Name: measuring photophysiology of attached stage of colacium sp. by a cuvette-type fast repetition rate fluorometer
Uploaded: 2021-11-12T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Measuring Photophysiology of Attached Stage of Colacium sp. by a Cuvette-Type Fast Repetition Rate Fluorometer at JoVE.com

Arbeidet ble støttet av Collaborative Research Fund fra Shiga Prefecture med tittelen "Study on water quality and lake-bottom environment for the protection of the soundness of water environment" under det japanske bevilgningen til regional revitalisering og Miljøforsknings- og teknologiutviklingsfondet (nr. 5-1607) fra Miljøverndepartementet, Japan. https://www.kantei.go.jp/jp/singi/tiiki/tiikisaisei/souseikoufukin.html. Forfatterne vil takke Enago (www.enago.jp) for den engelske språkanmeldelsen.

1. Prøvetaking
<ol><li>Samle innsjøvann fra overflaten med en bøtte. For å målrette Colacium sp. festet til S. mucronata (Figur 1A-C) filter 0,5-10 L innsjøvann ved hjelp av en 100 μm nylon mesh net52. MERK: S. mucronata samles ofte tett i grunne, eutrofiske, gjørmete vann, for eksempel blant reed (phragmites) områder.</li>
	<li>Oppbevar de konsentrerte prøvene i 500 ml plastflasker med 350 ml...

Denne protokollen demonstrerte for første gang at fotofysiologien til Colacium sp. i løpet av det vedlagte stadiet i et naturlig miljø er sammenlignbar med dets planktoniske stadium i AF-6 medium. I tillegg påvirket ikke tarminnholdet i sultet S. mucronata baseline og Chl-a fluorescens når tettheten ble ≤5 inds·mL−1 (figur 5 og figur 6). Disse resultatene antyder at denne protokollen kan måle fotofysiologi av ...

Klorofyll variabel fluorescens er et nyttig verktøy for måling av alge fotosystem II (PSII) fotofysiologi. Alger reagerer på ulike miljøspenninger, for eksempel overflødig lys og næringsmangel, ved å endre PSII-fotofysiologien. Rask repetisjonshastighet fluorometer (FRRf) er en vanlig metode for å måle PSII fotofysiologi1,2 og estimere primær produktivitet1,3,4, som muliggjør overvåking av planteplankton PSII fotofysiologi, samt primær produktivitet på tvers av brede romlige og tidsskalaer5,6,7. FRRf kan samtidig måle PSII (σ PSII) absorpsjon tverrsnitt, reaksjonssenter ([RCII]) konsentrasjon, maksimal fotokjemisk effektivitet (Fv/Fm), effektiv fotokjemisk effektivitet (Fq′/Fm′) og ikke-fotokjemisk slukking (NPQNSV) (tabell 1). Generelt er Fv/Fm og Fq′/Fm′ definert som PSII-aktivitet8, mens NPQNSV er definert som relativ varmeavledende energi9.
Viktigst, enkeltomsetning (ST) blinker av FRRf reduserer den primære quinone elektron akseptor, QA, men ikke plastokinon bassenget. På den annen side blinker multippel omsetning (MT) fra et pulsamplitudemodulerings-fluorometer (PAM) som kan redusere begge deler. ST-metoden har en klar fordel i forhold til MT-metoden når du identifiserer den mulige opprinnelsen til NPQNSV ved samtidig måling av utvinning kinetikk av Fv / Fm, Fq′/Fm′, NPQNSV, og σ PSII10. Til dags dato er flere typer FRRf-instrumenter, for eksempel nedsenkbar type, cuvette-type og flow-through-type, kommersielt tilgjengelige. Frrf av nedsenkbar type muliggjør in situ-målinger i hav og innsjøer, mens cuvette-typen FRRf er egnet for måling av små prøvevolumer. Gjennomstrømningstypen brukes vanligvis til kontinuerlig å måle fotofysiologien til planteplankton i overflatevann.
Gitt utviklingen av PAM fluorometre, inkludert cuvette-typen, for et bredt spekter av fag11, er PAM fluorometre fortsatt mer vanlige enn FRRfs i alge fotofysiologisk forskning12. For eksempel kan Selv om prøvekammerstrukturen og cuvettekapasiteten mellom disse verktøyene bare varierer noe, har cuvette-typen PAM blitt brukt på planteplankton13,14,15, bunnmikroalger16,17,18, isalger19 og epizoiske alger20, mens den cuvette-typen FRRf har blitt brukt primært på planteplankton21,22,2 og et begrenset antall isalgesamfunn24,25. Gitt effektiviteten, er cuvette-type FRRf like aktuelt for bunn- og epizoiske alger. Derfor vil utvidelse av søknaden gi betydelig innsikt i PSII fotofysiologi, spesielt for mindre kjent epizoisk alge fotofysiologi.
Epizoiske alger har fått liten oppmerksomhet, med få studier som undersøker deres PSII-fotofysiologi20,26, mest sannsynlig på grunn av deres mindre roller i akvatiske matbaner27,28. Epibionter, inkludert epizoiske alger, kan imidlertid positivt påvirke dyreplanktonsamfunnsdynamikken, for eksempel økende reproduksjons- og overlevelsesrater29,30, samt negativ innvirkningsprosesser, for eksempel økende synkehastighet29,31 og sårbarhet for visuelle rovdyr32,33,34,35,36 . Derfor er det avgjørende å utforske de miljømessige og biologiske faktorene som kontrollerer epibiontdynamikk i dyreplanktonsamfunn.
Blant epizoiske alger er Colacium Ehrenberg 1834 (Euglenophyta) en vanlig, ferskvanns-, algegruppe32,37,38,39 med ulike livsstadier, inkludert vedlagt (Figur 1A-D), ikke-motil planktonisk (figur 1E,F) og motile planktoniske stadier40,41 . I løpet av det ikke-motile planktoniske stadiet lever celler som encellede planktoner, aggregerte kolonier eller ettlags arkkolonier, dekket av mucilage42. I det vedlagte stadiet bruker Colacium sp. mucilage utskilt fra den fremre enden av cellen37,39,41 for å feste til substratorganismer (basibionts), spesielt mikrocrustaceans41,43. Deres livssyklus innebærer også å løsne fra smeltet eksoskjelett eller død basibiont og svømme med flagellaen for å finne en annen substratorganisme39. Både planktoniske og vedlagte stadier kan øke bestandsstørrelsen ved mitose40. Selv om deres vedlagte stadium er hypoteset om å være et evolusjonært trekk for å samle ressurser, for eksempel light44 og sporstoffer41,45,46, eller som en dispersjonsstrategi27, er det lite eksperimentelt bevis tilgjengelig om disse aspektene37,41,44 og de viktigste vedleggsmekanismene er i stor grad ukjente. For eksempel forventet Rosowski og Kugrens at Colacium får mangan (Mn) fra substrat copepods41, konsentrert i eksoskjelettet47.
Her beskriver vi hvordan du måler PSII fotofysiologi av planktoniske alger og den relaterte søknadsmetoden for målretting av vedlagte alger (feste til dyreplankton) med Colacium sp. celler ved hjelp av cuvette-type FRRf. Vi bruker Act2-systemet utstyrt med tre lysdioder (lysdioder) som gir flash eksitasjonsenergi sentrert ved 444 nm, 512 nm og 633 nm48. Her tilsvarer 444 nm (blå) absorpsjonstoppen av chrophyll a (Chl-a), mens 512 nm (grønn) og 633 nm (oransje) tilsvarer absorpsjonstoppene til henholdsvis fycoerythrin og phycocyanin. Den fluorescerende signaldeteksjonstoppen er 682 nm med 30 nm halv båndbredde. Siden det er vanskelig å finne det planktoniske stadiet av Colacium sp. i naturlige miljøer, ble deres vedlagte stadium samlet inn for forsøkene. Blant de mange substratorganismer, Scapholeberis mucronata O.F. Müller 1776 (Branchiopoda, Daphniidae; Figur 1A, B, G) er en av de enkleste å håndtere på grunn av deres langsomme svømmehastighet, stor kroppsstørrelse (400-650 μm) og unik oppførsel (hengende opp ned på vannoverflaten). Derfor bruker denne protokollen Colacium sp. festet på S. mucronata som en casestudie av Colacium-basibiont-systemet. For å unngå fluorescens avledet fra tarminnholdet, ble S. mucronata sultet. Som en tidligere studie rapporterte at fluorescenssignalet fra tarminnhold (inntatt alger) viser en fem ganger reduksjon etter 40 min49, forventet vi at 90 min sult ville være nok til å minimere muligheten for tarminnhold fluorescens som påvirker FRRf-målingen med minimale effekter av eksperimentell stress til Colacium sp., for eksempel næringsmangel. Videre ble denne protokollen brukt for å avklare festemekanismen til Colacium sp. og bestemme hvordan to metaller, kalsium (Ca) og mangan (Mn) påvirker fotofysiologien til både planktoniske og vedlagte stadier. Kalsium spiller nøkkelroller i fotosyntetiske veier50 på flere måter, og begge metallene er pålagt å konstruere de oksygen-utviklende kompleksene til PSII51. Ettersom kalsium og mangan er svært konsentrert i karapace av krepsdyr zooplankton47, vi hypoteser at Colacium sp. fotofysiologi kan reagere mer fremtredende på Ca og Mn berikelse i løpet av planktonisk stadium hvis dette livsstadiet får disse elementene fra S. mucronata i det vedlagte stadiet.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Acrodisc syringe filter</td>
			<td>Pall Corporation, Ann Arbor, MI, USA</td>
			<td></td>
			<td>0.2 &#956;m pore size</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Act2Run</td>
			<td>CTG Ltd., West Molesey, UK</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biotin</td>
			<td>Wako</td>
			<td>023-08711</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CaCl2&#183;2H2O</td>
			<td>Wako</td>
			<td>031-25031</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CaCO3</td>
			<td>Wako</td>
			<td>036-00382</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Citric acid</td>
			<td>Wako</td>
			<td>036-05522</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CoCl2&#183;6H2O</td>
			<td>Wako</td>
			<td>036-03682</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Concentrated Chlorella</td>
			<td>Recenttec, Tokyo, Japan</td>
			<td></td>
			<td>20 mg C&#183;mL&#8722;1 ; store at 4 &#176;C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FastOcean Act2</td>
			<td>CTG Ltd., West Molesey, UK</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fe-citrate</td>
			<td>Wako</td>
			<td>093-00952</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FeCl3&#183;6H2O</td>
			<td>Wako</td>
			<td>091-00872</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HCLP-880PF</td>
			<td>Nippon Medical and Chemical Instruments 
			&#160;Co., Ltd., Osaka, Japan</td>
			<td></td>
			<td>With LED light bulbs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>K2HPO4</td>
			<td>Wako</td>
			<td>160-04292</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KH2PO4</td>
			<td>Wako</td>
			<td>167-04241</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgSO4&#183;7H2O</td>
			<td>Wako</td>
			<td>137-00402</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MnCl3&#183;4H2O</td>
			<td>Wako</td>
			<td>139-00722</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Na2EDTA</td>
			<td>Wako</td>
			<td>343-01861</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Na2MoO4</td>
			<td>Wako</td>
			<td>196-02472</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaNO3</td>
			<td>Wako</td>
			<td>191-02542</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NH4NO3</td>
			<td>Wako</td>
			<td>015-03231</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plankton Counter</td>
			<td>Matsunami Glass, Osaka, Japan</td>
			<td>S6300</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pylex test tube</td>
			<td>CTG Ltd., West Molesey, UK</td>
			<td></td>
			<td>With rim, 16 x 100 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vit. B1</td>
			<td>Wako</td>
			<td>203-00851</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vit. B12</td>
			<td>Wako</td>
			<td>226-00343</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vit. B6</td>
			<td>Wako</td>
			<td>165-05401</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZnSO4&#183;7H2O</td>
			<td>Wako</td>
			<td>264-00402</td>
			<td>AF-6 medium</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

measuring photophysiology of attached stage of colacium sp. by a cuvette-type fast repetition rate fluorometer

Rask repetisjonshastighet fluorometer (FRRf) er en gunstig metode for måling av fotosystem II (PSII) fotofysiologi og primær produktivitet. Selv om FRRf kan måle PSII absorpsjon tverrsnitt (σ PSII), maksimal fotokjemisk effektivitet (Fv / Fm), effektiv fotokjemisk effektivitet (Fq′/Fm′), og ikke-fotokjemisk slukking (NPQNSV) for ulike eukaryote alger og cyanobakterier, har nesten alle FRRf-studier til dags dato fokusert på planteplankton. Her beskriver protokollen hvordan man måler PSII-fotofysiologi av en epizoisk alge Colacium sp. Ehrenberg 1834 (Euglenophyta), i sitt vedlagte stadium (festet til dyreplankton), ved hjelp av cuvette-type FRRf. Først estimerte vi effekten av substrat zooplankton (Scapholeberis mucronata O.F. Müller 1776, Cladocera, Daphniidae) på baseline fluorescens og σ PSII, Fv/ Fm, Fq′/Fm′, og NPQNSV av planktonisk Colacium sp. For å validere denne metodikken registrerte vi fotofysiologimålinger av vedlagte Colacium sp. på S. mucronata og sammenlignet disse resultatene med dets planktoniske stadium. Representative resultater viste hvordan protokollen kunne bestemme effekten av kalsium (Ca) og mangan (Mn) på Colacium sp. fotofysiologi og identifisere de ulike effektene av Mn-berikelse mellom vedlagte og planktoniske stadier. Til slutt diskuterer vi tilpasningsevnen til denne protokollen til andre perifytiske alger.

Det var ingen signifikant effekt av baseline fluorescens (figur 5) eller Chl-a fluorescens (figur 6) av S. mucronata opptil 5 personer (inds.) ml−1. Fv/Fm og NPQNSV ble imidlertid betydelig påvirket da S. mucronata var 7,5 inds·mL−1. Derfor, for å måle fotofysiologien til Colacium sp. i det vedlagte stadiet, valgte vi S. mucronata</e...

Watch this Scientific Journal Video about Measuring Photophysiology of Attached Stage of Colacium sp. by a Cuvette-Type Fast Repetition Rate Fluorometer at JoVE.com

Measuring Photophysiology of Attached Stage of Colacium sp. by a Cuvette-Type Fast Repetition Rate Fluorometer

Rask repetisjonshastighet fluorometer (FRRf) er en gunstig metode for måling av fotosystem II fotofysiologi og primær produktivitet. Her beskriver vi en protokoll for å måle PSII fotofysiologi av epizoisk alge, Colacium sp. på substrat dyreplankton ved hjelp av cuvette-type FRRf.

Måling av fotofysiologi av Vedlagt Stadium of Colacium sp. av en Cuvette-Type Fast Repetition Rate Fluorometer

Fast repetition rate fluorometer (FRRf) is a beneficial method for measuring photosystem II (PSII) photophysiology and primary productivity. Although FRRf ...

Denne protokollen måler fotosyntetisk aktivitet av vedlagte alger, mens de fortsatt fester seg til planktonet, akkurat som i naturen. Den største fordelen med denne teknikken er at måling av fotofysiologi kan gjøres i sanntid uten prøve distraksjon. For å undersøke effekten av zooplankton individer på baseline fluorescens, forberede voksen scapholeberis mucronata fra kulturen uten noen vedlagte organismer.Sult nå individene i FLW ved 20 grader Celsius i minst 90 minutter for å unngå fluorescens fra tarminnholdet. Hell 1,5 milliliter FWL i en cuvette. Plukk opp ønsket antall s.mucronata individer som bruker en pipette under et optisk mikroskop ved 100 ganger forstørrelse og overfører dem til cuvette. Tilsett FLW for å bringe prøvevolumet opp til 2 milliliter og la det akklimatisere seg under svakt lys ved 20 grader Celsius er i 15 minutter før den raske repetisjonshastigheten fluorometermåling. Klikk deretter på act for å kjøre "for å starte målingen og gjenta målingene mer enn tre ganger per prøve.Les F0-verdien fra det resulterende plottet. Plukk opp colacium arter med en smeltet karapace ved hjelp av en pipette under et optisk mikroskop ved 100 ganger forstørrelse og vask dem med FLW. Aseptisk inokulere colacium arter i AF-6 medium i en 10 milliliter glassrør på en ren benk.Opprettholde kulturen ved en NC2 temperatur i et vekstkammer, rist glassrøret forsiktig for hånd minst en gang per dag for å forhindre celleoppgjør. For å undersøke effekten av zooplankton individer på klorofyll en fluorescens fra colacium arter, bruk voksen s. mucronata uten vedlagte organismer.For å unngå fluorescens fra tarminnholdet, sulte individene i FLW i minst 90 minutter. Sett opp et cuvette-type hurtigrepetisjonshastighetfluoriometer. Hell nå en 1,5 milliliter subprøve av prekulturerte colaciumarter i en cuvette.Overfør deretter ønsket antall s. mucronata individer inn i disse cuvettes og ta prøvevolumet opp til 2 milliliter med det filtrerte mediet. Akklimatisere individene under lite lys ved 20 grader Celsius i 15 minutter før du tar den raske repetisjonshastigheten fluorometermåling.Klikk på handling for å kjøre "for å starte målingen, gjenta målingene mer enn tre ganger per prøve. Les F0- og FM-verdiene fra det resulterende plottet. For å korrigere baseline fluorescens, filtrer kulturmediet ved hjelp av et 0,2-mikrometer pour-sized filter og mål fluorescensen.Trekk F0 fra basisprøven fra F0 og FM av colaciumarter eller endre den tomme korreksjonsverdien i innstillingene i alternativfanen. Isoler s. mucronata individer med colacium arter ved hjelp av en pipette under et optisk mikroskop.Vask deretter s. mucronata ved hjelp av FLW. Overføring s.mucronata i 100 milliliter FLW og hold dem under mørke forhold ved NC2-temperatur i 90 minutter for sult. Hell 1,5 milliliter FLW i en cuvette. Overføring rundt ti s.mucronata individer med colacium arter i en cuvette og legge FLW for å bringe prøven opp til 2 milliliter. Akklimatisere individene under lite lys ved N2C-temperatur i 15 minutter og måle klorofyll en fluorescens, som nevnt i tekstmanuskriptet. For å liste opp antall vedlagte celler, fest prøven med 2% glutaraldehyd etter å ha tatt den raske repetisjonshastigheten fluorometermåling.Ta deretter bilder på flere brennvidder og posisjoner av s. mucronata under et lysmikroskop. Det var ingen signifikant effekt på baseline fluorescens eller klorofyll en fluorescens av s.mucronata opptil 5 personer per milliliter. Imidlertid ble maksimal fotokjemisk effektivitet og ikke-fotokjemisk slukking betydelig påvirket når s. mucronata tetthet var 7,5 personer per milliliter.Sesongvariasjon i fytofysiologien til colaciumarter i festefasen og planktonisk stadium for den stasjonære fasen i AF-6-mediet viste tilsvarende gjennomsnittlig maksimal fotokjemisk effektivitet og ikke-fotokjemisk slukking. For det vedlagte stadiet av colacium arter under mørke forhold, var det ingen signifikant forskjell i fotofysiologiske parametere, bortsett fra at ikke-fotokjemisk slukking var høyere for mangan enn kalsium etter tre timer, og med lav lysintensitet på 21 timer. For det planktoniske stadiet var PS2-absorpsjons tverrsnittet betydelig lavere i mangan enn kalsiumbehandling på tre timer.Effektiv fotokjemisk effektivitet var betydelig høyere, men ikke-fotokjemisk slukking var lavere i manganbehandlingen enn kontroll på 21 timer. Under økende lys hadde mangan en tendens til å redusere PS2-absorpsjons tverrsnitt på tre timer, i ikke-fotokjemisk slukking på 21 timer, samtidig som den effektive fotokjemiske effektiviteten økte på tre timer. Kalsium litt forbedret ikke-fotokjemisk slukking under økende lys.Det reduserte imidlertid den effektive fotokjemiske effektiviteten på tre timer. Det viktigste er effekten av substratorganismer. Hvis alger festet til forskjellige arter eller materialer, kan effekten være forskjellig.I tillegg til denne protokollen er måling av karbonfiksering eller oksygenproduksjonshastigheter nyttig for å avklare kalsiumproduktivitetens respons på de eksperimentelle manipulasjonene. Denne protokollen gjør det mulig for oss å avklare hvordan fotosyntetisk aktivitet av vedlagte alger reagerer på miljøendringer.

Research

JoVE Journal

Biology

Measuring Photophysiology of Attached Stage of Colacium sp. by a Cuvette-Type Fast Repetition Rate Fluorometer

Preparation of Neuronal Cultures from Midgastrula Stage Drosophila Embryos

This video illustrates the procedure for making primary neuronal cultures from midgastrula stage Drosophila embryos. The methods for collecting embryos ...

Chromatin Immunoprecipitation Assay for Tissue-specific Genes using Early-stage Mouse Embryos

Chromatin immunoprecipitation (ChIP) is a powerful tool to identify protein:chromatin interactions that occur in the context of living cells 1-3. This ...

Measuring Fast Calcium Fluxes in Cardiomyocytes

Måling Rask Kalsium flukser i cardiomyocytes

Cardiomyocytes have multiple Ca2+ fluxes of varying duration that work together to optimize function 1,2. Changes in Ca2+ activity in response to ...

Improving the Success Rate of Protein Crystallization by Random Microseed Matrix Screening

Forbedre suksessrate på Protein Krystallisering av Random Microseed Matrix Screening

Random microseed matrix screening  (rMMS) is a protein crystallization technique in which seed crystals are added  to random screens. By increasing the ...

Monitoring Functionality and Morphology of Vasculature Recruited by Factors Secreted by Fast-growing Tumor-generating Cells

Overvåking Funksjonalitet og morfologi av blodkar Rekruttert av faktorer utskilles av sterkt voksende svulst generer Cells

The subcutaneous matrigel plug assay in mice is a method of choice for the in vivo evaluation of pro- and anti-angiogenic factors. In this method, desired ...

One-channel Cell-attached Patch-clamp Recording

En kanal Cell-festet Patch-clamp opptak

Ion channel proteins are universal devices for fast communication across biological membranes. The temporal signature of the ionic flux they generate ...

In Vivo 4-Dimensional Tracking of Hematopoietic Stem and Progenitor Cells in Adult Mouse Calvarial Bone Marrow

In Vivo 4-Dimensional Tracking of Hematopoietic Stem and Progenitor Cells in Adult Mouse Calvarial Bone Marrow

In Vivo 4-Dimensional Sporing av Hematopoietiske Stem og stamceller i Adult Mouse Calvarial Bone Marrow

Through a delicate balance between quiescence and proliferation, self renewal and production of differentiated progeny, hematopoietic stem cells (HSCs) ...

Generation of Enterobacter sp. YSU Auxotrophs Using Transposon Mutagenesis

Generation of Enterobacter sp. YSU Auxotrophs Using Transposon Mutagenesis

Generering av<em&gt; Enterobacter</em&gt; Sp. YSU Auxotrophs Bruke Transposon Mutagenesis

Prototrophic bacteria grow on M-9 minimal salts medium supplemented with glucose (M-9 medium), which is used as a carbon and energy source. Auxotrophs can ...

Floral-Dip Transformation of Flax (Linum usitatissimum) to Generate Transgenic Progenies with a High Transformation Rate

Floral-Dip Transformation of Flax Linum usitatissimum to Generate Transgenic Progenies with a High Transformation Rate

Blomster-Dip Transformasjon av Flax (<em&gt; Linum usitatissimum</em&gt;) For å generere Transgene progenies med en høy Transformation Ranger

Agrobacterium-mediated plant transformation via floral-dip is a widely used technique in the field of plant transformation and has been reported to be ...