Name: myocardial infarction by percutaneous embolization coil deployment in a swine model
Uploaded: 2021-11-04T13:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Myocardial Infarction by Percutaneous Embolization Coil Deployment in a Swine Model at JoVE.com

Мы выражаем благодарность Центру сравнительной медицины и биовизуализации Каталонии (CMCiB) и сотрудникам за их вклад в реализацию животной модели. Эта работа была поддержана Институтом спасения Карлоса III (PI18/01227, PI18/00256, INT20/00052), Испанским обществом кардиологии и Женералитатом Каталонии [2017-SGR-483]. Эта работа также финансировалась проектами Red de Terapia Celular - TerCel [RD16/0011/0006] и CIBER Cardiovascular [CB16/11/00403] в рамках Национального плана I+D+I и совместно финансировалась ISCIII-Subdirección General de Evaluación y el Fondo Europeo de Desarrollo Regional (FEDER). Доктор Фадеуйе получил грант испанского общества кардиологов (Мадрид, Испания).

Это исследование было одобрено Этическим комитетом Отдела экспериментов на животных Научно-исследовательского института здоровья немцев Trias i Pujol (IGTP) и государственными органами (Женералитат Каталонии; Код: 10558 и 11208), и соответствует всем руководящим принципам, касающимся использован?...

<ol>
	<li>Khan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+epidemiology+of+ischemic+heart+disease:+Results+from+the+global+burden+of+disease+study.">Global epidemiology of ischemic heart disease: Results from the global burden of disease study.</a> Cureus. 12 (7), 9349 (2020).</li><li>Bhatt, A. S., Ambrosy, A. P., Velazquez, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adverse+remodeling+and+reverse+remodeling+after+myocardial+infarction.">Adverse remodeling and reverse remodeling after myocardial infarction.</a> Current Cardiology Reports. 19 (8), 71 (2017).</li><li>Verma, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prognostic+implications+of+left+ventricular+mass+and+geometry+following+myocardial+infarction:+The+VALIANT+(VALsartan+In+Acute+myocardial+iNfarcTion)+echocardiographic+study.">Prognostic implications of left ventricular mass and geometry following myocardial infarction: The VALIANT (VALsartan In Acute myocardial iNfarcTion) echocardiographic study.</a> JACC: Cardiovascular Imaging. 1 (5), 582-591 (2008).</li><li>Konstam, M., Kramer, D., Patel, A., Maron, M., Udelson, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+remodeling+in+heart+failure:+current+concepts+in+clinical+significance+and+assessment.">Left ventricular remodeling in heart failure: current concepts in clinical significance and assessment.</a> JACC. Cardiovascular Imaging. 4 (1), 98-108 (2011).</li><li>Srikanth, G., Prakash, P., Tripathy, N., Dikshit, M., Nityanand, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+a+rat+model+of+myocardial+infarction+with+a+high+survival+rate:+A+suitable+model+for+evaluation+of+efficacy+of+stem+cell+therapy.">Establishment of a rat model of myocardial infarction with a high survival rate: A suitable model for evaluation of efficacy of stem cell therapy.</a> Journal of Stem Cells and Regenerative Medicine. 5 (1), 30 (2009).</li><li>Wu, Y., Yin, X., Wijaya, C., Huang, M. -. H., McConnell, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+myocardial+infarction+in+rats.">Acute myocardial infarction in rats.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (48), e2464 (2011).</li><li>Takagawa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarct+size+measurement+in+the+mouse+chronic+infarction+model:+comparison+of+area-+and+length-based+approaches.">Myocardial infarct size measurement in the mouse chronic infarction model: comparison of area- and length-based approaches.</a> Journal of Applied Physiology. 102 (6), 2104-2111 (2007).</li><li>Yang, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarction+and+cardiac+remodelling+in+mice.">Myocardial infarction and cardiac remodelling in mice.</a> Experimental Physiology. 87 (5), 547-555 (2002).</li><li>Suzuki, M., Asano, H., Tanaka, H., Usuda, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+and+evaluation+of+a+new+canine+myocardial+infarction+model+using+a+closed-chest+injection+of+thrombogenic+material.">Development and evaluation of a new canine myocardial infarction model using a closed-chest injection of thrombogenic material.</a> Japanese Circulation Journal. 63 (11), 900-905 (1999).</li><li>Rienzo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+total+closed+chest+sheep+model+of+cardiogenic+shock+by+percutaneous+intracoronary+ethanol+injection.">A total closed chest sheep model of cardiogenic shock by percutaneous intracoronary ethanol injection.</a> Scientific Reports. 10 (1), 12417 (2020).</li><li>Spannbauer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+of+heart+failure+with+reduced+ejection+fraction+(HFrEF).">Large animal models of heart failure with reduced ejection fraction (HFrEF).</a> Frontiers in Cardiovascular Medicine. 6, 117 (2019).</li><li>Liu, J., Li, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+porcine+models+of+myocardial+ischemia/infarction+-+Technical+progress,+modified+electrocardiograms+validating,+and+future+application.">Novel porcine models of myocardial ischemia/infarction - Technical progress, modified electrocardiograms validating, and future application.</a> Advances in Electrocardiograms - Clinical Applications. , 175-190 (2012).</li><li>Hughes, G. C., Post, M., Simons, M., Annex, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Translational+physiology:+porcine+models+of+human+coronary+artery+disease:+implications+for+pre-clinical+trials+of+therapeutic+angiogenesis.">Translational physiology: porcine models of human coronary artery disease: implications for pre-clinical trials of therapeutic angiogenesis.</a> Journal of Applied Physiology. 94 (5), 1689-1701 (2003).</li><li>Tsang, H. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+of+cardiovascular+disease.">Large animal models of cardiovascular disease.</a> Cell Biochemistry and Function. 34 (3), 113 (2016).</li><li>Dixon, J. A., Spinale, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+of+heart+failure.">Large animal models of heart failure.</a> Circulation: Heart Failure. 2 (3), 262-271 (2009).</li><li>G&#225;lvez-Mont&#243;n, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transposition+of+a+pericardial-derived+vascular+adipose+flap+for+myocardial+salvage+after+infarct.">Transposition of a pericardial-derived vascular adipose flap for myocardial salvage after infarct.</a> Cardiovascular Research. 91 (4), 659-667 (2011).</li><li>G&#225;lvez-Mont&#243;n, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+two+pre-clinical+myocardial+infarct+models:+coronary+coil+deployment+versus+surgical+ligation.">Comparison of two pre-clinical myocardial infarct models: coronary coil deployment versus surgical ligation.</a> Journal of Translational Medicine. 12, 137 (2014).</li><li>Domkowski, P. W., Hughes, G. C., Lowe, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ameroid+constrictor+versus+hydraulic+occluder:+creation+of+hibernating+myocardium.">Ameroid constrictor versus hydraulic occluder: creation of hibernating myocardium.</a> The Annals of Thoracic Surgery. 69 (6), 1984 (2000).</li><li>Tuzun, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlation+of+ischemic+area+and+coronary+flow+with+ameroid+size+in+a+porcine+model.">Correlation of ischemic area and coronary flow with ameroid size in a porcine model.</a> Journal of Surgical Research. 164 (1), 38-42 (2010).</li><li>Weism&#252;ller, P., Mayer, U., Richter, P., Heieck, F., Kochs, M., Hombach, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemical+ablation+by+subendocardial+injection+of+ethanol+via+catheter+-+preliminary+results+in+the+pig+heart.">Chemical ablation by subendocardial injection of ethanol via catheter - preliminary results in the pig heart.</a> European Heart Journal. 12 (11), 1234-1239 (1991).</li><li>Haines, D., Verow, A., Sinusas, A., Whayne, J., DiMarco, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracoronary+ethanol+ablation+in+swine:+characterization+of+myocardial+injury+in+target+and+remote+vascular+beds.">Intracoronary ethanol ablation in swine: characterization of myocardial injury in target and remote vascular beds.</a> Journal of Cardiovascular Electrophysiology. 5 (1), 41-49 (1994).</li><li>Li, K., Wagner, L., Moctezuma-Ramirez, A., Vela, D., Perin, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+robust+percutaneous+myocardial+infarction+model+in+pigs+and+its+effect+on+left+ventricular+function.">A robust percutaneous myocardial infarction model in pigs and its effect on left ventricular function.</a> Journal of Cardiovascular Translational Research. , (2021).</li><li>Eldar, M., Ohad, D., Bor, A., Varda-Bloom, N., Swanson, D., Battler, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+closed-chest+pig+model+of+sustained+ventricular+tachycardia.">A closed-chest pig model of sustained ventricular tachycardia.</a> Pacing and Clinical Electrophysiology : PACE. 17 (10), 1603-1609 (1994).</li><li>Dib, N., Diethrich, E. B., Campbell, A., Gahremanpour, A., McGarry, M., Opie, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+percutaneous+swine+model+of+myocardial+infarction.">A percutaneous swine model of myocardial infarction.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 53 (3), 256-263 (2006).</li><li>National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. , (2011).</li><li>Carter, C., Girod, D., Hurwitz, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Percutaneous+cardiac+catheterization+of+the+neonate.">Percutaneous cardiac catheterization of the neonate.</a> Pediatrics. 55 (5), 662-665 (1975).</li><li>Koudstaal, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarction+and+functional+outcome+assessment+in+pigs.">Myocardial infarction and functional outcome assessment in pigs.</a> Journal of Visualized Experiments JoVE. (86), e51269 (2014).</li><li>Kumar, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+myocardial+infarction:+Mainstay+in+clinical+translation.">Animal models of myocardial infarction: Mainstay in clinical translation.</a> Regulatory Toxicology And Pharmacology RTP. 76, 221-230 (2016).</li></ol>

Катушка, развернутая в коронарной артерии, обеспечивает воспроизводимую и последовательную доклиническую нереперфузированную модель ИМ у свиней, которая может быть использована для разработки и тестирования новых сердечно-сосудистых терапевтических стратегий.
В наш?...

Инфаркт миокарда (ИМ) является наиболее распространенной причиной смертности, заболеваемости и инвалидности во всем мире1. Несмотря на современные терапевтические достижения, у значительной части пациентов развивается неблагоприятное ремоделирование желудочков и прогрессирующая сердечная недостаточность после ИМ, что приводит к плохому прогнозу из-за желудочковой дисфункции и внезапной смерти 2,3,4. Таким образом, новые терапевтические возможности для восстановления и / или регенерации поврежденного миокарда находятся под пристальным вниманием, а трансляционные модели ИМ на животных имеют решающее значение для проверки их безопасности и эффективности. Хотя для сердечно-сосудистых исследований было использовано несколько моделей, включая крыс 5,6, мышей 7,8, собак9 и овец10, свиньи являются одним из лучших вариантов для моделирования исследований ишемии сердца из-за их высокого сходства с людьми с точки зрения размера сердца, анатомии коронарной артерии, кинетики сердца, физиологии, метаболизма и процесса заживления после ИМ 11. 12,13,14,15.
В этом контексте существует множество различных открытых хирургических и чрескожных подходов для разработки моделей свиньев с ИМ. Подход с открытой грудной клеткой включает в себя процедуру левой боковой торакотомии и полезен при выполнении хирургического перевязки коронарной артерии 16,17, криотравмы миокарда, прижигания12 и размещения коронарной артерии гидравлического окклюда18 или амероидного констриктора19, среди прочих. Хирургическая коронарная окклюзия широко используется для тестирования новых терапевтических возможностей, таких как инженерия сердечной ткани и клеточная терапия, поскольку она обеспечивает широкий доступ и визуальную оценку сердца; однако, в отличие от ИМ человека, он может привести к хирургическим спайкам, смежным рубцам и послеоперационному воспалению17. Криотравмление и прижигание миокарда являются легко воспроизводимыми методами, но не воспроизводят патофизиологическое прогрессирование ИМ, наблюдаемое у людей12. С другой стороны, было разработано несколько чрескожных методов для получения временной или постоянной коронарной блокировки. Они включают транскоронарную или интракоронарную абляцию этанола 20,21, окклюзию с помощью баллонной ангиопластики22 или доставку тромбогенных материалов, таких как шарики агарозногогеля 23, смеси фибриногенов9 или эмболизация катушки 17,24. В то время как баллонная ангиопластика лучше подходит для исследований ишемии / реперфузии, развертывание коронарной катушки является одним из лучших вариантов для моделирования нереваскуляризированного ИМ. Этот чрескожный подход осуществим, последовательно воспроизводим и позволяет избежать операции на открытой грудной клетке. Это позволяет точно контролировать местоположение инфаркта и приводит к патофизиологии, аналогичной патофизиологии человека без реперфузированного ИМ. Кроме того, эмболизация катушки подходит для моделирования острого, подострого или хронического ИМ; хроническая застойная сердечная недостаточность; или заболевание клапанов17.
Настоящий протокол направлен на описание того, как разработать модель свиньи ИМ путем постоянного развертывания катушки. Вкратце, он включает в себя чрескожную селективную канюляцию коронарной артерии через ретроградный бедренный доступ. После коронарной ангиографии катушка разворачивается на артерии целевой ветви под флюороскопическим руководством. Наконец, полная окклюзия подтверждается повторной коронарной ангиографией.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>6-F JR4 0-71&#34;guiding catheter</td>
			<td>Medtronic</td>
			<td>LA6JR40</td>
			<td>6F JR4 90 cm Guiding catheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adrenaline 1 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>National Code (NC). 602486</td>
			<td>Adrenaline</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atropine 1 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>NC. 635649</td>
			<td>Atropine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine</td>
			<td>Mylan</td>
			<td>NC. 694109-1</td>
			<td>Povidone iodine solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bupaq 0.3 mg/mL</td>
			<td>Richter Pharma AG</td>
			<td>NC. 578816.6</td>
			<td>Buprenorphine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexdomitor 0.5 mg/mL</td>
			<td>Orion Pharma</td>
			<td>NC. 576303.3</td>
			<td>Dexmedetomidine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Draxxin</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>NC. 576313.2</td>
			<td>Tulathromycin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EMERALD Guidewire</td>
			<td>Cordis</td>
			<td>502-585</td>
			<td>0.035-inch J-tipped wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>External defibrillator</td>
			<td>DigiCare</td>
			<td>CS81XVET</td>
			<td>Manual external defibrillator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fendivia 100 &#181;g/h</td>
			<td>Takeda</td>
			<td>NC. 658524.5</td>
			<td>Fentanyl transdermal patch</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Guidewire Introducer Needle 18 G x 7 cm</td>
			<td>Argon</td>
			<td>GWI1802</td>
			<td>Introducer needle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparine 1%</td>
			<td>ROVI</td>
			<td>NC. 641647.1</td>
			<td>Heparin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hi-Torque VersaTurn F</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>1013317J</td>
			<td>0.014-inch 200 cm Guidewire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IsoFlo</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>50019100</td>
			<td>Isoflurane</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamidor</td>
			<td>Richter Pharma AG,</td>
			<td>NC. 580393.7</td>
			<td>Ketamine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidocaine 50 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>NC. 645572.2</td>
			<td>Lidocaine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MD8000vet</td>
			<td>Meditech Equipment</td>
			<td>MD8000vet</td>
			<td>Multi-parameter monitor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Midazolam</td>
			<td>Laboratorios Normon</td>
			<td>NC. 624437.1</td>
			<td>Midazolam</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude.6F.11 cm (4.3&#34;).0.035&#34; (0.89 mm).50 cm (19.7&#34;).Double Ended.Stainless Steel.6F.16</td>
			<td>Merit</td>
			<td>PSI-6F-11-035</td>
			<td>6F Vascular sheath</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propovet Multidosis 10 mg/mL</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>NC. 579742.7</td>
			<td>Propofol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RENEGADE STC-18 150/20/STRAIGHT/1RO</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>M001181370</td>
			<td>150 cm length with 0.017-inch inner diameter Microcatheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ruschelit</td>
			<td>Teleflex</td>
			<td>112482</td>
			<td>Endotracheal tube with balloon (#6.5)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SPUR II</td>
			<td>Ambu</td>
			<td>325 012 000</td>
			<td>Airway mask bag unit-ventilation (AMBU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vasofix 20 G</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>4269098</td>
			<td>20 G Cannula</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Visipaque 320 mg/mL USB 10 x 200 mL</td>
			<td>General Electrics</td>
			<td>1177612</td>
			<td>Iodinated contrast medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VortX-18 Diamond 3 mm/3.3 mm</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>M0013822030</td>
			<td>Coil</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>WATO EX-35</td>
			<td>Mindray</td>
			<td>WATO EX-35Vet</td>
			<td>Anesthesia machine</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

myocardial infarction by percutaneous embolization coil deployment in a swine model

Инфаркт миокарда (ИМ) является основной причиной смертности во всем мире. Несмотря на использование научно обоснованных методов лечения, включая коронарную реваскуляризацию и сердечно-сосудистые препараты, у значительной части пациентов развивается патологическое ремоделирование левого желудочка и прогрессирующая сердечная недостаточность после ИМ. Поэтому были разработаны новые терапевтические возможности, такие как клеточная и генная терапия, среди прочих, для восстановления и регенерации поврежденного миокарда. В этом контексте животные модели ИМ имеют решающее значение для изучения безопасности и эффективности этих экспериментальных методов лечения до клинического перевода. Крупные животные модели, такие как свиньи, предпочтительнее более мелких из-за высокого сходства свиного и человеческого сердца с точки зрения анатомии коронарной артерии, сердечной кинетики и процесса заживления после ИМ. Здесь мы стремились описать модель MI в свинье путем постоянного развертывания катушки. Вкратце, он включает в себя чрескожную селективную канюляцию коронарной артерии через ретроградный бедренный доступ. После коронарной ангиографии катушка разворачивается на целевой ветви под флюороскопическим наведением. Наконец, полная окклюзия подтверждается повторной коронарной ангиографией. Этот подход осуществим, хорошо воспроизводим и имитирует патогенез нереваскуляризированного ИМ человека, избегая традиционной операции на открытой грудной клетке и последующего послеоперационного воспаления. В зависимости от времени наблюдения, метод подходит для острых, подострых или хронических моделей ИМ.

Выживаемость и местоположение ИМ Пятьдесят семь свиней подверглись имплантации коронарной катушки в крайнюю ветвь LCX (n = 25; 12 самок и 13 самцов) или в LAD между первой и второй диагональными ветвями (n = 32; 16 самок и 16 самцов) коронарной артерии и наблюдались в течение 30 дней. Выжива?...

Watch this Scientific Journal Video about Myocardial Infarction by Percutaneous Embolization Coil Deployment in a Swine Model at JoVE.com

Myocardial Infarction by Percutaneous Embolization Coil Deployment in a Swine Model

Животные модели инфаркта миокарда (ИМ), которые имитируют естественный процесс заболевания у людей, имеют решающее значение для понимания патофизиологических механизмов и проверки безопасности и эффективности новых возникающих методов лечения. Здесь мы опишем модель свиньи MI, созданную путем развертывания чрескожной эмболизационной катушки.

Инфаркт миокарда с помощью чрескожной эмболизационной катушки в модели свиней

Myocardial infarction (MI) is the leading cause of mortality worldwide. Despite the use of evidence-based treatments, including coronary revascularization ...

Этот протокол важен тем, что позволяет выполнять инфаркт миокарда на поступательной животной модели, посильно и воспроизводимо, подобно человеческому. Основным преимуществом этой процедуры является то, что она позволяет избежать традиционной операции на открытой грудной клетке и последующего послеоперационного воспаления. И поэтому является одним из лучших вариантов, имитирующих инфаркт миокарда человека.Данная методика подходит для моделирования инфаркта миокарда и более высокой недостаточности в зависимости от рассечения ишемической области. Начните с того, что положите обезболенное животное на операционный стол в положении лежа на спине и зафиксируйте конечности к столу скотчем или бинтом. Поместите зонды электрокардиограммы подкожно в конечности животных для регистрации изменений в ST-сегменте, Т-волнах и частоте сердечных сокращений во время экспериментальной процедуры.Поместите пульсоксиметр на язык или угол губы животного и неинвазивную манжету давления на конечность. Измерьте температуру с помощью пищеводного зонда. Очистите правую бедренную область хирургическим мылом с последующим чередованием антисептического раствора повидона-йода и спирта три раза в стерильных условиях.Вымойте руки хирургическим путем и наденьте стерильный халат и стерильные перчатки. Затем накройте животное стерильной хирургической драпировкой. Промывайте игольчатую сосудистую оболочку J-образным наконечником, направляющий катетер, направляющий микрокатетер и комплект для инъекционного коллектора контрастного вещества с гепаринизированным физиологическим раствором.Определите бифуркацию между поверхностными и глубокими бедренными артериями с помощью ультразвука. Расположите преобразователь на два-три сантиметра проксимально к бифуркации в общей бедренной артерии и выровняйте центр преобразователя с общей бедренной артерией. Теперь поместите иглу в центр датчика и проколите артерию при ангуляции примерно на 45 градусов.Впоследствии вставьте шесть французских сосудистых оболочек с использованием модифицированной техники Зельдингера и введите гепарин через оболочку. Начните с вставки провода J-tip в направляющий катетер JR4r и продвиньте провод через оболочку в восходящую аорту. Поместите катетер вверх над поверхностью клапана.После снятия провода подключите катетер к системе инжекционного коллектора и продувите всю систему. При рентгеноскопии задействуйте катетер в левую главную коронарную артерию и введите 10 миллилитров йодированного контрастного вещества для визуализации левой коронарной системы. Выполняют ангиограммы в левом переднем косом 40 градусов и правом переднем косом 30 градусов проекциях.Под флюороскопическим наведением выдвигайте 0,014-дюймовую направляющую проволоку, предварительно собранную на микрокатетере, к средней левой передней нисходящей или дистальной левой циркумфлексной коронарной артерии. Под флюороскопическим руководством продвиньте микрокатетер через провод к нужному месту, где должен быть развернут спиральный имплантат. Извлеките провод и выберите катушку.Подайте катушку через микрокатетер и медленно введите пять миллилитров йодированного контрастного вещества под рентгеноскопией, чтобы визуализировать правильное положение катушки. Поместите провод в боковую ветвь для выполнения контрольных инъекций и обеспечения доступа к артерии, если необходимо имплантировать вторую катушку. Подождите, пока катушка тромбирует и закупорет артерию.57 свиней подверглись имплантации коронарной катушки, и их ангиография показала инфаркт миокарда в дистальной левой циркумфлексной краевой ветви или дистальной левой передней нисходящей коронарной артерии. Смертность этой модели составила 19%, связанных с осложнениями ИМ.Магнитно-резонансный томографный анализ левой циркумфлексной краевой ветви и дистального левого переднего нисходящего коронарного инфаркта проводили у всех животных через 30 дней после инфаркта миокарда. Развертывание катушки в левой окружной краевой коронарной артерии затронуло боковую стенку левого желудочка.В то время как внутрижелудочковая перегородка является наиболее пораженной областью в дистальном левом переднем нисходящем коронарном размещении. Инфарктные участки после развития катушки в левой циркумфлексной краевой коронарной артерии и дистальной левой передней нисходящей коронарной артерии также были подтверждены после разрезания сердца. Наиболее важные шаги включают, во-первых, размещение микрокатетера в правильном положении.Во-вторых, выбрать правильный размер катушки, а в-третьих, правильно ее доставить. Благодаря этой модели исследователи могут исследовать новые методы лечения и изучать патофизиологический механизм инфаркта миокарда.

Research

JoVE Journal

Medicine

Acute Myocardial Infarction in Rats

Острого инфаркта миокарда у крыс

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Инфаркт миокарда и функциональная оценка результат в Свиней

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

A Hydrogel Construct and Fibrin-based Glue Approach to Deliver Therapeutics in a Murine Myocardial Infarction Model.

Гидрогель Построить и фибрина-клей на основе подхода, чтобы доставить Therapeutics в мышиной модели инфаркта миокарда.

The murine MI model is widely recognized in the field of cardiovascular disease, and has consistently been used as a first step to test the efficacy of ...

Primary Outcome Assessment in a Pig Model of Acute Myocardial Infarction

Первичная оценка Результат в Pig модели острого инфаркта миокарда

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are ...

Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration

Инфаркт миокарда у новорожденных мышей, Модель регенерации сердца

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and ...

Improvement of a Closed Chest Porcine Myocardial Infarction Model by Standardization of Tissue and Blood Sampling Procedures

Улучшение модели свинину инфаркт миокарда закрытой груди путем стандартизации процедур отбора проб крови и тканей

Myocardial ischemia reperfusion (I/R) injury contributes to almost half of the necrotic area after myocardial infarction. To date there is no approved ...

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

Криотравма модель для изучения инфаркта миокарда в мыши

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Establishing a Swine Model of Post-myocardial Infarction Heart Failure for Stem Cell Treatment

Создание свиной модели пост-миокарда инфаркт сердечной недостаточности для лечения стволовых клеток

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major ...

Novel Percutaneous Approach for Deployment of 3D Printed Coronary Stenosis Implants in Swine Models of Ischemic Heart Disease

Роман Перкутаный подход к развертыванию 3D печатных коронарных стеноз имплантатов в свиней Модели ишемической болезни сердца

Minimally invasive methods for creating models of focal coronary narrowing in large animals are challenging. Rapid prototyping using three-dimensionally ...

Intramyocardial Transplantation of MSC-Loading Injectable Hydrogels after Myocardial Infarction in a Murine Model

Трансплантация внутримякардных инъекций MSC-Loading инъекционных гидрогелей после инфаркта миокарда в модели Murine

One of the major issues facing current cardiac stem cell therapies for preventing postinfarct heart failure is the low retention and survival rates of ...