Name: technique for obtaining mesenchymal stem cell from adipose tissue and stromal vascular fraction characterization in long-term cryopreservation
Uploaded: 2021-12-30T16:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Technique for Obtaining Mesenchymal Stem Cell from Adipose Tissue and Stromal Vascular Fraction Characterization in Long-Term Cryopreservation at JoVE.com

نشكر المرضى الذين تطوعوا للمشاركة والطاقم الطبي والتمريضي في مستشفى ساو باولو. تم دعم هذه الدراسة من قبل مؤسسة أمبارو في بيسكيزا دو إستادو دي ساو باولو (FAPESP) والمجلس الوطني للتنمية العلمية والتكنولوجيا (CNPq) ، البرازيل.

تمت الموافقة على هذه الدراسة من قبل لجنة الأخلاقيات التابعة ل UNIFESP (رقم البروتوكول: 0029/2015 CAAE: 40846215.0.0000.5505) ، والتي أجريت بعد الحصول على موافقة خطية مستنيرة من المرضى وفقا لإعلان هلسنكي (2004). تتكون عينة الدراسة الحالية من تسع مريضات ، تتراوح أعمارهن بين 33-50 عاما (متوسط العمر 41.5) ومتوسط مؤشر كتلة...

عائد العزلة من الثابت أن عملية الحفظ بالتبريد ، المطلوبة بشكل متكرر في العلاج الخلوي ، تؤدي إلى فقدان كبير للخلايا ، وأحيانا أكبر من 50٪ 29،30،35. وبالتالي ، فإن التحسين التقني للحصول على عائد خلوي أولي مرتفع بمعزل عن غيره أمر أساس?...

الخلايا الجذعية الوسيطة البشرية مفيدة في كل من البحوث الأساسية والتطبيقية. يتجاوز استخدام هذا النوع من الخلايا البالغة القضايا الأخلاقية - مقارنة باستخدام الخلايا الجنينية أو غيرها - كونه أحد أكثر مجالات الدراسة الواعدة في هندسة تجديد الأنسجة الذاتية والعلاج الخلوي1 ، مثل منطقة الأورام ، وعلاج الأمراض التنكسية ، والتطبيقات العلاجية في منطقة الجراحة الترميمية2،3،4 ، 5. تم الإبلاغ سابقا عن وجود مصدر وفير للخلايا الجذعية متعددة القدرات ومتعددة القدرات في جزء الخلايا الوعائية اللحمية من الأنسجة الدهنية 6,7. تعتبر هذه ADSC مرشحة رائعة للاستخدام في العلاج بالخلايا والزرع / التسريب حيث يمكن الحصول بسهولة على عدد كبير من الخلايا ذات القدرة القوية على التوسع خارج الجسم الحي بعائد مرتفع من إجراء طفيف التوغل 5,8.
كما ثبت أن الأنسجة الدهنية تقدم قدرة أكبر على توفير الخلايا الجذعية الوسيطة من مصدرين آخرين (نخاع العظام وأنسجة الحبل السري)9. إلى جانب كونه ضعيف المناعة ولديه قدرة عالية على الاندماج في الأنسجة المضيفة والتفاعل مع الأنسجة المحيطة4،10 ، يتمتع ADSC بقدرة متعددة القدرات على التمايز في خطوط الخلايا ، مع تقارير عن تمايز غضروفي ، عظمي ، وعضلي المنشأ في ظل ظروف الثقافة المناسبة11،12،13 ، وفي الخلايا ، مثل البنكرياس ، خلايا الكبد ، والخلايا العصبية14،15،16.
يتفق المجتمع العلمي على أن التأثير المناعي للخلايا الجذعية الوسيطة هو آلية عمل أكثر صلة بالعلاج الخلوي17،18،19 من خاصية تمايزها. واحدة من أهم مزايا استخدام ADSC هي إمكانية التسريب الذاتي أو التطعيم ، لتصبح علاجا بديلا للعديد من الأمراض. بالنسبة للطب التجديدي ، تم استخدام ADSC بالفعل في حالات تلف الكبد ، وإعادة بناء عضلة القلب ، وتجديد الأنسجة العصبية ، وتحسين وظيفة العضلات الهيكلية ، وتجديد العظام ، وعلاج السرطان ، وعلاج مرض السكري20,21.
وحتى هذا التاريخ، هناك 263 تجربة سريرية مسجلة لتقييم إمكانات مركز أبوظبي للأبحاث، مدرجة على الموقع الإلكتروني للمعاهد الوطنية الأمريكية للصحة22. تم وضع بروتوكولات مختلفة لحصاد الأنسجة الدهنية ، ولكن لا يوجد إجماع في الأدبيات حول طريقة موحدة لعزل ADSC للاستخدام السريري23،24. يمكن أن تؤثر طرق معالجة Lipoaspirate أثناء الجراحة وبعدها بشكل مباشر على صلاحية الخلية ، والعائد الخلوي النهائي25 ، وجودة مجموعة ADSC20. فيما يتعلق بالمعالجة الجراحية المسبقة ، ليس من الثابت جيدا أي تقنية جراحية مسبقة المعالجة تنتج عددا أكبر من الخلايا القابلة للحياة بعد العزل أو ما إذا كان محلول التخدير المحقون في الأنسجة الدهنية يؤثر على إنتاجية الخلية ووظائفها26. وبالمثل ، يمكن أن يؤدي الفرق بين تقنيات الحصول على الخلايا الدهنية إلى انخفاض بنسبة 70٪ في عدد ADSC20 القابل للحياة. وفقا للأدبيات ، يجب تجنب العلاجات الميكانيكية للحصول على مجموعات الخلايا ذات القدرة العالية - بما في ذلك الموجات فوق الصوتية - لأنها يمكن أن تكسر الأنسجة الدهنية20. ومع ذلك ، فإن طريقة شفط الدهون اليدوية باستخدام المحاقن أقل ضررا ، مما يتسبب في تدمير أقل للخلايا ، حيث ينتج عن شفط الدهون المنتفخ عدد كبير من الخلايا بأفضل جودة26.
تستخدم هذه التقنية محلول ملحي مع يدوكائين وإبينفرين يتم حقنه في منطقة شفط الدهون. لكل 3 مل من حجم المحلول المحقون ، يتم استنشاق 1 مل. في هذه الدراسة ، تم إجراء تقنية شفط الدهون الرطب ، حيث يتم شفط 0.2 مل من الأنسجة الدهنية لكل 1 مل من الأدرينالين والمحلول الملحي المحقون. يعد استخدام الإنزيمات الهاضمة ، وخاصة الكولاجيناز ، أمرا شائعا في عملية عزل ADSC.
بعد خطوة العزل الأولى في المختبر ، تسمى الحبيبات النهائية الكسر الوعائي اللحمي (SVF). يحتوي على أنواع مختلفة من الخلايا27 ، بما في ذلك خلايا السلائف البطانية ، والخلايا البطانية ، والبلاعم ، وخلايا العضلات الملساء ، والخلايا الليمفاوية ، والخلايا المحيطة ، والخلايا الشحمية المسبقة ، و ADSCs ، القادرة على الالتصاق. بمجرد الانتهاء من العزل النهائي من الثقافات في المختبر ، يتم التخلص من الخلايا التي لم تلتصق بالبلاستيك في التبادلات المتوسطة. بعد ثمانية أسابيع من التوسع والتغيرات المتوسطة والممرات، تمثل ADSCs معظم عدد الخلايا في القوارير20. واحدة من أهم مزايا استخدام الخلايا الجذعية المعزولة المشتقة من الدهون لعلاج مستقبلي محتمل هي إمكانية الحفظ بالتبريد. وقد ثبت أن شفاطات الدهون المحفوظة بالتبريد هي مصدر محتمل لخلايا SVF حتى بعد 6 أسابيع من التجميد28 ، مع النشاط البيولوجي حتى بعد عامين من الحفظ بالتبريد29 ، والقدرة الكاملة على النمو والتمايز في الثقافة30. ومع ذلك ، أثناء عملية الذوبان ، عادة ما يتم فقدان نسبة كبيرة من الخلايا31. لذلك ، يجب أن تضمن عملية إزالة شفط الدهون والطرق التالية لعزل الخلايا أعلى إنتاجية للخلايا.
تصف هذه الدراسة منهجية أسرع لجمع وعزل كالوريمتر المسح الضوئي التفاضلي، مما يدل على ارتفاع الإنتاجية الخلوية والجدوى لتحسين كفاءة العلاجات الخلوية. علاوة على ذلك ، تم تقييم تأثير هذه التقنية المحسنة بعد الحفظ بالتبريد SVF على المدى الطويل.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>1.8 mL cryovials</td>
			<td>Nunc Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>340711</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>150 mL polyvinyl chloride transfer bag</td>
			<td>JP FARMA</td>
			<td>80146150059</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2% Alizarin Red S Solution, pH 4.2</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>A5533</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adrenaline (1 mg/mL)</td>
			<td>Hipolabor</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alcian Blue solution</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>1,01,647</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Antibiotic-Antimycotic 100x</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15240062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD FACSCalibur Flow Cytometer using BD CellQues Pro Analysis</td>
			<td>BD BioSciences</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcium chloride 10%</td>
			<td>Merck</td>
			<td>102379</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Chlorhexidine gluconate 4%</td>
			<td>VIC PHARMA</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase, Type I, powder</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17018029</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM (Dulbecco&#39;s modified Eagle&#39;s medium)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11966025</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS no calcium, no magnesium (Dulbecco&#39;s Phosphate Buffered Saline Gibco Cell Therapy Systems)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A1285801</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS with calcium (Dulbecco&#39;s Phosphate Buffered Saline Gibco Cell Therapy Systems)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A1285601</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10500056</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formaldehyde 4%</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>1,00,496</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted light microscope</td>
			<td>Nikon Eclipse TS100</td>
			<td>NA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Live and Dead Cell Assay</td>
			<td>Thermofisher</td>
			<td>01-3333-41 | 01-3333-42</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibody: CD105</td>
			<td>BD BioSciences</td>
			<td>745927</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibody: CD11B</td>
			<td>BD BioSciences</td>
			<td>746004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibody: CD19</td>
			<td>BD BioSciences</td>
			<td>745907</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibody: CD34</td>
			<td>BD BioSciences</td>
			<td>747822</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibody: CD45</td>
			<td>DAKO</td>
			<td>M0701</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibody: CD73</td>
			<td>BD BioSciences</td>
			<td>746000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibody: CD90</td>
			<td>BD BioSciences</td>
			<td>553011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monoclonal antibody: HLA-DR</td>
			<td>BD BioSciences</td>
			<td>340827</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mr. Frosty Freezing Container</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>5100-0001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS (phosphate buffered saline) 1x pH 7.4</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>&#160;10010023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>StemPro Adipogenesis Differentiation Kit</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A1007001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>StemPro Chondrogenesis Differentiation Kit</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A1007101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>StemPro Osteogenesis Differentiation Kit</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A1007201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile connector with one spike with needle injection site</td>
			<td>Origen Biomedical Connector, USA</td>
			<td>NA</td>
			<td>Code mark: IBS</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan blue solution 0.4%</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>93595</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin-EDTA 0.25% 1x, phenol red</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>25200056</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

technique for obtaining mesenchymal stem cell from adipose tissue and stromal vascular fraction characterization in long-term cryopreservation

أصبحت الخلايا الجذعية الوسيطة البشرية المشتقة من الأنسجة الدهنية جذابة بشكل متزايد لأنها تظهر ميزات مناسبة وهي مصدر يمكن الوصول إليه للتطبيقات السريرية التجديدية. تم استخدام بروتوكولات مختلفة للحصول على الخلايا الجذعية المشتقة من الدهون. توضح هذه المقالة الخطوات المختلفة لبروتوكول توفير الوقت المحسن للحصول على كمية أكثر أهمية من ADSC، مما يوضح كيفية حفظ ADSC وإذابته بالتبريد للحصول على خلايا قابلة للحياة لتوسيع الثقافة. تم جمع مائة ملليلتر من شفط الدهون باستخدام شفط الدهون بحقنة من عيار 26 سم وثلاث ثقوب وعيار 3 مم ، من منطقة البطن لتسعة مرضى خضعوا لاحقا لعملية شد البطن الاختيارية. تم عزل الخلايا الجذعية بسلسلة من الغسلات باستخدام محلول ملحي مخزن للفوسفات (DPBS) من Dulbecco مع الكالسيوم واستخدام الكولاجيناز. تم حفظ خلايا الكسر الوعائي اللحمي (SVF) بالتبريد ، وتم فحص صلاحيتها عن طريق التنميط المناعي. كان العائد الخلوي SVF 15.7 × 105 خلايا / مل ، يتراوح بين 6.1-26.2 خلية / مل. وصلت خلايا SVF الملتصقة إلى التقاء بعد متوسط 7.5 (±4.5) يوما ، بمتوسط عائد خلوي يبلغ 12.3 (± 5.7) × 105 خلايا / مل. تراوحت صلاحية SVF المذاب بعد 8 أشهر و 1 سنة و 2 سنة بين 23.06٪ -72.34٪ بمتوسط 47.7٪ (±24.64) مع أدنى جدوى مرتبطة بحالات التجميد لمدة عامين. أدى استخدام محلول DPBS المكمل بالكالسيوم وأوقات استراحة الكيس لترسيب الدهون مع وقت أقصر من هضم الكولاجيناز إلى زيادة العائد الخلوي النهائي للخلايا الجذعية. كان الإجراء التفصيلي للحصول على غلات عالية من الخلايا الجذعية القابلة للحياة أكثر كفاءة فيما يتعلق بالوقت والعائد الخلوي من التقنيات من الدراسات السابقة. حتى بعد فترة طويلة من الحفظ بالتبريد ، تم العثور على خلايا ADSC قابلة للحياة في SVF.

يوضح الجدول 1 توصيف الأفراد التسعة الذين تمت دراستهم ، بما في ذلك العمر والوزن والطول ومؤشر كتلة الجسم.
وفقا للعائد الخلوي المقدم في البداية ، تم حساب حجم الخلية الملقحة في الثقافة ليكون أقرب ما يمكن إلى سعة دورق الثقافة 75 سم2 . ويرد في الجدول 2 وصف لحج?...

Watch this Scientific Journal Video about Technique for Obtaining Mesenchymal Stem Cell from Adipose Tissue and Stromal Vascular Fraction Characterization in Long-Term Cryopreservation at JoVE.com

Technique for Obtaining Mesenchymal Stem Cell from Adipose Tissue and Stromal Vascular Fraction Characterization in Long-Term Cryopreservation

يصف البروتوكول الحالي منهجية محسنة لعزل ADSC مما يؤدي إلى عائد خلوي هائل مع زيادة الوقت مقارنة بالأدبيات. توفر هذه الدراسة أيضا طريقة مباشرة للحصول على عدد كبير نسبيا من الخلايا القابلة للحياة بعد الحفظ بالتبريد على المدى الطويل.

تقنية الحصول على الخلايا الجذعية الوسيطة من الأنسجة الدهنية وتوصيف الكسر الوعائي اللحمية في الحفظ بالتبريد على المدى الطويل

Human mesenchymal stem cells derived from adipose tissue have become increasingly attractive as they show appropriate features and are an accessible ...

هنا ، قمنا بإظهار بروتوكول الحصول على الخلايا الجيدة والقابلة للحياة والحفاظ عليها لاستخدامات الخطوات العلاجية ، مثل ضخ خلايا اللحمة المتوسطة متعددة القدرات. الميزة الرئيسية لذلك ، أنه باستخدام هذه التقنية ، يمكننا الحصول على حجم الخلية القابل للحياة مقابل الوقت المكتسب في خطوة عزل الخلايا عن الأنسجة التي تم جمعها. يمكن توسيع هذه التقنية لتشمل جميع الأمراض أو الحالات التي يتم فيها تطبيق الطب غير المتجانس والعلاج الخلوي.يمكن أيضا تطبيق هذه الطريقة على اختبار الاستقرار الخلوي في مجالات مثل اختبار الأدوية ، حيث يمكن تشجيع مزارع الخلايا طويلة الأجل. عند التلاعب بالخلايا الحية ، كن هادئا وواثقا. توخ الحذر الشديد مع الإنتان وكن متيقظا باستمرار بعيون العالم لمراقبة أي محنة واتخاذ قرارات جيدة.ابدأ بوزن الكيس وقياس درجة الحرارة باستخدام مقياس حرارة سريري رقمي غير متصل بالأشعة تحت الحمراء. اترك الكيس لمدة خمس دقائق داخل غرفة التدفق الصفحي لترسيب الطبقات الدهنية وفصل الأنسجة التي تحتوي على الخلايا. حقن 100 ملليلتر من DPBS مع الكالسيوم في كيس النقل واخلطه باليدين.دعها تقف لمدة خمس دقائق. ثم استخدم حقنة سعة 60 ملليلتر متصلة بمحول الكيس للتخلص من معظم السائل القاعدي الذي يترسب. كرر هذه العملية مرتين.أضف 100 ملليلتر من محلول الهضم إلى الكيس ، واتركه عند 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة مع التقليب البطيء. ثم انقل جميع محتويات الكيس إلى أربعة أنابيب مخروطية سعة 50 ملليلتر وقم بطردها بالطرد المركزي عند 400 جرام لمدة 10 دقائق عند 22 درجة مئوية. تخلصي من المادة الطافية وأضيفي 5 ملليلتر من DMEM منخفض الجلوكوز المكمل بمصل بقري جنيني بنسبة 20٪ إلى حبيبات الخلية.امزج محلولا جديدا من 10 ميكرولتر من التربان الأزرق بنسبة 0.05٪ في الماء المقطر مع 10 ميكرولتر من التعليق الخلوي لمدة خمس دقائق. استخدم مجهرا ضوئيا مقلوبا عند تكبير 20X وعد الخلايا القابلة للحياة في غرفة عد خلايا نيوباور. قم بتعليق حبيبات الخلية في وسط واقي من البرودة بتركيز 1 مليون خلية لكل ملليلتر.ثم ضع 1 ملليلتر من هذا الخليط في قوارير التبريد. استخدم حاوية تجميد بمعدل تبريد 1 درجة مئوية في الدقيقة وتخزينها في 80 درجة مئوية لمدة عام واحد. بعد عام ، قم بتخزينه في صناديق كاسيت قياسية مغمورة في مرحلة بخار النيتروجين السائل.يتم عرض البيانات من خطوات مختلفة من الإجراء من المرضى التسعة في هذا الجدول. وفقا للعائد الخلوي الأولي ، تم تحديد حجم متغير من الخلايا لكل عينة. 1 ملليلتر من العينات ذات العائد الخلوي الأعلى ، 1.1 ملليلتر للعينات ذات العائد الخلوي المتوسط و 2 ملليلتر لكل عينة ذات عائد خلوي أقل.اختلف العائد الخلوي قبل مرور واحد على نطاق واسع حتى عندما لوحظ نفس الالتقاء قبل التربسين. لذلك ، هنا قد تكون الخلايا قد نمت في طبقات. تظهر الصورة التمثيلية ADSCs الوسيطة الملتصقة بالبلاستيك عند الممر الأول بعد العزل في المجهر الضوئي.تظهر الخلايا التصاق بالتشكل الشبيه بالبلاستيك والخلايا الليفية. تظهر هنا الخلايا القابلة للحياة التي تم عدها في غرفة نيوباور في مقايسة تريبان الزرقاء. يتم عرض بيانات قياس التدفق الخلوي من ستة مرضى في هذا الجدول.من هذه الخلايا السلبية CD45 ، تم تحديد النسبة المئوية ل ADSCs مع مجموعات مختلفة من علامات الخلايا الجذعية. تظهر الصور التمثيلية المجموعة الفرعية للخلايا الإيجابية للعلامات المرتبطة بالخلايا الجذعية في SVF للحالة التاسعة بعد ثمانية أشهر من الحفظ بالتبريد. هنا ، R1 هي المنطقة الخلوية الكلية التي تم تحليلها في مخطط التشتت الأمامي مقابل مخطط التشتت الجانبي.و R2 هي المنطقة السالبة CD45. مجموعات CD73 و CD90 و CD105 إيجابية في هذه المنطقة. يوضح هنا تمايز ADSC في الخلايا الغضروفية والخلايا العظمية والخلايا الشحمية.أثناء محاولة هذا الإجراء ، تذكر أن تحرك ببطء ، ويفضل أن يكون ذلك باليدين ، مع ترك 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة لمراقبة الالتصاقات والبثور. حافظ على درجة حرارة غرفة العمل حوالي 25 درجة مئوية ، وتجنب أي صدمة حرارية في درجات حرارة أكبر بكثير. يمكن استخدام التقنية الموضحة هنا لعزل خلايا اللحمة المتوسطة متعددة القدرات بنجاح عن الأنسجة الأخرى.

Research

JoVE Journal

Medicine

Isolation of Cardiomyocyte Nuclei from Post-mortem Tissue

العزلة نوى Cardiomyocyte من الأنسجة بعد الوفاة

Identification of cardiomyocyte nuclei has been challenging in tissue sections as most strategies rely only on cytoplasmic marker proteins1. Rare events ...

Isolation, Characterization and Comparative Differentiation of Human Dental Pulp Stem Cells Derived from Permanent Teeth by Using Two Different Methods

العزلة، وتوصيف المقارن التمييز بين الخلايا الجذعية البشرية الأسنان اللب المستمدة من الأسنان الدائمة باستخدام طريقتين مختلفتين

Developing wisdom teeth are easy-accessible source of stem cells during the adulthood which could be obtained by routine orthodontic treatments. Human ...

Surgical Placement of Catheters for Long-term Cardiovascular Exercise Testing in Swine

الموضع الجراحي القسطرة على المدى الطويل القلب والأوعية الدموية ممارسة اختبار في الخنازير

This protocol describes the surgical procedure to chronically instrument swine and the procedure to exercise swine on a motor-driven treadmill. Early ...

A Technique for Subcutaneous Abdominal Adipose Tissue Biopsy via a Non-diathermy Method

تقنية للأنسجة الدهنية تحت الجلد للبطن خزعة عبر أسلوب غير النافذة

Adipose tissue biopsies offer tissue samples that, upon analysis, may provide insightful overviews of mechanisms relating to metabolism and disease. To ...

Stromal Vascular Fraction-enriched Fat Grafting for the Treatment of Symptomatic End-neuromata

Stromal الأوعية الدموية الغنية بكسر الدهون تطعيم لعلاج أعراض نهاية-نيوروماتا

The purpose of this study was to methodically illustrate and highlight the crucial steps of stromal vascular fraction (SVF)-enriched fat grafting as a ...

Transplantation of Adipose Tissue-Derived Stem Cell Sheet to Reduce Leakage After Partial Colectomy in A Rat Model

زرع صفحة الخلايا الجذعية المشتقة من الأنسجة الدهنية للحد من تسرب بعد Colectomy الجزئية في نموذج الفئران

Anastomotic leakage is a disastrous complication after colorectal surgery. Although current methods for leakage prevention have different levels of ...

Characterization of Immune Cells in Human Adipose Tissue by Using Flow Cytometry

تحديد خصائص الخلايا المناعية في الأنسجة الدهنية البشرية باستخدام التدفق الخلوي

Infiltration of immune cells in the subcutaneous and visceral adipose tissue (AT) deposits leads to a low-grade inflammation contributing to the ...

Clinical Protocol of Producing Adipose Tissue-Derived Stromal Vascular Fraction for Potential Cartilage Regeneration

بروتوكول السريرية لإنتاج كسر الأوعية الدموية Stromal المستمدة من الأنسجة الدهنية لتجديد الغضاريف المحتملة

Osteoarthritis (OA) is one of the most common debilitating disorders.&#160;Recently, numerous attempts have been made to improve the functions of the ...

An Enzyme-free Method for Isolation and Expansion of Human Adipose-derived Mesenchymal Stem Cells

طريقه خاليه من الانزيمات للعزل والتمدد للخلايا الجذعية الدهنية المستمدة من الدهون البشرية

Mesenchymal stem cells (MSCs) are a population of multipotent cells that can be isolated from various adult and fetal tissues, including adipose tissue. ...

Isolation of Viable Adipocytes and Stromal Vascular Fraction from Human Visceral Adipose Tissue Suitable for RNA Analysis and Macrophage Phenotyping

عزل الخلايا الشحمية القابلة للحياة وجزء الأوعية الدموية اللحمية من الأنسجة الدهنية الحشوية البشرية المناسبة لتحليل الحمض النووي الريبي والتنميط الظاهري للبلاعم

Visceral adipose tissue (VAT) is an active metabolic organ composed mainly of mature adipocytes and stromal vascular fraction (SVF) cells, which release ...