Name: injection of porcine adipose tissue-derived stroma cells via waterjet technology
Uploaded: 2021-11-23T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology at JoVE.com

We danken onze co-auteurs uit de originele publicaties voor hun hulp en steun.

De vetweefselmonsters van varkens werden verkregen van het Instituut voor Experimentele Chirurgie van de Universiteit van Tübingen. Alle procedures werden goedgekeurd door lokale dierenwelzijnsautoriteiten onder het dierproefnummer CU1/16.
1. Isolatie van van vetweefsel afgeleide stromale cellen van varkens
<ol><li>Gebruik vetweefsel van varkens dat door het Instituut voor Experimentele Chirurgie in een centrifugebuis van 50 ml naar het laboratorium wordt gebracht.</li>
	<l...

In de huidige studie hebben we een stapsgewijze aanpak voor de WJ-celafgifteprocedure gedemonstreerd en gepresenteerd en een vervolg van kwantitatief onderzoek gebruikt om het effect van WJ-afgifte op cellulaire kenmerken te beoordelen: cellulaire levensvatbaarheid en biomechanische kenmerken (d.w.z. EM). Na WJ-injectie was 85,9% van de geoogste cellen levensvatbaar. In termen van WN-injectie behield 97,2% van de cellen hun levensvatbaarheid na injectie. De WJ-aanpak voldoet dus aan een absolute vereiste voor een klinisc...

Urine-incontinentie (UI) is een wijdverspreide aandoening met een prevalentie van 1,8 - 30,5% in Europese populaties1 en wordt voornamelijk gekenmerkt door slecht functioneren van de urethrale sluitspier. Vanuit een klinisch perspectief wordt chirurgische behandeling vaak aangeboden aan patiënten wanneer conservatieve therapieën of fysiotherapie er niet in slagen om de opkomende symptomen aan te pakken en te verlichten.
Celtherapie voor het potentiële regeneratieve herstel van de sfinctercomplexstoring is in opkomst als een avant-gardistische benadering voor de behandeling van UI-pathologie 2,3. De belangrijkste doelen zijn het vervangen, repareren en herstellen van de biologische functionaliteit van het beschadigde weefsel. In diermodellen voor UI heeft stamceltransplantatie veelbelovende resultaten laten zien in urodynamische uitkomsten 2,4,5. Stamcellen ontstaan als optimale cellulaire kandidaten omdat ze het vermogen hebben om zelfvernieuwing en multipotente differentiatie te ondergaan, waardoor de aangetaste weefselregeneratiewordt bevorderd 6. Ondanks het aanstaande regeneratieve potentieel, blijft het praktische gebruik van celtherapie belemmerd, aangezien minimaal invasieve toediening van cellen nog steeds voor verschillende uitdagingen staat met betrekking tot de injectieprecisie en dekking van het doelwit. Hoewel de huidige aanpak die wordt gebruikt voor celafgifte injectie via een naald-spuitsysteem7 is, resulteert dit meestal in een algemeen tekort aan levensvatbare cellen, met gerapporteerde levensvatbaarheden zo laag als 1% - 31% na transplantatie8. Bovendien is aangetoond dat celafgifte via naaldinjectie ook van invloed is op de plaatsing, de retentiesnelheid en de distributie van getransplanteerde cellen in het beoogde weefsel 9,10,11. Een haalbare, nieuwe aanpak die de bovengenoemde beperking overwint, is de naaldvrije celafgifte via waterstraaltechnologie.
Waterjet (WJ) technologie is in opkomst als een nieuwe aanpak die een hoge doorvoer levering van cellen door cystoscoop onder visuele controle in de urethrale sluitspier 12,13 mogelijk maakt. De WJ maakt celafgifte mogelijk bij verschillende drukken (E = effecten in bar) variërend van E5 tot E8013. In de eerste fase (weefselpenetratiefase) wordt isotone oplossing toegepast met hoge druk (d.w.z. E60 of E80) om de extracellulaire matrix rond het beoogde weefsel los te maken en kleine onderling verbonden microlacunes te openen. In de tweede fase (de injectiefase) wordt de druk binnen milliseconden verlaagd (d.w.z. tot E10) om de cellen voorzichtig in het beoogde weefsel af te leveren. Na deze toepassing in twee stappen worden de cellen niet blootgesteld aan extra druk tegen het weefsel wanneer ze worden uitgeworpen, maar zweven ze in een lagedrukstroom in een met vloeistof gevuld caverneus gebied13. In een ex vivo modelsetting waarbij stamcellen via WJ in cadaveric urethraweefsel werden geïnjecteerd, konden levensvatbare cellen daarna worden geaspireerd en uit het weefsel worden gehaald en in vitro verder worden uitgebreid 13. Hoewel een studie uit 2020 door Weber et al. de haalbaarheid en toepasbaarheid van WJ aantoonde om voetafdrukvrije cardiomyocyten in hetmyocardium 14 te leveren, moet er rekening mee worden gehouden dat de WJ-technologie zich nog in een prototypefase bevindt.
Het volgende protocol beschrijft hoe varkens vetweefsel-afgeleide stromale cellen (pADSC) kunnen worden voorbereid en gelabeld en hoe ze kunnen worden afgeleverd in vanvangvloeistof en kadaverweefsel via WJ-technologie en Williams cystoscopienaalden (WN). Na cellulaire injectie wordt de cellulaire vitaliteit en elasticiteit via atomaire krachtmicroscopie (AFM) beoordeeld. Via stapsgewijze instructies geeft het protocol een duidelijke en beknopte aanpak om betrouwbare gegevens te verkrijgen. Het discussiegedeelte presenteert en beschrijft de belangrijkste voordelen, beperkingen en toekomstperspectieven van de techniek. De WJ-levering van cellen en de sequela-posttransformatieanalyses die hier worden gerapporteerd, vervangen de standaard naaldinjectie en bieden een solide celafgiftekader voor regeneratieve genezing van het doelweefsel. In onze recente studies leverden we bewijs dat WJ cellen nauwkeuriger en ten minste met een vergelijkbare levensvatbaarheid afleverde in vergelijking met naaldinjecties15,16.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>50 mL centrifuge tube</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>227261</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL BD Luer-LokTM Syringe</td>
			<td>BD Plastik Inc</td>
			<td>n.a.</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 &#181;m cell sieve</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>542000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 mL centrifuge tube</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>188271</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>75 cm2 tissue culture flask</td>
			<td>Corning Incorporated</td>
			<td>353136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM head</td>
			<td>(CellHesion 200) JPK</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM processing software</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM software</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM system Cell Hesion 200</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>All-In-One-Al cantilever</td>
			<td>Budget Sensors</td>
			<td>AIO-10</td>
			<td>tip A, Conatct Mode, Shape: Beam 
			Force Constant: 0.2 N/m (0.04 - 0.7 N/m) 
			Resonance Frequency: 15 kHz (10 - 20 kHz) 
			Length: 500 &#181;m (490 - 510 &#181;m) 
			Width: 30 &#181;m (35 - 45 &#181;m) 
			Thickness: 2.7 &#181;m (1.7 - 3.7 &#181;m)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amphotericin B solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A2942</td>
			<td>250 &#181;g/ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atomic Force Microscope (AFM)</td>
			<td>CellHesion 200, JPK Instruments, Berlin, Germany</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Microlance 3 18G</td>
			<td>BD</td>
			<td>304622</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bovine serum albumin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A10008-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cantilever</td>
			<td>&#160;All-In-One-AleTl, Budget Sensors, Sofia, Bulgaria</td>
			<td>AIO-TL-10</td>
			<td>tip A, k &#188; 0.2 N/m</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-chip disposable hemocytometer</td>
			<td>NanoEnTek</td>
			<td>631-1098</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>centrifuge: Rotina 420R</td>
			<td>Hettich Zentrifugen</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase, Type I, powder</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17100-017</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8217;s Modified Eagle&#8217;s Medium - low glucose</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D5546</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Feather disposable scalpel (No. 10)</td>
			<td>Feather</td>
			<td>02.001.30.010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>F7524</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES sodium salt solution (1 M)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H3662</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted phase contrast microscope (Integrated with AFM)</td>
			<td>AxioObserver D1, Carl Zeiss Microscopy, Jena, Germany</td>
			<td>L201306_03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>laboratory bags</td>
			<td>Brand</td>
			<td>759705</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 medium without l-glutamine</td>
			<td>Merck</td>
			<td>F1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 medium without L-glutamine</td>
			<td>(Merck KGaA, Darmstadt, Germany)</td>
			<td>F1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>BE 17-605C1</td>
			<td>200 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LIVE/DEADTM Viability/Cytotoxicity Kit</td>
			<td>Invitrogen by Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>L3224</td>
			<td>Calcein AM and EthD-1 are used from this kit.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope software: Zen 2.6</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope: AxioVertA.1</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nelaton-Catheter female</td>
			<td>Bicakcilar</td>
			<td>19512051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140-122</td>
			<td>10000 U/ml Penicillin 
			10000 &#181;g/ml Streptomycin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish heater associated with AFM</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>T-05-0117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish heater associated with AFM</td>
			<td>JPK Instruments AG, Berlin, Germany</td>
			<td>T-05-0117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline (PBS)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Statistical Software: SPSS Statistics 22</td>
			<td>IBM</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Petri dish - CellStar</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>664160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture dishes</td>
			<td>TPP AG</td>
			<td>TPP93040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture dishes</td>
			<td>TPP Techno Plastic Products AG, Trasadingen, Switzerland</td>
			<td>TPP93040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan Blue 0.4% 
			0.85% NaCl</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>17-942E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin-EDTA solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T3924</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Waterjet: ERBEJET2 device</td>
			<td>Erbe Elektromedizin GmbH</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Williams Cystoscopic Injection Needle</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td>G14220</td>
			<td>23G, 5.0 Fr, 35 cm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

injection of porcine adipose tissue-derived stroma cells via waterjet technology

Urine-incontinentie (UI) is een veel voorkomende aandoening die wordt gekenmerkt door het tekort aan de urethrale sluitspier. Regeneratieve geneeskunde takken, met name celtherapie, zijn nieuwe benaderingen om de urethrale sluitspierfunctie te verbeteren en te herstellen. Hoewel injectie van actieve functionele cellen routinematig wordt uitgevoerd in klinische omgevingen met naald en spuit, hebben deze benaderingen aanzienlijke nadelen en beperkingen. In deze context is naaldvrije waterstraaltechnologie (WJ) een haalbare en innovatieve methode die levensvatbare cellen kan injecteren door visueel geleide cystoscopie in de urethrale sluitspier. In de huidige studie gebruikten we WJ om van varkensweefsel afgeleide stromale cellen (pADSCs) af te leveren in cadaveric urethraal weefsel en onderzochten vervolgens het effect van WJ-afgifte op celopbrengst en levensvatbaarheid. We beoordeelden ook de biomechanische kenmerken (d.w.z. elasticiteit) door atomaire krachtmicroscopie (AFM) metingen. We toonden aan dat door WJ geleverde pADSC's significant verminderd waren in hun cellulaire elasticiteit. De levensvatbaarheid was aanzienlijk lager in vergelijking met controles, maar ligt nog steeds boven de 80%.

Na celafgifte via de twee benaderingen was de levensvatbaarheid van cellen die via het WN werden toegediend (97,2 ± 2%, n = 10, p<0,002) hoger in vergelijking met injecties door WJ met behulp van de E60-10-instellingen (85,9 ± 0,16%, n = 12) (figuur 2). Biomechanische beoordelingsresultaten toonden aan dat: WN-injecties van cellen in afvangvloeistof geen significant verschil vertoonden met betrekking tot de elastische moduli (EM; 0,992 kPa) in vergelijking met de controles (1,176 kPa; <str...

Watch this Scientific Journal Video about Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology at JoVE.com

Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology

We presenteren een methode van celinjectie via naaldvrije waterstraaltechnologie in combinatie met een vervolg op onderzoeken na toediening in termen van cellulaire levensvatbaarheid, proliferatie en elasticiteitsmetingen.

Injectie van van varkensweefsel afgeleide stromacellen via waterstraaltechnologie

Urinary incontinence (UI) is a highly prevalent condition characterized by the deficiency of the urethral sphincter muscle. Regenerative medicine ...

Waterstraalinjecties van actieve componenten, zoals vloeistoffen, nanodeeltjes, microdeeltjes, ingekapselde geneesmiddelen of zelfs levende cellen kunnen veel nauwkeuriger worden toegepast in vergelijking met naaldinjecties in verschillende beoogde weefsels. Minimaal invasieve benaderingen vereisen nauwkeurige lokalisatie van de medicatie in vooraf bepaalde lagen van het beoogde weefsel door de injectiedrukken vooraf te selecteren. Onze huidige focus ligt op de celtherapie voor urine-incontinentie.Deze techniek is echter al uitgebreid naar de regeneratie van geïnfecteerd spierweefsel na ernstige hartaanvallen. Op dit moment kan de techniek alleen worden toegepast door ervaren onderzoekers of erkende artsen in preklinische studies. Het is niet bedoeld voor gebruik in routine laboratoriumprocedures, omdat het is ontwikkeld voor toekomstige klinische doeleinden.Plaats om te beginnen de urethra met de verbindingsblaas ontleed van een volwassen vrouwelijk landrasvarken op een spons die de elasticiteit van de onderste bekkenbodem nabootst. Bepaal vervolgens met behulp van de blaas de oriëntatie van de urethra. Dit is mogelijk door de lokalisatie van de urineleider en de drie ligamenten, die de blaas in de buik- en bekkenholte fixeren.Na het correct oriënteren van de urethra, snijdt u deze in de lengterichting open aan de dorsale kant met behulp van een katheter. Na het aanpassen van de celdichtheid van de van vetweefsel afgeleide stromale cellen van varkensweefsel tot 2,4 keer 10 tot de zesde cellen per milliliter, labelt u de cellen met een groen fluorescerend membraandoorlatende levende celvlek, ademt u vervolgens de celsuspensie op met de spuit en brengt u de Williams cytoscopische injectienaald aan. Houd vervolgens de naald kort boven de twee milliliter groeimedia in een centrifugatiebuis van 15 milliliter of steek de naald in het open urethraweefsel.Injecteer in beide gevallen handmatig 250 microliter van de celsuspensie. Cellen geïnjecteerd in de cadaverische urethra vanuit een injectiekoepel. Verzamel de cellen die rechtstreeks door centrifugering in de media worden geïnjecteerd.Voor cellen die in de cadaverische urethra worden geïnjecteerd, zuigt u ze uit de injectiekoepel met een naald van 18 gauge aangebracht op een spuit. Breng de aangezogen cellen over in een centrifugatiebuis en pellet ze door centrifugeren. Resuspend beide celkorrels in vier milliliter groeimedia.Om de celopbrengst en levensvatbaarheid te bepalen, mengt u 20 van de celsuspensie grondig met 20 microliter trypanblauw. Vul vervolgens 10 microliter van dit mengsel in elke kamer van de hemocytometer. Tel onder een microscoop de cellen in alle vier de hoekvierkanten.Tel de onbevlekte witte bloedcellen als levensvatbare cellen en de blauw gekleurde cellen als dode cellen en bereken vervolgens het celgetal per milliliter. Voor injecties via de waterjet, pas de dichtheid van de varkens vetweefsel-afgeleide stromale cellen aan tot zes keer 10 tot zesde cellen per milliliter. Label ze zoals eerder gedemonstreerd en vul de celsuspensie in de doseereenheid van het naaldvrije waterstraalapparaat.Houd vervolgens het injectiemondstuk kort boven de twee milliliter groeimedia in een centrifugatiebuis van 15 milliliter of kort boven het open urethraweefsel. Injecteer in beide gevallen 100 microliter van de celsuspensie. Gebruik hoge druk voor weefselpenetratie gevolgd door een lage drukfase voor celinjecties.Cellen die in de cadaverische urethra worden geïnjecteerd, vormen een injectiekoepel. Verzamel cellen die rechtstreeks door centrifugering in de media worden geïnjecteerd. Voor cellen die in de cadaverische urethra worden geïnjecteerd, aspirateer ze uit de injectiekoepel.Breng de aangezogen cellen over in een centrifugatiebuis en pellet ze met behulp van centrifugatie zoals eerder aangetoond. Na centrifugeren, resuspend beide pellets in vier milliliter groeimedia. Zaad de cellen opgehaald na injecties in weefselkweekschalen met een dichtheid van vijf keer 10 tot de vijfde cel per schotel.Vervang na een incubatietijd van drie uur bij 37 graden Celsius, en vlak voor de AFM-meting, de groeimedia door drie milliliter L-15-media van Leibovitz zonder L-glutamine. Om de elasticiteit van individuele cellen te meten, identificeert u visueel één cel en concentreert u zich erop. Plaats vervolgens de computermuis in het midden van de cel en plaats de AFM-punt direct boven de celkern om de precisie van de metingen te verbeteren.Richt u vervolgens op de cantilever en verplaats deze op de computermuis. Start vervolgens de meting met run en meet minimaal 50 cellen. De instelpuntparameter die wordt verkregen door kalibratie van de cantilever wordt gebruikt en één cel wordt drie keer gemeten.De levensvatbaarheid van cellen die via de Williams-naald werden afgeleverd, was hoger dan injecties door de waterstraal met behulp van de E60-10-instellingen. Biomechanische beoordeling van injecties in de afvangvloeistof onthulde dat Williams-naaldinjecties geen significant verschil vertoonden in de elastische moduli in vergelijking met controles, terwijl de waterjet-injecties de cellulaire elastische moduli aanzienlijk verminderden met 40 tot 50%Evenzo leverden Williams-naaldinjecties in cadaverische urethraweefselmonsters geen significant verschil op in cellulaire elastische moduli in vergelijking met controles. Er werd echter een significante vermindering van 51% waargenomen na waterstraalinjecties.Men moet er alleen voor zorgen dat de naaldinjecties niet volledig doordringen in het weefsel dat letsel toebrengt. Bij waterjet hoeft men het apparaat alleen in de juiste positie in het injectiegebied te plaatsen, terwijl de rest automatisch door het apparaat zelf wordt gedaan. Omdat het waterstraalapparaat is ontwikkeld om te passen bij en te passen in endoscopische apparaten, kunt u de waterstraaltoepassingen gebruiken voor elke plaats in het lichaam die kan worden bereikt door deze cystoscopische of endoscopische technologieën om weefsels te regenereren en het reparatiewerk uit te voeren.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Transplantation of Induced Pluripotent Stem Cell-derived Mesoangioblast-like Myogenic Progenitors in Mouse Models of Muscle Regeneration

Transplantatie van geïnduceerde pluripotente stamcel-afgeleide mesoangioblast-achtige myogene voorlopers in muismodellen van spierregeneratie

Patient-derived iPSCs could be an invaluable source of cells for future autologous cell therapy protocols. iPSC-derived myogenic stem/progenitor cells ...

Human Cartilage Tissue Fabrication Using Three-dimensional Inkjet Printing Technology

Human kraakbeenweefsel Fabrication behulp van drie-dimensionale Inkjet Printing Technology

Bioprinting, which is based on thermal inkjet printing, is one of the most attractive enabling technologies in the field of tissue engineering and ...

An Injectable and Drug-loaded Supramolecular Hydrogel for Local Catheter Injection into the Pig Heart

Een injecteerbare en-Drug geladen Supramoleculaire Hydrogel voor Local Catheter injectie in de Pig Heart

Regeneration of lost myocardium is an important goal for future therapies because of the increasing occurrence of chronic ischemic heart failure and the ...

Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering

Isolatie Murine vetweefsel afgeleide microvasculaire fragmenten als Vascularisatie eenheden voor Tissue Engineering

A functional microvascular network is of pivotal importance for the survival and integration of engineered tissue constructs. For this purpose, several ...

Generic Protocol for Optimization of Heterologous Protein Production Using Automated Microbioreactor Technology

Generic-Protocol voor optimalisatie van heterologe eiwitproductie met behulp van geautomatiseerde Microbioreactor technologie

A core business in industrial biotechnology using microbial production cell factories is the iterative process of strain engineering and optimization of ...

Microdissection of Primary Renal Tissue Segments and Incorporation with Novel Scaffold-free Construct Technology

Microdissection van primaire renale weefsel segmenten en integratie met nieuwe steiger-vrije constructie technologie

Kidney transplantation is now a mainstream therapy for end-stage renal disease. However, with approximately 96,000 people on the waiting list and only ...

Isolation and Decellularization of a Whole Porcine Pancreas

Isolatie en Decellularization van een hele varkens alvleesklier

Tissue engineering of the whole pancreas can improve current treatments for diabetes mellitus. The ultimate goal is to tissue engineer pancreas from an ...

High-resolution Imaging of Nuclear Dynamics in Live Cells under Uniaxial Tensile Strain

Hoge-resolutie beeldvorming van kern dynamiek in levende cellen onder Éénassige trekspanning

Extracellular mechanical strain is known to elicit cell phenotypic responses and has physiological relevance in several tissue systems. To capture the ...

Encapsulated Cell Technology for the Delivery of Biologics to the Mouse Eye

Ingekapselde celtechnologie voor de levering van biologics aan het muisoog

Many current therapeutics under development for diseases of the posterior pole of the eye are biologics. These drugs need to be administered frequently, ...

Pancreatic Tissue-Derived Extracellular Matrix Bioink for Printing 3D Cell-Laden Pancreatic Tissue Constructs

Pancreatic weefsel-afgeleide extracellulaire matrix Bioink voor het afdrukken van 3D Cell-beladen alvleesklier weefsel constructies

The transplantation of pancreatic islets is a promising treatment for patients who suffer from type 1 diabetes accompanied by hypoglycemia and secondary ...