Name: myocardial infarction by percutaneous embolization coil deployment in a swine model
Uploaded: 2021-11-04T13:00:00
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Nous exprimons notre gratitude au Centre de médecine comparée et de bioimagerie de Catalogne (CMCiB) et au personnel pour leur contribution à l’exécution du modèle animal. Ce travail a été soutenu par l’Instituto de Salud Carlos III (PI18/01227, PI18/00256, INT20/00052), la Sociedad Española de Cardiología et la Generalitat de Catalunya [2017-SGR-483]. Ces travaux ont également été financés par les projets Red de Terapia Celular - TerCel [RD16/0011/0006] et CIBER Cardiovascular [CB16/11/00403], dans le cadre du Plan Nacional de I+D+I, et cofinancés par l’ISCIII-Subdirección General de Evaluación y el Fondo Europeo de Desarrollo Regional (FEDER). Le Dr Fadeuilhe a reçu une subvention de la Société espagnole de cardiologie (Madrid, Espagne).

Cette étude a été approuvée par le Comité d’éthique de l’Unité d’expérimentation animale de l’Institut allemand de recherche en santé Trias i Pujol (IGTP) et les autorités gouvernementales (Generalitat de Catalunya; Code : 10558 et 11208), et se conforme à toutes les lignes directrices concernant l’utilisation des animaux dans la recherche et l’enseignement telles que définies par le Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire25.
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	<li>Khan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+epidemiology+of+ischemic+heart+disease:+Results+from+the+global+burden+of+disease+study.">Global epidemiology of ischemic heart disease: Results from the global burden of disease study.</a> Cureus. 12 (7), 9349 (2020).</li><li>Bhatt, A. S., Ambrosy, A. P., Velazquez, E. 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Cardiovascular Imaging. 4 (1), 98-108 (2011).</li><li>Srikanth, G., Prakash, P., Tripathy, N., Dikshit, M., Nityanand, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+a+rat+model+of+myocardial+infarction+with+a+high+survival+rate:+A+suitable+model+for+evaluation+of+efficacy+of+stem+cell+therapy.">Establishment of a rat model of myocardial infarction with a high survival rate: A suitable model for evaluation of efficacy of stem cell therapy.</a> Journal of Stem Cells and Regenerative Medicine. 5 (1), 30 (2009).</li><li>Wu, Y., Yin, X., Wijaya, C., Huang, M. -. H., McConnell, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+myocardial+infarction+in+rats.">Acute myocardial infarction in rats.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. 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G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+of+heart+failure.">Large animal models of heart failure.</a> Circulation: Heart Failure. 2 (3), 262-271 (2009).</li><li>G&#225;lvez-Mont&#243;n, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transposition+of+a+pericardial-derived+vascular+adipose+flap+for+myocardial+salvage+after+infarct.">Transposition of a pericardial-derived vascular adipose flap for myocardial salvage after infarct.</a> Cardiovascular Research. 91 (4), 659-667 (2011).</li><li>G&#225;lvez-Mont&#243;n, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+two+pre-clinical+myocardial+infarct+models:+coronary+coil+deployment+versus+surgical+ligation.">Comparison of two pre-clinical myocardial infarct models: coronary coil deployment versus surgical ligation.</a> Journal of Translational Medicine. 12, 137 (2014).</li><li>Domkowski, P. W., Hughes, G. C., Lowe, J. 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B., Campbell, A., Gahremanpour, A., McGarry, M., Opie, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+percutaneous+swine+model+of+myocardial+infarction.">A percutaneous swine model of myocardial infarction.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 53 (3), 256-263 (2006).</li><li>National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. , (2011).</li><li>Carter, C., Girod, D., Hurwitz, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Percutaneous+cardiac+catheterization+of+the+neonate.">Percutaneous cardiac catheterization of the neonate.</a> Pediatrics. 55 (5), 662-665 (1975).</li><li>Koudstaal, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarction+and+functional+outcome+assessment+in+pigs.">Myocardial infarction and functional outcome assessment in pigs.</a> Journal of Visualized Experiments JoVE. (86), e51269 (2014).</li><li>Kumar, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+myocardial+infarction:+Mainstay+in+clinical+translation.">Animal models of myocardial infarction: Mainstay in clinical translation.</a> Regulatory Toxicology And Pharmacology RTP. 76, 221-230 (2016).</li></ol>

Une bobine déployée dans une artère coronaire fournit un modèle préclinique d’IM non reperfusé reproductible et cohérent chez le porc qui peut être utilisé pour développer et tester de nouvelles stratégies thérapeutiques cardiovasculaires.
Entre nos mains, la mortalité au suivi était de 19% liée aux complications de l’IM, principalement dans les 24 premières heures de la procédure. Tous ces décès sont liés à l’histoire naturelle de l’IM non reperfusé et ont été ...

L’infarctus du myocarde (IM) est la cause la plus répandue de mortalité, de morbidité et d’invalidité dans le monde1. Malgré les progrès thérapeutiques actuels, une proportion importante de patients développent un remodelage ventriculaire indésirable et une insuffisance cardiaque progressive après l’IM, entraînant un mauvais pronostic en raison d’un dysfonctionnement ventriculaire et d’une mort subite 2,3,4. De nouvelles options thérapeutiques pour réparer et/ou régénérer le myocarde blessé font donc l’objet d’un examen minutieux, et les modèles animaux d’IM translationnels sont cruciaux pour tester leur innocuité et leur efficacité. Bien que plusieurs modèles aient été utilisés pour la recherche cardiovasculaire, y compris les rats 5,6, les souris 7,8, les chiens9 et les moutons10, les porcs sont l’un des meilleurs choix pour modéliser les études d’ischémie cardiaque en raison de leur grande similitude avec les humains en termes de taille cardiaque, d’anatomie de l’artère coronaire, de cinétique cardiaque, de physiologie, de métabolisme et du processus de guérison post-MI 11, 12,13,14,15.
Dans ce contexte, de nombreuses approches chirurgicales ouvertes et percutanées sont disponibles pour développer des modèles porcins d’IM. L’approche de la poitrine ouverte implique une procédure de thoracotomie latérale gauche et est utile pour effectuer une ligature chirurgicale de l’artère coronaire16,17, une cryo-lésion myocardique, une cautérisation12 et la mise en place d’un obsclusion hydraulique18 ou d’un constricteur améroïde19, entre autres. L’occlusion coronarienne chirurgicale a été largement utilisée pour tester de nouvelles options thérapeutiques telles que l’ingénierie tissulaire cardiaque et la thérapie cellulaire, car elle permet un large accès et une évaluation visuelle du cœur; cependant, contrairement à l’IM humain, il peut entraîner des adhérences chirurgicales, des cicatrices adjacentes et une inflammation postopératoire17. La cryo-lésion myocardique et la cautérisation sont des techniques facilement reproductibles mais ne reproduisent pas la progression physiopathologique de l’IM observée chez l’homme12. D’autre part, plusieurs techniques percutanées ont été développées pour produire un blocage coronarien temporaire ou permanent. Il s’agit notamment de l’ablation transcoronnaire ou intracoronaire de l’éthanol 20,21, de l’occlusion par angioplastie par ballonnet22 ou de l’administration de matériaux thrombogéniques tels que les billes de gel d’agarose23, les mélanges de fibrinogène 9 ou l’embolisationen bobine 17,24. Alors que l’angioplastie par ballonnet est mieux adaptée aux études d’ischémie / reperfusion, le déploiement de la bobine coronaire est l’un des meilleurs choix pour la modélisation de l’IM non revascularisée. Cette approche percutanée est réalisable, reproductible de manière cohérente et évite la chirurgie thoracique ouverte. Il permet un contrôle précis de l’emplacement de l’infarctus et aboutit à une physiopathologie similaire à celle d’un IM humain non reperfusé. De plus, l’embolisation de la bobine convient à la modélisation de l’IM aiguë, subaiguë ou chronique; insuffisance cardiaque congestive chronique; ou valvulopathie17.
Le présent protocole vise à décrire comment développer un modèle porcin IM par déploiement permanent de bobines. En bref, il comprend une canulation artérielle sélective percutanée par accès fémoral rétrograde. Après l’angiographie coronaire, une bobine est déployée au niveau de l’artère de la branche cible sous guidage fluoroscopique. Enfin, l’occlusion complète est confirmée par une coronarographie répétée.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>6-F JR4 0-71&#34;guiding catheter</td>
			<td>Medtronic</td>
			<td>LA6JR40</td>
			<td>6F JR4 90 cm Guiding catheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adrenaline 1 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>National Code (NC). 602486</td>
			<td>Adrenaline</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atropine 1 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>NC. 635649</td>
			<td>Atropine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine</td>
			<td>Mylan</td>
			<td>NC. 694109-1</td>
			<td>Povidone iodine solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bupaq 0.3 mg/mL</td>
			<td>Richter Pharma AG</td>
			<td>NC. 578816.6</td>
			<td>Buprenorphine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexdomitor 0.5 mg/mL</td>
			<td>Orion Pharma</td>
			<td>NC. 576303.3</td>
			<td>Dexmedetomidine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Draxxin</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>NC. 576313.2</td>
			<td>Tulathromycin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EMERALD Guidewire</td>
			<td>Cordis</td>
			<td>502-585</td>
			<td>0.035-inch J-tipped wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>External defibrillator</td>
			<td>DigiCare</td>
			<td>CS81XVET</td>
			<td>Manual external defibrillator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fendivia 100 &#181;g/h</td>
			<td>Takeda</td>
			<td>NC. 658524.5</td>
			<td>Fentanyl transdermal patch</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Guidewire Introducer Needle 18 G x 7 cm</td>
			<td>Argon</td>
			<td>GWI1802</td>
			<td>Introducer needle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparine 1%</td>
			<td>ROVI</td>
			<td>NC. 641647.1</td>
			<td>Heparin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hi-Torque VersaTurn F</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>1013317J</td>
			<td>0.014-inch 200 cm Guidewire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IsoFlo</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>50019100</td>
			<td>Isoflurane</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamidor</td>
			<td>Richter Pharma AG,</td>
			<td>NC. 580393.7</td>
			<td>Ketamine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidocaine 50 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>NC. 645572.2</td>
			<td>Lidocaine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MD8000vet</td>
			<td>Meditech Equipment</td>
			<td>MD8000vet</td>
			<td>Multi-parameter monitor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Midazolam</td>
			<td>Laboratorios Normon</td>
			<td>NC. 624437.1</td>
			<td>Midazolam</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude.6F.11 cm (4.3&#34;).0.035&#34; (0.89 mm).50 cm (19.7&#34;).Double Ended.Stainless Steel.6F.16</td>
			<td>Merit</td>
			<td>PSI-6F-11-035</td>
			<td>6F Vascular sheath</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propovet Multidosis 10 mg/mL</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>NC. 579742.7</td>
			<td>Propofol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RENEGADE STC-18 150/20/STRAIGHT/1RO</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>M001181370</td>
			<td>150 cm length with 0.017-inch inner diameter Microcatheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ruschelit</td>
			<td>Teleflex</td>
			<td>112482</td>
			<td>Endotracheal tube with balloon (#6.5)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SPUR II</td>
			<td>Ambu</td>
			<td>325 012 000</td>
			<td>Airway mask bag unit-ventilation (AMBU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vasofix 20 G</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>4269098</td>
			<td>20 G Cannula</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Visipaque 320 mg/mL USB 10 x 200 mL</td>
			<td>General Electrics</td>
			<td>1177612</td>
			<td>Iodinated contrast medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VortX-18 Diamond 3 mm/3.3 mm</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>M0013822030</td>
			<td>Coil</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>WATO EX-35</td>
			<td>Mindray</td>
			<td>WATO EX-35Vet</td>
			<td>Anesthesia machine</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

myocardial infarction by percutaneous embolization coil deployment in a swine model

L’infarctus du myocarde (IM) est la principale cause de mortalité dans le monde. Malgré l’utilisation de traitements fondés sur des données probantes, y compris la revascularisation coronarienne et les médicaments cardiovasculaires, une proportion importante de patients développent un remodelage pathologique du ventriculaire gauche et une insuffisance cardiaque progressive après IM. Par conséquent, de nouvelles options thérapeutiques, telles que les thérapies cellulaires et géniques, entre autres, ont été développées pour réparer et régénérer le myocarde blessé. Dans ce contexte, les modèles animaux d’IM sont cruciaux pour explorer l’innocuité et l’efficacité de ces thérapies expérimentales avant la traduction clinique. Les grands modèles animaux tels que les porcs sont préférés aux plus petits en raison de la grande similitude des cœurs porcins et humains en termes d’anatomie de l’artère coronaire, de cinétique cardiaque et du processus de guérison post-MI. Ici, nous avons cherché à décrire un modèle MI chez le porc par déploiement permanent de bobine. En bref, il comprend une canulation artérielle sélective percutanée par accès fémoral rétrograde. Après l’angiographie coronaire, la bobine est déployée à la branche cible sous guidage fluoroscopique. Enfin, l’occlusion complète est confirmée par une coronarographie répétée. Cette approche est réalisable, hautement reproductible et émule la pathogenèse de l’IM humaine non revascularisée, en évitant la chirurgie thoracique ouverte traditionnelle et l’inflammation postopératoire subséquente. Selon le moment du suivi, la technique convient aux modèles d’IM aiguë, subaiguë ou chronique.

Taux de survie et localisation de l’IM Cinquante-sept porcs ont subi une implantation de bobine coronaire dans la branche marginale LCX (n = 25; 12 femelles et 13 mâles) ou dans la LAD entre la première et la deuxième branches diagonales (n = 32; 16 femelles et 16 mâles) de l’artère coronaire et ont été suivis pendant 30 jours. Le taux de survie des animaux soumis à un IM à la branche marginale LCX était de 80 % (n = 20). Trois porcs sont morts à la suite de complications mortelles lié...

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Myocardial Infarction by Percutaneous Embolization Coil Deployment in a Swine Model

Les modèles animaux d’infarctus du myocarde (IM) qui imitent le processus naturel de la maladie chez l’homme sont essentiels pour comprendre les mécanismes physiopathologiques et tester l’innocuité et l’efficacité des nouvelles thérapies émergentes. Nous décrivons ici un modèle de porc MI créé en déployant une bobine d’embolisation percutanée.

Infarctus du myocarde par déploiement de bobine d’embolisation percutanée dans un modèle porcin

Myocardial infarction (MI) is the leading cause of mortality worldwide. Despite the use of evidence-based treatments, including coronary revascularization ...

Ce protocole est important car il permet d’effectuer un infarctus du myocarde dans un modèle animal translationnel, d’une manière réalisable et reproductible similaire à celle de l’homme. Le principal avantage de cette procédure est qu’elle évite la chirurgie thoracique ouverte traditionnelle et l’inflammation postopératoire ultérieure. Et est donc l’un des meilleurs choix imitant l’infarctus du myocarde humain.Cette technique convient à la modélisation de l’infarctus du myocarde et de l’échec supérieur en fonction de la dissection de la zone ischémique. Commencez par placer l’animal anesthésié sur la table d’opération en position couchée et fixez les membres à la table avec du ruban adhésif ou un bandage. Placer les sondes d’électrocardiogramme par voie sous-cutanée dans les extrémités des animaux pour enregistrer les changements dans le segment ST, les ondes T et la fréquence cardiaque pendant la procédure expérimentale.Placez l’oxymètre de pouls sur la langue ou un coin de la lèvre de l’animal et le brassard de pression non invasif sur le membre avant. Mesurez la température avec une sonde œsophagienne. Nettoyez la zone fémorale droite avec du savon chirurgical suivi d’une alternance de solution antiseptique povidone-iode et d’alcool trois fois dans des conditions stériles.Lavez-vous les mains chirurgicalement et portez une blouse stérile et des gants stériles. Ensuite, couvrez l’animal avec un drap chirurgical stérile. Rincer le fil à pointe en J de la gaine vasculaire de l’aiguille, le cathéter de guidage, le microcathéter à fil guide et le kit de collecteur d’injection de produit de contraste avec une solution saline héparinisée.Localisez la bifurcation entre les artères fémorales superficielles et profondes à l’aide d’ultrasons. Positionnez le transducteur de deux à trois centimètres proximal à la bifurcation dans l’artère fémorale commune et alignez le centre du transducteur avec l’artère fémorale commune. Maintenant, placez l’aiguille au centre du transducteur et perforez l’artère à une angulation d’environ 45 degrés.Par la suite, insérez une gaine vasculaire de six Français en utilisant la technique de Seldinger modifiée et administrez de l’héparine à travers la gaine. Commencez par insérer le fil À pointe en J dans le cathéter de guidage JR4r et avancez le fil à travers la gaine dans l’aorte ascendante. Placez le cathéter sur la surface valvulaire.Après avoir retiré le fil, connectez le cathéter au système de collecteur d’injection et purgez l’ensemble du système. Sous fluoroscopie, engagez le cathéter dans l’artère coronaire principale gauche et injectez 10 millilitres de produit de contraste iodé pour visualiser le système coronaire gauche. Effectuez des angiographies dans les projections obliques antérieures gauches de 40 degrés et obliques antérieures droites de 30 degrés.Sous guidage fluoroscopique, avancez le fil de guidage de 0,014 pouce pré-assemblé sur le microcathéter vers l’artère coronaire descendante antérieure ou gauche distale au milieu gauche. Sous guidage fluoroscopique, faites avancer le microcathéter à travers le fil jusqu’à l’endroit souhaité où l’implant de bobine doit être déployé. Retirez le fil et sélectionnez la bobine.Délivrez la bobine via un microcathéter et injectez lentement cinq millilitres de produit de contraste iodé sous fluoroscopie pour visualiser la position correcte de la bobine. Placez le fil dans une branche latérale pour effectuer des injections de contrôle et pour assurer l’accès à l’artère si une deuxième bobine doit être implantée. Attendez que la bobine se thrombose et obstrue l’artère.57 porcs ont subi une implantation de bobine coronaire et leur angiographie a montré un infarctus du myocarde dans la branche marginale circonflexe gauche distale ou l’artère coronaire descendante antérieure gauche distale. La mortalité de ce modèle était de 19% liée aux complications de l’IM.L’analyse par résonance magnétique de la branche marginale circonflexe gauche et des infarctus coronaires descendants antérieurs gauches distaux a été réalisée chez tous les animaux 30 jours après l’infarctus du myocarde. Le déploiement de la bobine dans l’artère coronaire marginale circonflexe gauche a affecté la paroi latérale ventriculaire gauche.Alors que le septum intra-ventriculaire est la zone la plus touchée dans la position coronarienne descendante antérieure gauche distale. Les zones infarctus post-développement de la bobine dans l’artère coronaire marginale circonflexe gauche et la coronaire descendante antérieure gauche distale ont également été confirmées après une section cardiaque. Les étapes les plus importantes comprennent, tout d’abord, de placer le microcathéter dans la bonne position.Deuxièmement, pour choisir la bonne taille de bobine et troisième pour la livrer correctement. Grâce à ce modèle, les chercheurs peuvent explorer de nouvelles thérapies et étudier le mécanisme physiopathologique de l’infarctus du myocarde.

Research

JoVE Journal

Medicine

Acute Myocardial Infarction in Rats

Infarctus aigu du myocarde chez le rat

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

Recherche

Médecine

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Infarctus du myocarde et d&#39;évaluation fonctionnelle de résultats chez le porc

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

A Hydrogel Construct and Fibrin-based Glue Approach to Deliver Therapeutics in a Murine Myocardial Infarction Model.

Un hydrogel construire et de fibrine-colle à base son approche et proposer Therapeutics dans un infarctus du myocarde murin modèle.

The murine MI model is widely recognized in the field of cardiovascular disease, and has consistently been used as a first step to test the efficacy of ...

Primary Outcome Assessment in a Pig Model of Acute Myocardial Infarction

Évaluation des résultats primaires dans un modèle porcin de infarctus aigu du myocarde

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are ...

Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration

Infarctus du myocarde chez les souris néonatales, Un modèle de régénération cardiaque

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and ...

Improvement of a Closed Chest Porcine Myocardial Infarction Model by Standardization of Tissue and Blood Sampling Procedures

Amélioration d’un modèle de porcins infarctus du myocarde de thorax fermé par normalisation des tissus et des procédures d’échantillonnage de sang

Myocardial ischemia reperfusion (I/R) injury contributes to almost half of the necrotic area after myocardial infarction. To date there is no approved ...

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

Un modèle cryo-blessure pour étudier l'infarctus du myocarde chez la souris

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Establishing a Swine Model of Post-myocardial Infarction Heart Failure for Stem Cell Treatment

Établissement d’un modèle porcin d’insuffisance cardiaque d’infarctus post-myocardique pour le traitement des cellules souches

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major ...

Novel Percutaneous Approach for Deployment of 3D Printed Coronary Stenosis Implants in Swine Models of Ischemic Heart Disease

Nouvelle approche percutanée pour le déploiement d’implants de sténose coronaire imprimés en 3D dans les modèles porcins de la maladie cardiaque ischémique

Minimally invasive methods for creating models of focal coronary narrowing in large animals are challenging. Rapid prototyping using three-dimensionally ...

Intramyocardial Transplantation of MSC-Loading Injectable Hydrogels after Myocardial Infarction in a Murine Model

Transplantation intramyocardique d’hydrogels injectables à chargement MSC après l’infarctus du myocarde dans un modèle murin

One of the major issues facing current cardiac stem cell therapies for preventing postinfarct heart failure is the low retention and survival rates of ...