Name: injection of porcine adipose tissue-derived stroma cells via waterjet technology
Uploaded: 2021-11-23T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology at JoVE.com

نشكر المؤلفين المشاركين من المنشورات الأصلية على مساعدتهم ودعمهم.

تم الحصول على عينات الأنسجة الدهنية الخنازير من معهد الجراحة التجريبية في جامعة توبنغن. تمت الموافقة على جميع الإجراءات من قبل سلطات رعاية الحيوان المحلية تحت رقم التجربة على الحيوانات CU1/16.
1. عزل الخلايا اللحمية المشتقة من الأنسجة الدهنية الخنازير
<ol><li>استخدم ال...

في هذه الدراسة ، أظهرنا وقدمنا نهجا خطوة بخطوة لإجراء توصيل خلايا WJ واستخدمنا تكملة من التحقيقات الكمية لتقييم تأثير تسليم WJ على الخصائص الخلوية: الجدوى الخلوية والميزات الميكانيكية الحيوية (أي EM). بعد حقن WJ ، كانت 85.9٪ من الخلايا التي تم حصادها قابلة للحياة. من حيث حقن WN ، احتفظت 97.2٪ من الخل...

سلس البول (UI) هو اضطراب واسع الانتشار مع انتشار 1.8 - 30.5 ٪ في السكان الأوروبيين1 ويتميز في المقام الأول عن طريق خلل في العضلة العاصرة للإحليل. من منظور سريري ، غالبا ما يتم تقديم العلاج الجراحي للمرضى عندما تفشل العلاجات المحافظة أو العلاج الطبيعي في معالجة الأعراض الناشئة والتخفيف من حدتها.
ظهر العلاج الخلوي للإصلاح التجديدي المحتمل لخلل مجمع العضلة العاصرة كنهج طليعي لعلاج أمراض UI 2,3. أهدافها الرئيسية هي استبدال وإصلاح واستعادة الوظائف البيولوجية للأنسجة التالفة. في النماذج الحيوانية لواجهة المستخدم ، أظهرت زراعة الخلايا الجذعية نتائج واعدة في نتائج ديناميكا البول2،4،5. تنشأ الخلايا الجذعية كمرشحة خلوية مثالية لأنها تتمتع بالقدرة على الخضوع للتجديد الذاتي والتمايز متعدد القدرات ، وبالتالي ، تساعد على تجديد الأنسجة المصابة6. على الرغم من إمكانات التجدد القادمة ، لا يزال الاستخدام العملي للعلاج بالخلايا معوقا لأن توصيل الخلايا بأقل قدر من التدخل الجراحي لا يزال يواجه العديد من التحديات المتعلقة بدقة الحقن وتغطية الهدف. على الرغم من أن النهج الحالي المستخدم لتوصيل الخلايا هو الحقن من خلال نظام حقنة الإبرة7 ، إلا أنه عادة ما يؤدي إلى عجز عام في الخلايا القابلة للحياة ، مع انخفاض الجدوى المبلغ عنها إلى 1٪ - 31٪ بعد الزرع8. بالإضافة إلى ذلك ، فقد ثبت أيضا أن توصيل الخلايا عن طريق حقن الإبرة يؤثر على الوضع ، ومعدل الاحتفاظ ، وكذلك توزيع الخلايا المزروعة في الأنسجة المستهدفة9،10،11. هناك نهج عملي وجديد يتغلب على القيد المذكور أعلاه وهو توصيل الخلايا الخالية من الإبر عبر تقنية المياه النفاثة.
تظهر تقنية Waterjet (WJ) كنهج جديد يتيح توصيل الخلايا عالية الإنتاجية بواسطة منظار المثانة تحت السيطرة البصرية في العضلة العاصرة للإحليل12,13. يتيح WJ توصيل الخلايا عند ضغوط مختلفة (E = تأثيرات في البار) تتراوح من E5 إلى E8013. في المرحلة الأولى ، يتم تطبيق محلول متساوي التوتر (مرحلة اختراق الأنسجة) بضغط عال (أي E60 أو E80) من أجل تخفيف المصفوفة خارج الخلية المحيطة بالأنسجة المستهدفة وفتح ثغرات صغيرة مترابطة صغيرة. في المرحلة الثانية (مرحلة الحقن) ، يتم خفض الضغط في غضون مللي ثانية (أي حتى E10) من أجل توصيل الخلايا بلطف إلى الأنسجة المستهدفة. بعد هذا التطبيق المكون من مرحلتين ، لا تتعرض الخلايا لضغط إضافي ضد الأنسجة عند إخراجها ولكنها تطفو في تيار منخفض الضغط في منطقة كهفية مملوءة بالسائل13. في إعداد نموذج خارج الجسم الحي حيث تم حقن الخلايا الجذعية عبر WJ في أنسجة مجرى البول الجثة، يمكن بعد ذلك شفط الخلايا القابلة للحياة واسترجاعها من الأنسجة وتوسيعها في المختبر13. على الرغم من أن دراسة أجريت عام 2020 من قبل Weber et al. أظهرت جدوى وقابلية تطبيق WJ لتقديم خلايا عضلة القلب الخالية من البصمة في عضلة القلب14 ، إلا أنه يجب أن يؤخذ في الاعتبار أن تقنية WJ لا تزال في مرحلة النموذج الأولي.
يصف البروتوكول التالي كيفية تحضير وتسمية الخلايا اللحمية المشتقة من الأنسجة الدهنية الخنازير (pADSC) وكيفية توصيلها إلى أنسجة سائلة وجثث عبر تقنية WJ وإبر تنظير المثانة من ويليامز (WN). بعد الحقن الخلوي ، يتم تقييم الحيوية الخلوية والمرونة عبر مجهر القوة الذرية (AFM). من خلال تعليمات خطوة بخطوة ، يوفر البروتوكول نهجا واضحا وموجزا للحصول على بيانات موثوقة. يعرض قسم المناقشة ويصف المزايا الرئيسية والقيود والمنظورات المستقبلية لهذه التقنية. إن تسليم WJ للخلايا بالإضافة إلى تحليلات ما بعد ترجمة التتمة المذكورة هنا تحل محل حقن الإبرة القياسي وتوفر إطارا قويا لتوصيل الخلايا للشفاء التجديدي للأنسجة المستهدفة. في دراساتنا الأخيرة قدمنا أدلة على أن WJ سلمت الخلايا بشكل أكثر دقة وعلى الأقل في قابلية مماثلة عند مقارنتها بحقن الإبرة15,16.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>50 mL centrifuge tube</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>227261</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL BD Luer-LokTM Syringe</td>
			<td>BD Plastik Inc</td>
			<td>n.a.</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 &#181;m cell sieve</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>542000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 mL centrifuge tube</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>188271</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>75 cm2 tissue culture flask</td>
			<td>Corning Incorporated</td>
			<td>353136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM head</td>
			<td>(CellHesion 200) JPK</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM processing software</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM software</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM system Cell Hesion 200</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>All-In-One-Al cantilever</td>
			<td>Budget Sensors</td>
			<td>AIO-10</td>
			<td>tip A, Conatct Mode, Shape: Beam 
			Force Constant: 0.2 N/m (0.04 - 0.7 N/m) 
			Resonance Frequency: 15 kHz (10 - 20 kHz) 
			Length: 500 &#181;m (490 - 510 &#181;m) 
			Width: 30 &#181;m (35 - 45 &#181;m) 
			Thickness: 2.7 &#181;m (1.7 - 3.7 &#181;m)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amphotericin B solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A2942</td>
			<td>250 &#181;g/ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atomic Force Microscope (AFM)</td>
			<td>CellHesion 200, JPK Instruments, Berlin, Germany</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Microlance 3 18G</td>
			<td>BD</td>
			<td>304622</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bovine serum albumin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A10008-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cantilever</td>
			<td>&#160;All-In-One-AleTl, Budget Sensors, Sofia, Bulgaria</td>
			<td>AIO-TL-10</td>
			<td>tip A, k &#188; 0.2 N/m</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-chip disposable hemocytometer</td>
			<td>NanoEnTek</td>
			<td>631-1098</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>centrifuge: Rotina 420R</td>
			<td>Hettich Zentrifugen</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase, Type I, powder</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17100-017</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8217;s Modified Eagle&#8217;s Medium - low glucose</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D5546</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Feather disposable scalpel (No. 10)</td>
			<td>Feather</td>
			<td>02.001.30.010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>F7524</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES sodium salt solution (1 M)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H3662</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted phase contrast microscope (Integrated with AFM)</td>
			<td>AxioObserver D1, Carl Zeiss Microscopy, Jena, Germany</td>
			<td>L201306_03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>laboratory bags</td>
			<td>Brand</td>
			<td>759705</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 medium without l-glutamine</td>
			<td>Merck</td>
			<td>F1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 medium without L-glutamine</td>
			<td>(Merck KGaA, Darmstadt, Germany)</td>
			<td>F1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>BE 17-605C1</td>
			<td>200 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LIVE/DEADTM Viability/Cytotoxicity Kit</td>
			<td>Invitrogen by Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>L3224</td>
			<td>Calcein AM and EthD-1 are used from this kit.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope software: Zen 2.6</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope: AxioVertA.1</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nelaton-Catheter female</td>
			<td>Bicakcilar</td>
			<td>19512051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140-122</td>
			<td>10000 U/ml Penicillin 
			10000 &#181;g/ml Streptomycin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish heater associated with AFM</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>T-05-0117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish heater associated with AFM</td>
			<td>JPK Instruments AG, Berlin, Germany</td>
			<td>T-05-0117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline (PBS)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Statistical Software: SPSS Statistics 22</td>
			<td>IBM</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Petri dish - CellStar</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>664160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture dishes</td>
			<td>TPP AG</td>
			<td>TPP93040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture dishes</td>
			<td>TPP Techno Plastic Products AG, Trasadingen, Switzerland</td>
			<td>TPP93040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan Blue 0.4% 
			0.85% NaCl</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>17-942E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin-EDTA solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T3924</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Waterjet: ERBEJET2 device</td>
			<td>Erbe Elektromedizin GmbH</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Williams Cystoscopic Injection Needle</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td>G14220</td>
			<td>23G, 5.0 Fr, 35 cm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

injection of porcine adipose tissue-derived stroma cells via waterjet technology

سلس البول (UI) هو حالة منتشرة للغاية تتميز بنقص العضلة العاصرة للإحليل. فروع الطب التجديدي ، وخاصة العلاج الخلوي ، هي أساليب جديدة لتحسين واستعادة وظيفة العضلة العاصرة للإحليل. على الرغم من أن حقن الخلايا الوظيفية النشطة يتم إجراؤه بشكل روتيني في الإعدادات السريرية عن طريق الإبرة والحقنة ، إلا أن هذه الأساليب لها عيوب وقيود كبيرة. في هذا السياق ، تعد تقنية Waterjet الخالية من الإبر (WJ) طريقة مجدية ومبتكرة يمكنها حقن خلايا قابلة للحياة عن طريق تنظير المثانة الموجه بصريا في العضلة العاصرة للإحليل. في هذه الدراسة ، استخدمنا WJ لتوصيل الخلايا اللحمية المشتقة من الأنسجة الدهنية الخنازير (pADSCs) إلى أنسجة مجرى البول الجثة، ثم حققنا في تأثير توصيل WJ على إنتاجية الخلايا وقابليتها للحياة. قمنا أيضا بتقييم السمات الميكانيكية الحيوية (أي المرونة) بواسطة قياسات مجهر القوة الذرية (AFM). لقد أظهرنا أن PADSC التي قدمتها WJ قد انخفضت بشكل كبير في مرونتها الخلوية. كانت الجدوى أقل بكثير مقارنة بالضوابط ولكنها لا تزال أعلى من 80٪.

بعد توصيل الخلايا عبر النهجين ، كانت صلاحية الخلايا التي يتم تسليمها من خلال WN (97.2 ± 2٪ ، n = 10 ، p<0.002) أعلى عند مقارنتها بالحقن بواسطة WJ باستخدام إعدادات E60-10 (85.9 ± 0.16٪ ، n = 12) (الشكل 2). أظهرت نتائج التقييم البيوميكانيكي أن: حقن WN للخلايا في سائل الالتقاط لم تظهر فرقا كبيرا فيما يت?...

Watch this Scientific Journal Video about Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology at JoVE.com

Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology

نحن نقدم طريقة لحقن الخلايا عبر تقنية Waterjet الخالية من الإبر إلى جانب تكملة من تحقيقات ما بعد الولادة من حيث الجدوى الخلوية والانتشار وقياسات المرونة.

حقن خلايا السدى المشتقة من الأنسجة الدهنية من لحم الخنزير عن طريق تقنية Waterjet

Urinary incontinence (UI) is a highly prevalent condition characterized by the deficiency of the urethral sphincter muscle. Regenerative medicine ...

يمكن تطبيق حقن Waterjet للمكونات النشطة ، مثل السوائل أو الجسيمات النانوية أو الجسيمات الدقيقة أو الأدوية المغلفة أو حتى الخلايا الحية بشكل أكثر دقة عند مقارنتها بحقن الإبرة في الأنسجة المختلفة المستهدفة. تتطلب الأساليب طفيفة التوغل توطينا دقيقا للدواء في طبقات محددة مسبقا من الأنسجة المستهدفة عن طريق الاختيار المسبق لضغوط الحقن. ينصب تركيزنا الحالي على العلاج الخلوي لسلس البول.ومع ذلك ، فقد تم بالفعل توسيع هذه التقنية لتجديد الأنسجة العضلية المصابة بعد النوبات القلبية الشديدة. في الوقت الحاضر ، لا يمكن تطبيق هذه التقنية إلا من قبل الباحثين ذوي الخبرة أو الأطباء المرخصين في الدراسات ما قبل السريرية. ليس المقصود استخدامه في الإجراءات المختبرية الروتينية لأنه تم تطويره للأغراض السريرية المستقبلية.للبدء ، ضع مجرى البول مع المثانة المتصلة التي تم تشريحها من خنزير Landrace الأنثوي البالغ على إسفنجة تحاكي مرونة قاع الحوض السفلي. ثم باستخدام المثانة ، حدد اتجاه مجرى البول. هذا ممكن بسبب توطين الحالب والأربطة الثلاثة ، والتي تثبت المثانة في تجويف البطن والحوض.بعد توجيه مجرى البول بشكل صحيح ، قم بقطعه طوليا على الجانب الظهري بمساعدة قسطرة. بعد ضبط كثافة الخلايا للخلايا اللحمية المشتقة من الأنسجة الدهنية الخنازير إلى 2.4 مرة 10 إلى الخلايا السادسة لكل ملليلتر ، قم بتسمية الخلايا بغشاء فلورسنت أخضر قابل للنفاذ بقعة خلية حية ، ثم استنشق تعليق الخلية باستخدام المحقنة وتطبيق إبرة الحقن بالمنظار الخلوي ويليامز. بعد ذلك ، إما أن تمسك الإبرة فوق مليلترين من وسائط النمو في أنبوب طرد مركزي 15 ملليلتر أو تدخل الإبرة في أنسجة مجرى البول المفتوحة.في كلتا الحالتين ، حقن 250 ميكرولتر يدويا من تعليق الخلية. الخلايا التي يتم حقنها في مجرى البول الجثوي من قبة الحقن. جمع الخلايا التي يتم حقنها في الوسائط مباشرة عن طريق الطرد المركزي.بالنسبة للخلايا التي يتم حقنها في مجرى البول الجثة، قم بشفطها من قبة الحقن باستخدام إبرة قياس 18 مطبقة على حقنة. نقل الخلايا المستنشقة إلى أنبوب الطرد المركزي وكرها عن طريق الطرد المركزي. أعد تعليق كل من كريات الخلايا في أربعة ملليلترات من وسائط النمو.لتحديد إنتاجية الخلية وقابليتها للبقاء، امزج 20 من تعليق الخلية جيدا مع 20 ميكرولتر من التربان الأزرق. ثم املأ 10 ميكرولترات من هذا الخليط في كل غرفة من مقياس الدم. تحت المجهر عد الخلايا في جميع مربعات الزاوية الأربعة.عد الخلايا البيضاء غير الملطخة كخلايا قابلة للحياة والخلايا الملطخة الزرقاء كخلايا ميتة ، ثم احسب عدد الخلايا لكل ملليلتر. بالنسبة للحقن عبر Waterjet ، اضبط كثافة الخلايا اللحمية المشتقة من الأنسجة الدهنية الخنازير إلى ست مرات من 10 إلى 6 خلايا لكل ملليلتر. قم بتسميتها كما هو موضح سابقا واملأ تعليق الخلية في وحدة الجرعات الخاصة بجهاز Waterjet الخالي من الإبرة.ثم إما أن تمسك فوهة الحقن فوق مليلترين من وسائط النمو في أنبوب طرد مركزي 15 ملليلتر أو فوق أنسجة مجرى البول المفتوحة بقليل. في كلتا الحالتين ، حقن 100 ميكرولتر من تعليق الخلية. استخدم ضغطا عاليا لاختراق الأنسجة متبوعا بمرحلة ضغط منخفض لحقن الخلايا.تشكل الخلايا المحقونة في مجرى البول الجثوي قبة حقن. جمع الخلايا التي يتم حقنها في الوسائط مباشرة عن طريق الطرد المركزي. بالنسبة للخلايا التي يتم حقنها في مجرى البول الجثة، قم بشفطها خارج قبة الحقن.انقل الخلايا المستنشقة إلى أنبوب طرد مركزي ، وقم بتكويرها باستخدام الطرد المركزي كما هو موضح سابقا. بعد الطرد المركزي ، أعد تعليق كلا الكريات في أربعة ملليلتر من وسائط النمو. زرع الخلايا التي تم استردادها بعد الحقن في أطباق زراعة الأنسجة بكثافة خمس مرات 10 إلى الخلايا الخامسة لكل طبق.بعد ثلاث ساعات من الحضانة عند 37 درجة مئوية ، وقبل قياس AFM مباشرة ، استبدل وسائط النمو بثلاثة ملليلترات من وسائط L-15 من Leibovitz بدون L-glutamine. لقياس مرونة الخلايا الفردية ، حدد بصريا خلية واحدة وركز عليها. ثم ضع ماوس الكمبيوتر في منتصف الخلية ولتحسين دقة القياسات ، ضع طرف AFM مباشرة فوق نواة الخلية.بعد ذلك ، ركز على الكابولي وحركه على ماوس الكمبيوتر. ثم ابدأ القياس بتشغيل وقياس 50 خلية على الأقل. يتم استخدام معلمة نقطة الضبط التي تم الحصول عليها عن طريق معايرة الكابولي ويتم قياس خلية واحدة ثلاث مرات.كانت صلاحية الخلايا التي يتم تسليمها من خلال إبرة ويليامز أعلى من الحقن بواسطة الطائرة المائية باستخدام إعدادات E60-10. كشف التقييم الميكانيكي الحيوي للحقن في سائل الالتقاط أن حقن إبرة ويليامز لم تظهر فرقا كبيرا في المعامل المرن عند مقارنتها بالضوابط ، في حين أن حقن Waterjet خفضت بشكل كبير من المعامل المرن الخلوي بنسبة 40 إلى 50٪ وبالمثل ، في عينات أنسجة مجرى البول الجثث ، لم تسفر حقن إبرة ويليامز عن أي فرق كبير في المعامل المرنة الخلوية مقارنة بالضوابط. ومع ذلك ، لوحظ انخفاض كبير بنسبة 51 ٪ بعد حقن Waterjet.على المرء فقط التأكد من أن حقن الإبرة لا تخترق الأنسجة التي تسبب الإصابة بشكل كامل. مع Waterjet ، يتعين على المرء فقط وضع الجهاز في الموضع الصحيح في منطقة الحقن بينما يتم الباقي تلقائيا بواسطة الجهاز نفسه. نظرا لأنه تم تطوير جهاز Waterjet ليتناسب مع أجهزة التنظير الداخلي ويتناسب معها ، يمكنك استخدام تطبيقات Waterjet لأي موقع في الجسم يمكن الوصول إليه بواسطة تقنيات تنظير المثانة أو التنظير الداخلي هذه لتجديد الأنسجة والقيام بمهمة الإصلاح.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Transplantation of Induced Pluripotent Stem Cell-derived Mesoangioblast-like Myogenic Progenitors in Mouse Models of Muscle Regeneration

زرع المستحثة متعددة القدرات الخلايا الجذعية المشتقة من Mesoangioblast مثل السلف الميوجينيك في نماذج الماوس من تجديد العضلات

Patient-derived iPSCs could be an invaluable source of cells for future autologous cell therapy protocols. iPSC-derived myogenic stem/progenitor cells ...

Human Cartilage Tissue Fabrication Using Three-dimensional Inkjet Printing Technology

الغضروف الإنسان الأنسجة التصنيع باستخدام ثلاثي الأبعاد تكنولوجيا الطباعة النافثة للحبر

Bioprinting, which is based on thermal inkjet printing, is one of the most attractive enabling technologies in the field of tissue engineering and ...

An Injectable and Drug-loaded Supramolecular Hydrogel for Local Catheter Injection into the Pig Heart

عن طريق الحقن ومحملة المخدرات Supramolecular هيدروجيل لحقن القسطرة المحلي في قلب خنزير

Regeneration of lost myocardium is an important goal for future therapies because of the increasing occurrence of chronic ischemic heart failure and the ...

Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering

عزل الفئران الدهنية المشتقة من الأنسجة الاوعية الدموية الدقيقة شظايا كما وحدات الأوعية الدموية للهندسة الأنسجة

A functional microvascular network is of pivotal importance for the survival and integration of engineered tissue constructs. For this purpose, several ...

Generic Protocol for Optimization of Heterologous Protein Production Using Automated Microbioreactor Technology

بروتوكول عام للاستفادة المثلى إنتاج البروتين مغايرة باستخدام تقنية ميكروبيوريكتور الآلي

A core business in industrial biotechnology using microbial production cell factories is the iterative process of strain engineering and optimization of ...

Microdissection of Primary Renal Tissue Segments and Incorporation with Novel Scaffold-free Construct Technology

ميكروديسيكشن شرائح الأنسجة الكلوية الأولية، وإدماج مع تكنولوجيا بناء رواية خالية من السقالة

Kidney transplantation is now a mainstream therapy for end-stage renal disease. However, with approximately 96,000 people on the waiting list and only ...

Isolation and Decellularization of a Whole Porcine Pancreas

والعزلة وديسيلولاريزيشن من بنكرياس الخنزير كله

Tissue engineering of the whole pancreas can improve current treatments for diabetes mellitus. The ultimate goal is to tissue engineer pancreas from an ...

High-resolution Imaging of Nuclear Dynamics in Live Cells under Uniaxial Tensile Strain

تصوير عالي الدقة لديناميكيات نوويه في الخلايا الحية تحت ضغط الشد المحوري

Extracellular mechanical strain is known to elicit cell phenotypic responses and has physiological relevance in several tissue systems. To capture the ...

Encapsulated Cell Technology for the Delivery of Biologics to the Mouse Eye

تكنولوجيا الخلية المغلفة لتسليم البيولوجيا إلى العين الماوس

Many current therapeutics under development for diseases of the posterior pole of the eye are biologics. These drugs need to be administered frequently, ...

Pancreatic Tissue-Derived Extracellular Matrix Bioink for Printing 3D Cell-Laden Pancreatic Tissue Constructs

البنكرياس المشتقة الانسجه المستمدة مصفوفة بيونك للطباعة 3D خلايا البنكرياس لادن الانسجه يبني

The transplantation of pancreatic islets is a promising treatment for patients who suffer from type 1 diabetes accompanied by hypoglycemia and secondary ...