Name: myocardial infarction by percutaneous embolization coil deployment in a swine model
Uploaded: 2021-11-04T13:00:00
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Expresamos nuestro agradecimiento al Centro de Medicina Comparada y Bioimagen de Cataluña (CMCiB) y al personal por su contribución a la ejecución del modelo animal. Este trabajo ha contado con el apoyo del Instituto de Salud Carlos III (PI18/01227, PI18/00256, INT20/00052), la Sociedad Española de Cardiología y la Generalitat de Catalunya [2017-SGR-483]. Este trabajo también ha sido financiado por los proyectos Red de Terapia Celular - TerCel [RD16/0011/0006] y CIBER Cardiovascular [CB16/11/00403], en el marco del Plan Nacional de I+D+I, y cofinanciado por el ISCIII-Subdirección General de Evaluación y el Fondo Europeo de Desarrollo Regional (FEDER). El Dr. Fadeuilhe recibió el apoyo de una beca de la Sociedad Española de Cardiología (Madrid, España).

Este estudio ha sido aprobado por el Comité Ético de la Unidad de Experimentación Animal del Instituto de Investigación Sanitaria Germans Trias i Pujol (IGTP) y autoridades gubernamentales (Generalitat de Catalunya; Código: 10558 y 11208), y cumple con todas las directrices relativas al uso de animales en la investigación y la enseñanza según lo definido por la Guía para el Cuidado y Uso de Animales de Laboratorio25.
1. Preparación preprocedural de anima...

<ol>
	<li>Khan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+epidemiology+of+ischemic+heart+disease:+Results+from+the+global+burden+of+disease+study.">Global epidemiology of ischemic heart disease: Results from the global burden of disease study.</a> Cureus. 12 (7), 9349 (2020).</li><li>Bhatt, A. S., Ambrosy, A. P., Velazquez, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adverse+remodeling+and+reverse+remodeling+after+myocardial+infarction.">Adverse remodeling and reverse remodeling after myocardial infarction.</a> Current Cardiology Reports. 19 (8), 71 (2017).</li><li>Verma, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prognostic+implications+of+left+ventricular+mass+and+geometry+following+myocardial+infarction:+The+VALIANT+(VALsartan+In+Acute+myocardial+iNfarcTion)+echocardiographic+study.">Prognostic implications of left ventricular mass and geometry following myocardial infarction: The VALIANT (VALsartan In Acute myocardial iNfarcTion) echocardiographic study.</a> JACC: Cardiovascular Imaging. 1 (5), 582-591 (2008).</li><li>Konstam, M., Kramer, D., Patel, A., Maron, M., Udelson, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+remodeling+in+heart+failure:+current+concepts+in+clinical+significance+and+assessment.">Left ventricular remodeling in heart failure: current concepts in clinical significance and assessment.</a> JACC. Cardiovascular Imaging. 4 (1), 98-108 (2011).</li><li>Srikanth, G., Prakash, P., Tripathy, N., Dikshit, M., Nityanand, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+of+a+rat+model+of+myocardial+infarction+with+a+high+survival+rate:+A+suitable+model+for+evaluation+of+efficacy+of+stem+cell+therapy.">Establishment of a rat model of myocardial infarction with a high survival rate: A suitable model for evaluation of efficacy of stem cell therapy.</a> Journal of Stem Cells and Regenerative Medicine. 5 (1), 30 (2009).</li><li>Wu, Y., Yin, X., Wijaya, C., Huang, M. -. H., McConnell, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+myocardial+infarction+in+rats.">Acute myocardial infarction in rats.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. 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C., Post, M., Simons, M., Annex, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Translational+physiology:+porcine+models+of+human+coronary+artery+disease:+implications+for+pre-clinical+trials+of+therapeutic+angiogenesis.">Translational physiology: porcine models of human coronary artery disease: implications for pre-clinical trials of therapeutic angiogenesis.</a> Journal of Applied Physiology. 94 (5), 1689-1701 (2003).</li><li>Tsang, H. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+of+cardiovascular+disease.">Large animal models of cardiovascular disease.</a> Cell Biochemistry and Function. 34 (3), 113 (2016).</li><li>Dixon, J. A., Spinale, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Large+animal+models+of+heart+failure.">Large animal models of heart failure.</a> Circulation: Heart Failure. 2 (3), 262-271 (2009).</li><li>G&#225;lvez-Mont&#243;n, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transposition+of+a+pericardial-derived+vascular+adipose+flap+for+myocardial+salvage+after+infarct.">Transposition of a pericardial-derived vascular adipose flap for myocardial salvage after infarct.</a> Cardiovascular Research. 91 (4), 659-667 (2011).</li><li>G&#225;lvez-Mont&#243;n, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+two+pre-clinical+myocardial+infarct+models:+coronary+coil+deployment+versus+surgical+ligation.">Comparison of two pre-clinical myocardial infarct models: coronary coil deployment versus surgical ligation.</a> Journal of Translational Medicine. 12, 137 (2014).</li><li>Domkowski, P. W., Hughes, G. C., Lowe, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ameroid+constrictor+versus+hydraulic+occluder:+creation+of+hibernating+myocardium.">Ameroid constrictor versus hydraulic occluder: creation of hibernating myocardium.</a> The Annals of Thoracic Surgery. 69 (6), 1984 (2000).</li><li>Tuzun, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Correlation+of+ischemic+area+and+coronary+flow+with+ameroid+size+in+a+porcine+model.">Correlation of ischemic area and coronary flow with ameroid size in a porcine model.</a> Journal of Surgical Research. 164 (1), 38-42 (2010).</li><li>Weism&#252;ller, P., Mayer, U., Richter, P., Heieck, F., Kochs, M., Hombach, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemical+ablation+by+subendocardial+injection+of+ethanol+via+catheter+-+preliminary+results+in+the+pig+heart.">Chemical ablation by subendocardial injection of ethanol via catheter - preliminary results in the pig heart.</a> European Heart Journal. 12 (11), 1234-1239 (1991).</li><li>Haines, D., Verow, A., Sinusas, A., Whayne, J., DiMarco, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracoronary+ethanol+ablation+in+swine:+characterization+of+myocardial+injury+in+target+and+remote+vascular+beds.">Intracoronary ethanol ablation in swine: characterization of myocardial injury in target and remote vascular beds.</a> Journal of Cardiovascular Electrophysiology. 5 (1), 41-49 (1994).</li><li>Li, K., Wagner, L., Moctezuma-Ramirez, A., Vela, D., Perin, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+robust+percutaneous+myocardial+infarction+model+in+pigs+and+its+effect+on+left+ventricular+function.">A robust percutaneous myocardial infarction model in pigs and its effect on left ventricular function.</a> Journal of Cardiovascular Translational Research. , (2021).</li><li>Eldar, M., Ohad, D., Bor, A., Varda-Bloom, N., Swanson, D., Battler, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+closed-chest+pig+model+of+sustained+ventricular+tachycardia.">A closed-chest pig model of sustained ventricular tachycardia.</a> Pacing and Clinical Electrophysiology : PACE. 17 (10), 1603-1609 (1994).</li><li>Dib, N., Diethrich, E. B., Campbell, A., Gahremanpour, A., McGarry, M., Opie, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+percutaneous+swine+model+of+myocardial+infarction.">A percutaneous swine model of myocardial infarction.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 53 (3), 256-263 (2006).</li><li>National Research Council (US) Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. , (2011).</li><li>Carter, C., Girod, D., Hurwitz, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Percutaneous+cardiac+catheterization+of+the+neonate.">Percutaneous cardiac catheterization of the neonate.</a> Pediatrics. 55 (5), 662-665 (1975).</li><li>Koudstaal, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarction+and+functional+outcome+assessment+in+pigs.">Myocardial infarction and functional outcome assessment in pigs.</a> Journal of Visualized Experiments JoVE. (86), e51269 (2014).</li><li>Kumar, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+myocardial+infarction:+Mainstay+in+clinical+translation.">Animal models of myocardial infarction: Mainstay in clinical translation.</a> Regulatory Toxicology And Pharmacology RTP. 76, 221-230 (2016).</li></ol>

Una bobina desplegada en una arteria coronaria proporciona un modelo de IM preclínico no reperfundido reproducible y consistente en cerdos que se puede utilizar para desarrollar y probar nuevas estrategias terapéuticas cardiovasculares.
En nuestras manos, la mortalidad en el seguimiento fue del 19% relacionada con complicaciones del IM, principalmente dentro de las primeras 24 h del procedimiento. Todas estas muertes están relacionadas con la historia natural del IM no reperfundido y fueron...

El infarto de miocardio (IM) es la causa más prevalente de mortalidad, morbilidad y discapacidad en todo el mundo1. A pesar de los avances terapéuticos actuales, una proporción significativa de pacientes desarrolla remodelación ventricular adversa e insuficiencia cardíaca progresiva después del IM, lo que resulta en un mal pronóstico debido a la disfunción ventricular y la muertesúbita 2,3,4. Por lo tanto, las nuevas opciones terapéuticas para reparar y / o regenerar el miocardio lesionado están bajo escrutinio, y los modelos animales de IM traslacionales son cruciales para probar su seguridad y eficacia. Aunque se han utilizado varios modelos para la investigación cardiovascular, incluidas las ratas 5,6, los ratones 7,8, los perros9 y las ovejas10, los cerdos son una de las mejores opciones para modelar estudios de isquemia cardíaca debido a su alta similitud con los humanos en términos de tamaño del corazón, anatomía de la arteria coronaria, cinética cardíaca, fisiología, metabolismo y el proceso de curación post-IM 11, 12,13,14,15.
En este contexto, se dispone de muchos enfoques quirúrgicos y percutáneos abiertos diferentes para desarrollar modelos porcinos IM. El abordaje de tórax abierto implica un procedimiento de toracotomía lateral izquierda y es útil en la realización de ligadura quirúrgica de la arteria coronaria 16,17, criolesión miocárdica, cauterización12 y colocación de la arteria coronaria de una oclusión hidráulica18 o un constrictor ameroide19, entre otros. La oclusión coronaria quirúrgica se ha utilizado ampliamente para probar nuevas opciones terapéuticas como la ingeniería de tejidos cardíacos y la terapia celular, ya que permite un amplio acceso y evaluación visual del corazón; sin embargo, a diferencia del IM humano, puede resultar en adherencias quirúrgicas, cicatrices adyacentes e inflamación postoperatoria17. La criolesión miocárdica y la cauterización son técnicas fácilmente reproducibles pero no reproducen la progresión fisiopatológica del IM observada en humanos12. Por otro lado, se han desarrollado varias técnicas percutáneas para producir bloqueo coronario temporal o permanente. Estos comprenden la ablación transcoronaria o intracoronariade etanol 20,21, la oclusión por angioplastia con balón22 o la administración de materiales trombogénicos como perlas de gel de agarosa23, mezclasde fibrinógeno 9 o embolización en bobina17,24. Si bien la angioplastia con balón es más adecuada para los estudios de isquemia/reperfusión, el despliegue de la bobina coronaria es una de las mejores opciones para modelar el IM no revascularizado. Este enfoque percutáneo es factible, consistentemente reproducible y evita la cirugía de tórax abierto. Permite un control preciso de la ubicación del infarto y da como resultado una fisiopatología similar a la de un IM humano no reperfundido. Además, la embolización en espiral es adecuada para modelar el IM agudo, subagudo o crónico; insuficiencia cardíaca congestiva crónica; o enfermedad valvular17.
El presente protocolo tiene como objetivo describir cómo desarrollar un modelo porcino MI mediante el despliegue permanente de bobinas. Brevemente, comprende una canulación percutánea selectiva de la arteria coronaria a través del acceso femoral retrógrado. Después de la angiografía coronaria, se despliega una bobina en la arteria de la rama objetivo bajo guía fluoroscópica. Finalmente, la oclusión completa se confirma mediante angiografía coronaria repetida.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>6-F JR4 0-71&#34;guiding catheter</td>
			<td>Medtronic</td>
			<td>LA6JR40</td>
			<td>6F JR4 90 cm Guiding catheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adrenaline 1 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>National Code (NC). 602486</td>
			<td>Adrenaline</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atropine 1 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>NC. 635649</td>
			<td>Atropine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Betadine</td>
			<td>Mylan</td>
			<td>NC. 694109-1</td>
			<td>Povidone iodine solution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bupaq 0.3 mg/mL</td>
			<td>Richter Pharma AG</td>
			<td>NC. 578816.6</td>
			<td>Buprenorphine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexdomitor 0.5 mg/mL</td>
			<td>Orion Pharma</td>
			<td>NC. 576303.3</td>
			<td>Dexmedetomidine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Draxxin</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>NC. 576313.2</td>
			<td>Tulathromycin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EMERALD Guidewire</td>
			<td>Cordis</td>
			<td>502-585</td>
			<td>0.035-inch J-tipped wire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>External defibrillator</td>
			<td>DigiCare</td>
			<td>CS81XVET</td>
			<td>Manual external defibrillator</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fendivia 100 &#181;g/h</td>
			<td>Takeda</td>
			<td>NC. 658524.5</td>
			<td>Fentanyl transdermal patch</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Guidewire Introducer Needle 18 G x 7 cm</td>
			<td>Argon</td>
			<td>GWI1802</td>
			<td>Introducer needle</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparine 1%</td>
			<td>ROVI</td>
			<td>NC. 641647.1</td>
			<td>Heparin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hi-Torque VersaTurn F</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>1013317J</td>
			<td>0.014-inch 200 cm Guidewire</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>IsoFlo</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>50019100</td>
			<td>Isoflurane</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamidor</td>
			<td>Richter Pharma AG,</td>
			<td>NC. 580393.7</td>
			<td>Ketamine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lidocaine 50 mg/mL</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>NC. 645572.2</td>
			<td>Lidocaine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MD8000vet</td>
			<td>Meditech Equipment</td>
			<td>MD8000vet</td>
			<td>Multi-parameter monitor</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Midazolam</td>
			<td>Laboratorios Normon</td>
			<td>NC. 624437.1</td>
			<td>Midazolam</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prelude.6F.11 cm (4.3&#34;).0.035&#34; (0.89 mm).50 cm (19.7&#34;).Double Ended.Stainless Steel.6F.16</td>
			<td>Merit</td>
			<td>PSI-6F-11-035</td>
			<td>6F Vascular sheath</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propovet Multidosis 10 mg/mL</td>
			<td>Zoetis</td>
			<td>NC. 579742.7</td>
			<td>Propofol</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RENEGADE STC-18 150/20/STRAIGHT/1RO</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>M001181370</td>
			<td>150 cm length with 0.017-inch inner diameter Microcatheter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ruschelit</td>
			<td>Teleflex</td>
			<td>112482</td>
			<td>Endotracheal tube with balloon (#6.5)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SPUR II</td>
			<td>Ambu</td>
			<td>325 012 000</td>
			<td>Airway mask bag unit-ventilation (AMBU)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vasofix 20 G</td>
			<td>B.Braun</td>
			<td>4269098</td>
			<td>20 G Cannula</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Visipaque 320 mg/mL USB 10 x 200 mL</td>
			<td>General Electrics</td>
			<td>1177612</td>
			<td>Iodinated contrast medium</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>VortX-18 Diamond 3 mm/3.3 mm</td>
			<td>Boston Scientific</td>
			<td>M0013822030</td>
			<td>Coil</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>WATO EX-35</td>
			<td>Mindray</td>
			<td>WATO EX-35Vet</td>
			<td>Anesthesia machine</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

myocardial infarction by percutaneous embolization coil deployment in a swine model

El infarto de miocardio (IM) es la principal causa de mortalidad en todo el mundo. A pesar del uso de tratamientos basados en la evidencia, incluida la revascularización coronaria y los medicamentos cardiovasculares, una proporción significativa de pacientes desarrolla remodelación patológica del ventrículo izquierdo e insuficiencia cardíaca progresiva después del IM. Por ello, se han desarrollado nuevas opciones terapéuticas, como las terapias celulares y génicas, entre otras, para reparar y regenerar el miocardio lesionado. En este contexto, los modelos animales de IM son cruciales para explorar la seguridad y eficacia de estas terapias experimentales antes de la traducción clínica. Los modelos animales grandes como los cerdos son preferidos sobre los más pequeños debido a la alta similitud de los corazones porcinos y humanos en términos de anatomía de la arteria coronaria, cinética cardíaca y el proceso de curación post-IM. Aquí, nuestro objetivo fue describir un modelo de IM en cerdo mediante el despliegue permanente de bobinas. Brevemente, comprende una canulación percutánea selectiva de la arteria coronaria a través del acceso femoral retrógrado. Después de la angiografía coronaria, la bobina se despliega en la rama objetivo bajo guía fluoroscópica. Finalmente, la oclusión completa se confirma mediante angiografía coronaria repetida. Este enfoque es factible, altamente reproducible y emula la patogénesis del IM humano no revascularizado, evitando la cirugía tradicional de tórax abierto y la posterior inflamación postoperatoria. Dependiendo del momento del seguimiento, la técnica es adecuada para modelos de IM agudos, subagudos o crónicos.

Tasas de supervivencia y ubicación del IM Cincuenta y siete cerdos se sometieron a implantación de bobina coronaria en la rama marginal LCX (n = 25; 12 hembras y 13 machos) o en el LAD entre la primera y la segunda ramas diagonales (n = 32; 16 hembras y 16 machos) de la arteria coronaria y fueron seguidos durante 30 días. La tasa de supervivencia de los animales sometidos a un IM en la rama marginal LCX fue del 80% (n = 20). Tres cerdos murieron como resultado de complicaciones fatales relacionadas...

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Myocardial Infarction by Percutaneous Embolization Coil Deployment in a Swine Model

Los modelos animales de infarto de miocardio (IM) que emulan el proceso natural de la enfermedad en humanos son cruciales para comprender los mecanismos fisiopatológicos y probar la seguridad y eficacia de las nuevas terapias emergentes. Aquí, describimos un modelo porcino MI creado mediante el despliegue de una bobina de embolización percutánea.

Infarto de miocardio por despliegue de bobina de embolización percutánea en un modelo porcino

Myocardial infarction (MI) is the leading cause of mortality worldwide. Despite the use of evidence-based treatments, including coronary revascularization ...

Este protocolo es importante porque permite realizar infarto de miocardio en un modelo animal traslacional, de forma factible y reproducible similar a la humana. La principal ventaja de este procedimiento es que evita la cirugía tradicional de tórax abierto y la posterior inflamación postoperatoria. Y por lo tanto es una de las mejores opciones que imitan el infarto de miocardio humano.Esta técnica es adecuada para modelar el infarto de miocardio y el mayor fracaso dependiendo de la disección del área isquémica. Comience colocando al animal anestesiado en la mesa de operaciones en posición supina y fije las extremidades a la mesa con cinta adhesiva o vendaje. Coloque las sondas de electrocardiograma por vía subcutánea en las extremidades de los animales para registrar los cambios en el segmento ST, las ondas T y la frecuencia cardíaca durante el procedimiento experimental.Coloque el oxímetro de pulso en la lengua o en una esquina del labio del animal y el manguito de presión no invasivo en la extremidad. Mida la temperatura con una sonda esofágica. Limpie el área femoral derecha con jabón quirúrgico seguido de una solución antiséptica de povidona-yodo y alcohol tres veces en condiciones estériles.Lávese las manos quirúrgicamente y use bata estéril y guantes estériles. Luego cubra al animal con una cortina quirúrgica estéril. Enjuague el alambre con punta J de la vaina vascular de la aguja, el catéter guía, el microcatéter de alambre guía y el kit del colector de inyección del medio de contraste con solución salina heparinizada.Localice la bifurcación entre las arterias femorales superficiales y profundas mediante ultrasonido. Coloque el transductor de dos a tres centímetros proximal a la bifurcación en la arteria femoral común y alinee el centro del transductor con la arteria femoral común. Ahora coloque la aguja en el centro del transductor y perfore la arteria a una angulación de aproximadamente 45 grados.Posteriormente, inserte una vaina vascular de seis franceses utilizando la técnica de Seldinger modificada y administre heparina a través de la vaina. Comience insertando el alambre de punta en J en el catéter guía JR4r y avance el cable a través de la vaina hacia la aorta ascendente. Coloque el catéter sobre la superficie valvular.Después de retirar el cable, conecte el catéter al sistema del colector de inyección y purgue todo el sistema. Bajo fluoroscopia, conecte el catéter en la arteria coronaria principal izquierda e inyecte 10 mililitros de medio de contraste yodado para visualizar el sistema coronario izquierdo. Realizar angiogramas en las proyecciones oblicuas anteriores izquierdas de 40 grados y en las proyecciones oblicuas anteriores derechas de 30 grados.Bajo guía fluoroscópica, avance el alambre guía de 0.014 pulgadas premontado en el microcatéter a la arteria coronaria circunfleja media izquierda anterior descendente o circunfleja izquierda distal. Bajo guía fluoroscópica, avance el microcatéter a través del cable hasta la ubicación deseada donde se debe desplegar el implante de bobina. Retire el cable y seleccione la bobina.Entregue la bobina a través de microcatéter e inyecte lentamente cinco mililitros de medio de contraste yodado bajo fluoroscopia para visualizar la posición correcta de la bobina. Coloque el alambre en una rama lateral para realizar inyecciones de control y para garantizar el acceso a la arteria si es necesario implantar una segunda bobina. Espere a que la bobina trombose y ocluya la arteria.57 cerdos se sometieron a implantación de bobina coronaria y su angiografía mostró infarto de miocardio en la rama marginal circunfleja izquierda distal o arteria coronaria descendente anterior izquierda distal. La mortalidad de este modelo estuvo relacionada con el 19% con complicaciones del IM.El análisis por resonancia magnética de la rama marginal circunfleja izquierda y los infartos coronarios descendentes anteriores izquierdos distales se realizó en todos los animales 30 días después del infarto de miocardio. El despliegue de la bobina en la arteria coronaria marginal circunfleja izquierda afectó a la pared lateral del ventrículo izquierdo.Mientras que el tabique intraventricular es la zona más afectada en la colocación coronaria descendente anterior izquierda distal. Las áreas infartadas después del desarrollo de la bobina en la arteria coronaria marginal circunfleja izquierda y la coronaria descendente anterior izquierda distal también se confirmaron después de la seccionamiento cardíaco. Los pasos más importantes incluyen, primero, colocar el microcatéter en la posición correcta.Segundo, elegir el tamaño correcto de la bobina y tercero para entregarlo correctamente. Gracias a este modelo, los investigadores pueden explorar nuevas terapias y estudiar el mecanismo fisiopatológico del infarto de miocardio.

Research

JoVE Journal

Medicine

Acute Myocardial Infarction in Rats

Infarto agudo de miocardio en ratas

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

Investigación

Medicina

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Infarto de miocardio y la evaluación de resultados funcionales en los cerdos

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

A Hydrogel Construct and Fibrin-based Glue Approach to Deliver Therapeutics in a Murine Myocardial Infarction Model.

Un hidrogel Construct y fibrina enfoque basado Pegamento para ofrecer Terapéutica en un infarto de miocardio modelo murino.

The murine MI model is widely recognized in the field of cardiovascular disease, and has consistently been used as a first step to test the efficacy of ...

Primary Outcome Assessment in a Pig Model of Acute Myocardial Infarction

La evaluación de resultado primaria en un modelo porcino de infarto agudo de miocardio

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are ...

Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration

El infarto de miocardio en ratones recién nacidos, un modelo de regeneración cardiaca

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and ...

Improvement of a Closed Chest Porcine Myocardial Infarction Model by Standardization of Tissue and Blood Sampling Procedures

Mejora de un modelo de infarto de miocardio porcino pecho cerrado por normalización del tejido y procedimientos de muestreo de sangre

Myocardial ischemia reperfusion (I/R) injury contributes to almost half of the necrotic area after myocardial infarction. To date there is no approved ...

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

Un modelo de criolesiones para estudiar el infarto de miocardio en el ratón

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Establishing a Swine Model of Post-myocardial Infarction Heart Failure for Stem Cell Treatment

Establecer un modelo porcino de infarto de infarto post-miocardio insuficiencia cardíaca para el tratamiento de células madre

Although advances have been achieved in the treatment of heart failure (HF) following myocardial infarction (MI), HF following MI remains one of the major ...

Novel Percutaneous Approach for Deployment of 3D Printed Coronary Stenosis Implants in Swine Models of Ischemic Heart Disease

Nuevo enfoque percutáneo para el despliegue de implantes de estenosis coronaria impresa en 3D en modelos porcinos de cardiopatía isquémica

Minimally invasive methods for creating models of focal coronary narrowing in large animals are challenging. Rapid prototyping using three-dimensionally ...

Intramyocardial Transplantation of MSC-Loading Injectable Hydrogels after Myocardial Infarction in a Murine Model

Trasplante intramiocardio de hidrogeles inyectables msc-loading después de infarto de miocardio en un modelo murino

One of the major issues facing current cardiac stem cell therapies for preventing postinfarct heart failure is the low retention and survival rates of ...