Name: injection of porcine adipose tissue-derived stroma cells via waterjet technology
Uploaded: 2021-11-23T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology at JoVE.com

Vi takker våre medforfattere fra de opprinnelige publikasjonene for deres hjelp og støtte.

Porcine fettvevsprøvene ble hentet fra Institutt for eksperimentell kirurgi ved Universitetet i Tuebingen. Alle prosedyrer ble godkjent av lokale dyrevelferdsmyndigheter under dyreforsøksnummer CU1/16.
1. Isolering av svine fettvevsavledede stromalceller
<ol><li>Bruk porcin fettvev levert fra Institutt for eksperimentell kirurgi i et 50 ml sentrifugerør til laboratoriet.</li>
	<li>Overfør vevet til en steril Petri-tallerken under den sterile benken og hakk det med to ska...

I den nåværende studien demonstrerte og presenterte vi en trinnvis tilnærming for WJ-celleleveringsprosedyren og brukte en oppfølger av kvantitative undersøkelser for å vurdere effekten av WJ-levering på cellulære egenskaper: cellulær levedyktighet og biomekaniske egenskaper (dvs. EM). Etter WJ-injeksjon var 85,9% av de høstede cellene levedyktige. Når det gjelder WN-injeksjon, beholdt 97,2% av cellene sin levedyktighet etter injeksjon. Dermed oppfyller WJ-tilnærmingen et absolutt krav til en klinisk implemen...

Urininkontinens (UI) er en utbredt lidelse med en prevalens på 1,8 - 30,5% i europeiske populasjoner1 og er hovedsakelig preget av funksjonsfeil i urinrørssfinkteren. Fra et klinisk perspektiv tilbys kirurgisk behandling ofte til pasienter når konservative terapier eller fysioterapi ikke klarer å adressere og lindre de fremvoksende symptomene.
Celleterapi for potensiell regenerativ reparasjon av sphincterkompleksfeilen har dukket opp som en avantgarde-tilnærming for behandling av UI-patologi 2,3. Hovedmålene er å erstatte, reparere og gjenopprette den biologiske funksjonaliteten til det skadede vevet. I dyremodeller for UI har stamcelletransplantasjon vist lovende resultater i urodynamiske utfall 2,4,5. Stamceller oppstår som optimale cellulære kandidater som de har evnen til å gjennomgå selvfornyelse og multipotent differensiering, og dermed hjelpe den berørte vev regenerering6. Til tross for det kommende regenerative potensialet, forblir den praktiske bruken av celleterapi hindret, da minimal invasiv levering av celler fortsatt står overfor flere utfordringer med hensyn til injeksjonspresisjon og dekning av målet. Selv om den nåværende tilnærmingen som brukes til cellelevering er injeksjon gjennom et sprøytesystem7, resulterer det vanligvis i et samlet underskudd av levedyktige celler, med rapporterte viaevner så lave som 1%- 31% etter transplantasjon8. I tillegg har cellelevering via nåleinjeksjon også vist seg å påvirke plasseringen, oppbevaringsgraden, samt distribusjon av transplanterte celler i det målrettede vevet 9,10,11. En gjennomførbar, ny tilnærming som overvinner ovennevnte begrensning er nålfri cellelevering via vannstråleteknologi.
Waterjet (WJ) teknologi dukker opp som en ny tilnærming som muliggjør høy gjennomstrømning levering av celler ved cystoskop under visuell kontroll i urinrør sphincter12,13. WJ muliggjør cellelevering ved ulike trykk (E = effekter i bar) fra E5 til E8013. I den første fasen påføres (vevsinntrengningsfase) isotonisk løsning med høyt trykk (dvs. E60 eller E80) for å løsne den ekstracellulære matrisen rundt vevet som er målrettet og åpne små sammenkoblede mikro-laktuna. I den andre fasen (injeksjonsfasen) senkes trykket innen millisekunder (dvs. opp til E10) for å forsiktig levere cellene inn i det målrettede vevet. Etter denne to trinnfaseapplikasjonen blir cellene ikke utsatt for ekstra trykk mot vevet når de kastes ut, men flyter i en lavtrykksstrøm inn i et væskefylt huleområde13. I en ex vivo modell setting hvor stamceller ble injisert via WJ i kadaverisk urinrør vev, levedyktige celler kunne etterpå aspireres og hentes fra vevet og ytterligere utvidet in vitro13. Selv om en studie fra 2020 av Weber et al. demonstrerte WJs gjennomførbarhet og anvendbarhet for å levere fotavtrykkfrie kardiomyocytter inn i myokardiet14, må den tas i betraktning at WJ-teknologien fortsatt er i et prototypestadium.
Følgende protokoll beskriver hvordan du klargjør og merker porcin fettvevsavledede stromalceller (pADSC) og hvordan du leverer dem til fangstvæske og kadavervev via WJ-teknologi og Williams cystoskopinåler (WN). Post cellulær injeksjon vurderes cellulær vitalitet og elastisitet via atomkraftmikroskopi (AFM). Via trinnvise instruksjoner gir protokollen en klar og kortfattet tilnærming for å skaffe pålitelige data. Diskusjonsdelen presenterer og beskriver teknikkens store fordeler, begrensninger og fremtidsperspektiver. WJ-leveransen av celler samt oppfølgeren postoversettelsesanalyser rapportert her erstatter standard nåleinjeksjon og gir et solid celleleveringsrammeverk for regenerativ helbredelse av målvevet. I våre nylige studier ga vi bevis for at WJ leverte celler mer presist og i det minste i sammenlignbar levedyktighet sammenlignet med nåleinjeksjoner15,16.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>50 mL centrifuge tube</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>227261</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL BD Luer-LokTM Syringe</td>
			<td>BD Plastik Inc</td>
			<td>n.a.</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 &#181;m cell sieve</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>542000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 mL centrifuge tube</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>188271</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>75 cm2 tissue culture flask</td>
			<td>Corning Incorporated</td>
			<td>353136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM head</td>
			<td>(CellHesion 200) JPK</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM processing software</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM software</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM system Cell Hesion 200</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>All-In-One-Al cantilever</td>
			<td>Budget Sensors</td>
			<td>AIO-10</td>
			<td>tip A, Conatct Mode, Shape: Beam 
			Force Constant: 0.2 N/m (0.04 - 0.7 N/m) 
			Resonance Frequency: 15 kHz (10 - 20 kHz) 
			Length: 500 &#181;m (490 - 510 &#181;m) 
			Width: 30 &#181;m (35 - 45 &#181;m) 
			Thickness: 2.7 &#181;m (1.7 - 3.7 &#181;m)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amphotericin B solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A2942</td>
			<td>250 &#181;g/ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atomic Force Microscope (AFM)</td>
			<td>CellHesion 200, JPK Instruments, Berlin, Germany</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Microlance 3 18G</td>
			<td>BD</td>
			<td>304622</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bovine serum albumin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A10008-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cantilever</td>
			<td>&#160;All-In-One-AleTl, Budget Sensors, Sofia, Bulgaria</td>
			<td>AIO-TL-10</td>
			<td>tip A, k &#188; 0.2 N/m</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-chip disposable hemocytometer</td>
			<td>NanoEnTek</td>
			<td>631-1098</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>centrifuge: Rotina 420R</td>
			<td>Hettich Zentrifugen</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase, Type I, powder</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17100-017</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8217;s Modified Eagle&#8217;s Medium - low glucose</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D5546</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Feather disposable scalpel (No. 10)</td>
			<td>Feather</td>
			<td>02.001.30.010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>F7524</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES sodium salt solution (1 M)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H3662</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted phase contrast microscope (Integrated with AFM)</td>
			<td>AxioObserver D1, Carl Zeiss Microscopy, Jena, Germany</td>
			<td>L201306_03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>laboratory bags</td>
			<td>Brand</td>
			<td>759705</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 medium without l-glutamine</td>
			<td>Merck</td>
			<td>F1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 medium without L-glutamine</td>
			<td>(Merck KGaA, Darmstadt, Germany)</td>
			<td>F1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>BE 17-605C1</td>
			<td>200 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LIVE/DEADTM Viability/Cytotoxicity Kit</td>
			<td>Invitrogen by Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>L3224</td>
			<td>Calcein AM and EthD-1 are used from this kit.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope software: Zen 2.6</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope: AxioVertA.1</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nelaton-Catheter female</td>
			<td>Bicakcilar</td>
			<td>19512051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140-122</td>
			<td>10000 U/ml Penicillin 
			10000 &#181;g/ml Streptomycin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish heater associated with AFM</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>T-05-0117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish heater associated with AFM</td>
			<td>JPK Instruments AG, Berlin, Germany</td>
			<td>T-05-0117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline (PBS)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Statistical Software: SPSS Statistics 22</td>
			<td>IBM</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Petri dish - CellStar</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>664160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture dishes</td>
			<td>TPP AG</td>
			<td>TPP93040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture dishes</td>
			<td>TPP Techno Plastic Products AG, Trasadingen, Switzerland</td>
			<td>TPP93040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan Blue 0.4% 
			0.85% NaCl</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>17-942E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin-EDTA solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T3924</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Waterjet: ERBEJET2 device</td>
			<td>Erbe Elektromedizin GmbH</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Williams Cystoscopic Injection Needle</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td>G14220</td>
			<td>23G, 5.0 Fr, 35 cm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

injection of porcine adipose tissue-derived stroma cells via waterjet technology

Urininkontinens (UI) er en svært utbredt tilstand preget av mangelen på urinrørssfinktermuskelen. Regenerative medisingrener, spesielt celleterapi, er nye tilnærminger for å forbedre og gjenopprette urinrørssfinkterfunksjonen. Selv om injeksjon av aktive funksjonelle celler rutinemessig utføres i kliniske omgivelser med nål og sprøyte, har disse tilnærmingene betydelige ulemper og begrensninger. I denne sammenhengen er nålfri waterjet (WJ)-teknologi en gjennomførbar og innovativ metode som kan injisere levedyktige celler ved visuell guidet cystoskopi i urinrørssfinkteren. I den nåværende studien brukte vi WJ til å levere svine fettvevsavledede stromale celler (pADSCer) i kadaverisk urinrørsvev og undersøkte deretter effekten av WJ-levering på celleutbytte og levedyktighet. Vi vurderte også de biomekaniske egenskapene (dvs. elastisitet) ved målinger av atomkraftmikroskopi (AFM). Vi viste at WJ leverte pADSCer ble betydelig redusert i deres cellulære elastisitet. Levedyktigheten var betydelig lavere sammenlignet med kontroller, men er fortsatt over 80%.

Etter cellelevering via de to tilnærmingene var levedyktigheten til celler levert gjennom WN (97,2 ± 2 %, n=10, p<0,002) høyere sammenlignet med injeksjoner av WJ ved hjelp av E60-10-innstillingene (85,9 ± 0,16 %, n=12) (figur 2). Biomekaniske vurderingsresultater viste at: WN-injeksjoner av celler i fangstvæske viste ingen signifikant forskjell med hensyn til elastisk moduli (EM; 0,992 kPa) sammenlignet med kontrollene (1,176 kPa; figur 3A), mens WJ-injeks...

Watch this Scientific Journal Video about Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology at JoVE.com

Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology

Vi presenterer en metode for celleinjeksjon via nålfri vannjetteknologi kombinert med en oppfølger av undersøkelser etter levering når det gjelder cellulær levedyktighet, spredning og elastisitetsmålinger.

Injeksjon av porcin adipose vev-avledede stromaceller via Waterjet Technology

Urinary incontinence (UI) is a highly prevalent condition characterized by the deficiency of the urethral sphincter muscle. Regenerative medicine ...

Waterjet injeksjoner av aktive komponenter, som væsker, nanopartikler, mikropartikler, innkapslede legemidler, eller til og med levende celler kan brukes mye mer presis sammenlignet med nåleinjeksjoner i forskjellige vev målrettet. Minimalt invasive tilnærminger krever presis lokalisering av medisinen i forhåndsbestemte lag av det målrettede vevet ved å forhåndsvelge injeksjonstrykk. Vårt nåværende fokus er celleterapi for urininkontinens.Imidlertid har denne teknikken allerede blitt utvidet til regenerering av infisert muskelvev etter alvorlige hjerteinfarkt. For tiden kan teknikken bare brukes av erfarne forskere eller lisensierte leger i prekliniske studier. Det er ikke ment å brukes i rutinemessige laboratorieprosedyrer da det er utviklet for fremtidige kliniske formål.Til å begynne med, plasser urinrøret med forbindelsesblæren dissekert fra en voksen kvinnelig landrace gris på en svamp som etterligner elastisiteten til det nedre bekkenbunnen. Deretter bruker blæren, bestem retningen av urinrøret. Dette er mulig på grunn av lokalisering av urinlederen og de tre leddbåndene, som fikser blæren i buk- og bekkenhulen.Etter riktig orientering av urinrøret, kutt det opp langsgående på dorsalsiden ved hjelp av et kateter. Etter å ha justert celletettheten til svine fettvevsavledede stromalceller til 2,4 ganger 10 til de sjette cellene per milliliter, merk cellene med en grønn fluorescerende membrangjennomtrengelig levende celleflekk, og aspirer deretter celleopphenget med sprøyten og påfør Williams cytoskopisk injeksjonsnål. Deretter holder du nålen kort tid over de to milliliter vekstmediene i et 15 milliliter sentrifugeringsrør eller setter nålen inn i det åpne urinrøret.I begge tilfeller injiserer du manuelt 250 mikroliter av cellefjæringen. Celler injisert i urinrøret fra en injeksjon kuppel. Samle cellene injisert i media direkte ved sentrifugering.For celler som injiseres i urinrøret, aspirer dem ut av injeksjonskuppelen med en 18 gauge nål påført på en sprøyte. Overfør de aspirerte cellene til et sentrifugeringsrør og pellet dem ved sentrifugering. Resuspend begge cellepellets i fire milliliter vekstmedier.For å bestemme celleutbytte og levedyktighet, bland 20 av celleopphenget grundig med 20 mikroliter trypanblå. Fyll deretter 10 mikroliter av denne blandingen i hvert kammer av hemocytometeret. Under et mikroskop teller cellene i alle fire hjørne firkanter.Tell de unstained hvite cellene som levedyktige celler og de blå fargede cellene som døde celler, og beregn deretter cellenummeret per milliliter. For injeksjoner via vannjet, juster tettheten av svine fettvevsavledede stromalceller til seks ganger 10 til sjette celler per milliliter. Merk dem som vist tidligere, og fyll cellefjæringen inn i doseringsenheten til den nålefrie vannjetenheten.Hold deretter injeksjonsdysen kort over de to milliliter vekstmediene i et 15 milliliter sentrifugeringsrør eller kort over det åpne urinrøret. I begge tilfeller injiserer du 100 mikroliter av cellefjæringen. Bruk høyt trykk for vev penetrasjon etterfulgt av en lavtrykksfase for celleinjeksjoner.Celler injisert i urinrøret danner en injeksjon kuppel. Samle celler injisert i media direkte ved sentrifugering. For celler som injiseres i urinrøret, aspirer dem ut av injeksjonskuppelen.Overfør de aspirerte cellene til et sentrifugeringsrør, og pellet dem ved hjelp av sentrifugering som vist tidligere. Etter sentrifugering, resuspend begge pellets i fire milliliter vekstmedier. Frø cellene hentet etter injeksjoner i vev kultur retter med en tetthet på fem ganger 10 til femte celler per tallerken.Etter en tre timers inkubasjon ved 37 grader Celsius, og rett før AFM-målingen, erstatt vekstmediene med tre milliliter Leibovitz's L-15 media uten L-glutamin. For å måle elastisiteten til individuelle celler, identifiser visuelt en celle og fokuser på den. Plasser deretter datamusen midt i cellen og for å forbedre målepresisjonen, plasser AFM-spissen rett over cellekjernen.Deretter fokuserer du på cantilever og flytter den på datamusen. Start deretter målingen med løping og mål minst 50 celler. Set point-parameteren oppnådd ved kalibrering av cantilever brukes og en celle måles tre ganger.Levedyktigheten til celler levert gjennom Williams-nålen var høyere enn injeksjoner av vannbeholderen ved hjelp av E60-10-innstillingene. Biomekanisk vurdering av injeksjoner i fangstvæsken viste at Williams nåleinjeksjoner ikke viste noen signifikant forskjell i den elastiske modulen sammenlignet med kontroller, mens waterjet-injeksjonene reduserte den cellulære elastiske modulen betydelig med 40 til 50%Tilsvarende, i kadaveriske urinrørsvevsprøver, ga Williams nåleinjeksjoner ingen signifikant forskjell i cellulær elastisk moduli sammenlignet med kontroller. Imidlertid ble det observert en betydelig reduksjon på 51%etter vannjetinjeksjoner.Man må bare sørge for at nåleinjeksjonene ikke trenger helt inn i vevet som påfører skade. Med waterjet må man bare plassere enheten i riktig posisjon i injeksjonsområdet mens resten automatisk gjøres av selve enheten. Ettersom waterjet-enheten ble utviklet for å matche og passe inn i endoskopiske enheter, kan du bruke waterjet-applikasjonene for ethvert sted i kroppen som kan nås av disse cystoskopiske eller endoskopiske teknologiene for å regenerere vev og gjøre reparasjonsjobben.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Transplantation of Induced Pluripotent Stem Cell-derived Mesoangioblast-like Myogenic Progenitors in Mouse Models of Muscle Regeneration

Transplantasjon av indusert pluripotent stamcelle-avledet Mesoangioblast-lignende myogene forfedre i musemodeller av muskelregenerering

Patient-derived iPSCs could be an invaluable source of cells for future autologous cell therapy protocols. iPSC-derived myogenic stem/progenitor cells ...

Human Cartilage Tissue Fabrication Using Three-dimensional Inkjet Printing Technology

Menneskelig bruskvev Fabrication Bruke Tredimensjonal Inkjet Printing Technology

Bioprinting, which is based on thermal inkjet printing, is one of the most attractive enabling technologies in the field of tissue engineering and ...

An Injectable and Drug-loaded Supramolecular Hydrogel for Local Catheter Injection into the Pig Heart

En injeksjon and Drug lastet Supramolecular hydrogel for Lokal kateter Injeksjon i Pig Hjerte

Regeneration of lost myocardium is an important goal for future therapies because of the increasing occurrence of chronic ischemic heart failure and the ...

Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering

Isolering av Murine fettvev-avledet mikrovaskulær Fragmenter som vaskularisering Enheter for Tissue Engineering

A functional microvascular network is of pivotal importance for the survival and integration of engineered tissue constructs. For this purpose, several ...

Generic Protocol for Optimization of Heterologous Protein Production Using Automated Microbioreactor Technology

Generisk protokoll for optimalisering av Heterologous Protein produksjonen ved hjelp av automatisert Microbioreactor teknologi

A core business in industrial biotechnology using microbial production cell factories is the iterative process of strain engineering and optimization of ...

Microdissection of Primary Renal Tissue Segments and Incorporation with Novel Scaffold-free Construct Technology

Microdissection av primære nyre vev segmenter og innlemmelse med romanen stillaset-fri konstruksjon teknologi

Kidney transplantation is now a mainstream therapy for end-stage renal disease. However, with approximately 96,000 people on the waiting list and only ...

Isolation and Decellularization of a Whole Porcine Pancreas

Isolasjon og Decellularization av en helt svin bukspyttkjertelen

Tissue engineering of the whole pancreas can improve current treatments for diabetes mellitus. The ultimate goal is to tissue engineer pancreas from an ...

High-resolution Imaging of Nuclear Dynamics in Live Cells under Uniaxial Tensile Strain

Høyoppløselig bilde av Nuclear Dynamics i levende celler under Uniaxial strekk belastning

Extracellular mechanical strain is known to elicit cell phenotypic responses and has physiological relevance in several tissue systems. To capture the ...

Encapsulated Cell Technology for the Delivery of Biologics to the Mouse Eye

Innkapslet celleteknologi for levering av biologer til museøyet

Many current therapeutics under development for diseases of the posterior pole of the eye are biologics. These drugs need to be administered frequently, ...

Pancreatic Tissue-Derived Extracellular Matrix Bioink for Printing 3D Cell-Laden Pancreatic Tissue Constructs

Bukspyttkjertelen tissue-avledet ekstracellulære Matrix Bioink for utskrift 3D Cell-Laden bukspyttkjertelen vev konstruksjoner

The transplantation of pancreatic islets is a promising treatment for patients who suffer from type 1 diabetes accompanied by hypoglycemia and secondary ...