux cadres à utiliser pour référence. Examinez et affinez chaque cadre de l’essai à l’aide de solutions manuelles et basées sur le DHS. Utilisez le tracé des paramètres pour vous assurer que le coefficient de corrélation est suffisamment élevé et que l’orientation de l’os n’a pas de sauts soudains dans un paramètre.Pour visualiser le mouvement, ouvrez les surfaces du fémur et du bassin dans le logiciel pour la visualisation cinématique. Si nécessaire, à l’aide de la fonction convertir en maillage, convertissez les surfaces en maillages. Sélectionnez les deux surfaces et exportez-les en tant que maillage de surface au format k.À l’aide de la sortie du suivi, générez un fichier texte avec les transformations de coordonnées pour chaque os et cadre. Ensuite, à l’aide de l’outil cinématique et du maillage de surface et des fichiers texte générés précédemment, animez la cinématique. À l’aide d’une surface semi-transparente, vérifiez que la cinématique animée semble raisonnable.Vous pouvez également utiliser l’outil Distance de surface, exécutez la cinématique animée et vérifiez que les surfaces ont une distance appropriée entre elles. La cinématique pour 100 cadres entourant la rotation maximale des pivots de rotation externes et internes pour un participant représentatif est présentée ici. Cette figure montre la mesure de la distance de surface entre un bassin hémi gauche et le fémur.À rotation maximale du pivot de rotation externe et interne par rapport aux modèles osseux par double fluoroscopie. L’attention aux détails est importante pour un suivi précis de l’arthrokinématique. Il est crucial que chaque étape de la collecte et du traitement des données soit effectuée avec intention.

Research

Education

JoVE Core

JoVE Journal

Anatomy and Physiology

Medicine

Unit 1

In Vivo Quantification of Hip Arthrokinematics during Dynamic Weight-bearing Activities using Dual Fluoroscopy

The Appendicular Skeleton

SCIENTISTS IN ACTION

In vivo Dual Substrate Bioluminescent Imaging

In vivo Dual Substrate Bioluminescent Imaging

In vivo double Substrat Bioluminescent Imaging

Our understanding of how and when breast cancer cells transit from established primary tumors to metastatic sites has increased at an exceptional rate ...

Recherche

Médecine

In vivo 19F MRI for Cell Tracking

In vivo 19F MRI for Cell Tracking

In vivo 19 F IRM pour le suivi cellulaire

In vivo 19F MRI allows quantitative cell tracking without the use of ionizing radiation. It is a noninvasive technique that can be applied to humans. ...

Sequential In vivo Imaging of Osteogenic Stem/Progenitor Cells During Fracture Repair

Sequential In vivo Imaging of Osteogenic Stem/Progenitor Cells During Fracture Repair

Séquentiel<em&gt; In vivo</em&gt; Imagerie des cellules souches / progénitrices ostéogéniques lors de la réparation de la fracture

Bone turns over continuously and is highly regenerative following injury. Osteogenic stem/progenitor cells have long been hypothesized to exist, but in ...

Non-fluoroscopic Catheter Tracking for Fluoroscopy Reduction in Interventional Electrophysiology

Non-fluoroscopique suivi cathéter pour la réduction de la fluoroscopie en électrophysiologie interventionnelle

A technological platform (MediGuide) has been recently introduced for non-fluoroscopic catheter tracking. In several studies, we have demonstrated that ...

Depletion of Mouse Cells from Human Tumor Xenografts Significantly Improves Downstream Analysis of Target Cells

Appauvrissement des cellules de souris de xénogreffes de tumeurs humaines améliore de manière significative l&#39;analyse en aval des cellules cibles

The use of in vitro cell line models for cancer research has been a useful tool. However, it has been shown that these models fail to reliably mimic ...

In Vivo Evaluation of Fracture Callus Development During Bone Healing in Mice Using an MRI-compatible Osteosynthesis Device for the Mouse Femur

In Vivo Evaluation of Fracture Callus Development During Bone Healing in Mice Using an MRI-compatible Osteosynthesis Device for the Mouse Femur

In Vivo Évaluation du développement de cals de Fracture au cours de la guérison osseuse chez la souris en utilisant un dispositif d’ostéosynthèse IRM-compatible pour le fémur de souris

Endochondral fracture healing is a complex process involving the development of fibrous, cartilaginous, and osseous tissue in the fracture callus. The ...

Individualized Stem-positioning in Calcar-guided Short-stem Total Hip Arthroplasty

Tige-positionnement individualisé en guidage Calcar courte tige arthroplastie totale

Bone- and soft-tissue sparing short stems are increasingly used in total hip arthroplasty (THA). However, there are a large variety of models of short ...

Improved Registration of 3D CT Angiography with X-ray Fluoroscopy for Image Fusion During Transcatheter Aortic Valve Implantation

Amélioré enregistrement d’angiographie 3D avec radioscopie aux rayons x pour la Fusion d’Image pendant l’Implantation de la Valve aortique Transcatheter

The fusion of 3D anatomical models derived from high-fidelity pre-interventional computed tomography angiography (CTA), and x-ray (XR) fluoroscopy to ...

An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery

An In Vivo Mouse Model of Total Intravenous Anesthesia During Cancer Resection Surgery

Un modèle murin in vivo d’anesthésie intraveineuse totale pendant une chirurgie de résection du cancer

Anesthesia is a routine component of cancer care that is used for diagnostic and therapeutic procedures. The anesthetic technique has recently been ...

The Use of Mixed Reality in Custom-Made Revision Hip Arthroplasty: A First Case Report

L’utilisation de la réalité mixte dans l’arthroplastie de la hanche de révision sur mesure : un premier rapport de cas

The technology of 3D printing and visualization of anatomical structures is rapidly growing in various fields of medicine. A custom-made implant and mixed ...