Name: sterile pericarditis in aachener minipigs as a model for atrial myopathy and atrial fibrillation
Uploaded: 2021-09-24T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Sterile Pericarditis in Aachener Minipigs As a Model for Atrial Myopathy and Atrial Fibrillation at JoVE.com

이 연구는 Industrieel OnderzoeksFonds/Strategisch Basisonderzoek (IOF / SBO) 연구 보조금 (PID34923)과 앤트워프 대학의 Geconcerteerde Onderzoeksactie (GOA) 보조금 (PID36444)에 의해 지원되었습니다. 선임 임상 연구자 펠로우십 (VFS에) 및 과학 연구 플랑드르 기금의 연구 보조금 (신청 번호 1842219N, G021019N, G0D0520N 및 G021420N); ERA.Net RUS Plus (2018, Project Consortium 278)의 연구 보조금에 의해; Vlaamse Interuniversitaire Raad/Interuniversitair Bijzonder OnderzoeksFonds (VLIR/iBOF) grant (20-VLIR-iBOF-027). 심박 조율기 리드의 상당 부분을 후원해 주신 Abbott와 Boston Scientific과 심박 조율기 프로그래머의 대출을 위해 Medtronic 및 Biotronik 회사에 감사드립니다. 우리는 앤트워프 대학 동물 시설의 동물 직원들에게 동물을 훌륭하게 돌봐 준 것에 대해 감사드립니다.

이 프로토콜은 앤트워프 대학 동물 실험을위한 윤리위원회 (사례 번호 2019-29)의 승인을 받았으며 앤트워프 대학의 동물 관리 지침을 따릅니다. 이 연구를 위해 체중이 ~20kg인 열일곱 6개월 된 아체너 미니피그(수컷, 거성)를 선정하였다.
1. 약물 및 마취
<ol><li>약물 치료 전<ol>
<li>돼지가 12 시간 동안 금식하지만 물에 무제한으로 접근 할 수 있도록하십시오.</li>
		<li>진정을 위?...

<ol>
	<li>Hindricks, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=2020+ESC+Guidelines+for+the+diagnosis+and+management+of+atrial+fibrillation+developed+in+collaboration+with+the+European+Association+for+Cardio-Thoracic+Surgery+(EACTS):+The+Task+Force+for+the+diagnosis+and+management+of+atrial+fibrillation+of+the+European+Society+of+Cardiology+(ESC)+Developed+with+the+special+contribution+of+the+European+Heart+Rhythm+Association+(EHRA)+of+the+ESC.">2020 ESC Guidelines for the diagnosis and management of atrial fibrillation developed in collaboration with the European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS): The Task Force for the diagnosis and management of atrial fibrillation of the European Society of Cardiology (ESC) Developed with the special contribution of the European Heart Rhythm Association (EHRA) of the ESC.</a> European Heart Journal. 42 (5), 373 (2021).</li><li>Sajeev, J. K., Kalman, J. M., Dewey, H., Cooke, J. C., Teh, A. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+atrium+and+embolic+stroke:+myopathy+not+atrial+fibrillation+as+the+requisite+determinant.">The atrium and embolic stroke: myopathy not atrial fibrillation as the requisite determinant.</a> JACC. Clinical Electrophysiology. 6 (3), 251-261 (2020).</li><li>Shen, M. J., Arora, R., Jalife, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Atrial+myopathy.">Atrial myopathy.</a> JACC: Basic to Translational Science. 4 (5), 640-654 (2019).</li><li>Jalife, J., Kaur, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Atrial+remodeling,+fibrosis,+and+atrial+fibrillation.">Atrial remodeling, fibrosis, and atrial fibrillation.</a> Trends in Cardiovascular Medicine. 25 (6), 475-484 (2015).</li><li>Fu, X. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interleukin-17A+contributes+to+the+development+of+post-operative+atrial+fibrillation+by+regulating+inflammation+and+fibrosis+in+rats+with+sterile+pericarditis.">Interleukin-17A contributes to the development of post-operative atrial fibrillation by regulating inflammation and fibrosis in rats with sterile pericarditis.</a> International Journal of Molecular Medicine. 36 (1), 83-92 (2015).</li><li>Liao, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TRPV4+blockade+suppresses+atrial+fibrillation+in+sterile+pericarditis+rats.">TRPV4 blockade suppresses atrial fibrillation in sterile pericarditis rats.</a> JCI Insight. 5 (23), 137528 (2020).</li><li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+inflammation+in+the+initiation+and+maintenance+of+atrial+fibrillation+and+the+protective+effect+of+atorvastatin+in+a+goat+model+of+aseptic+pericarditis.">Role of inflammation in the initiation and maintenance of atrial fibrillation and the protective effect of atorvastatin in a goat model of aseptic pericarditis.</a> Molecular Medicine Reports. 11 (4), 2615-2623 (2015).</li><li>Vizzardi, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Risk+factors+for+atrial+fibrillation+recurrence:+a+literature+review.">Risk factors for atrial fibrillation recurrence: a literature review.</a> Journal of Cardiovascular Medicine. 15 (3), 235-253 (2014).</li><li>Dosdall, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronic+atrial+fibrillation+causes+left+ventricular+dysfunction+in+dogs+but+not+goats:+experience+with+dogs,+goats,+and+pigs.">Chronic atrial fibrillation causes left ventricular dysfunction in dogs but not goats: experience with dogs, goats, and pigs.</a> American Journal of Physiology. Heart and Circulatory Physiology. 305 (5), 725-731 (2013).</li><li>Schuttler, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+atrial+fibrillation.">Animal models of atrial fibrillation.</a> Circulation Research. 127 (1), 91-110 (2020).</li><li>Wijffels, M. C., Kirchhof, C. J., Dorland, R., Allessie, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Atrial+fibrillation+begets+atrial+fibrillation.+A+study+in+awake+chronically+instrumented+goats.">Atrial fibrillation begets atrial fibrillation. A study in awake chronically instrumented goats.</a> Circulation. 92 (7), 1954-1968 (1995).</li><li>Willems, R., Ector, H., Holemans, P., Van De Werf, F., Heidbuchel, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+different+pacing+protocols+on+the+induction+of+atrial+fibrillation+in+a+transvenously+paced+sheep+model.">Effect of different pacing protocols on the induction of atrial fibrillation in a transvenously paced sheep model.</a> Pacing and Clinical Electrophysiology. 24 (6), 925-932 (2001).</li><li>Pag&#233;, P. L., Plumb, V. J., Okumura, K., Waldo, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+animal+model+of+atrial+flutter.">A new animal model of atrial flutter.</a> Journal of the American College of Cardiology. 8 (4), 872-879 (1986).</li><li>Schwartzman, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+plasma-based,+amiodarone-impregnated+material+decreases+susceptibility+to+atrial+fibrillation+in+a+post-cardiac+surgery+model.">A plasma-based, amiodarone-impregnated material decreases susceptibility to atrial fibrillation in a post-cardiac surgery model.</a> Innovations. 11 (1), 59-63 (2016).</li><li>BCFI vzw. Vetcompendium BCFIvet Available from: <a target="_blank" href="https://www.vetcompendium.be/nl">https://www.vetcompendium.be/nl</a> (2021)</li><li>Swindle, M. M., Smith, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Swine in the laboratory. Surgery, anesthesia, imaging, and experimental techniques, Third edition. , (2016).</li><li>Unit for Laboratory Animal Medicine. Guidelines on anesthesia and analgesia in swine Available from: <a target="_blank" href="https://az.research.umich.edu/animalcare/guidelines/guidelines-anesthesia-and-analgesia-swine">https://az.research.umich.edu/animalcare/guidelines/guidelines-anesthesia-and-analgesia-swine</a> (2021)</li><li>Ettrup, K. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Basic+surgical+techniques+in+the+Gottingen+minipig:+intubation,+bladder+catheterization,+femoral+vessel+catheterization,+and+transcardial+perfusion.">Basic surgical techniques in the Gottingen minipig: intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (52), e2652 (2011).</li></ol>

신뢰할 수있는 대형 동물 모델은 심방 근 병증 및 AF 연구 및 AF에 대한 새로운 치료법 개발의 주요 자산입니다. 심방 심막에 심박 조율기 리드를 이식하면 종방향 추적 관찰 및 반복적 인 전기 생리학 테스트가 가능해졌으며 이는 작은 동물에서는 어렵습니다. 미니피그는 다루기 쉽고, 그들의 심장은 구조적으로나 생리적으로 인간의 심장과 유사하다10.
멸균 ...

심방 세동 (AF)은 가장 널리 퍼진 심장 부정맥으로 심각한 이환률, 사망률 및 의료 비용을 초래합니다1. 많은 경우에, AF는 단지 심방의 구조적, 전기적, 자율적, 및 수축성 리모델링에 의해 정의되는 근본적인 심방 근병증의 전기적 증상일 뿐이다. 이 심방 근병증은 AF 및 뇌졸중 2,3으로 이어질 수 있습니다. 대부분의 치료법은 전기 리모델링만을 목표로하지만 심방의 근본적인 구조적 변화 (염증 및 섬유증)를 목표로하지 않습니다 4,5,6,7. 이것은 아마도 현재의 치료법이 특히 더 진행된 심방 근병증에서 미미하게 효과적인 이유 중 하나 일 것입니다8.
재현 가능한 동물 모델은 심방 근병증에 존재하는 염증 및 섬유증을 표적으로 삼는 데 중요합니다. 심방 빈틈이 모델은 여러 대형 동물 종 9,10,11,12에서 개발되었습니다. 이들 모델에서, 심방 조직은 전기적 및 궁극적으로 구조적 변화를 유도하기 위해 장기간 연속적으로 진행된다. 타키페이싱 모델의 주요 단점은 심방 근병증의 구조적 징후가 나타나기 전에 오랜 기간 지속되며 심방 근병증 전에 전기적 이상이 발생하는 임상 증후군에만 관련성이 있다는 것입니다. 이론적 인 위험은 긴 추적 관찰 9 동안 섬유증으로 인한 페이싱 리드 실패입니다.
멸균 심낭염 모델에서, 멸균 활석은 심방의 심외막 표면 위에 분무되어 급성 염증 및 섬유성 반응을 유도하여, 심방 근병증13,14를 초래한다. 돼지는 인간의 심장 해부학 및 생리학과 유사하므로 돼지 모델은 번역 관련성이 높습니다. 미니 피그 사용의 장점은 기존의 돼지 균주보다 크기가 작기 때문에 취급이 쉽고 체중이 크게 증가하지 않고 장기간 유지 될 수 있다는 것입니다10. 이러한 모든 이유로 인해 미니 피그의 멸균 심낭염은 심방 근 병증 및 세동 조사를위한 훌륭한 모델입니다. 이 프로토콜과 비디오는 다양한 연구 시설에서이 모델의 설정을 용이하게하고 AF의 유도성을 연구하기위한 프로토콜을 표준화하는 것을 목표로합니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Aachener minipig, 6-months old, male, castrated, weight 15-25 kg</td>
			<td>Carfil</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anesthesia and preparation</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ECG electrodes</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Endotracheal tube 6.5 mm ID</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>115-65OR</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>External cardioverter-defibrillator</td>
			<td>Innomed</td>
			<td>Cardio-aid 200B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating pad</td>
			<td>OK.</td>
			<td>OUB 60321</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Intravenous catheter 22 GA, 1 Inch</td>
			<td>BD</td>
			<td>381323</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laryngoscope blade size 4</td>
			<td>Miller</td>
			<td>SUS426601</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monitor</td>
			<td>GE Medical systems</td>
			<td>2600040-003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Respirator</td>
			<td>Datex-Ohmeda</td>
			<td>1009-9000-000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shaver</td>
			<td>Aesculap</td>
			<td>GT 104 / REF 985203</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe driver pump</td>
			<td>Fresenius Kabi</td>
			<td>082470</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arterial and central venous line placement</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-lumen central venous catheterization set, 7 French, 16 cm, 0.032 Inch guide</td>
			<td>Arrow medical</td>
			<td>EU-22703-EN</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Arteral catheter 3 French, 8 cm</td>
			<td>Vygon</td>
			<td>1,15,090</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Caresite Luer access device</td>
			<td>B. Braun</td>
			<td>415122-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluids: IV bags of Plasmalyte, Glucose 5%, NaCl 0.9% (500 mL or 1000 mL)</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>heparinized saline</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needles: 18 Ga / 40 mm and 22 Ga / 40 mm</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure monitoring set, 195 cm</td>
			<td>Edwards Lifesciences</td>
			<td>T005021M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pressure tubing 180 cm</td>
			<td>Edwards Lifesciences</td>
			<td>50P172</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>suture with needle</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringes Luerlok: 2 mL, 5 mL, 10 mL, 20 mL, 50 mL</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound gel</td>
			<td>Zealand coating</td>
			<td>446-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultrasound with vascular probe</td>
			<td>Philips healthcare</td>
			<td>EPIQ 7C / REF BZE1723</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical set</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blunt-tip surgical scissors</td>
			<td>Martin</td>
			<td>11-934-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>60 degrees curved Debakey forceps</td>
			<td>Aesculap</td>
			<td>FB403</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anatomical forceps</td>
			<td>AS</td>
			<td>13-102-16</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Debakey forceps</td>
			<td>Geister</td>
			<td>10-0634</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrocautery module</td>
			<td>Alsa</td>
			<td>Alsatom SU 140/D MPC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Holders for stainless steel wire</td>
			<td>COBE</td>
			<td>013-123</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mosquito</td>
			<td>Leibinger</td>
			<td>32-01008</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needledriver, fine</td>
			<td>Delacroix-Chevalier</td>
			<td>50302-21</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needledriver, normal</td>
			<td>Aesculap</td>
			<td>BM 77</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rib spreader</td>
			<td>Martin</td>
			<td>24-178-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td>Swann-Morton</td>
			<td>0511</td>
			<td>no. 24</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors for stainless steel wire</td>
			<td>Jakobi</td>
			<td>411830</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Spreaders</td>
			<td>AS</td>
			<td>16-058-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sternum saw</td>
			<td>Eure-Power</td>
			<td>5000020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sternum saw blade</td>
			<td>MicroAire</td>
			<td>ZR-032M</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical consumables</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disinfectant: iodine, chlorhexidine</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrocautery pencil with push button, cable 5 m</td>
			<td>Dongguan QueenMed Equipment</td>
			<td>ESPB4001LQ</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gastric tube</td>
			<td>Vygon</td>
			<td>390.12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mersilene-0, 75 cm</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>F2505H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Monocryl 3-0, 70 cm</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>Y423H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouth masks, hair nets</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oriflex-4 vacuum flask for surgical draining</td>
			<td>Oriplast Krayer</td>
			<td>VK00352</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prolene 6-0, 75 cm</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>8711H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stainless steel monofilament non-absorbable suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>W995</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile drapes</td>
			<td>3M</td>
			<td>9010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile gauze 20 x 10 cm</td>
			<td>Stella</td>
			<td>35921</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile gloves</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile surgical gown</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steritalc PF3</td>
			<td>Novatech</td>
			<td>16863</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vicryl-0, 75 cm</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>V324H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cardiac pacing</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar pacing lead Fineline II Sterox EZ 58 cm</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>4474</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bipolar pacing lead Tendril STS 58 cm</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>2088TC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ellegaard G&#246;ttingen Minipig Frame 3</td>
			<td>Lomir</td>
			<td>DF H1PU</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ellegaard G&#246;ttingen Minipig Sling Cover</td>
			<td>Lomir</td>
			<td>SS CEG1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micropace cardiac stimulator</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>EPS 320</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pacemaker for pacing</td>
			<td>Medtronic</td>
			<td>Azure XT DR MRI SureScan</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pacemaker for sensing</td>
			<td>Biotronik</td>
			<td>Eluna 8 DR-T</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pacemaker programmer for pacing</td>
			<td>Medtronic</td>
			<td>CareLink Encore 29901A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pacemaker programmer for sensing</td>
			<td>Biotronik</td>
			<td>ICS 3000 DS CD-W US</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medication</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adrenaline 1 mg/mL, 1 mL</td>
			<td>Sterop</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atropine 0.5 mg/mL, 1 mL</td>
			<td>Sterop</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Catapressan 150 &#181;g/mL, 1 ml clonidine</td>
			<td>Boehringer Ingelheim</td>
			<td>BE021402</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cefazoline 2 g powder</td>
			<td>Mylan</td>
			<td>BE319794</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cordarone 50 mg/mL, 3 mL amiodarone</td>
			<td>Sanofi</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Durogesic 50 &#181;g/h fentanyl patches</td>
			<td>Janssen-Cilag</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glucose 5%, 500 mL</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>AE0063</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketalar 50 mg/mL, 10 mL</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>804101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lanoxin 0.25 mg/mL, 2 mL digoxine</td>
			<td>Aspen</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Marcaine 0.5% + adrenaline 1:200,000</td>
			<td>Aspen</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Midazolam 5 mg/ml, 3 mL</td>
			<td>B. Braun</td>
			<td>3521740</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Morfine 10 mg/mL, 1 mL</td>
			<td>Sterop</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl 0.9%, 500 mL</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>AKE1323</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nitro Pohl 1 mg/mL, 5 mL nitroglycerine</td>
			<td>Pohl Boskamp</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Noradrenaline 1 mg/mL, 4 mL</td>
			<td>Aguettant</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plasmalyte 1000 mL</td>
			<td>Baxter</td>
			<td>AKE0324</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propofol 10 mg/mL, 20 mL</td>
			<td>B. Braun</td>
			<td>3521810</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Protamine 1400 IU/mL, 5 mL</td>
			<td>Leo pharma</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rapifen 0.5 mg/mL, 2 mL</td>
			<td>Janssen-Cilag</td>
			<td>95103</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Seloken 1 mg/mL, 5 mL metoprolol</td>
			<td>AstraZeneca</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sevorane Quick Fill 100% sevoflurane, 250 mL</td>
			<td>Abbvie</td>
			<td>1283-415</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tracrium 10 mg/mL, 5 mL atracurium</td>
			<td>Aspen</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
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sterile pericarditis in aachener minipigs as a model for atrial myopathy and atrial fibrillation

심방 세동 (AF)은 심방 근병증이라고도하는 심방의 구조적 리모델링으로 인한 가장 흔한 부정맥입니다. 현재의 치료법은 전기적 이상만을 표적으로 하고 근본적인 심방 근병증은 표적으로 삼지 않는다. 새로운 치료법의 개발을 위해서는 심방 근 병증의 재현 가능한 대형 동물 모델이 필요합니다. 이 논문은 Aachener 미니 돼지에서 멸균 심낭염으로 인한 심방 근병증의 모델을 제시합니다. 멸균 심낭염은 멸균 활석을 분무하고 심방 심막 표면 위에 멸균 거즈 층을 남겨둠으로써 유도되었다. 이로 인해 심방 근병증의 병태생리학의 두 가지 중요한 구성 요소인 염증과 섬유증이 발생하여 심방이 AF의 유도에 취약해졌습니다. 두 개의 심박 조율기 전극이 각 심방망에 심막 모양으로 배치되고 서로 다른 제조업체의 두 심박 조율기에 연결되었습니다. 이 전략은 수술 후 지정된 시점에서 AF의 유도성을 결정하기 위해 반복적 인 비 침습적 심방 프로그램 자극을 허용했습니다. AF 유도성을 테스트하기 위한 상이한 프로토콜이 사용되었다. 이 모델의 장점은 AF 유도성과 심방 근병증에 존재하는 염증 및 섬유증의 신속한 유도와 그 재현성과 함께 임상 관련성입니다. 이 모델은 심방 근병증 및 AF를 표적화하는 신규한 치료법의 개발에 유용할 것이다.

이환율 및 사망률: 우리가 Aachener 미니 피그에서이 멸균 심낭염 모델을 개발하기 시작했을 때, 우리는 17 마리의 돼지 중 4 마리 (23.5 %)의 수술 전 사망률을 발견했습니다 : 4 명 중 3 명이 "학습 곡선 효과"로 인해 처음 6 번의 수술에서 사망했습니다. 병인은 다음과 같습니다 : 수술 후 호흡 정지로 인해 2 마리의 돼지가 사망했습니다. 이 문제는 알펜타닐의 투여량을 감소시킴으로써 해...

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Sterile Pericarditis in Aachener Minipigs As a Model for Atrial Myopathy and Atrial Fibrillation

우리는 심방 근 병증과 심방 세동 (AF)을 연구하기 위해 미니 피그에서 멸균 심낭염 모델을 설명합니다. 우리는 외과 및 마취 기술, 혈관 접근 전략 및 AF의 유도성을 연구하기위한 프로토콜을 제시합니다.

Aachener Minipigs의 멸균 심낭염 심방 근 병증 및 심방 세동을위한 모델로서

Atrial fibrillation (AF) is the most common arrhythmia caused by structural remodeling of the atria, also called atrial myopathy. Current therapies only ...

심방 근 병증은 인간에서 가장 흔한 부정맥 인 심방 세동을 초래할 수 있습니다. 멸균 심낭염 모델은 심방 근병증의 발병기전과 유사한 신뢰할 수 있는 대형 동물 모델입니다. 이 모델은 몇 주 내에 심방 근병증의 신속한 유도를 제공합니다.또한, 반복 전기생리학 연구는 반복적인 카테터 삽입의 필요 없이 후속 기간에 쉽게 수행될 수 있다. 인간에 비해 해부학 및 생리학의 유사성 때문에 여기에 제시된 미니 피그 모델은 심방 근 병증 및 심방 세동의 병리 생리학을 연구하는 데 사용할 수 있지만 전임상 약물 발견에도 사용할 수 있습니다. 압력 전도 시스템을 준비하는 것으로 시작하십시오.5, 000 국제 단위의 헤파린을 500 밀리리터의 0.9 % 식염수가있는 IV 백에 넣으십시오. 동물을 수핀 위치에 놓은 다음 다리를 뻗고 경동맥 환경에서 혈관 프로브가있는 초음파를 사용하여 대퇴 동맥을 찾습니다. 사타구니 영역을 클로르헥시딘으로 소독하십시오.초음파 안내를 사용하여 대퇴골 동맥에 구멍을 뚫고 Seldinger 기술을 사용하여 3 개의 프랑스 칼집을 삽입하십시오. 봉합사로 칼집을 고정하고 트랜스듀서에 연결하여 플러시하십시오. 실시간으로 동맥 혈압을 모니터링합니다.흉쇄 유양돌기 근육의 내측 경계에있는 홈에서 다섯 센티미터 절개를하십시오. 그런 다음 내부 경정맥에 도달 할 때까지 무뚝뚝하게 해부하십시오. 정맥 주위의 섬유질 조직을 제거하고 원하는 카테터 삽입 부위 주위에 Prolene 6 x 0 제곱 봉합사를 배치하여 혈관 제어를 얻습니다.Seldinger 기술을 사용하여 3 개의 프랑스 트리플 루멘 CVC로 내부 경정맥을 캐뉼레이트하십시오. 그런 다음 카테터 주위에 Prolene 6-0 봉합사를 조이십시오. 카테터의 손잡이를 흉쇄 유돌근 근육에 고정시킵니다.세 개의 카테터 루미나를 별도로 터널링하고 끝을 피부에 단단히 부착하십시오. 바늘이없는 주사 포트를 착용 한 다음 절개 부위를 두 층으로 닫으십시오. 흉골이 명백해질 때까지 xiphoid 과정 아래 세 센티미터까지 흉골의 중간 절개 manubrium을 만드십시오.xiphoid 과정에서 caudally 해부하십시오. 흉골의 내장 측면에 손가락이나 무딘 해부 가위를 놓고 가능한 한 내장 흉골 표면을 따라 결합 조직을 제거하십시오. 흉골 톱을 사용하여 흉골을 절단하십시오.그런 다음 흉골 살포기를 사용하여 흉막강에 대한 접근을 확대하여 흉막의 손상을 피하십시오. 심낭을 조심스럽게 열고 서스펜션 봉합사를 사용하여 수술 현장에서 벗어나십시오. 리드 고정 나사의 연장 및 후퇴 메커니즘을 테스트 한 후 리드 팁을 곡선 포셉에 놓고 필요한 경우 스타일릿을 60도 구부립니다.좌심실에 압축을 걸고 부드럽게 옆으로 당겨 왼쪽 심방을 볼 수 있습니다. 왼쪽 심방의 시각화에 따라, 가능한 한 폐정맥에 가깝고 심실에서 가능한 한 멀리 떨어진 벽에 납 끝을 단단히 두십시오. 나선을 심방 조직으로 연장시켜 나사로 조이십시오, 바람직하게는 약간의 경사로 말하십시오.신속하게 작업하고 좌심실의 압력을 즉시 해제하십시오. 프로그래밍 가능한 전기 자극기 또는 심박조율기 프로그램을 사용하여 리드의 감지 및 페이싱 임계값 및 임피던스를 측정합니다. 고전압에서 페이싱할 때 포획 이상의 심실이 없음을 보장합니다.심박 조율기 리드를 왼쪽 심방 리드의 배치와 완전히 유사한 오른쪽 심방에 놓습니다. 두 리드 모두 흉부를 미드 라인에 남겨 둡니다. 왼쪽 심방 리드는 xiphoid 과정에서 왼쪽 측면으로 복부 피하 지방을 통해 터널링되어야하며 오른쪽 심방이 오른쪽 측면으로 이어집니다.돼지의 왼쪽과 오른쪽 측면에있는 피하 지방에 심박 조율기 주머니를 만드십시오. 왼쪽 심방 리드와 50 헤르츠 버스트 페이싱을 수행할 수 있는 심박 조율기와 오른쪽 심방 리드가 있는 다른 제조업체의 심박조율기를 연결한 다음 주머니 안에 넣습니다. 심실을 부드럽게 당겨서 심방을 다시 노출 한 다음 거즈로 심실을 덮으십시오.디스펜서를 사용하여 양쪽 심방의 심막 표면에 멸균 활석을 뿌리십시오. 심방의 심막 표면에 멸균 거즈의 한 층을 남겨 두십시오. 폐쇄를 시작하기 전에 심박 조율기 리드의 위치를 마지막으로 한 번 확인하십시오.모노크릴 3-0과 스테인레스 스틸 와이어를 사용하여 흉골을 사용하여 심낭을 닫은 다음 각각 Vicryl 0과 monocryl 3-0을 사용하여 피하와 피부를 닫습니다. 흉골 상처가 치유 된 후, 돼지의 무게를 다시 측정하여 후속 조치를 취한 다음 동물을 제지 된 슬링에 넣고 수술실로 가져 오십시오. ECG 및 채도 모니터링을 연결하고 프로그래머의 머리를 해당 심박 조율기 위에 놓습니다.심박 조율기를 심문합니다. 자발적 AF의 발생에 대한 심박 조율기 설정을 확인하십시오. 심실 경고는 듀얼 챔버 심박 조율기를 사용할 때 정상입니다. 임피던스와 감지 및 페이싱 임계값을 결정합니다.버스트 페이싱 동안 일대일 비율 캡처가 유지되는 가장 짧은 사이클 길이로 근사된 심방 유효 내화 기간을 결정합니다. 왼쪽 및 오른쪽 심방 리드 사이의 전도 시간을 결정하려면 페이싱 스파이크의 시작과 오른쪽 심방 리드의 심방 탈분극 사이의 시간을 측정하십시오. 텍스트 원고에 설명된 대로 세 가지 프로토콜을 수행합니다.각 프로토콜에 대한 AF 지속 시간 및 AF 유도성을 지적하면 동물이 깨어나거나 다른 절차를 계속할 수 있습니다. 왼쪽 심방 리드의 전압 임계 값 및 임피던스의 점진적인 증가가 시간이 지남에 따라 관찰되었으며, 이는 섬유증 증가를 나타냅니다. 해로운 페이싱과 50헤르츠 버스트 페이싱 프로토콜은 AERP 플러스 30밀리초 페이싱 프로토콜보다 더 성공적이었다.AF 유도성은 수술 후 2주 후 약 25%까지 증가하기 시작했으며, AERP 플러스 30밀리초 프로토콜은 가장 효과적이지 않았으며, 약 10%AF 유도성을 보였다. 해로운 페이싱과 50 헤르츠 버스트 페이싱은 AF 유도성을 약 40 %로 증가 시켰습니다.이 심방 심방 심박 조율기의 심방 전자그램은 50 헤르츠 파열 페이싱의 5 초 후에 AF 에피소드의 유도를 보여줍니다. 이 하나에서는 AF 유도가 없습니다.Masson의 왼쪽 심방 조직의 삼색 염색은 shams에 비해 멸균 심낭염 동물에서 간질성 또는 부혈관 섬유증의 더 높은 수준을 보였다. 전체 심근 면적에 비해 청색 섬유성 조직 면적의 백분율을 맹검 정량화한 결과, 멸균 심낭염이 가짜 수술보다 심방 조직에서 더 많은 부혈관 및 간질성 섬유증을 유도한다는 것을 보여주었다. 가장 중요한 것은 적절한 전압 임계 값과 심실 포획없이 심박 조율기 리드의 양호한 위치를 얻는 것입니다.이 모델에서 관찰 된 광범위한 섬유증이 리드의 교체를 금지하기 때문에 초기 수술 후 심박 조율기 리드의 문제를 해결하는 것은 매우 어렵습니다. 이 프로토콜은 외과 및 전기 생리학 연구에 중점을두고 있지만 CT 및 MRI를 포함한 조직학 및 심장 영상에도 모델을 사용할 수 있습니다. 또한, 설치류에 비해, 심방 조직의 더 많은 양은 상세한 전사체 및 프로테오믹 연구를 허용한다.

Research

JoVE Journal

Medicine

High-Resolution Endocardial and Epicardial Optical Mapping in a Sheep Model of Stretch-Induced Atrial Fibrillation

스트레치 유도 심방세동 세동의 쉽 모델에서 고해상도 Endocardial 및 Epicardial 광학 매핑

 Atrial fibrillation (AF) is a complex cardiac arrhythmia with high morbidity and mortality.1,2 It is the most common sustained cardiac rhythm disturbance ...

연구

의학

The WATCHMAN Left Atrial Appendage Closure Device for Atrial Fibrillation

경비원이 심방세동 세동에 대한 심방세동 부위요 폐쇄 장치를 왼쪽

Atrial fibrillation (AF) is the most common cardiac arrhythmia, affecting an estimated 6 million people in the United States 1. Since AF affects primarily ...

A New Single Chamber Implantable Defibrillator with Atrial Sensing: A Practical Demonstration of Sensing and  Ease of Implantation

새로운 싱글 회의소 Implantable 심방세동 감지와 심장 박동기 : 감지의 실용 데모와 주입의 용이성

Implantable cardioverter-defibrillators (ICDs) terminate ventricular tachycardia (VT) and ventricular fibrillation (VF) with high efficacy and can protect ...

Catheter Ablation in Combination With Left Atrial Appendage Closure for Atrial Fibrillation

심방 세동에 대한 왼쪽 심방 부위 요 폐쇄와 함께 카테 테르 박리

Atrial fibrillation (AF) is the most common sustained cardiac arrhythmia, affecting millions of individuals worldwide 1-3. The rapid, irregular, and ...

Robotic Ablation of Atrial Fibrillation

심방 세동의 로봇 절제

Background: Pulmonary vein isolation (PVI) is an established treatment for atrial fibrillation (AF). During PVI an electrical conduction block between ...

Isolation of Atrial Cardiomyocytes from a Rat Model of Metabolic Syndrome-related Heart Failure with Preserved Ejection Fraction

심 방 Cardiomyocytes 보존된 방출 분수와 함께 대사 증후군 관련 심장 마비의 쥐 모델에서의 격리

In this article, we describe an optimized, Langendorff-based procedure for the isolation of single-cell atrial cardiomyocytes (ACMs) from a rat model of ...

Left Atrial Stenosis Induced Pulmonary Venous Arterialization and Group 2 Pulmonary Hypertension in Rat

왼쪽된 심 방 협 유발 쥐에서 그룹 2 폐 동맥 고혈압과 폐 정 맥 Arterialization

The mechanism of mitral stenosis-induced pulmonary venous arterialization and group 2 pulmonary hypertension (PH) is unclear. There is no rodent model of ...

Isolation of Atrial Myocytes from Adult Mice

성인 마우스에서 심방 근세포의 격리

The electrophysiological properties of atrial myocytes importantly affect overall cardiac function. Alterations in the underlying ionic currents ...

Cooling or Warming the Esophagus to Reduce Esophageal Injury During Left Atrial Ablation in the Treatment of Atrial Fibrillation

심방 세동 의 치료에 왼쪽 심방 절제 동안 식도 부상을 줄이기 위해 식도를 냉각 또는 온난화

Ablation of the left atrium using either radiofrequency (RF) or cryothermal energy is an effective treatment for atrial fibrillation (AF) and is the most ...

Echocardiographic Evaluation of Atrial Communications before Transcatheter Closure

트랜스카테터 폐쇄 전 심방 통신의 심초음파 평가

Transthoracic (TTE) and transesophageal echocardiography (TEE) is the standard imaging method for atrial septal defect (ASD) and patent foramen ovale ...