Name: analyses of actin dynamics, clutch coupling and traction force for growth cone advance
Uploaded: 2021-10-21T15:00:00
Duration: 7 min 53 s
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この研究は、助成金番号21gm0810011h0005(N.I.)の下でAMEDによって部分的にサポートされました。 そしてY.S.)、JSPS KAKENHI(JP19H03223、N.I.)、JSPS早期研究者のための援助助成金(JP19K16258、T.M.)、大阪不治病医学研究財団(T.M.)、NAIST次世代学際研究プロジェクト(Y.S.)

著者らは開示するものは何もない。

本研究で説明したプロトコルは、すべての研究所、研究所、大学で日常的に見られる市販の材料や顕微鏡検査装置を使用しています。したがって、研究者は、現在の単一のスペックルイメージングと牽引力顕微鏡を研究に容易に採用することができます。
スペックルイメージングはアクチン重合とクラッチカップリングを解析できます。さらに、スペックルイメージングは、F-アクチン逆行流と相互作用するshootin1やコルタクチンなどのクラッチ分子の逆行流を監視することができます。TIRF顕微鏡を用いることで、細胞接着分子L1-CAMの逆行流も23,41をモニターすることができる。L1-CAMはクラッチカップリング効率23,41を反映したグリップおよびスリップの挙動を受ける。本研究では、スペックルイメージングにTMR-HaloTagシステムを採用していますが、EGFPや単量体赤色蛍光タンパク質などの他の蛍光タンパク質も分析16,18,20,23,24,27,39で入手可能です。アクチンの斑点を可視化するための基本は、蛍光アクチンの発現量が低く、最小領域の照明である(図2)。このプロトコルでは、ライフアクトおよびハロタグアクチン信号が順次取得されます。アクチン逆行流は比較的遅いため(4.5±0.1 μm/min)24、F-アクチン逆行流量とアクチン重合の解析は、異なる蛍光チャネルの逐次画像取得(〜1秒間隔)の影響を受けません。ライフアクトは広く使用されているF-アクチンマーカーですが、アクチン結合タンパク質47と競合することができます。さらに重要なのは、Lifeactがアクチンダイナミクスを変化させ、それによってF-アクチン構造および細胞形態47,48,49に影響を及ぼす可能性がある。
牽引力顕微鏡は成長コーンの前進を促進する力を検出できる。細胞外マトリックス内にニューロンを取り付けることで、研究者は半3D環境11で発生する力を分析することもできる。高倍率イメージングは、成長コーンが弱い牽引力を生成するため、牽引力を正確に定量するために重要です7。また、ナノピラーやストレス感受性バイオセンサーを用いる他の方法も牽引力50,51を測定するために使用されますが、PAAゲルベースの方法は非常に適応性が高く、アクリルアミドとビスアクリルアミド41,44,52の濃度を変化させることによって基質剛性の調整を可能にします。このプロトコルでは、PAAゲルは3.75%アクリルアミドおよび0.03%ビスアクリルアミドの最終濃度で調製される。ヤング率は~270 Pa22であり、この剛性は脳組織の範囲内(100-10,000 Pa)53,54,55である。PAAゲルの厚さ(〜100 μm)のため、顕微鏡での高倍率レンズの使用を制限します。高倍率画像を得るためには、研究者はレーザー走査型共焦点顕微鏡でズーム機能を使用する必要があります。
結論として、本スペックルイメージングとトラクションフォース顕微鏡は、力世代における主要な事象の定量的分析を可能にする。この情報は、成長コーンの進歩とナビゲーションの根源となるメカニズムの理解を深める上で非常に貴重です。

発達中の脊椎動物の脳では、ニューロンは精巧に組織化された移行を受け、適切なシナプスパートナーに向かって軸索を投影して機能的なニューロンネットワークを確立する1,2,3。神経突起の先端に位置する感覚および運動性構造である成長コーンは、ニューロンの移動と軸索の成長の速度と方向を決定する3,4,5。ニューロンは密集した環境に囲まれているので、成長コーンは6,7を前進させるために自分の環境に対して力を発揮しなければなりません。神経移動と軸索誘導の基礎となるメカニズムを理解するためには、成長コーンアドバンスのための分子力学の分析が不可欠です。
数十年にわたる分析の結果、成長コーンの前進を促進する牽引力は「クラッチ」メカニズムによって生成される。;このメカニズムは、軸索成長コーンだけでなく、ニューロンの移行の主要なプロセス成長コーンでも機能すると考えられている8,9,10,11,12.すなわち、成長コーンのアクチンフィラメント(F-アクチン)は、先端縁で重合し、近位で非重合し、先端膜13,14,15を押し出します。得られた力は、アクトミオシン収縮と併せて、逆行流7、11、16、17、18、19、20、21と呼ばれるF-アクチンの後方移動を誘導する。クラッチおよび細胞接着分子は、F-アクチン逆行流と接着基材との機械的結合を媒介し、Fアクチン流量の力を基質に伝達し、成長コーン前進のための牽引力を発生させる7,8,9,11,12,22 .同時に、アクチンと基質結合はF-アクチンの流速を減少させ、アクチン重合を力に変換して、最先端の膜9,10を突き出します。
軸索の成長コーンは、局所的な化学的手がかりを感知し、成長コーンナビゲーション3,23,24,25のための指向性の原動力にそれらを変換します。例えば、軸索誘導分子ネトリン-1は、大腸癌(DCC)で削除された受容体を刺激し、細胞分裂対照タンパク質42(Cdc42)およびRas関連C3ボツリヌス毒素基質1(Rac1)およびそれらの下流キナーゼp21活性化物1(Pak1)を活性化する。Cdc42及びRac1は1)アクチン重合を促進し、そしてPak1はクラッチ分子shootin122,26をリン酸化する。Shootin1はアクチン結合タンパク質コルクタクチン27を介してF-アクチン逆行流と相互作用する。Shootin1はまた、L1細胞接着分子(L1-CAM)20,24と相互作用する。Shootin1リン酸化は、コルタクチンおよびL1-CAMの結合親和性を増加させ、そしてshootin1媒介した2)クラッチカップリング24,27を増強する。成長コーン内では、ネトリン-1源の側のアクチン重合およびクラッチ結合の非対称活性化が3)牽引力を増加させ、成長コーン旋回のための指向性駆動力を発生させる(図1)24。神経遊び動と軸索誘導に関する過去数十年間の集中的な研究は、ガイダンス分子、それらの受容体、および関連する下流シグナル伝達カスケード2,10,28,29,30の理解を高めました。しかし、成長コーンアドバンスのための力を生成する分子機械は、ちょうど解明され始めています。これは、メカノ生物学的分析のためのプロトコルの限られた使用法に起因する可能性があります。
本研究は、単一のスペックルイメージング16,18によるF-アクチン逆行流をモニタリングするための詳細なプロトコルを説明する。F-アクチン逆行流のモニタリングは、超解像顕微鏡、回転ディスク共焦点顕微鏡、全干渉反射蛍光(TIRF)顕微鏡25,31,32,33,34,35,36,37,38を用いて広範囲に行われてきた。.しかしながら、本研究のプロトコルは、標準的な蛍光顕微鏡を用い、容易に採用可能である11,16,18,20,22,23,24,27,39,40,41,42。Lifeact43によるF-アクチンラベリングと組み合わせると、単一スペックルイメージングにより、アクチン重合速度の定量化と、F-アクチン逆行流と接着基材間のクラッチ結合効率39,42が可能になります。本研究は、蛍光ビーズ埋め込みポリアクリルアミド(PAA)gel11,22,23,24,27,39,41,42,44を用いたトラクション力顕微鏡の詳細なプロトコルについてさらに説明する。この方法は、力誘導ビーズの動き44,45を監視することにより、成長コーン下の牽引力を検出し、定量化する。オープンソースの牽引力分析コードが提供され、成長コーン移行時の牽引力を定量化する方法について詳しく説明します。単一のスペックルのイメージ投射および牽引力顕微鏡の助けによって、成長コーンの移動および運行の基礎となる分子力学を理解することは容易になる。これらの技術は、学習や記憶42において重要であることが知られている樹状脊椎の拡大の基礎となる分子力学を分析するためにも適用可能である。

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	<tbody>
		<tr>
			<td>0.5% trypan blue stain solution</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>29853-34</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-aminopropyltrimethyoxysilane</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>281778-100ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acrylamide monomer</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>00809-85</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ammonium persulphate</td>
			<td>Cytiva</td>
			<td>17-1311-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Axio Observer Z1</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>431007-9902-000</td>
			<td>Epi-fluorescence microscope (single speckle imaging)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>B-27 supplement (50x)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>17504-044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine serum albmine</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A7906-10G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C-Apochromat 63x/1.2 W Corr</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>421787-9970-799</td>
			<td>Objective lens (traction force microscopy)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Coverslip (diameter 18 mm)</td>
			<td>Matsunami</td>
			<td>C018001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-glucose</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>16806-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNaseI</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>DN25-100MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal bovine serum</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>10270-106</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fiji</td>
			<td>Open source software package</td>
			<td>https://imagej.net/software/fiji/</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FluoSpheres carboxylate-modified 0.2 mm, red (580/605), 2% solid</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>F8810</td>
			<td>carboxylate-modified microspheres</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass bottom dish (14 mm diameter)</td>
			<td>Matsunami</td>
			<td>D1130H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass bottom dish (27 mm diameter)</td>
			<td>Matsunami</td>
			<td>D1140H</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glutaraldehyde solution</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G5882-10X10ML</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HaloTag TMR ligand</td>
			<td>Promega</td>
			<td>G8251</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HBO103 W/2</td>
			<td>Osram</td>
			<td>4050300382128</td>
			<td>Mercury lamp (single speckle imaging)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Image Processing Toolbox</td>
			<td>MathWork</td>
			<td>https://www.mathworks.com/products/image.html</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laminin solution from mouse EHS tumor</td>
			<td>Wako</td>
			<td>120-05751</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leibovitz&#8217;s L-15 medium</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>11415064</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-glutamine</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>16919-42</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LSM710</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Conforcal laser microscope (traction force microscopy)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MATLAB2018a</td>
			<td>MathWork</td>
			<td>https://www.mathworks.com/products/new_products/release2018a.html</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse C57BL/6</td>
			<td>Japan SLC</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse neuron nucleofector kit</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>VPG-1001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N,N,N&#8217;,N&#8217;-tetramethylethylenediamine (TEMED)</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>33401-72</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N,N&#8217;-methylenebisacrylamide</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>22402-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Neurobasal medium</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>21103-049</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nucleofector I</td>
			<td>Amaxa</td>
			<td>AAD-1001</td>
			<td>Electroporation apparatus</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ORCA Flash 4.0 V2</td>
			<td>Hamamatsu</td>
			<td>C11440-22CU</td>
			<td>CMOS camera (single speckle imaging)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Papain</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>26036-34</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Parallel Computing Toolbox</td>
			<td>MathWork</td>
			<td>https://www.mathworks.com/products/parallel-computing.html</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pEGFP-C1</td>
			<td>Clontech</td>
			<td>1528177</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-streptomycin (100x)</td>
			<td>Nacalai Tesque</td>
			<td>26253-84</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pFN21A-HaloTag-actin</td>
			<td>(Minegishi et al., 2018)</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphate buffered saline (PBS) pH 7.4 (10x)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>70011-044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Plan-Apochromat 100x/1.4 Oil</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>420790-9901-000</td>
			<td>Objective lens (single speckle imaging)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pmNeonGreen-N1-Lifeact</td>
			<td>(Kastian et al., 2021)</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Poly-D-lysine hydrobromide</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P6407-5MG</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Slulfo-SAMPHA</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>22589</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium dodecyl sulfate</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>08933-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium hydrate (NaOH)</td>
			<td>Nacalai</td>
			<td>31511-05</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Steel ball</td>
			<td>Sako tekkou</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Microshpere to determin PAA gel rigidity. 0.6 mm diameter, 7.87 g/cm3.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZEN2009</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>https://www.zeiss.com/microscopy/us/products/microscope-software/zen.html#introduction</td>
			<td>Image acquisition software (traction force microscopy)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ZEN2012</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td>https://www.zeiss.com/microscopy/us/products/microscope-software/zen.html#introduction</td>
			<td>Image acquisition software (single speckle imaging)</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

analyses of actin dynamics, clutch coupling and traction force for growth cone advance

機能的なネットワークを確立するには、ニューロンは適切な目的地に移行し、そのターゲットセルに向かって軸索を拡張する必要があります。これらのプロセスは、神経突起の先端にある成長コーンの進歩に依存します。軸索成長コーンは、局所的な微小環境を感知し、細胞骨格ダイナミクスとアクチン接着結合(クラッチカップリング)を調節することによって駆動力を発生させます。数十年にわたる研究は、神経移動と軸索誘導を調節するための誘導分子、それらの受容体、および下流シグナル伝達カスケードの同定につながっている。しかし、成長コーンの前進と航行を促進するために力を発生させるために必要な分子機械は、解明され始めたばかりです。神経細胞増殖コーンのリーディングエッジでは、アクチンフィラメントは逆行流を受け、アクチン重合とアクトミオシン収縮によって動力を与えられる。F-アクチン逆行流と粘着基材のクラッチカップリングは成長コーン前進のための牽引力を発生させる。本研究では、単一スペックルイメージングによるF-アクチン逆行流をモニタリングするための詳細なプロトコルについて説明する。重要なことに、FアクチンマーカーLifeactと組み合わせると、この技術は1)F-アクチン重合率と2)F-アクチン逆行流と接着基材との間のクラッチカップリング効率を定量することができます。どちらも、成長コーンアドバンスとナビゲーションのための力を生成するための重要な変数です。さらに、本研究は、成長コーンによって生成される3)牽引力を定量化することができる牽引力顕微鏡の詳細なプロトコルを記述する。したがって、単一のスペックルイメージングと牽引力顕微鏡の解析を結合させることで、研究者は成長コーンの前進とナビゲーションの基礎となる分子力学を監視することができます。

アクチン重合率とクラッチカップリング効率を定量化する単一スペックルイメージング 高いライフアクトの表現は成長コーンの中でFアクチンの視覚化を可能にする;低いHaloTag-アクチン発現は、F-アクチン逆行流のモニタリングを可能にする(図3、 補足ファイル2)。アクチン斑点のトレースは、F-アクチンの流速の測定を可能にする(図3C、D)。F-アクチン逆行流と接着基材の機械的結合はF-アクチンの流速を低下させるため、クラッチカップリング効率は速度から推定できます。さらに、ライフアクトによるF-アクチン標識は、F-アクチン伸長の可視化を補助し、アクチン重合率を定量化するのに有用である(図3E、F)。
牽引力の定量的分析 ここで提示される方法論を厳密に遵守すると、成長コーン下の蛍光ビーズの動きが明らかになります(図6C、補足ファイル4)。基板上に逆行するF-アクチンの逆行流は、成長コーンの下で蛍光ビーズが後方に移動する原因となる牽引力を発生させる。牽引力分析コードは、蛍光ビーズ変位からの牽引力を推定し、算出された牽引力を力ベクトルとして表現する。牽引力の方向と大きさは、力ベクトルのx成分とy成分から決定されます(図8C,D)。図 8D の赤いボックスは、力ベクトルの x 成分と y 成分を表します。図8Cは、対応する成長コーンを示す。x-y 座標の点では、ベクトルは x 軸に対して -93.8° を指します。この方向は、成長コーンの背面に向いています(図8C)。牽引力Fの大きさは次のように計算した。
<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/63227/63227eq02.jpg">
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63227/63227fig01.jpg"> 図1:力発生および成長コーンナビゲーションのための成長コーン機械。 ネトリン-1化学誘起剤勾配は、軸索成長コーン上の受容体DCCの非対称的な刺激を誘発する。これにより、Rac1 と Cdc42、および下流キナーゼ Pak1 がアクティブになります。Rac1およびCdc42は(1)アクチン重合を促進し、一方、Pak1はshootin1をリン酸化し、(2)クラッチカップリングを促進する。成長コーン内のアクチンダイナミクスとクラッチカップリングの非対称的な活性化は、ネトリン-1源の側の(3)牽引力を増加させ、それによって成長コーン引き寄せのための指向性駆動力を生成する。ここで示すプロトコルは、成長コーンナビゲーションのための主要変数(1)-(3)の定量化を可能にする。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/63227fig01large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63227/63227fig02.jpg"> 図2:完全に開いた狭いダイヤフラムの下での神経成長コーンの蛍光画像。成長コーンは、ライフアクトとハロタグアクチンを発現する。 (A)高いライフアクト発現により、成長コーン形態の可視化が可能となる。一方、HaloTag-アクチン発現レベルは非常に低く、ダイヤフラムが完全に開かれたときには薄暗い信号が出ます。(B) 横隔膜が適切に狭くなると、バックグラウンド信号が減少し、成長コーンに単一のアクチン斑点が現れる。スケールバー:5 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/63227fig02large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63227/63227fig3v2.jpg"> 図3:画像処理および解析ソフトウェアフィジーを用いてF-アクチンの流速とアクチン重合速度を定量化するステップ(A)解析のために画像の角度を調整する。(1) F-アクチンバンドルに流れるアクチンスペックル(矢印頭)を見つけて選択します。(2) [イメージ>変換>回転を選択します。(3) Fアクチンバンドルが上向きになるように角度を設定します。(4) 画像の角度が変更されます。(B)アクチンスペックルとF-アクチンバンドルを含む領域をデマルケートする。(1) ツールバーの長方形をクリックします。(2) 画像上の領域をデリエーションする。画像の明るさとコントラストが増加し、アクチンスペックルとF-アクチンバンドルの先端を明確に視覚化できます。(3) 画像>複製を選択します。(4) F-アクチンバンドルにアクチンスペックルフローを示す5つのタイムフレームを入力します。(5) 選択したスタックイメージが画面に表示されます。(C) アクチンのスペックルに円を重ね合わせ(1) ツールバーのオーバルをクリックします。(2) アクチンのスペックルに円を描きます。(3) [画像>オーバーレイ>選択を追加] を選択します。(4) 円が重ねられます。5)残りのアクチン斑点に円を重ねて繰り返します。(D) 5つのタイムフレームの間にアクチン斑点の転座距離を測定する。(1) ツールバーの[直線]をクリックします。(2) 円の中心を結ぶ線を描きます。(3) [メジャー>分析]を選択します。パラメータ高さ(赤いボックス)で示される結果は、アクチンスペックル転座距離を中継する。(E) 5つの時間枠の間のF-アクチン突起の長さの変化を測定する。(1) F-アクチンの突起の先端をリンクする線を描きます。(2) [>測定を分析]を選択します。結果(赤いボックス)、高さ、F-アクチンバンドルの延長長さを示します。(F)アクチン重合率は、F-アクチン流速と伸長速度の和から算出される。補足ファイル 2 も参照してください。補足ファイル3は、調査官が上記の方法論を実践するのを助けます。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/63227fig3v2large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63227/63227fig04.jpg"> 図4:PAAゲル調製のためのステップ。 詳細については、ステップ7.1を参照してください。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/63227fig04large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63227/63227fig05.jpg"> 図5:PAAゲル剛性の測定(A) 微小球のインデント法。蛍光ビーズ埋め込みPAAゲルにマイクロスフィアを置くと、微小球の重量がゲルにくぼみを引き起こします。インデント深度は、微小球(B,C)の下面からPAAゲル表面のZ位置を微小球でインデントし、蛍光ビーズを含むPAAゲルの蛍光画像から差し引いて計算されます。レーザー走査共焦点顕微鏡を用いて、ゲル表面(B)と微小球の底部(C)の画像を撮影した。蛍光ビーズからのシグナルは、インデントされた領域(B、円)のゲル表面では見えません。しかし、それらは微小球の底部で観察することができる。スケールバー: 50 μm. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/63227fig05large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63227/63227fig06.jpg"> 図6:神経成長コーンの強制マッピング (A-C)EGFPで可視化されたPAAゲルおよび神経成長コーンに埋め込まれたビーズの蛍光画像。タイムラプス画像(A)の取得後、SDS溶液を塗布してゲル基板からニューロンを放出し、未訓練の基質内のビーズの画像を取り込んだ(B)。(C) 非訓練基材のビーズの画像は、ビーズを元の(緑色)および変位(赤)位置に示しています。成長コーンのEGFP信号は青色で示される。キモグラフ(右)は、ボックス化された領域1と2の矢印で示される147 sの持続時間の3 s間隔でビーズの動きを示しています。エリア 2 のビードは参照ビードです。スケールバー:(A)、(B)、(C、左)の場合は2μm、(C、中央)は1μm。補足ファイル 4 も参照してください。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/63227fig06large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63227/63227fig07.jpg"> 図7:フィジーを用いた不緊張化基質におけるビーズ画像のx-y位置を補正するためのステップ(A)蛍光ビーズのタイムラプススタック画像と非緊張基板内のビーズ画像を連結する。(1) [イメージ > スタック] を選択>[ツール]> [連結]を選択します。(2)画像1とImage2の蛍光ビーズの未訓練の基質内のビーズ画像と、蛍光ビーズのタイムラプススタック画像をそれぞれ選択します。[OK] をクリックします。(3)非訓練基板中のビーズ画像をタイムラプススタック画像に追加する。(B)蛍光ビーズ像のx-y位置を補正する。(1) スクロールバー(赤枠)を使用して、イメージスタックの2番目のフレーム(赤い矢印)を選択します。(2) StackReg >プラグインを選択します。(3) ドロップダウン リスト(赤枠)から[リジッド ボディ]を選択し、[OK]をクリックします。x-y 位置の補正が開始されます。(C) x-y 位置補正ビードイメージを保存します。x-y 位置補正スタックイメージの最初のフレームを選択した後、(1) [イメージ>複製]を選択します。(2) 範囲に 1 を入力し、「重複スタック」の選択を解除します。次に、[OK] をクリックします。(3)未訓練基板内のx-y位置補正ビーズ画像が画面に表示されます。このイメージを tiff ファイルとして保存します。補足ファイル6は、研究者が上記の方法論を実践するのに助けます。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/63227fig07large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63227/63227fig08.jpg"> 図8:オープンソースの牽引力分析コードを用いたニューロン成長コーン下の牽引力の分析。 (A)牽引力を分析するためのGUI。GUIで選択したタイムラプス画像は、ドロップダウンリストと表示されたスライダー(赤色のボックス)で確認できます。(B) 成長コーンを含むリージョンを選択します。(1) GUIの ROI をクリックします。マウスカーソルで、セルイメージ上の2つの点(矢印)を指定します。(2) セル画像に赤いボックスが表示されます。2 つのクリックで 2 つのコーナーの位置が決まります。(C) 成長円錐の下で検出されたビーズ(白い点)を選択します。(1) GUI で[ ビーズを選択]をクリックし、クリックして成長円錐を含むポリゴン領域を区切ります。 Enter キーを押します。(2) ポリゴン領域内の白い点が赤い色に変わります。(D) 動力力の方向と大きさの計算結果。スプレッドシートの赤いボックスは、力の x 成分と y 成分を表し、牽引力解析によって推定されます。右パネルの x-y 座標では、成長円錐によって生成される力ベクトルは x 軸に対して -93.8° を指します。この方向は、(C)の成長コーンの背面に向けられる。 補足ファイル6 は、研究者が上記の方法論を実践するのに助けます。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/63227fig08large.jpg" target="_blank">この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。</a>
補足ファイル1:この研究で使用されるソリューションとメディアのレシピ。 詳しい使用方法については、テキストを参照してください。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/JoVE%20Review%20-%20Supplemental%20File%201-63227R1.xlsx" target="_blank">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
補足ファイル2:神経成長コーンにおけるハロタグアクチンのライフアクトおよび蛍光スペックルイメージングの蛍光イメージング。 ライフアクト(緑)とハロタグアクチン(マゼンタ)。画像は合計147 sの間、3 sごとに取得されました。スケールバー:2 μm。 図 3. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/JoVE%20Review%20-%20Supplemental%20File%202.mp4" target="_blank">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
補足ファイル3:F-アクチンの流速とアクチン重合速度を定量化するための実践データ。 ライフアクト(緑)とハロタグアクチン(マゼンタ)のマルチチャンネルタイムラプススタック画像。 図 3 も参照してください。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/Supplemental%20file%203.zip" target="_blank">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
補足ファイル4:ニューロン成長コーンでの牽引力を検出する力マッピングビデオ。 ビーズの元の(緑)と変位(赤)の位置。成長コーンのEGFPシグナルは青色で示されています。画像は147 sで3sごとに取得した。スケールバー:2 μm。 図 6 も参照してください。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/JoVE%20Review%20-%20Supplemental%20File%204.mp4" target="_blank">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
補足ファイル5:牽引力分析コード。 詳細な使用方法については、ステップ8.12を参照してください。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/JoVE%20Review%20-%20Supplemental%20file%205.zip" target="_blank">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
補足ファイル6:牽引力を定量化するためのデータを練習します。 成長コーン、EGFP、および明視野下の蛍光ビーズの非訓練基板および単一チャネルタイムラプススタックRGB画像のビーズの単一チャネルRGB画像。 図 7 および 8 も参照してください。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63227/JoVE%20Review%20-%20Supplemental%20file%206.zip" target="_blank">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>

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Analyses of Actin Dynamics, Clutch Coupling and Traction Force for Growth Cone Advance Video (Video) | JoVE

前進するためには、成長コーンは外部環境に対して牽引力を発揮しなければならない。牽引力の生成はアクチンの動態およびクラッチの結合に依存する。本研究では、成長コーンアドバンスのためのアクチンダイナミクス、クラッチカップリングおよび牽引力を分析する方法について説明する。

アクチンダイナミクス、クラッチカップリング、成長コーンアドバンスの牽引力の解析

To establish functional networks, neurons must migrate to their appropriate destinations and then extend axons toward their target cells. These processes ...

単一のスペックルイメージングとトラクションフォース顕微鏡のカップリング解析により、成長コーンの前進とナビゲーションのための分子機械を解析できます。技術としては、市販の材料および標準的な顕微鏡を使用する。研究者は文字通り彼らの研究の技術に適応することができます。インビトロ3の日に培養培地中の1〜2000の希釈でテトラメチルローダミンまたはTMRリガンドでニューロンを治療することから始めます。その後、ニューロンを摂氏37度で5%の二酸化炭素で1時間維持します。インキュベーション後、事前に温めたPBSでTMRリガンドを3回洗浄します。0.5ミリリットルの加温ライボヴィッツのL-15培地をニューロンに加えてPBSを取り除く。ニューロンを摂氏37度で1時間維持します。次に、蛍光顕微鏡をオンにし、状態トップインキュベーターを摂氏37度に設定します。その後、TMRリガンド処理されたニューロンを温めたステージトップインキュベーターのガラス底皿に入れます。Lifeact および HaloTag アクチン蛍光チャネルの場合は 500 ミリ秒の露出時間、ビニングは、50 フレームの 3 秒の時間間隔でピクセルあたり 0.065 ミクロン、0.065 ミクロンとして設定します。ライフアクトを強く発現する成長コーンを選択した後、毎週ハロタグアクチンを表現する。ダイヤフラムのフィールドを閉じて、成長コーンを含む最小領域を照らし、タイムラプス画像を取得します。当日のvitro 3では、培養培地を0.5ミリリットルの加温されたライボヴィッツのL-15培地に置き換え、ニューロンを摂氏37度で1時間維持します。トラクションフォース顕微鏡の場合は、レーザースキャン共焦点顕微鏡をオンにし、ステージトップインキュベーターを摂氏37度に設定します。事前に警告されたステージトップインキュベーターのガラス底皿にニューロンを置きます。メニュースクリプトに記載されているように画像取得パラメータを設定し、強化された緑色蛍光タンパク質またはEGFPを強く発現する成長コーンを選択します。ゲル表面に焦点を合わせ、タイムラプス画像を取得します。完了すると、画像処理ソフトウェアを使用して、単一チャネルタイムラプスRGB画像スタックを生成します。その後、TIFFファイルとして画像を保存します。次に、100マイクロリットルの100マイクロリットルを体積で10%重量のドデシル硫酸ナトリウムまたはSDSを蒸留水に溶解させてガラス底皿に塗布し、基質からニューロンを放出してゲル基板を弛緩させた。その後、温度を安定させるために摂氏37度で5分間、ステージトップインキュベーターで皿をインキュベートします。レーザー走査共焦点顕微鏡では、ゲル表面に焦点を合わせ、訓練されていない基板内のビーズの画像を取得します。訓練されていない基板内のビーズの単一チャネルRGB画像を生成し、tiffファイルとして保存します。トラクションフォース解析コードTFM2021をダウンロードし、MATLABでTFM2021を開きます。メインを開きます。m を TFM2021 で実行します。グラフィカル ユーザー インターフェイスが画面に表示される場合。訓練されていない負荷をクリックし、基板画像を、訓練されていない基板内のX-Y位置補正ビード画像を選択します。蛍光ビーズ画像をロードし、イメージビーズのタイムラプススタックを選択します。次に、明視野画像をロードして明視野のタイムラプススタック画像を選択し、GFP画像のロードを使用してEGFPのタイムラプススタック画像を選択します。グラフィカル ユーザー インターフェイスのドロップダウン リストから、[ROI] をクリックする前に GFP を選択し、表示されるセル イメージ上の 2 つのポイントをクリックして、拡大円錐を含む対象の四角形領域を指定します。完了したら、グラフィカルユーザーインターフェイス上の保存ボタンをクリックして、選択したスタックイメージをROIと一緒にマットファイルに保存します。次に、スポット検出をクリックし、ダイアログボックスに必要な値を入力して、ビード検出のしきい値を決定します。計算を開始するために大丈夫ヒット。計算が終了したら、プロットトラックをクリックして、先ほど選択した領域を拡大し、検出されたビーズを白い点として表示します。成長円錐の下に正しいドットを含むポリゴン領域を区切るために選択ビードを使用します。キーボードの Enter キーを押すと、ポリゴン領域内の白い点が赤に変わります。グラフィカルユーザーインターフェースで推定力をクリックします。次に、原稿で説明されているように、ピクセルサイズとヤング率の値を入力します。ポアソン比の値を0.3とし、推定力を実行して計算を開始します。ソフトウェアは、計算結果をスプレッドシート形式のファイルに保存します。ニューロン成長コーンの蛍光画像は、完全に開いた狭い横隔膜下で成長コーン形態の視覚化を可能にする高いLifeact発現を示した。ハロタグアクチン発現レベルは、薄暗い信号で非常に低かった。横隔膜が適切に狭くなると、バックグラウンド信号が減少し、斑点の単一の行為が成長コーンに現れる。すべてのステップを適切に達成した研究者は、成長コーンにおけるF-アクチン逆行流を観察する。ポリアクリルアミドゲルの剛性は、微小球の重量に起因するインデントの深さを計算することによって求めた。レーザー走査共焦点顕微鏡を用いて、ゲル表面と微小球の底部の画像を撮影した。蛍光ビーズからのシグナルは、インデントされた領域のゲル表面では見えませんでした。ポリアクリルアミドゲルおよび神経成長コーンに埋め込まれたビーズの蛍光画像は、その起源および変位位置におけるビーズを示した。成長コーンのEGFPシグナルも観察された。キモグラフは、ビードの動きを基準ビーズと比較して表示した。単一のスペックルイメージングを行う場合、毎週ニューロンを選択する重要なことは、最小2つの領域の下で行動する方法を表す。牽引力顕微鏡を行う場合、高倍率イメージングは、正確な牽引力の集中のために重要である。

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Analyses of Actin Dynamics, Clutch Coupling and Traction Force for Growth Cone Advance

Labeling F-actin Barbed Ends with Rhodamine-actin in Permeabilized Neuronal Growth Cones

Labeling F-actin Barbed Ends with Rhodamine-actin in Permeabilized Neuronal Growth Cones Video (Video) | JoVE

透過処理神経成長円錐におけるローダミン-アクチンとF -アクチンばら両端にラベルを付ける

The motile tips of growing axons are called growth cones. Growth cones lead navigating axons through developing tissues by interacting with locally ...

Morphometric Analyses of Retinal Sections

Morphometric Analyses of Retinal Sections Video (Video) | JoVE

網膜切片の形態学的解析

Morphometric analyses of retinal sections have been used in examining retinal diseases. For examples, neuronal cells were significantly lost in the ...

Transretinal ERG Recordings from Mouse Retina: Rod and Cone Photoresponses

Transretinal ERG Recordings from Mouse Retina: Rod and Cone Photoresponses Video (Video) | JoVE

マウス網膜からERG Transretinal·レコーディング：ロッドとコーンの光応答

There are two distinct classes of image-forming photoreceptors in the vertebrate retina: rods and cones. Rods are able to detect single photons of light ...

Long-term Behavioral Tracking of Freely Swimming Weakly Electric Fish

Long-term Behavioral Tracking of Freely Swimming Weakly Electric Fish Video (Video) | JoVE

自由水泳弱電気魚の長期的な行動の追跡

Long-term behavioral tracking can capture and quantify natural animal behaviors, including those occurring infrequently. Behaviors such as exploration and ...

Flow Cytometry Protocols for Surface and Intracellular Antigen Analyses of Neural Cell Types

Flow Cytometry Protocols for Surface and Intracellular Antigen Analyses of Neural Cell Types Video (Video) | JoVE

神経細胞型の表面のためのフローサイトメトリーのプロトコルおよび細胞内抗原解析

Flow cytometry has been extensively used to define cell populations in immunology, hematology and oncology. Here, we provide a detailed description of ...

Imaging Ca2+ Dynamics in Cone Photoreceptor Axon Terminals of the Mouse Retina

Imaging Ca2+ Dynamics in Cone Photoreceptor Axon Terminals of the Mouse Retina Video (Video) | JoVE

イメージングカルシウム<sup&gt; 2+</supマウス網膜の光受容コーン軸索末端で&gt;ダイナミクス

Retinal cone photoreceptors (cones) serve daylight vision and are the basis of color discrimination. They are subject to degeneration, often leading to ...

Quantification of Filamentous Actin (F-actin) Puncta in Rat Cortical Neurons

Quantification of Filamentous Actin F-actin Puncta in Rat Cortical Neurons Video (Video) | JoVE

ラット皮質ニューロンにおける繊維状アクチン（F-アクチン）涙点の定量化

Filamentous actin protein (F-actin) plays a major role in spinogenesis, synaptic plasticity, and synaptic stability. Changes in dendritic F-actin rich ...

Peering at Brain Polysomes with Atomic Force Microscopy

Peering at Brain Polysomes with Atomic Force Microscopy Video (Video) | JoVE

原子間力顕微鏡で脳ポリソームでピアリング

The translational machinery, i.e., the polysome or polyribosome, is one of the biggest and most complex cytoplasmic machineries in cells. Polysomes, ...

Microstate and Omega Complexity Analyses of the Resting-state Electroencephalography

Microstate and Omega Complexity Analyses of the Resting-state Electroencephalography Video (Video) | JoVE

微小状態と静止状態の脳波のオメガ複雑さ解析

Microstate and omega complexity are two reference-free electroencephalography (EEG) measures that can represent the temporal and spatial complexities of ...

Visualizing Axonal Growth Cone Collapse and Early Amyloid &#946; Effects in Cultured Mouse Neurons

Visualizing Axonal Growth Cone Collapse and Early Amyloid Î² Effects in Cultured Mouse Neurons Video (Video) | JoVE

軸索の成長円錐の破壊とマウスの培養神経細胞の初期のアミロイド β 効果の可視化

Amyloid-&#946; (A&#946;) causes memory impairments in Alzheimer's disease (AD). Although therapeutics have been shown to reduce A&#946; levels in the ...