Name: in vivo methods to assess retinal ganglion cell and optic nerve function and structure in large animals
Uploaded: 2022-02-26T13:00:00
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Este estudio fue financiado por las siguientes subvenciones: Programa Nacional Clave de I + D de China (2021YFA1101200); Proyecto de Investigación Médica de Wenzhou (Y20170188), Programa Nacional Clave de I + D de China (2016YFC1101200); Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (81770926;81800842); Programa clave de I + D de la provincia de Zhejiang (2018C03G2090634); y programa clave de I + D del Hospital de Ojos de Wenzhou (YNZD1201902). El patrocinador u organización financiadora no tuvo ningún papel en el diseño o la realización de esta investigación.

Los experimentos se llevaron a cabo estrictamente de acuerdo con las directrices de ARRIVE y la guía de los Institutos Nacionales de Salud para el cuidado y uso de animales de laboratorio, y se adhieren a los protocolos aprobados por el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales en la Universidad Médica de Wenzhou (WMU) y joinn Laboratory (Suzhou). Los machos de cabras Saanen, de 4 a 6 meses de edad con un peso de 19-23 kg, fueron alojados en las instalaciones de animales de la UMM. Los macacos Rhesus machos, d...

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S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optical+coherence+tomography+and+histologic+measurements+of+nerve+fiber+layer+thickness+in+normal+and+glaucomatous+monkey+eyes.">Optical coherence tomography and histologic measurements of nerve fiber layer thickness in normal and glaucomatous monkey eyes.</a> Investigative Ophthalmology &amp; Visual Science. 48 (8), 3645-3654 (2007).</li><li>You, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improving+reproducibility+of+VEP+recording+in+rats:+electrodes,+stimulus+source+and+peak+analysis.">Improving reproducibility of VEP recording in rats: electrodes, stimulus source and peak analysis.</a> Documenta Ophthalmologica. 123 (2), 109-119 (2011).</li><li>Odom, J. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ISCEV+standard+for+clinical+visual+evoked+potentials:+(2016+update).">ISCEV standard for clinical visual evoked potentials: (2016 update).</a> Documenta Ophthalmologica. 133 (1), 1-9 (2016).</li><li>Zhang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silicone+oil-induced+ocular+hypertension+and+glaucomatous+neurodegeneration+in+mouse.">Silicone oil-induced ocular hypertension and glaucomatous neurodegeneration in mouse.</a> eLife. 8, 45881 (2019).</li><li>Seidman, S. H., Telford, L., Paige, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vertical,+horizontal,+and+torsional+eye+movement+responses+to+head+roll+in+the+squirrel+monkey.">Vertical, horizontal, and torsional eye movement responses to head roll in the squirrel monkey.</a> Experimental Brain Research. 104 (2), 218-226 (1995).</li><li>Porciatti, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mouse+pattern+electroretinogram.">The mouse pattern electroretinogram.</a> Documenta Ophthalmologica. 115 (3), 145-153 (2007).</li></ol>

En este estudio, presentamos un protocolo de VEP, PERG y OCT en cabra y macaco rhesus. Estos métodos in vivo se pueden aplicar en modelos animales grandes de diversas neuropatías ópticas, como glaucoma, neuropatía óptica isquémica o traumática y neuritis óptica9.
PvEP es más estable y sensible que FVEP17; sin embargo, no se puede obtener en la cabra9. Como tal, FVEP se realiza en cabra y PVEP se realiza e...

El nervio óptico (ON), que consiste en axones de las células ganglionares de la retina (RGC), transmite la señal visual de la retina al cerebro. Las enfermedades ON, como el glaucoma, la neuropatía óptica traumática o isquémica, a menudo causaban degeneración irreversible de ON / RGC y pérdida visual devastadora. Aunque actualmente hay muchos avances en la regeneración de ON y la protección de RGC en modelos de roedores1,2,3,4,5,6, los tratamientos clínicos para la mayoría de las enfermedades ON se mantuvieron esencialmente iguales durante el último medio siglo con resultados insatisfactorios7,8 . Para llenar el vacío entre la investigación básica y la práctica clínica, los estudios traslacionales que utilizan modelos animales grandes de enfermedades ON a menudo son necesarios y beneficiosos debido a su similitud anatómica más cercana a los humanos que a los modelos de roedores.
Los macacos de cabra y rhesus son dos grandes especies animales utilizadas en nuestro laboratorio para modelar la enfermedad ON humana. El tamaño del globo ocular de una cabra, ON, y la estructura adyacente (cavidad orbitaria y nasal, base del cráneo, etc.) es similar al de un humano basado en la tomografía computarizada del cráneo9. Como tal, el modelo de cabra brinda la oportunidad de evaluar y refinar dispositivos terapéuticos o procedimientos quirúrgicos antes de su uso en humanos. El macaco rhesus, como primate no humano (NHP), tiene un sistema visual único similar al humano que no existe en otras especies10,11. Además, las respuestas fisiopatológicas a las lesiones y tratamientos en la NHP son muy similares a las de los seres humanos12.
Las pruebas in vivo para evaluar longitudinalmente la estructura y función del ON y el RGC son importantes en estudios con animales grandes. El electrorretinograma de patrón (PERG) se ha utilizado para evaluar la función RGC. El potencial evocado visual flash (FVEP) refleja la integridad de la vía retino-geniculo-cortical en el sistema visual. Así, PERG combinado con FVEP puede reflejar la función ON9,13,14 . La tomografía de coherencia óptica retiniana (OCT) puede mostrar la estructura retiniana con alta resolución temporal y espacial, lo que permite medir el grosor del complejo ganglionar retiniano (CCG)9,15. Para los exámenes electrofisiológicos en este estudio, el monitoreo de los signos vitales (tasa de calor, tasa de ruptura, presión arterial) y el nivel de saturación de oxígeno (SpO2) antes de las pruebas son cruciales ya que estos parámetros tienen un impacto potente en el flujo sanguíneo ocular y, por lo tanto, en la función del sistema visual. Sin embargo, no monitoreamos los signos vitales al realizar imágenes de retina octianas en aras de la simplicidad. Según nuestro estudio anterior9, el grosor del CCG medido por imágenes retinianas octeales es bastante estable, con un coeficiente de variación entre sesiones cercano al 3%. Estas pruebas in vivo en cabra y macaco rhesus han sido descritas en detalle en nuestro estudio anterior9. Aquí presentamos estos métodos para ayudar a aumentar la transparencia experimental y la reproducibilidad.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>47.6 x 26.8 cm monitors</td>
			<td>DELL Inc.</td>
			<td>E2216HV</td>
			<td>The visual stimuli of contrast-reversal black-white checkerboards were displayed on screens</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6.0 mm tracheal tube</td>
			<td>Henan Tuoren Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>PVC 6.0</td>
			<td>ensure the airway</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>alligator clip</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>atropine</td>
			<td>Guangdong Jieyang Longyang Animal pharmaceutical Co.,Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>reduce bronchial secretion and protect heart from vagal nerve activation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carbomer Eye Gel</td>
			<td>Fabrik GmbH Subsidiary of Bausch &#38; Lomb</td>
			<td></td>
			<td>moisten the cornea and stabilize the recording electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ERG-Jet recording electrodes</td>
			<td>Roland Consult Stasche&#38;Finger GmbH</td>
			<td>2300 La Chaux-De-Fonds</td>
			<td>ERG recording</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>eye speculum</td>
			<td>Shanghai Jinzhong Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>ZYD020</td>
			<td>open palpebral fissure</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heidelberg Spectralis OCT system</td>
			<td>Heidelberg Engineering</td>
			<td></td>
			<td>OCT system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Imaging</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>(https://www.heidelbergengineering.com/media/e-learning/Totara-US/files/pdf-tutorials/2238-003_Spectralis-Training-Guide.pdf)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isoflurane</td>
			<td>RWD Life Science Co., Ltd</td>
			<td>R510-22</td>
			<td>isoflurane anesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>male Saanen goats</td>
			<td>Caimu Livestock Company, country (Hangzhou, China)</td>
			<td></td>
			<td>The male Saanen goats, aged from 4 to 6 months with weight of 19&#8211;23 kg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>needle electrode</td>
			<td>Roland Consult Stasche&#38;Finger GmbH</td>
			<td>U51-426-G-D</td>
			<td>use for FVEP ground electrode and PERG reference electrodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>periphery venous catheter intravenously</td>
			<td>BD shanghai Medical Device Co., Ltd</td>
			<td>383019</td>
			<td>intravenous access for atropine and propofol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>propofol</td>
			<td>Xian Lipont Enterprise Union Management Co.,Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>induce Isoflurane anesthesia in goat</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tropicamide Phenylephrine Eye Drops</td>
			<td>SANTEN OY, Japan</td>
			<td></td>
			<td>5% tropicamide and 5% phenylephrine hydrochloride</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>visual electrophysiology device</td>
			<td>Gotec Co., Ltd</td>
			<td>GT-2008V-III</td>
			<td>use for FVEP &#38; PERG</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>xylazine</td>
			<td>Huamu Animal Health Products Co., Ltd.</td>
			<td></td>
			<td>xylazine anesthesia: intramuscular injection of xylazine 3mg/kg</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>zoletil50</td>
			<td>Virbac</td>
			<td></td>
			<td>induce Isoflurane anesthesia in monkey</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

in vivo methods to assess retinal ganglion cell and optic nerve function and structure in large animals

El nervio óptico recoge las señales de los axones de las células ganglionares de la retina y transmite la señal visual al cerebro. Los modelos animales grandes de lesión del nervio óptico son esenciales para traducir nuevas estrategias terapéuticas de modelos de roedores a la aplicación clínica debido a sus similitudes más cercanas con los humanos en tamaño y anatomía. Aquí describimos algunos métodos in vivo para evaluar la función y la estructura de las células ganglionares de la retina (RGC) y el nervio óptico (ON) en animales grandes, incluido el potencial evocado visual (VEP), el electrorretinograma de patrón (PERG) y la tomografía de coherencia óptica (OCT). Tanto la cabra como los primates no humanos fueron empleados en este estudio. Al presentar estos métodos in vivo paso a paso, esperamos aumentar la reproducibilidad experimental entre diferentes laboratorios y facilitar el uso de grandes modelos animales de neuropatías ópticas.

La Figura 1A muestra resultados representativos de FVEP en cabra. Aunque las formas de onda en la misma intensidad de flash tienen una similitud relativa, todavía recomendamos examinar las formas de onda dos veces. Las ondas electromagnéticas generadas por dispositivos electrónicos interferirán con las señales eléctricas recogidas, lo que resultará en un alto ruido de referencia y una mala repetibilidad de la forma de onda. Por lo tanto, se recomienda asegurarse de que no haya disposi...

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In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

Aquí demostramos varias pruebas in vivo (flash visual evoked potential, electrorretinograma de patrón y tomografía de coherencia óptica) en macaco cabra y rhesus para comprender la estructura y función del nervio óptico y sus neuronas.

In vivo Métodos para evaluar la función y estructura de las células ganglionares de la retina y el nervio óptico en animales grandes

The optic nerve collects axons signals from the retinal ganglion cells and transmits visual signal to the brain. Large animal models of optic nerve injury ...

Hola a todos. Este es Yikui Zhang del Hospital de Ojos de Wenzhou. El nervio superior carece de Exxons de las células ganglionares de orexina, y luego transmite la señal visual al cerebro.Un modelo más grande de lesión del nervio superior es esencial para traducir el nuevo tratamiento del modelo de robot a la aplicación de linfa. Aquí, describimos algunos métodos in vivo para evaluar la estructura y función de las células ganglionares de orexina en el nervio superior en animales grandes. Al presentar este método paso a paso, esperamos aumentar las discapacidades reproductivas experimentales y facilitar el uso de modelos más grandes de neurosis óptica.Afeitarse con una maquinilla de afeitar electrónica. Y, prepárelo con 70% de alcohol tres veces, para limpiar la piel y exponer la vena subcutánea. Inserte un ricino venoso periférico por vía intravenosa.Luego gotee atropina y propofol. Intubar a la cabra con un tubo traqueal de seis milímetros y conectarla a un respirador artificial. La anestesia se mantuvo con 3,5% de isoflurano en oxígeno a un caudal controlado constante de dos litros.Coloque el sensor de temperatura debajo de la lengua de la cabra. Recorte la saturación de oxígeno que se escinde hasta el extremo proximal de la oreja de cabra. Ate el manguito de presión arterial a la base del muslo.Pinza ECG se escinde en las extremidades en orden. Luego, podemos monitorear los indicadores vitales de la cabra. Afeitarse el cabello y desinfectar la piel con betadina y alcohol al 70% tres veces en el centro del hueso frontal.Abra la bolsa esterilizadora que contiene las tijeras y las uñas. Haga incisiones en la piel para exponer el cráneo con una tijera. Tornillos de acero para implantar en el centro del hueso frontal.Afeitar el cabello y desinfectar la piel con betadina y alcohol al 70% tres veces en un punto medio de dos orejas en el hueso occipital. Haga incisiones en la piel. Tornillos de acero para implantar en el punto medio de dos orejas en hueso occipital.El electrodo de la aguja de tierra se inserta por vía subcutánea debajo del tornillo frontal del cráneo. El electrodo activo y el electrodo de referencia están conectados a un tornillo frontal y occipital respectivamente con clips de cocodrilo para reducir la impotencia del electrodo. Parche en un ojo.Aplique gotas oftálmicas de anestesia tópica en la superficie ocular. Las pupilas de ambos lados están dilatadas por las gotas oftálmicas de midriasis. Coloque la cabeza de la cabra en un estimulador lleno de gas dirigido a la luz ambulante.Coloque la manta negra sobre el estimulador y la cabeza de cabra durante cinco minutos de adaptación. El espéculo del párpado se utiliza para exponer completamente su pupila. Compruebe la impotencia de contacto del tejido del electrodo.Asegúrese de que la impotencia esté por debajo de los 10 kilómetros para cada uno para evitar la interferencia electromagnética de otros dispositivos eléctricos en la misma habitación. Compruebe el ruido de referencia sin estimulación lumínica. Inicie la grabación FVEP.Tenga en cuenta que la grabación FVEP en cada intensidad de luz se realiza dos veces. Tenga en cuenta que humedezca la córnea con lágrima artificial si parece seca. Repita los pasos para el ojo contralateral.Inicie la grabación FVEP a diferentes intensidades de luz consecutivamente. Para cada grabación, se promedian 64 trazas para producir una forma de onda. El primer pico positivo y activo en la forma de onda FVEP fue designado como P1 y N1. El electrodo de tierra esterilizado se coloca en el lóbulo de la oreja.Los electrodos activos y de referencia esterilizados se insertan por vía subcutánea a lo largo de la línea media y el hueso frontal y occipital respectivamente. El espéculo del párpado se utiliza para exponer completamente su pupila. Parche en un ojo.Registre las respuestas VEP del patrón del otro ojo a diferentes frecuencias espaciales consecutivamente. Conéctelo al electrodo de tierra con un clip de cocodrilo. Dos electrodos de referencia de aguja esterilizados se colocan debajo de la piel un centímetro detrás del canto lateral en ambos lados.El espéculo del párpado se utiliza para exponer completamente su pupila. Dos electrodos de registro ERG desinfectados se centran en ambas córneas después de la aplicación tópica de lágrima artificial. Se colocan dos estimuladores delante de cada ojo con una distancia de visión de 50 centímetros.Asegúrese de que la impotencia esté por debajo de los 10 kilómetros. Rastree el ruido de referencia sin estimulación de la luz. Apunta la luz ambulante.Inicie el patrón de grabación ERG desde ambos ojos simultáneamente a diferentes frecuencias espaciales consecutivamente. Por último, retorno de la pantalla para grabar patrón ERG sin estimuladores visuales y un control activo. El filtro de paso de banda está configurado para variar de uno a 75 Hertz para tres ERG de patrón CPD.El filtro de paso de banda es de uno a 50 Hertz para suavizar la forma sin afectar su amplitud. Los primeros picos positivos y activos en forma de onda se designan como P1 y N1. El patrón de amplitud ERG medido de N1 a P1.To reducir la impotencia del electrodo, se coloca una referencia de aguja esterilizada debajo de la piel frontal. Y se coloca un electrodo de referencia de aguja esterilizado debajo de la piel un centímetro detrás del canto lateral en un lado.Se coloca un electrodo de registro ERG desinfectado en la córnea en una aplicación tópica de lágrima artificial. Parche en un ojo. Una pantalla se coloca a una distancia de visualización de 50 centímetros.El espéculo del párpado se utiliza para exponer completamente su pupila. Luego, la cabra se coloca en el reposamentón. Alinee la cabra con la cámara para enviar su cabeza del nervio óptico en la imagen de oftalmoscopia láser de escaneo confocal modificando la posición de su cabeza.Haga clic en el botón de inicio para entrar en la fase final de detección. Espere a que la máquina termine de cargarse. Presione el botón amarillo de inicio para iniciar la imagen formal.Ajuste el joystick para iluminar uniformemente la imagen infrarroja para mejorar la calidad de la imagen. Deslice la cámara hacia adelante hasta que se muestre la imagen de OCT retiniana vertical en la pantalla superior derecha. Modifique el joystick para que baile uniformemente en una imagen horizontal de octatoria retiniana.Presiona el botón del joystick para capturar tu imagen automáticamente. Mantenga presionado este joystick para mantener la calidad de la imagen en la pantalla de imagen en vivo hasta que se complete la ejecución de la imagen. Luego presione adquirir.Seleccione una foto inicial de alta calidad. Haga clic con el botón derecho y seleccione establecer referencia. Presione el botón de seguimiento para permitir que el programa haga coincidir automáticamente el escaneo actual con el escaneo de línea de base.Una vez emparejado, presionó el botón en el joystick para activar el seguimiento automático en tiempo real. Haga clic en el botón de medición para ingresar a la plataforma de medición. Elija el borrador de una herramienta y limpie la línea RFL, que se etiqueta automáticamente por máquina.Elija la herramienta de dibujo de líneas para delinear manualmente el límite entre IPL e INL. Entre las líneas roja y azul se encuentra el complejo GCC. Las imágenes alteradas de la retina en el macaco rhesus se realizan utilizando el mismo equipo y procedimiento que los utilizados en la cabra.La Figura A muestra el FVEP representativo en cabra. La Figura B muestra el patrón representativo de forma de onda ERG en cabra. La Figura C muestra el patrón representativo FVEP en macaco rhesus.Y, la figura D muestra el patrón representativo de forma de onda ERG en macaco rhesus. La figura dos muestra imágenes representativas de la OCT retiniana alrededor de la cabeza del nervio óptico y el grosor del complejo GCC en diferentes regiones periféricas en cabra y macaco rhesus. El modelo animal grande juega un papel importante en la investigación traslacional.En muchos casos, los efectos terapéuticos prometedores en modelos animales pequeños no se tradujeron a pacientes humanos. En este estudio, presentamos el protocolo de video de FVEP, PERG y OCT en cabra y el macaco rhesus. Este método in vivo se puede aplicar en modelos más grandes de diversas neurosis ópticas, como el glaucoma isquémico o la neuropatía óptica traumática y la neuritis óptica.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

Methods for Experimental Manipulations after Optic Nerve Transection in the Mammalian CNS

Los métodos para la manipulación experimental después de la transección del nervio óptico en el SNC de los mamíferos

Retinal ganglion cells (RGCs) are CNS neurons that output visual information from the retina to the brain, via the optic nerve. The optic nerve can be ...

Investigación

Neurociencias

Transfection of Mouse Retinal Ganglion Cells by in vivo Electroporation

Transfection of Mouse Retinal Ganglion Cells by in vivo Electroporation

La transfección de células de ratón del ganglio de la retina por In vivo La electroporación

The targeting and refinement of RGC projections to the midbrain is a popular and powerful model system for studying how precise patterns of neural ...

An Optic Nerve Crush Injury Murine Model to Study Retinal Ganglion Cell Survival

Un aplastamiento del nervio óptico Lesiones modelo murino para estudiar la supervivencia de células ganglionares retinianas

Injury to the optic nerve can lead to axonal degeneration, followed by a gradual death of retinal ganglion cells (RGCs), which results in irreversible ...

Functional Neuroimaging Using Ultrasonic Blood-brain Barrier Disruption and Manganese-enhanced MRI

Neuroimagen Funcional Utilizando ultrasonidos hematoencefálica perturbación de la barrera y la RM-manganeso mayor

Although mice are the dominant model system for studying the genetic and molecular underpinnings of neuroscience, functional neuroimaging in mice remains ...

Retrograde Labeling of Retinal Ganglion Cells in Adult Zebrafish with Fluorescent Dyes

Etiquetado retrógrada de células ganglionares retinianas en adultos de pez cebra con tintes fluorescentes

As retrograde labeling retinal ganglion cells (RGCs) can isolate RGCs somata from dying sites, it has become the gold standard for counting RGCs in RGCs ...

In vivo Imaging of Optic Nerve Fiber Integrity by Contrast-Enhanced MRI in Mice

In vivo Imaging of Optic Nerve Fiber Integrity by Contrast-Enhanced MRI in Mice

Imágenes in vivo de Óptica de Fibras Nerviosas Integridad de la RM con contraste en ratones

The rodent visual system encompasses retinal ganglion cells and their axons that form the optic nerve to enter thalamic and midbrain centers, and ...

Imaging Serotonergic Fibers in the Mouse Spinal Cord Using the CLARITY/CUBIC Technique

Las fibras serotoninérgicos proyección de imagen en la médula espinal de ratón El uso de la claridad / Técnica CÚBICO

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Single-cell RNA-Seq of Defined Subsets of Retinal Ganglion Cells

RNA-Seq de una sola célula de subconjuntos definidos de células de ganglio retiniano

The discovery of cell type-specific markers can provide insight into cellular function and the origins of cellular heterogeneity. With a recent push for ...

Optical Coherence Tomography: Imaging Mouse Retinal Ganglion Cells In Vivo

Optical Coherence Tomography: Imaging Mouse Retinal Ganglion Cells In Vivo

Tomografía de coherencia óptica: Proyección de imagen de ratón ganglionares de la retina las células In Vivo

Structural changes in the retina are common manifestations of ophthalmic diseases. Optical coherence tomography (OCT) enables their identification in ...

Partial Optic Nerve Transection in Rats: A Model Established with a New Operative Approach to Assess Secondary Degeneration of Retinal Ganglion Cells

Transección parcial del nervio óptico en ratas: un modelo con un nuevo enfoque operativo para evaluar la degeneración secundaria de las células ganglionares de la retina

Previous studies have shown that the secondary degeneration of retinal ganglion cells (RGCs) occurs commonly in glaucoma. Partial optic nerve transection ...