Name: in vivo methods to assess retinal ganglion cell and optic nerve function and structure in large animals
Uploaded: 2022-02-26T13:00:00
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Questo studio è stato finanziato dalle seguenti sovvenzioni: National Key R&D Program of China (2021YFA1101200); Progetto di ricerca medica di Wenzhou (Y20170188), National Key R&D Program of China (2016YFC1101200); Fondazione nazionale di scienze naturali della Cina (81770926; 81800842); Programma chiave di ricerca e sviluppo della provincia di Zhejiang (2018C03G2090634); e Key R & D Program del Wenzhou Eye Hospital (YNZD1201902). Lo sponsor o l'organizzazione di finanziamento non ha avuto alcun ruolo nella progettazione o nella conduzione di questa ricerca.

Gli esperimenti sono stati condotti rigorosamente in conformità con le linee guida ARRIVE e la guida del National Institutes of Health per la cura e l'uso di animali da laboratorio e aderiscono ai protocolli approvati dall'Institutional Animal Care and Use Committee della Wenzhou Medical University (WMU) e del Joinn Laboratory (Suzhou). Le capre Saanen maschio, di età compresa tra 4 e 6 mesi con peso di 19-23 kg, sono state ospitate nella struttura per animali WMU. I macachi Rhesus maschi, di età compresa tra 5 e 6 an...

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A., Vianna, J. R., Chauhan, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+retinal+ganglion+cell+damage.">Assessing retinal ganglion cell damage.</a> Eye. 31 (2), 209-217 (2017).</li><li>Schuman, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+coherence+tomography+and+histologic+measurements+of+nerve+fiber+layer+thickness+in+normal+and+glaucomatous+monkey+eyes.">Optical coherence tomography and histologic measurements of nerve fiber layer thickness in normal and glaucomatous monkey eyes.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 48 (8), 3645-3654 (2007).</li><li>You, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improving+reproducibility+of+VEP+recording+in+rats:+electrodes,+stimulus+source+and+peak+analysis.">Improving reproducibility of VEP recording in rats: electrodes, stimulus source and peak analysis.</a> Documenta Ophthalmologica. 123 (2), 109-119 (2011).</li><li>Odom, J. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ISCEV+standard+for+clinical+visual+evoked+potentials:+(2016+update).">ISCEV standard for clinical visual evoked potentials: (2016 update).</a> Documenta Ophthalmologica. 133 (1), 1-9 (2016).</li><li>Zhang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silicone+oil-induced+ocular+hypertension+and+glaucomatous+neurodegeneration+in+mouse.">Silicone oil-induced ocular hypertension and glaucomatous neurodegeneration in mouse.</a> eLife. 8, 45881 (2019).</li><li>Seidman, S. H., Telford, L., Paige, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertical,+horizontal,+and+torsional+eye+movement+responses+to+head+roll+in+the+squirrel+monkey.">Vertical, horizontal, and torsional eye movement responses to head roll in the squirrel monkey.</a> Experimental Brain Research. 104 (2), 218-226 (1995).</li><li>Porciatti, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mouse+pattern+electroretinogram.">The mouse pattern electroretinogram.</a> Documenta Ophthalmologica. 115 (3), 145-153 (2007).</li></ol>

In questo studio, presentiamo un protocollo di VEP, PERG e OCT in capra e macaco rhesus. Questi metodi in vivo possono essere applicati in modelli animali di grandi dimensioni di varie neuropatie ottiche, come il glaucoma, la neuropatia ottica ischemica o traumatica e la neurite ottica9.
PVEP è più stabile e sensibile di FVEP17; tuttavia, non può essere suscitato in goat9. Come tale, FVEP viene eseguito in capr...

Il nervo ottico (ON), costituito da assoni delle cellule gangliari retiniche (RGC), trasmette il segnale visivo dalla retina al cervello. Le malattie ON, come il glaucoma, la neuropatia ottica traumatica o ischemica, spesso causavano una degenerazione irreversibile di ON / RGC e una devastante perdita visiva. Sebbene attualmente ci siano molte scoperte nella rigenerazione ON e nella protezione RGC nei modelli di roditori1,2,3,4,5,6, i trattamenti clinici per la maggior parte delle malattie ON sono rimasti essenzialmente gli stessi nell'ultimo mezzo secolo con esiti insoddisfacenti7,8 . Per colmare il divario tra la ricerca di base e la pratica clinica, gli studi traslazionali che utilizzano modelli animali di grandi dimensioni di malattie ON sono spesso necessari e utili a causa della loro più stretta somiglianza anatomica con gli esseri umani rispetto ai modelli di roditori.
I macachi di capra e rhesus sono due grandi specie animali utilizzate nel nostro laboratorio per modellare la malattia ON dell'uomo. La dimensione del bulbo oculare di una capra, ON, e la struttura adiacente (cavità orbitale e nasale, base cranica, ecc.) è simile a quella di un essere umano basato sulla SCANSIONE TC del cranio9. Pertanto, il modello di capra offre l'opportunità di valutare e perfezionare i dispositivi terapeutici o le procedure chirurgiche prima dell'uso nell'uomo. Il macaco rhesus, come primate non umano (NHP), ha un sistema visivo unico simile all'uomo che non esiste in altre specie10,11. Inoltre, le risposte fisiopatologiche alle lesioni e ai trattamenti nella NHP sono molto simili a quelle degli esseri umani12.
I test in vivo per valutare longitudinalmente la struttura e la funzione dell'ON e dell'RGC sono importanti negli studi su animali di grandi dimensioni. L'elettroretinogramma di pattern (PERG) è stato utilizzato per valutare la funzione RGC. Il potenziale evocato visivo flash (FVEP) riflette l'integrità della via retino-genicolo-corticale nel sistema visivo. Pertanto, PERG combinato con FVEP può riflettere la funzione ON9,13,14 . La tomografia a coerenza ottica retinica (OCT) può mostrare la struttura retinica con un'elevata risoluzione temporale e spaziale, che consente la misurazione dello spessore del complesso gangliare retinico (GCC)9,15. Per gli esami elettrofisiologici in questo studio, il monitoraggio dei segni vitali (tasso di calore, tasso di violazione, pressione sanguigna) e del livello di saturazione di ossigeno (SpO2) prima del test sono cruciali poiché questi parametri hanno potenti impatti sul flusso sanguigno oculare e quindi sulla funzione del sistema visivo. Tuttavia, non abbiamo monitorato i segni vitali durante l'esecuzione dell'imaging retinico OCT per motivi di semplicità. Secondo il nostro studio precedente9, lo spessore del GCC misurato dall'imaging retinico OCT è abbastanza stabile, con un coefficiente di variazione intersessione vicino al 3%. Questi test in vivo nel macaco di capra e rhesus sono stati descritti in dettaglio nel nostro studio precedente9. Qui presentiamo questi metodi per contribuire ad aumentare la trasparenza sperimentale e la riproducibilità.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>47.6 x 26.8 cm monitors</td>
			<td>DELL Inc.</td>
			<td>E2216HV</td>
			<td>The visual stimuli of contrast-reversal black-white checkerboards were displayed on screens</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6.0 mm tracheal tube</td>
			<td>Henan Tuoren Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>PVC 6.0</td>
			<td>ensure the airway</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>alligator clip</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>atropine</td>
			<td>Guangdong Jieyang Longyang Animal pharmaceutical Co.,Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>reduce bronchial secretion and protect heart from vagal nerve activation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carbomer Eye Gel</td>
			<td>Fabrik GmbH Subsidiary of Bausch &#38; Lomb</td>
			<td></td>
			<td>moisten the cornea and stabilize the recording electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ERG-Jet recording electrodes</td>
			<td>Roland Consult Stasche&#38;Finger GmbH</td>
			<td>2300 La Chaux-De-Fonds</td>
			<td>ERG recording</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eye speculum</td>
			<td>Shanghai Jinzhong Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>ZYD020</td>
			<td>open palpebral fissure</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heidelberg Spectralis OCT system</td>
			<td>Heidelberg Engineering</td>
			<td></td>
			<td>OCT system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imaging</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>(https://www.heidelbergengineering.com/media/e-learning/Totara-US/files/pdf-tutorials/2238-003_Spectralis-Training-Guide.pdf)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isoflurane</td>
			<td>RWD Life Science Co., Ltd</td>
			<td>R510-22</td>
			<td>isoflurane anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>male Saanen goats</td>
			<td>Caimu Livestock Company, country (Hangzhou, China)</td>
			<td></td>
			<td>The male Saanen goats, aged from 4 to 6 months with weight of 19&#8211;23 kg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>needle electrode</td>
			<td>Roland Consult Stasche&#38;Finger GmbH</td>
			<td>U51-426-G-D</td>
			<td>use for FVEP ground electrode and PERG reference electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>periphery venous catheter intravenously</td>
			<td>BD shanghai Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>383019</td>
			<td>intravenous access for atropine and propofol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>propofol</td>
			<td>Xian Lipont Enterprise Union Management Co.,Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>induce Isoflurane anesthesia in goat</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tropicamide Phenylephrine Eye Drops</td>
			<td>SANTEN OY, Japan</td>
			<td></td>
			<td>5% tropicamide and 5% phenylephrine hydrochloride</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>visual electrophysiology device</td>
			<td>Gotec Co., Ltd</td>
			<td>GT-2008V-III</td>
			<td>use for FVEP &#38; PERG</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>xylazine</td>
			<td>Huamu Animal Health Products Co., Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>xylazine anesthesia: intramuscular injection of xylazine 3mg/kg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>zoletil50</td>
			<td>Virbac</td>
			<td></td>
			<td>induce Isoflurane anesthesia in monkey</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vivo methods to assess retinal ganglion cell and optic nerve function and structure in large animals

Il nervo ottico raccoglie i segnali degli assoni dalle cellule gangliari retiniche e trasmette il segnale visivo al cervello. I grandi modelli animali di lesioni del nervo ottico sono essenziali per tradurre nuove strategie terapeutiche dai modelli di roditori all'applicazione clinica a causa delle loro somiglianze più strette con gli esseri umani in termini di dimensioni e anatomia. Qui descriviamo alcuni metodi in vivo per valutare la funzione e la struttura delle cellule gangliari retiniche (RGC) e del nervo ottico (ON) in animali di grandi dimensioni, tra cui il potenziale evocato visivo (VEP), l'elettroretinogramma pattern (PERG) e la tomografia a coerenza ottica (OCT). Sia la capra che il primate non umano sono stati impiegati in questo studio. Presentando questi metodi in vivo passo dopo passo, speriamo di aumentare la riproducibilità sperimentale tra diversi laboratori e facilitare l'uso di grandi modelli animali di neuropatie ottiche.

La Figura 1A mostra i risultati rappresentativi di FVEP nella capra. Sebbene le forme d'onda con la stessa intensità del flash abbiano una somiglianza relativa, raccomandiamo comunque di esaminare le forme d'onda due volte. Le onde elettromagnetiche generate dai dispositivi elettronici interferiranno con i segnali elettrici raccolti, con conseguente elevato rumore di base e scarsa ripetibilità della forma d'onda. Pertanto, si raccomanda di assicurarsi che non vi siano dispositivi elettroni...

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In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

Qui mostriamo diversi test in vivo (potenziale evocato visivo flash, elettroretinogramma pattern e tomografia a coerenza ottica) in macaco di capra e rhesus per comprendere la struttura e la funzione del nervo ottico e dei suoi neuroni.

In vivo Metodi per valutare la funzione e la struttura delle cellule gangliari retiniche e del nervo ottico in animali di grandi dimensioni

The optic nerve collects axons signals from the retinal ganglion cells and transmits visual signal to the brain. Large animal models of optic nerve injury ...

Ciao a tutti. Questo è Yikui Zhang del Wenzhou Eye Hospital. Il nervo superiore manca di Exxon dalle cellule gangliari dell'orexina e quindi trasmette il segnale visivo al cervello.Un modello più ampio di lesione del nervo superiore è essenziale per tradurre il nuovo trattamento dal modello robotico all'applicazione linfatica. Qui, descriviamo alcuni metodi in vivo per valutare la struttura e la funzione delle cellule gangliari dell'orexina nel nervo superiore in animali di grandi dimensioni. Presentando questo metodo passo dopo passo, speriamo di aumentare le disabilità riproduttive sperimentali e facilitare l'uso di modelli più ampi di nevrosi ottica.Rasare il rasoio con rasoio elettronico. E, preparalo con il 70% di alcol tre volte, per pulire la pelle ed esporre la vena sottocutanea. Inserire una ruota venosa periferica per via endovenosa.Quindi gocciolare atropina e propofol. Intubare la capra con un tubo tracheale di sei millimetri e connettersi a un respiratore artificiale. L'anestesia è stata mantenuta con il 3,5% di isoflurano in ossigeno a una portata gestita costante di due litri.Posizionare il sensore di temperatura sotto la lingua della capra. Agganciare la fessura di saturazione di ossigeno all'estremità prossimale dell'orecchio di capra. Legare il bracciale per la pressione sanguigna alla base della coscia.Clamp ECG si spacca sugli arti in ordine. Quindi, possiamo monitorare gli indicatori vitali della capra. Rasare i capelli e disinfettare la pelle con betadina e alcool al 70% tre volte al centro dell'osso frontale.Aprire il sacchetto sterilizzatore contenente le forbici e le unghie. Fai incisioni cutanee per esporre il cranio con una forbice. Viti in acciaio per impiantato al centro dell'osso frontale.Rasare i capelli e disinfettare la pelle con betadina e alcool al 70% tre volte in un punto centrale di due orecchie nell'osso occipitale. Fai incisioni cutanee. Viti in acciaio per impiantato nel punto medio di due orecchie nell'osso occipitale.L'elettrodo dell'ago di terra viene inserito per via sottocutanea sotto la vite cranica frontale. L'elettrodo attivo e l'elettrodo di riferimento sono collegati rispettivamente a viti frontali e occipitali con clip a coccodrillo per ridurre l'impotenza dell'elettrodo. Patch un occhio.Applicare colliri per anestesia topica sulla superficie oculare. Le pupille su entrambi i lati sono dilatate da colliri midriasi. Metti la testa della capra in uno stimolatore pieno di gas rivolto alla luce deambulante.Posizionare la coperta nera sopra lo stimolatore e la testa di capra per cinque minuti di adattamento. Lo speculum palpebrale viene utilizzato per esporre completamente la sua pupilla. Controllare l'impotenza del contatto con il tessuto dell'elettrodo.Assicurarsi che l'impotenza sia inferiore a 10 chilometri per ciascuno per evitare interferenze elettromagnetiche da altri dispositivi elettrici nella stessa stanza. Controllare il rumore di base senza stimolazione luminosa. Avviare la registrazione FVEP.Si noti che la registrazione FVEP ad ogni intensità luminosa viene eseguita due volte. Si noti che inumidire la cornea con lacrima artificiale se appare asciutta. Ripeti i passaggi per l'occhio controlaterale.Avviare consecutivamente la registrazione FVEP a diverse intensità luminose. Per ogni registrazione, 64 tracce sono mediate per produrre una forma d'onda. Il primo picco positivo e attivo nella forma d'onda FVEP è stato designato come P1 e N1. L'elettrodo di terra sterilizzato è posizionato nel lobo dell'orecchio.Gli elettrodi attivi e di riferimento sterilizzati vengono inseriti per via sottocutanea lungo la linea mediana e l'osso frontale e occipitale rispettivamente. Lo speculum palpebrale viene utilizzato per esporre completamente la sua pupilla. Patch un occhio.Registra consecutivamente le risposte VEP dell'altro occhio a diverse frequenze spaziali. Collegare all'elettrodo di terra con una clip a coccodrillo. Due elettrodi di riferimento dell'ago sterilizzati sono posizionati sotto la pelle un centimetro dietro il canto laterale su entrambi i lati.Lo speculum palpebrale viene utilizzato per esporre completamente la sua pupilla. Due elettrodi di registrazione ERG disinfettati sono centrati su entrambi la cornea dopo l'applicazione topica di lacrima artificiale. Due stimolatori sono posizionati davanti a ciascun occhio con una distanza di visione di 50 centimetri.Assicurati che l'impotenza sia inferiore a 10 chilometri. Tieni traccia del rumore di base senza stimolazione luminosa. Punta la luce deambulante.Avviare la registrazione ERG del modello da entrambi gli occhi contemporaneamente a diverse frequenze spaziali consecutivamente. Infine, ritorno dello schermo per registrare il modello ERG senza stimolatori visivi e un controllo attivo. Il filtro passa-banda è impostato per variare da uno a 75 Hertz per tre pattern CPD ERG.Il filtro passa-banda va da uno a 50 Hertz per levigare la forma senza alterarne l'ampiezza. I primi picchi positivi e attivi nella forma d'onda sono designati come P1 e N1. L'ampiezza ERG del modello misurata da N1 a P1.To ridurre l'impotenza dell'elettrodo, un riferimento di ago sterilizzato viene posizionato sotto la pelle frontale. E un elettrodo di riferimento dell'ago sterilizzato è posto sotto la pelle un centimetro dietro il canto laterale su un lato.Un elettrodo di registrazione ERG disinfettato viene posizionato sulla cornea su un'applicazione topica di lacrima artificiale. Patch un occhio. Un display è posizionato a una distanza di visualizzazione di 50 centimetri.Lo speculum palpebrale viene utilizzato per esporre completamente la sua pupilla. Quindi, la capra viene posizionata sul mentoniera. Allineare la capra con la fotocamera per inviare la sua testa del nervo ottico nell'immagine oftalmoscopia laser a scansione confocale modificando la sua posizione della testa.Fare clic sul pulsante Start per accedere alla fase finale del rilevamento. Attendere che la macchina finisca di caricare. Premere il pulsante di avvio giallo per avviare l'imaging formale.Regolare il joystick per illuminare uniformemente l'immagine a infrarossi per migliorare la qualità dell'immagine. Far scorrere la fotocamera in avanti fino a visualizzare l'immagine dello Strumento di personalizzazione di Office retinica verticale sullo schermo in alto a destra. Modificare il joystick per farlo danzare uniformemente in un'immagine OCT retinica orizzontale.Premi il pulsante sul joystick per catturare automaticamente la tua immagine. Tenere premuto questo joystick per mantenere la qualità dell'immagine sullo schermo dell'immagine dal vivo fino al completamento dell'esecuzione dell'immagine. Quindi premere acquisisci.Seleziona una foto iniziale di alta qualità. Fare clic con il pulsante destro del mouse e selezionare Imposta riferimento. Premere il pulsante di follow-up per consentire al programma di abbinare automaticamente la scansione corrente alla scansione di base.Una volta abbinato, premi il pulsante sul joystick per attivare il tracciamento automatico in tempo reale. Fare clic sul pulsante di misurazione per accedere alla piattaforma di misurazione. Scegli la gomma uno strumento e cancella la linea RFL, che viene automaticamente etichettata dalla macchina.Scegliete lo strumento di disegno a linee per delineare manualmente il limite tra IPL e INL. Tra le linee rosse e blu c'è il complesso GCC. L'imaging alterato della retina nel macaco rhesus viene eseguito utilizzando le stesse attrezzature e procedure utilizzate nella capra.La figura A mostra FVEP rappresentativo nella capra. La figura B mostra il modello rappresentativo della forma d'onda ERG nella capra. La figura C mostra il modello rappresentativo FVEP nel macaco rhesus.E la figura D mostra il modello rappresentativo della forma d'onda ERG nel macaco rhesus. La figura due mostra immagini OCT retiniche rappresentative intorno alla testa del nervo ottico e lo spessore del complesso GCC in diverse regioni periferiche nella capra e nel macaco rhesus. Il modello animale di grandi dimensioni svolge un ruolo importante nella ricerca traslazionale.In molti casi, gli effetti terapeutici promettenti in modelli di piccoli animali non sono stati tradotti in pazienti umani. In questo studio, abbiamo presentato il protocollo video di FVEP, PERG e OCT nella capra e nel macaco rhesus. Questo metodo in vivo può essere applicato in modelli più ampi di varie nevrosi ottiche, come la neuropatia ottica ischemica o traumatica del glaucoma e la neurite ottica.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

Methods for Experimental Manipulations after Optic Nerve Transection in the Mammalian CNS

Metodi per manipolazioni sperimentali dopo resezione del nervo ottico nel sistema nervoso centrale dei mammiferi

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Ricerca

Neuroscienze

Transfection of Mouse Retinal Ganglion Cells by in vivo Electroporation

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Trasfezione delle cellule gangliari della retina di topo In vivo Elettroporazione

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An Optic Nerve Crush Injury Murine Model to Study Retinal Ganglion Cell Survival

Una lesione del nervo ottico Modello Crush murini per studiare la sopravvivenza delle cellule gangliari della retina

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Functional Neuroimaging Using Ultrasonic Blood-brain Barrier Disruption and Manganese-enhanced MRI

Neuroimaging funzionale con l&#39;impiego dell&#39;ecografia emato-encefalica e la barriera di Turbativa del Manganese-enhanced MRI

Although mice are the dominant model system for studying the genetic and molecular underpinnings of neuroscience, functional neuroimaging in mice remains ...

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Etichettatura retrograda di cellule gangliari della retina in Zebrafish adulti con coloranti fluorescenti

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In vivo Imaging of Optic Nerve Fiber Integrity by Contrast-Enhanced MRI in Mice

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Optical Coherence Tomography: Imaging Mouse Retinal Ganglion Cells In Vivo

Optical Coherence Tomography: Imaging Mouse Retinal Ganglion Cells In Vivo

Tomografia a coerenza ottica: Imaging Mouse ganglionari cellule In Vivo

Structural changes in the retina are common manifestations of ophthalmic diseases. Optical coherence tomography (OCT) enables their identification in ...

Partial Optic Nerve Transection in Rats: A Model Established with a New Operative Approach to Assess Secondary Degeneration of Retinal Ganglion Cells

Transection parziale del nervo ottico in ratti: un modello stabilito con un nuovo approccio operativo per valutare la degenerazione secondaria delle cellule ganglionari retiniche

Previous studies have shown that the secondary degeneration of retinal ganglion cells (RGCs) occurs commonly in glaucoma. Partial optic nerve transection ...