Name: in vivo methods to assess retinal ganglion cell and optic nerve function and structure in large animals
Uploaded: 2022-02-26T13:00:00
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이 연구는 다음과 같은 보조금에 의해 지원되었다: 중국의 국가 키 R&D 프로그램 (2021YFA10101200); 원저우 의학 연구 프로젝트 (Y20170188), 중국의 국가 키 R&D 프로그램 (2016YFC1101200); 중국 국립 자연 과학 재단 (81770926;81800842); 저장성 주요 R&D 프로그램 (2018C03G2090634); 원저우안과 병원(YNZD1201902)의 주요 R&D 프로그램. 스폰서 또는 자금 조달 조직은 이 연구의 설계 또는 수행에 아무런 역할을 하지 않았습니다.

실험은 실험실 동물의 치료 및 사용에 대한 도착 지침 및 국립 보건 원 가이드에 따라 엄격하게 수행되었으며, 원저우 의과 대학 (WMU) 및 조인 연구소 (소주)의 기관 동물 관리 및 사용위원회가 승인 한 프로토콜을 준수했습니다. 체중19-23kg의 4개월에서 6개월까지 의 수컷 사넨 염소는 WMU 동물 시설에 보관되었습니다. 5-7kg의 무게로 5세에서 6세 사이의 수컷 레서스 원숭이는 조인 동물 시설에 보관되...

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A., Vianna, J. R., Chauhan, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+retinal+ganglion+cell+damage.">Assessing retinal ganglion cell damage.</a> Eye. 31 (2), 209-217 (2017).</li><li>Schuman, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+coherence+tomography+and+histologic+measurements+of+nerve+fiber+layer+thickness+in+normal+and+glaucomatous+monkey+eyes.">Optical coherence tomography and histologic measurements of nerve fiber layer thickness in normal and glaucomatous monkey eyes.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 48 (8), 3645-3654 (2007).</li><li>You, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improving+reproducibility+of+VEP+recording+in+rats:+electrodes,+stimulus+source+and+peak+analysis.">Improving reproducibility of VEP recording in rats: electrodes, stimulus source and peak analysis.</a> Documenta Ophthalmologica. 123 (2), 109-119 (2011).</li><li>Odom, J. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ISCEV+standard+for+clinical+visual+evoked+potentials:+(2016+update).">ISCEV standard for clinical visual evoked potentials: (2016 update).</a> Documenta Ophthalmologica. 133 (1), 1-9 (2016).</li><li>Zhang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silicone+oil-induced+ocular+hypertension+and+glaucomatous+neurodegeneration+in+mouse.">Silicone oil-induced ocular hypertension and glaucomatous neurodegeneration in mouse.</a> eLife. 8, 45881 (2019).</li><li>Seidman, S. H., Telford, L., Paige, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertical,+horizontal,+and+torsional+eye+movement+responses+to+head+roll+in+the+squirrel+monkey.">Vertical, horizontal, and torsional eye movement responses to head roll in the squirrel monkey.</a> Experimental Brain Research. 104 (2), 218-226 (1995).</li><li>Porciatti, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mouse+pattern+electroretinogram.">The mouse pattern electroretinogram.</a> Documenta Ophthalmologica. 115 (3), 145-153 (2007).</li></ol>

이 연구에서는 염소와 rhesus 원숭이에 VEP, PERG 및 OCT의 프로토콜을 제시합니다. 이러한 생체 내 방법은 녹내장, 허혈성 또는 외상성 시신경병증 및 광학 신경염과 같은 다양한 시신경병증의 대형 동물 모델에 적용될 수 있다.
PVEP는 FVEP17보다 더 안정적이고 민감합니다. 그러나 염소9에서는 유도될 수 없습니다. 이와 ?...

망막 신경절 세포 (RGC)에서 축으로 구성된 시신경 (ON)은 망막에서 뇌로 시각적 신호를 전달합니다. 녹내장, 외상성 또는 허혈성 신경병증과 같은 질병은 종종 돌이킬 수없는 ON / RGC 변성과 파괴적인 시각 손실을 일으켰습니다. 현재 설치류 모델에서 ON 재생 및 RGC 보호에 많은 돌파구가 있지만1,2,3,4,5,6, ON 질병의 대부분에 대한 임상 치료는 만족스럽지 못한 결과와 지난 반세기 동안 본질적으로 동일하게 유지7,8 . 기본 연구와 임상 실습 사이의 격차를 메우기 위해 ON 질병의 큰 동물 모델을 사용하는 번역 연구는 설치류 모델보다 인간과의 해부학적 유사성 때문에 종종 필요하고 유익합니다.
염소와 rhesus 원숭이는 인간의 ON 질병을 모델링하기 위해 우리의 실험실에서 사용되는 두 개의 큰 동물 종입니다. 염소의 안구, ON 및 인접한 구조(궤도 및 비강, 두개골 기지 등)의 크기는 두개골 CT 스캔9을 기반으로 한 사람의 크기와 유사합니다. 따라서 염소 모델은 인간에서 사용하기 전에 치료 장치 또는 수술 절차를 평가하고 정제 할 수있는 기회를 제공합니다. 비인간 영장류 (NHP)로 rhesus 원숭이는 다른 종10,11에 존재하지 않는 인간과 같은 독특한 시각 시스템을 가지고 있습니다. 또한, NHP에서 부상과 치료에 대한 병리학적 반응은 인간12에서와 훨씬 유사합니다.
ON 및 RGC의 구조와 기능을 세로적으로 평가하는 생체 내에서 는 큰 동물 연구에서 중요합니다. 패턴 전기 전세노그램(PERG)은 RGC 기능을 평가하는 데 사용되어 왔다. 플래시 비주얼 은 전위 (FVEP)는 시각 시스템에서 망막 제니큘로 피질 경로의 무결성을 반영합니다. 따라서, FVEP와 결합된 PERG는 ON 기능을 반영할 수 있다9,13,14. 망막 광학 일관성 단층 촬영(OCT) 이미징은 망막 신경절 복합체(GCC)9,15의 두께를 측정할 수 있는 높은 측두및 공간 해상도로 망막 구조를 보여줄 수 있다. 이 연구에서 전기 생리학적 검사의 경우, 이러한 매개 변수가 안구 혈류에 강력한 영향을 미치고 따라서 시각 시스템의 기능에 강력한 영향을 미치기 때문에 테스트 전에 활력 징후 (열속도, 위반 속도, 혈압) 및 산소 포화 수준 (SpO2)을 모니터링하는 것이 중요합니다. 그러나, 우리는 단순성을 위해 OCT 망막 화상 진찰을 수행할 때 생명 징후를 감시하지 않았습니다. 우리의 이전 연구에 따르면9, OCT 망막 이미징에 의해 측정 된 GCC 두께는 매우 안정적이다, 3 %에 가까운 변화의 세션 계수와. 염소와 rhesus 원숭이에서 생체 내 시험은 우리의 이전 연구에서 자세히 설명되었습니다9. 여기서 우리는 실험적 투명성과 재현성을 높이기 위해 이러한 방법을 제시합니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>47.6 x 26.8 cm monitors</td>
			<td>DELL Inc.</td>
			<td>E2216HV</td>
			<td>The visual stimuli of contrast-reversal black-white checkerboards were displayed on screens</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6.0 mm tracheal tube</td>
			<td>Henan Tuoren Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>PVC 6.0</td>
			<td>ensure the airway</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>alligator clip</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>atropine</td>
			<td>Guangdong Jieyang Longyang Animal pharmaceutical Co.,Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>reduce bronchial secretion and protect heart from vagal nerve activation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carbomer Eye Gel</td>
			<td>Fabrik GmbH Subsidiary of Bausch &#38; Lomb</td>
			<td></td>
			<td>moisten the cornea and stabilize the recording electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ERG-Jet recording electrodes</td>
			<td>Roland Consult Stasche&#38;Finger GmbH</td>
			<td>2300 La Chaux-De-Fonds</td>
			<td>ERG recording</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eye speculum</td>
			<td>Shanghai Jinzhong Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>ZYD020</td>
			<td>open palpebral fissure</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heidelberg Spectralis OCT system</td>
			<td>Heidelberg Engineering</td>
			<td></td>
			<td>OCT system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imaging</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>(https://www.heidelbergengineering.com/media/e-learning/Totara-US/files/pdf-tutorials/2238-003_Spectralis-Training-Guide.pdf)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isoflurane</td>
			<td>RWD Life Science Co., Ltd</td>
			<td>R510-22</td>
			<td>isoflurane anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>male Saanen goats</td>
			<td>Caimu Livestock Company, country (Hangzhou, China)</td>
			<td></td>
			<td>The male Saanen goats, aged from 4 to 6 months with weight of 19&#8211;23 kg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>needle electrode</td>
			<td>Roland Consult Stasche&#38;Finger GmbH</td>
			<td>U51-426-G-D</td>
			<td>use for FVEP ground electrode and PERG reference electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>periphery venous catheter intravenously</td>
			<td>BD shanghai Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>383019</td>
			<td>intravenous access for atropine and propofol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>propofol</td>
			<td>Xian Lipont Enterprise Union Management Co.,Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>induce Isoflurane anesthesia in goat</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tropicamide Phenylephrine Eye Drops</td>
			<td>SANTEN OY, Japan</td>
			<td></td>
			<td>5% tropicamide and 5% phenylephrine hydrochloride</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>visual electrophysiology device</td>
			<td>Gotec Co., Ltd</td>
			<td>GT-2008V-III</td>
			<td>use for FVEP &#38; PERG</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>xylazine</td>
			<td>Huamu Animal Health Products Co., Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>xylazine anesthesia: intramuscular injection of xylazine 3mg/kg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>zoletil50</td>
			<td>Virbac</td>
			<td></td>
			<td>induce Isoflurane anesthesia in monkey</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vivo methods to assess retinal ganglion cell and optic nerve function and structure in large animals

시신경은 망막 신경절 세포에서 축축절 신호를 수집하고 뇌에 시각적 신호를 전송합니다. 시신경 상해의 큰 동물 모형은 크기와 해부학에 있는 인간에 그들의 가까운 유사성 때문에 설치류 모형에서 임상 응용에 새로운 치료 전략을 번역하기 위해 필수적입니다. 여기서우리는 시각 유발 전위(VEP), 패턴 전백소(PERG) 및 광학 일관성 단층 촬영(OCT)을 포함하여 큰 동물에서 망막 신경절 세포(RGC) 및 시신경(ON)의 기능 및 구조를 평가하는 생체내 방법을 설명한다. 염소와 비 인간 영장류 모두이 연구에서 사용되었다. 생체 내 방법을 단계적으로 제시함으로써, 우리는 다른 실험실 중 실험 재현성을 높이고 시신경병증의 대형 동물 모델의 사용을 용이하게 할 수 있기를 바랍니다.

그림 1A 는 염소에서 FVEP의 대표적인 결과를 보여줍니다. 동일한 플래시 강도의 파형은 상대적인 유사성을 가지고 있지만 파형을 두 번 검사하는 것이 좋습니다. 전자 기기에 의해 생성된 전자파는 수집된 전기 신호를 방해하여 높은 기준 소음과 파형의 반복성이 떨어집니다. 따라서, 이러한 간섭을 피하기 위해 전기 생리학적 검사 중에 주변 환경에 연결된 중복 전자 장치가...

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In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

여기에서 우리는 시신경과 그 뉴런의 구조와 기능을 이해하기 위하여 염소와 rhesus 원숭이에서 생체 내 시험 (플래시 시각적 으로 불러일으킨 잠재력, 패턴 전기 전세노그램 및 광학 일관성 단층 촬영)에서 몇몇을 염판합니다.

인 비보 큰 동물의 망막 신경 세포 및 시신경 기능 및 구조를 평가하는 방법

The optic nerve collects axons signals from the retinal ganglion cells and transmits visual signal to the brain. Large animal models of optic nerve injury ...

안녕 여러분. 원저우안과병원 이쿠이 장입니다. 상부 신경은 오렉스신 신경절 세포에서 엑손이 부족하고, 그 후 뇌에 시각적 신호를 전송합니다.상부 신경 상해의 더 큰 모형은 로봇 모형에서 림프 응용으로 새로운 처리를 번역하기 위하여 필수적입니다. 여기서, 우리는 큰 동물에서 상부 신경에서 orexin 신경절 세포의 구조 와 기능을 평가하는 생체 내 방법을 설명합니다. 이 방법을 단계별로 제시함으로써 실험적 생식 장애를 증가시키고 더 큰 신경증 모델의 사용을 용이하게 할 수 있기를 바랍니다.전자 면도기로 면도하십시오. 그리고, 피부를 청소하고 피하 정맥을 노출하기 위해, 세 번 70 %의 알코올로 준비. 주변 정맥 캐스터를 정맥으로 삽입합니다.그런 다음 아트로핀과 프로포폴을 드립. 6mm 기관관으로 염소를 삽관하고 인공 호흡보호구에 연결합니다. 마취는 일정한 2리터 관리 유량으로 산소에서 3.5%의 이소플루란으로 유지되었다.온도 센서를 염소의 혀 아래에 놓습니다. 산소 포화도 를 염소 귀의 근위 쪽 끝으로 잘라냅니다. 혈압 커프를 허벅지 바닥에 묶습니다.전자선 클램프는 팔다리에 순서대로 갈라놓습니다. 그런 다음 염소의 중요한 지표를 모니터링 할 수 있습니다. 모발을 면도하고 전두엽 뼈의 중앙에서 베타딘과 70%의 알코올로 피부를 소독합니다.가위와 손톱이 들어 있는 멸균기 가방을 엽니다. 가위로 두개골을 노출하기 위해 피부 절개를 합니다. 정면 뼈의 중앙에 이식용 강철 나사.모발을 면도하고 베타딘으로 피부를 소독하고 후두 뼈에 있는 두 개의 귀의 중간 지점에서 70%의 알코올을 세 번 소독합니다. 피부 절개를 합니다. 후두 뼈에 두 개의 귀의 중간 지점에 이식하기위한 강철 나사.지상 바늘 전극은 전두엽 두개골 나사 아래에 피하로 삽입됩니다. 활성 전극 및 기준 전극은 전극 발기 부전을 줄이기 위해 악어 클립과 함께 각각 전두엽 및 후두 나사에 연결됩니다. 한쪽 눈을 패치합니다.안구 표면에 국소 마취 점안액을 적용합니다. 양쪽의 동공은 mydriasis 점안액에 의해 넓혀집니다. 염소의 머리를 가스로 채워진 자극기에 배치하여 외음광을 조준합니다.자극기와 염소 머리 위에 검은 담요를 5분간 조정합니다. 눈꺼풀 관은 동공을 완전히 노출하는 데 사용됩니다. 전극 조직 접촉 발기 부전을 확인하십시오.발기 부전이 같은 방에있는 다른 전기 장치에서 전자기 간섭을 피하기 위해 각각 10 킬로미터 미만인지 확인하십시오. 빛 자극 없이 베이스라인 노이즈를 확인합니다. FVEP 레코딩을 시작합니다.각 광 강도에서 FVEP 레코딩이 두 번 수행됩니다. 마른 것처럼 보이는 경우 인공 눈물로 각막을 촉촉하게 합니다. 반대되는 눈을 위한 단계에 대해 반복합니다.다른 빛 강도에서 FVEP 레코딩을 연속적으로 시작합니다. 각 레코딩에 대해 64개의 추적이 평균으로 되어 하나의 파 형태를 생성합니다. FVEP 파형의 첫 번째 양성 및 활성 피크는 P1 및 N1로 지정되었습니다. 멸균 된 접지 전극은 귓불에 배치됩니다.멸균 활성 및 기준 전극은 각각 중간선및 전두엽 및 후두 뼈를 따라 피하적으로 삽입됩니다. 눈꺼풀 관은 동공을 완전히 노출하는 데 사용됩니다. 한쪽 눈을 패치합니다.다른 눈의 VEP 응답을 연속적으로 다른 공간 주파수에서 기록합니다. 악어 클립으로 접지 전극에 연결합니다. 두 개의 멸균 된 바늘 참조 전극은 양쪽에 측면 캔투스 뒤에 1 센티미터 피부 아래에 배치됩니다.눈꺼풀 관은 동공을 완전히 노출하는 데 사용됩니다. 소독된 ERG 기록 전극 2개는 인공 눈물의 국소 적용 후 두 각막을 중심으로 한다. 시야거리가 50cm인 각 눈 앞에 두 개의 자극기가 배치됩니다.발기 부전이 10킬로미터 미만인지 확인합니다. 빛 자극 없이 베이스라인 노이즈를 추적합니다. 외래 의 빛을 목표로합니다.다양한 공간 주파수에서 두 눈에서 동시에 패턴 ERG 레코딩을 연속적으로 시작합니다. 마지막으로 화면으로 돌아와 시각적 자극기와 능동 제어 없이 패턴 ERG를 기록합니다. 밴드패스 필터는 세 개의 CPD 패턴 ERG에 대해 1개에서 75 헤르츠까지 다양하게 설정됩니다.밴드패스 필터는 1~50 헤르츠까지 진폭에 영향을 주지 않고 모양을 부드럽게 합니다. 파형의 첫 번째 양성 및 활성 피크는 P1 및 N1로 지정됩니다. N1에서 측정된 ERG 진폭은 전극 발기 부전을 P1.To 감소시키고, 멸균된 바늘 기준이 전두엽 피부 아래에 배치된다. 그리고 멸균된 바늘 기준 전극은 한쪽면에 측면 캔투스 뒤에 1센티미터 의 피부 아래에 배치된다.소독된 ERG 기록 전극은 인공 눈물의 국소 적용에 각막에 배치된다. 한쪽 눈을 패치합니다. 디스플레이는 50cm의 시야 거리에 배치됩니다.눈꺼풀 관은 동공을 완전히 노출하는 데 사용됩니다. 그런 다음 염소는 턱 받침대위에 놓입니다. 염소를 카메라와 정렬하여 머리 위치를 수정하여 공초점 스캔 레이저 안과 이미지에서 시신경 머리를 보냅니다.시작 버튼을 클릭하여 검색 종료 단계를 입력합니다. 기기가 로딩을 완료할 때까지 기다립니다. 노란색 시작 버튼을 눌러 형식 이미징을 시작합니다.조이스틱을 조정하여 적외선 이미지를 고르게 비추어 이미지 품질을 향상시킵니다. 오른쪽 상단 화면에 수직 망막 OCT 이미지가 표시될 때까지 카메라를 앞으로 밉드합니다. 조이스틱을 수정하여 수평 망막 OCT 이미지에서 균일하게 춤을 추세요.조이스틱의 버튼을 눌러 이미지를 자동으로 잡습니다. 이 조이스틱을 잡고 이미지 실행이 완료될 때까지 라이브 이미지 화면에서 이미지 품질을 유지합니다. 그런 다음 획득을 누릅니다.고품질 초기 사진을 선택합니다. 마우스 오른쪽 단추를 클릭하고 참조 를 설정합니다. 후속 버튼을 눌러 프로그램이 현재 스캔을 베이스라인 검사와 자동으로 일치시킬 수 있도록 합니다.일치하면 조이스틱의 버튼을 눌러 자동 실시간 추적을 활성화했습니다. 측정 버튼을 클릭하여 측정 플랫폼을 입력합니다. 지우개 도구를 선택하고 자동으로 컴퓨터에 레이블이 지정되는 RFL 라인을 지웁울 수 있습니다.IPL과 INL 사이의 경계를 수동으로 윤곽을 그리려면 선 그리기 도구를 선택합니다. 빨간색과 파란색 선 사이에는 GCC 복합체가 있습니다. rhesus 원숭이에서 망막 변경 된 이미징은 염소에 사용되는 것과 동일한 장비와 절차를 사용하여 수행됩니다.그림 A는 염소에서 대표적인 FVEP를 보여줍니다. 도 B는 염소에서 대표적인 패턴 ERG 파형을 나타낸다. 도면 C는 rhesus 원숭이에서 대표적인 패턴 FVEP를 나타낸다.그리고, 도면 D는 rhesus 원숭이에 대표적인 패턴 ERG 파형태를 나타낸다. 그림 2는 시신경 헤드 와 염소와 rhesus 원숭이의 다른 주변 지역에서 GCC 복합체의 두께 를 중심으로 대표적인 망막 OCT 이미지를 보여줍니다. 대형 동물 모델은 번역 연구에서 중요한 역할을 합니다.많은 경우에, 작은 동물 모형에 있는 유망한 치료 효력은 인간적인 환자에게 번역되지 못했습니다. 이 연구에서는, 우리는 염소와 rhesus 원숭이FVEP, PERG 및 OCT의 비디오 프로토콜을 제시했습니다. 이러한 생체 내 방법은 녹내장 허혈성 또는 외상성 신경병증 및 광학 신경염과 같은 다양한 광학 신경증의 더 큰 모델에 적용될 수 있다.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

Methods for Experimental Manipulations after Optic Nerve Transection in the Mammalian CNS

포유류의 CNS에서 시신경의 절개 후 실험에 대한 노는 방법

Retinal ganglion cells (RGCs) are CNS neurons that output visual information from the retina to the brain, via the optic nerve. The optic nerve can be ...

연구

신경과학

Transfection of Mouse Retinal Ganglion Cells by in vivo Electroporation

Transfection of Mouse Retinal Ganglion Cells by in vivo Electroporation

마우스 망막 신경절 세포 Transfection로 생체내에 Electroporation

The targeting and refinement of RGC projections to the midbrain is a popular and powerful model system for studying how precise patterns of neural ...

An Optic Nerve Crush Injury Murine Model to Study Retinal Ganglion Cell Survival

망막 신경절 세포의 생존을 공부 시신경의 호감 상해 Murine 모델

Injury to the optic nerve can lead to axonal degeneration, followed by a gradual death of retinal ganglion cells (RGCs), which results in irreversible ...

Functional Neuroimaging Using Ultrasonic Blood-brain Barrier Disruption and Manganese-enhanced MRI

초음파 혈액 - 뇌 장벽 파괴 및 망간 향상된 MRI를 사용하여 기능성 Neuroimaging

Although mice are the dominant model system for studying the genetic and molecular underpinnings of neuroscience, functional neuroimaging in mice remains ...

Retrograde Labeling of Retinal Ganglion Cells in Adult Zebrafish with Fluorescent Dyes

형광 염료와 성인 Zebrafish의 망막 신경절 세포의 퇴행성 라벨링

As retrograde labeling retinal ganglion cells (RGCs) can isolate RGCs somata from dying sites, it has become the gold standard for counting RGCs in RGCs ...

In vivo Imaging of Optic Nerve Fiber Integrity by Contrast-Enhanced MRI in Mice

In vivo Imaging of Optic Nerve Fiber Integrity by Contrast-Enhanced MRI in Mice

마우스의 조영 증강 MRI에 의한 시신경 섬유 무결성의 생체 내 이미징

The rodent visual system encompasses retinal ganglion cells and their axons that form the optic nerve to enter thalamic and midbrain centers, and ...

Imaging Serotonergic Fibers in the Mouse Spinal Cord Using the CLARITY/CUBIC Technique

CLARITY를 사용하여 마우스 척수에서 세로토닌 섬유 이미징 / CUBIC 기술

Long descending fibers to the spinal cord are essential for locomotion, pain perception, and other behaviors. The fiber termination pattern in the spinal ...

Single-cell RNA-Seq of Defined Subsets of Retinal Ganglion Cells

망막 신경절 세포의 정의 된 서브 세트의 단일 세포 RNA-Seq

The discovery of cell type-specific markers can provide insight into cellular function and the origins of cellular heterogeneity. With a recent push for ...

Optical Coherence Tomography: Imaging Mouse Retinal Ganglion Cells In Vivo

Optical Coherence Tomography: Imaging Mouse Retinal Ganglion Cells In Vivo

광학 일관성 단층 촬영: 마우스 망막 신경 절 세포에서 Vivo에서 화상 진 찰

Structural changes in the retina are common manifestations of ophthalmic diseases. Optical coherence tomography (OCT) enables their identification in ...

Partial Optic Nerve Transection in Rats: A Model Established with a New Operative Approach to Assess Secondary Degeneration of Retinal Ganglion Cells

쥐에 있는 부분 시 신경 Transection: 망막 신경 절 세포의 2 차 변성을 평가 하기 위해 새로운 수술 방식으로 설립 모델

Previous studies have shown that the secondary degeneration of retinal ganglion cells (RGCs) occurs commonly in glaucoma. Partial optic nerve transection ...