Name: injection of porcine adipose tissue-derived stroma cells via waterjet technology
Uploaded: 2021-11-23T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology at JoVE.com

Orijinal yayınlardan ortak yazarlarımıza yardım ve destekleri için teşekkür ederiz.

Domuz yağ dokusu örnekleri Tuebingen Üniversitesi Deneysel Cerrahi Enstitüsü'nden alındı. Tüm prosedürler yerel hayvan refahı yetkilileri tarafından CU1/16 hayvan deney numarası altında onaylanmıştır.
1. Domuz yağ dokusu kaynaklı stromal hücrelerin izolasyonu
<ol><li>Deneysel Cerrahi Enstitüsü'nden laboratuvara 50 mL'lik bir santrifüj tüpünde verilen domuz yağ dokusunu kullanın.</li>
	<li>Dokuyu steril tezgahın altındaki steril bir Petri kabına a...

Bu çalışmada, WJ hücre dağıtım prosedürü için adım adım bir yaklaşım gösterdik ve sunduk ve WJ dağıtımının hücresel özellikler üzerindeki etkisini değerlendirmek için nicel araştırmaların bir sekelini kullandık: hücresel canlılık ve biyomekanik özellikler (yani, EM). WJ enjeksiyonunu takiben, hasat edilen hücrelerin% 85.9'u yaşayabilirdi. WN enjeksiyonu açısından, hücrelerin% 97.2'si enjeksiyondan sonra canlılıklarını korudu. Bu nedenle, WJ yaklaşımı klinik bir uygulama için...

Üriner inkontinans (UI), Avrupa popülasyonlarında prevalansı %1.8-30.5 arasında değişen yaygın bir hastalıktır1 ve öncelikle üretral sfinkterin fonksiyon bozukluğu ile karakterizedir. Klinik açıdan bakıldığında, cerrahi tedavi genellikle konservatif tedaviler veya fizyoterapi ortaya çıkan semptomları ele almadığında ve hafifletemediğinde hastalara sunulmaktadır.
Sfinkter kompleksi fonksiyon bozukluğunun potansiyel rejeneratif onarımı için hücre tedavisi, UI patolojisinin tedavisinde avangard bir yaklaşım olarak ortaya çıkmaktadır 2,3. Başlıca hedefleri, hasarlı dokunun biyolojik işlevselliğini değiştirmek, onarmak ve geri kazanmaktır. UI için hayvan modellerinde, kök hücre nakli ürodinamik sonuçlarda umut verici sonuçlar göstermiştir 2,4,5. Kök hücreler, kendini yenileme ve çok güçlü farklılaşma geçirme yeteneğine sahip oldukları için optimal hücresel adaylar olarak ortaya çıkarlar, böylece etkilenen doku yenilenmesine yardımcıolurlar 6. Yaklaşan rejeneratif potansiyele rağmen, hücre tedavisinin pratik kullanımı, hücrelerin minimal invaziv olarak verilmesi, enjeksiyon hassasiyeti ve hedefin kapsamı ile ilgili çeşitli zorluklarla karşı karşıya kaldığı için engellenmektedir. Hücre iletimi için kullanılan mevcut yaklaşım bir iğne-şırınga sistemi7 yoluyla enjeksiyon olsa da, genellikle transplantasyon sonrası% 1 -% 31 kadar düşük bildirilen canlılıklarla, genel olarak canlı hücrelerin eksikliğine neden olur8. Ek olarak, iğne enjeksiyonu yoluyla hücre iletiminin, yerleştirmeyi, tutma oranını ve nakledilen hücrelerin hedeflenen dokuya dağılımını etkilediği gösterilmiştir 9,10,11. Yukarıda belirtilen sınırlamanın üstesinden gelen uygulanabilir, yeni bir yaklaşım, su jeti teknolojisi ile iğnesiz hücre dağıtımıdır.
Su jeti (WJ) teknolojisi, üretral sfinkter12,13'te görsel kontrol altında sistoskop ile hücrelerin yüksek verimli bir şekilde verilmesini sağlayan yeni bir yaklaşım olarak ortaya çıkmaktadır. WJ, E5 ila E8013 arasında değişen farklı basınçlarda (E = çubuktaki etkiler) hücre iletimini sağlar. İlk aşamada, hedeflenen dokuyu çevreleyen hücre dışı matrisi gevşetmek ve birbirine bağlanan küçük mikro lakunayı açmak için yüksek basınçla (yani E60 veya E80) izotonik çözelti uygulanır. İkinci aşamada (enjeksiyon aşaması), hücreleri hedeflenen dokuya nazikçe iletmek için basınç milisaniyeler içinde (yani E10'a kadar) düşürülür. Bu iki aşamalı faz uygulamasını takiben, hücreler dışarı atıldığında dokuya karşı ek basınca maruz kalmazlar, ancak düşük basınçlı bir akışta sıvı dolu bir kavernöz alanayüzerler 13. Kök hücrelerin WJ yoluyla kadavra üretra dokusuna enjekte edildiği bir ex vivo model ortamında, canlı hücreler daha sonra aspire edilebilir ve dokudan alınabilir ve in vitro13 daha da genişletilebilir. Weber ve ark. tarafından yapılan bir 2020 çalışması, WJ'nin miyokard14'e ayak izi içermeyen kardiyomiyositler vermek için fizibilitesini ve uygulanabilirliğini göstermiş olsa da, WJ teknolojisinin hala prototip aşamasında olduğu akılda tutulmalıdır.
Aşağıdaki protokol, domuz yağ dokusundan türetilmiş stromal hücrelerin (pADSC) nasıl hazırlanacağını ve etiketleneceğini ve bunların WJ teknolojisi ve Williams sistoskopi iğneleri (WN) aracılığıyla yakalama sıvısı ve kadavra dokusuna nasıl iletileceğini açıklamaktadır. Hücresel enjeksiyon sonrası, atomik kuvvet mikroskobu (AFM) ile hücresel canlılık ve elastikiyet değerlendirilir. Adım adım talimatlar aracılığıyla, protokol güvenilir veriler elde etmek için açık ve özlü bir yaklaşım sunar. Tartışma bölümü, tekniğin başlıca avantajlarını, sınırlamalarını ve gelecekteki perspektiflerini sunar ve açıklar. Hücrelerin WJ dağıtımı ve burada bildirilen sekel sonrası çeviri analizleri, standart iğne enjeksiyonunun yerini almakta ve hedef dokunun rejeneratif iyileşmesi için katı hücre dağıtım çerçevesi sağlamaktadır. Son çalışmalarımızda, WJ'nin iğne enjeksiyonlarına kıyasla hücreleri daha kesin ve en azından karşılaştırılabilir canlılıkta verdiğine dair kanıtlar sağladık15,16.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>50 mL centrifuge tube</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>227261</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL BD Luer-LokTM Syringe</td>
			<td>BD Plastik Inc</td>
			<td>n.a.</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 &#181;m cell sieve</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>542000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15 mL centrifuge tube</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>188271</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>75 cm2 tissue culture flask</td>
			<td>Corning Incorporated</td>
			<td>353136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM head</td>
			<td>(CellHesion 200) JPK</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM processing software</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM software</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AFM system Cell Hesion 200</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>All-In-One-Al cantilever</td>
			<td>Budget Sensors</td>
			<td>AIO-10</td>
			<td>tip A, Conatct Mode, Shape: Beam 
			Force Constant: 0.2 N/m (0.04 - 0.7 N/m) 
			Resonance Frequency: 15 kHz (10 - 20 kHz) 
			Length: 500 &#181;m (490 - 510 &#181;m) 
			Width: 30 &#181;m (35 - 45 &#181;m) 
			Thickness: 2.7 &#181;m (1.7 - 3.7 &#181;m)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amphotericin B solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A2942</td>
			<td>250 &#181;g/ml</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atomic Force Microscope (AFM)</td>
			<td>CellHesion 200, JPK Instruments, Berlin, Germany</td>
			<td>JPK00518</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Microlance 3 18G</td>
			<td>BD</td>
			<td>304622</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>bovine serum albumin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A10008-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cantilever</td>
			<td>&#160;All-In-One-AleTl, Budget Sensors, Sofia, Bulgaria</td>
			<td>AIO-TL-10</td>
			<td>tip A, k &#188; 0.2 N/m</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-chip disposable hemocytometer</td>
			<td>NanoEnTek</td>
			<td>631-1098</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>centrifuge: Rotina 420R</td>
			<td>Hettich Zentrifugen</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Collagenase, Type I, powder</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17100-017</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dulbecco&#8217;s Modified Eagle&#8217;s Medium - low glucose</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>D5546</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Feather disposable scalpel (No. 10)</td>
			<td>Feather</td>
			<td>02.001.30.010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>F7524</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES sodium salt solution (1 M)</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>H3662</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted phase contrast microscope (Integrated with AFM)</td>
			<td>AxioObserver D1, Carl Zeiss Microscopy, Jena, Germany</td>
			<td>L201306_03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>laboratory bags</td>
			<td>Brand</td>
			<td>759705</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 medium without l-glutamine</td>
			<td>Merck</td>
			<td>F1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#39;s L-15 medium without L-glutamine</td>
			<td>(Merck KGaA, Darmstadt, Germany)</td>
			<td>F1315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>BE 17-605C1</td>
			<td>200 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LIVE/DEADTM Viability/Cytotoxicity Kit</td>
			<td>Invitrogen by Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>L3224</td>
			<td>Calcein AM and EthD-1 are used from this kit.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope software: Zen 2.6</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope: AxioVertA.1</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nelaton-Catheter female</td>
			<td>Bicakcilar</td>
			<td>19512051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140-122</td>
			<td>10000 U/ml Penicillin 
			10000 &#181;g/ml Streptomycin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish heater associated with AFM</td>
			<td>Bruker</td>
			<td>T-05-0117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dish heater associated with AFM</td>
			<td>JPK Instruments AG, Berlin, Germany</td>
			<td>T-05-0117</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline (PBS)</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10010-015</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Statistical Software: SPSS Statistics 22</td>
			<td>IBM</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Petri dish - CellStar</td>
			<td>Greiner BioOne</td>
			<td>664160</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture dishes</td>
			<td>TPP AG</td>
			<td>TPP93040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture dishes</td>
			<td>TPP Techno Plastic Products AG, Trasadingen, Switzerland</td>
			<td>TPP93040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan Blue 0.4% 
			0.85% NaCl</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>17-942E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypsin-EDTA solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>T3924</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Waterjet: ERBEJET2 device</td>
			<td>Erbe Elektromedizin GmbH</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Williams Cystoscopic Injection Needle</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td>G14220</td>
			<td>23G, 5.0 Fr, 35 cm</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

injection of porcine adipose tissue-derived stroma cells via waterjet technology

Üriner inkontinans (UI), üretral sfinkter kasının eksikliği ile karakterize oldukça yaygın bir durumdur. Rejeneratif tıp dalları, özellikle hücre tedavisi, üretral sfinkter fonksiyonunu iyileştirmek ve restore etmek için yeni yaklaşımlardır. Aktif fonksiyonel hücrelerin enjeksiyonu rutin olarak klinik ortamlarda iğne ve şırınga ile yapılsa da bu yaklaşımların önemli dezavantajları ve kısıtlılıkları vardır. Bu bağlamda, iğnesiz su jeti (WJ) teknolojisi, üretral sfinkterde görsel rehberli sistoskopi ile canlı hücreleri enjekte edebilen uygulanabilir ve yenilikçi bir yöntemdir. Bu çalışmada, domuz yağ dokusu kaynaklı stromal hücreleri (pADSC'ler) kadavra üretral dokusuna vermek için WJ'yi kullandık ve daha sonra WJ doğumunun hücre verimi ve canlılığı üzerindeki etkisini araştırdık. Ayrıca biyomekanik özellikleri (yani elastikiyeti) atomik kuvvet mikroskobu (AFM) ölçümleri ile değerlendirdik. WJ tarafından verilen pADSC'lerin hücresel elastikiyetlerinde önemli ölçüde azaldığını gösterdik. Canlılık kontrollere kıyasla önemli ölçüde daha düşüktü, ancak hala% 80'in üzerinde.

İki yaklaşımla hücre dağıtımını takiben, WN yoluyla verilen hücrelerin yaşayabilirliği (97.2 ±% 2, n = 10, p <0.002), E60-10 ayarları (85.9 ±% 0.16, n = 12) kullanılarak WJ tarafından yapılan enjeksiyonlara kıyasla daha yüksekti (Şekil 2). Biyomekanik değerlendirme sonuçları şunu göstermiştir: Yakalama sıvısındaki hücrelerin WN enjeksiyonları, kontrollere (1.176 kPa; 0.176 kPa; Şekil 3A), WJ enjeksiyonları hücresel EM'de öneml...

Watch this Scientific Journal Video about Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology at JoVE.com

Injection of Porcine Adipose Tissue-Derived Stroma Cells via Waterjet Technology

İğnesiz su jeti teknolojisi ile hücre enjeksiyonu yöntemini, hücresel canlılık, proliferasyon ve elastikiyet ölçümleri açısından doğum sonrası araştırmaların bir sekeli ile birlikte sunuyoruz.

Domuz Yağ Dokusundan Türemiş Stroma Hücrelerinin Su Jeti Teknolojisi ile Enjeksiyonu

Urinary incontinence (UI) is a highly prevalent condition characterized by the deficiency of the urethral sphincter muscle. Regenerative medicine ...

Sıvılar, nanopartiküller, mikropartiküller, kapsüllenmiş ilaçlar ve hatta canlı hücreler gibi aktif bileşenlerin su jeti enjeksiyonları, hedeflenen farklı dokulardaki iğne enjeksiyonlarına kıyasla çok daha hassas bir şekilde uygulanabilir. Minimal invaziv yaklaşımlar, enjeksiyon basınçlarını önceden seçerek ilacın hedeflenen dokunun önceden belirlenmiş katmanlarında hassas lokalizasyonunu gerektirir. Şu anki odak noktamız üriner inkontinans için hücre tedavisidir.Bununla birlikte, bu teknik zaten ciddi kalp krizlerinden sonra enfekte kas dokusunun yenilenmesine kadar genişletilmiştir. Şu anda, teknik sadece klinik öncesi çalışmalarda deneyimli araştırmacılar veya lisanslı doktorlar tarafından uygulanabilir. Gelecekteki klinik amaçlar için geliştirildiği için rutin laboratuvar prosedürlerinde kullanılması amaçlanmamıştır.Başlamak için, üretrayı, yetişkin bir dişi landrace domuzundan disseke edilmiş bağlantı mesanesi ile alt pelvik tabanın elastikiyetini taklit eden bir sünger üzerine yerleştirin. Daha sonra mesaneyi kullanarak, üretranın oryantasyonunu belirleyin. Bu, üreterin lokalizasyonu ve mesaneyi karın ve pelvik boşlukta sabitleyen üç ligament nedeniyle mümkündür.Üretrayı doğru bir şekilde yönlendirdikten sonra, bir kateter yardımıyla dorsal tarafta uzunlamasına açın. Domuz yağı dokusundan türetilmiş stromal hücrelerin hücre yoğunluğunu mililitre başına altıncı hücrelere 2.4 kat 10 ila 2.4 kez ayarladıktan sonra, hücreleri yeşil floresan membran geçirgen canlı hücre lekesi ile etiketleyin, ardından hücre süspansiyonunu şırınga ile aspire edin ve Williams sitoskopik enjeksiyon iğnesini uygulayın. Daha sonra, iğneyi 15 mililitrelik bir santrifüj tüpünde iki mililitre büyüme ortamının biraz üzerinde tutun veya iğneyi açık üretra dokusuna yerleştirin.Her iki durumda da, hücre süspansiyonunun 250 mikrolitresini manuel olarak enjekte edin. Bir enjeksiyon kubbesinden kadavra üretraya enjekte edilen hücreler. Santrifüjleme yoluyla doğrudan ortama enjekte edilen hücreleri toplayın.Kadavra üretraya enjekte edilen hücreler için, bir şırınga üzerine uygulanan 18 gauge iğne ile enjeksiyon kubbesinden aspire edin. Aspire edilen hücreleri bir santrifüjleme tüpüne aktarın ve santrifüjleme yoluyla pelet edin. Her iki hücre peletini de dört mililitre büyüme ortamında yeniden askıya alın.Hücre verimini ve canlılığını belirlemek için, hücre süspansiyonunun 20'sini 20 mikrolitre tripan mavisi ile iyice karıştırın. Daha sonra hemositometrenin her odasına bu karışımın 10 mikrolitresini doldurun. Mikroskop altında dört köşe karesinin tümündeki hücreleri sayın.Lekesiz beyaz hücreleri canlı hücreler ve mavi lekeli hücreleri ölü hücreler olarak sayın, ardından mililitre başına hücre sayısını hesaplayın. Su jeti yoluyla enjeksiyonlar için, domuz yağ dokusundan türetilmiş stromal hücrelerin yoğunluğunu mililitre başına altı kat 10 ila altıncı hücrelere ayarlayın. Bunları daha önce gösterildiği gibi etiketleyin ve hücre süspansiyonunu iğnesiz su jeti cihazının dozaj ünitesine doldurun.Daha sonra enjeksiyon nozulunu 15 mililitrelik bir santrifüjleme tüpünde iki mililitre büyüme ortamının kısa bir süre üzerinde veya açık üretra dokusunun kısa bir süre üzerinde tutun. Her iki durumda da, hücre süspansiyonunun 100 mikrolitresini enjekte edin. Doku penetrasyonu için yüksek basınç ve ardından hücre enjeksiyonları için düşük basınç fazı kullanın.Kadavra üretrayına enjekte edilen hücreler bir enjeksiyon kubbesi oluşturur. Doğrudan santrifüjleme yoluyla ortama enjekte edilen hücreleri toplayın. Kadavra üretraya enjekte edilen hücreler için, onları enjeksiyon kubbesinden aspire edin.Aspire edilen hücreleri bir santrifüjleme tüpüne aktarın ve daha önce gösterildiği gibi santrifüjleme kullanarak pelet edin. Santrifüjlemeden sonra, her iki peleti de dört mililitre büyüme ortamında yeniden askıya alın. Doku kültürü kaplarına enjeksiyonlardan sonra elde edilen hücreleri, çanak başına beş kat 10 ila beşinci hücre yoğunluğunda tohumlayın.37 santigrat derecede üç saatlik bir inkübasyondan sonra ve AFM ölçümünden hemen önce, büyüme ortamını L-glutaminsiz üç mililitre Leibovitz'in L-15 ortamı ile değiştirin. Tek tek hücrelerin elastikiyetini ölçmek için, bir hücreyi görsel olarak tanımlayın ve ona odaklanın. Ardından bilgisayar faresini hücrenin ortasına yerleştirin ve ölçüm hassasiyetini artırmak için AFM ucunu doğrudan hücre çekirdeğinin üzerine yerleştirin.Ardından, konsola odaklanın ve bilgisayar faresinde hareket ettirin. Ardından ölçümü run ile başlatın ve en az 50 hücreyi ölçün. Konsol kalibrasyonu ile elde edilen ayar noktası parametresi kullanılır ve bir hücre üç kez ölçülür.Williams iğnesi yoluyla verilen hücrelerin yaşayabilirliği, E60-10 ayarlarını kullanarak su jeti tarafından yapılan enjeksiyonlardan daha yüksekti. Yakalama sıvısındaki enjeksiyonların biyomekanik değerlendirmesi, Williams iğne enjeksiyonlarının kontrollere kıyasla elastik modülde anlamlı bir fark göstermediğini, su jeti enjeksiyonlarının hücresel elastik modüli% 40 ila% 50 oranında önemli ölçüde azalttığını ortaya koymuştur Benzer şekilde, kadavra üretra doku örneklerinde, Williams iğne enjeksiyonları, kontrollere kıyasla hücresel elastik modülde anlamlı bir fark vermemiştir. Bununla birlikte, su jeti enjeksiyonlarından sonra% 51'lik önemli bir azalma gözlenmiştir.Kişi sadece iğne enjeksiyonlarının yaralanmaya neden olan dokuya tam olarak nüfuz etmediğinden emin olmalıdır. Su jeti ile, cihazı yalnızca enjeksiyon alanında doğru konuma yerleştirmek gerekirken, geri kalanı cihazın kendisi tarafından otomatik olarak yapılır. Su jeti cihazı endoskopik cihazlarla eşleşecek ve bunlara uyacak şekilde geliştirildiğinden, dokuları yenilemek ve onarım işini yapmak için bu sistoskopik veya endoskopik teknolojilerle ulaşılabilen vücudun herhangi bir bölgesi için su jeti uygulamalarını kullanabilirsiniz.

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Transplantation of Induced Pluripotent Stem Cell-derived Mesoangioblast-like Myogenic Progenitors in Mouse Models of Muscle Regeneration

Kas Yenilenmesinin Fare Modellerinde İndüklenmiş Pluripotent Kök Hücre türevi Mezoangioblast benzeri Miyojenik Progenitörlerin Nakli

Patient-derived iPSCs could be an invaluable source of cells for future autologous cell therapy protocols. iPSC-derived myogenic stem/progenitor cells ...

Human Cartilage Tissue Fabrication Using Three-dimensional Inkjet Printing Technology

Üç boyutlu Mürekkep Püskürtmeli Baskı Teknolojisi Kullanımı İnsan Kıkırdak Doku Fabrikasyon

Bioprinting, which is based on thermal inkjet printing, is one of the most attractive enabling technologies in the field of tissue engineering and ...

An Injectable and Drug-loaded Supramolecular Hydrogel for Local Catheter Injection into the Pig Heart

Domuz Kalbe Yerel Kateter Enjeksiyon için bir Enjekte ve İlaç yüklü Supramoleküler Hidrojel

Regeneration of lost myocardium is an important goal for future therapies because of the increasing occurrence of chronic ischemic heart failure and the ...

Isolation of Murine Adipose Tissue-derived Microvascular Fragments as Vascularization Units for Tissue Engineering

Doku Mühendisliği vaskülarizasyon Birimleri olarak Kemirgen Yağ Dokusu kaynaklı Mikrovasküler Parçalarının İzolasyonu

A functional microvascular network is of pivotal importance for the survival and integration of engineered tissue constructs. For this purpose, several ...

Generic Protocol for Optimization of Heterologous Protein Production Using Automated Microbioreactor Technology

Otomatik Microbioreactor teknolojisini kullanarak Contegra Protein üretim duruma getirilmesi için genel iletişim kuralı

A core business in industrial biotechnology using microbial production cell factories is the iterative process of strain engineering and optimization of ...

Microdissection of Primary Renal Tissue Segments and Incorporation with Novel Scaffold-free Construct Technology

Mikrodiseksiyon birincil böbrek doku parçaları ve roman iskele-Alerjik yapı teknolojisi ile birleşme

Kidney transplantation is now a mainstream therapy for end-stage renal disease. However, with approximately 96,000 people on the waiting list and only ...

Isolation and Decellularization of a Whole Porcine Pancreas

Yalıtım ve bütün domuz pankreas Decellularization

Tissue engineering of the whole pancreas can improve current treatments for diabetes mellitus. The ultimate goal is to tissue engineer pancreas from an ...

High-resolution Imaging of Nuclear Dynamics in Live Cells under Uniaxial Tensile Strain

Tek eksenli çekme gerinim altında canlı hücrelerde nükleer dinamiklerin yüksek çözünürlüklü görüntülenmesi

Extracellular mechanical strain is known to elicit cell phenotypic responses and has physiological relevance in several tissue systems. To capture the ...

Encapsulated Cell Technology for the Delivery of Biologics to the Mouse Eye

Fare Gözüne Biyolojik Teslim için Kapsüllü Hücre Teknolojisi

Many current therapeutics under development for diseases of the posterior pole of the eye are biologics. These drugs need to be administered frequently, ...

Pancreatic Tissue-Derived Extracellular Matrix Bioink for Printing 3D Cell-Laden Pancreatic Tissue Constructs

3D Hücre Yüklü Pankreas Dokusu Yapıları Baskı için Pankreas Doku Türetilmiş Ekstrasellüler Matrix Bioink

The transplantation of pancreatic islets is a promising treatment for patients who suffer from type 1 diabetes accompanied by hypoglycemia and secondary ...