Name: terminal h-reflex measurements in mice
Uploaded: 2022-06-16T12:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Terminal H-reflex Measurements in Mice at JoVE.com

يقر المؤلفون بامتنان بالدعم الذي قدمه T. Akay ، جامعة Dalhousie ، خلال زيارة MG إلى مختبره. تم دعم هذا العمل بتمويل من مؤسسة Friebe (T0498/28960/16) و Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG ، مؤسسة الأبحاث الألمانية) - معرف المشروع 431549029 - SFB 1451.

أجريت جميع التجارب وفقا لقوانين رعاية الحيوان الأوروبية والوطنية والمبادئ التوجيهية المؤسسية ، وتمت الموافقة عليها من قبل Landesamt für Natur-، Umwelt- ، und Verbraucherschutz North Rhine-Westphalia (Az: 81-02.04.2019.A309). تم تحسين البروتوكول للفئران البالغة (حوالي 8-16 أسبوعا من الفئران C57Bl / 6J) وتسجيل الأطراف الأمامية. يمكن تكييف...

<ol>
	<li>Palmieri, R. M., Ingersoll, C. D., Hoffman, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Hoffmann+reflex:+methodologic+considerations+and+applications+for+use+in+sports+medicine+and+athletic+training+research.">The Hoffmann reflex: methodologic considerations and applications for use in sports medicine and athletic training research.</a> Journal of Athletic Training. 39 (3), 268-277 (2004).</li><li>Henneman, E., Somjen, G., Carpenter, D. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Excitability+and+inhibitibility+of+motoneurons+of+different+sizes.">Excitability and inhibitibility of motoneurons of different sizes.</a> Journal of Neurophysiology. 28 (3), 599-620 (1965).</li><li>Toda, T., Ishida, K., Kiyama, H., Yamashita, T., Lee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Down-regulation+of+KCC2+expression+and+phosphorylation+in+motoneurons,+and+increases+the+number+of+in+primary+afferent+projections+to+motoneurons+in+mice+with+post-stroke+spasticity.">Down-regulation of KCC2 expression and phosphorylation in motoneurons, and increases the number of in primary afferent projections to motoneurons in mice with post-stroke spasticity.</a> PLoS ONE. 9 (12), 114328 (2014).</li><li>Lee, S., Toda, T., Kiyama, H., Yamashita, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Weakened+rate-dependent+depression+of+Hoffmann&#8217;s+reflex+and+increased+motoneuron+hyperactivity+after+motor+cortical+infarction+in+mice.">Weakened rate-dependent depression of Hoffmann&#8217;s reflex and increased motoneuron hyperactivity after motor cortical infarction in mice.</a> Cell Death &amp; Disease. 5 (1), 1007 (2014).</li><li>Knikou, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+H-reflex+as+a+probe:+Pathways+and+pitfalls.">The H-reflex as a probe: Pathways and pitfalls.</a> Journal of Neuroscience Methods. 171 (1), 1-12 (2008).</li><li>Wieters, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Introduction+to+spasticity+and+related+mouse+models.">Introduction to spasticity and related mouse models.</a> Experimental Neurology. 335, 113491 (2020).</li><li>Pearson, K. G., Acharya, H., Fouad, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+electrode+configuration+for+recording+electromyographic+activity+in+behaving+mice.">A new electrode configuration for recording electromyographic activity in behaving mice.</a> Journal of Neuroscience Methods. 148 (1), 36-42 (2005).</li><li>Akay, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+measurement+of+muscle+denervation+and+locomotor+behavior+in+individual+wild-type+and+ALS+model+mice.">Long-term measurement of muscle denervation and locomotor behavior in individual wild-type and ALS model mice.</a> Journal of Neurophysiology. 111 (3), 694-703 (2014).</li><li>Haghighi, S. S., Green, D. K., Oro, J. J., Drake, R. K., Kracke, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Depressive+effect+of+isoflurane+anesthesia+on+motor+evoked+potentials.">Depressive effect of isoflurane anesthesia on motor evoked potentials.</a> Neurosurgery. 26 (6), 993 (1990).</li><li>Chang, H. -. Y., Havton, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+effects+of+urethane+and+isoflurane+on+external+urethral+sphincter+electromyography+and+cystometry+in+rats.">Differential effects of urethane and isoflurane on external urethral sphincter electromyography and cystometry in rats.</a> American Journal of Physiology-Renal Physiology. 295 (4), 1248-1253 (2008).</li><li>Nolan, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Section+4:+Nervous+system+(Br.+J.+Pharmacol).">Section 4: Nervous system (Br. J. Pharmacol).</a> Clinical pharmacology. , 295-310 (2012).</li><li>Struck, M. B., Andrutis, K. A., Ramirez, H. E., Battles, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+a+short-term+fast+on+ketamine-xylazine+anesthesia+in+rats.">Effect of a short-term fast on ketamine-xylazine anesthesia in rats.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science: JAALAS. 50 (3), 344-348 (2011).</li><li>Zandieh, S., Hopf, R., Redl, H., Schlag, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+ketamine/xylazine+anesthesia+on+sensory+and+motor+evoked+potentials+in+the+rat.">The effect of ketamine/xylazine anesthesia on sensory and motor evoked potentials in the rat.</a> Spinal Cord. 41 (1), 16-22 (2003).</li></ol>

على عكس قياسات H-reflex عبر الجلد الموصوفة سابقا في الماوس6 ، فإننا نقدم قياسا مباشرا وخاصا بالأعصاب. يمكن تطبيق هذا النهج الجديد على أعصاب الأطراف الأمامية والخلفية (على سبيل المثال ، الأعصاب المتوسطة والزندية والشعاعية والأعصاب الظنبوبية والوركية ، على التوالي) ، مما يجعل هذه ?...

يمكن استحضار منعكس هوفمان (H-reflex) ، الذي سمي على اسم عالم الفسيولوجيا بول هوفمان ، عن طريق التحفيز الكهربائي للأعصاب الطرفية ، التي تحمل محاور عصبية من الخلايا العصبية الحسية والحركية الناشئة عن العضلات نفسها وتؤدي إليها. إنه التناظرية المستحثة كهربائيا لمنعكس التمدد أحادي المشبك ، ويشترك في نفس المسار1. على عكس تمدد العضلات ، ينتج رد الفعل H عن التحفيز الكهربائي. عندما يتم تحفيز الأعصاب الطرفية كهربائيا عند شدة تيار منخفضة ، عادة ما يتم إزالة استقطاب ألياف Ia الواردة أولا بسبب قطرها المحوري الكبير2. تثير إمكانات عملها الخلايا العصبية الحركية ألفا (αMNs) في الحبل الشوكي ، والتي بدورها تثير جهود الفعل التي تنتقل عبر محاور αMN نحو العضلات (الشكل 1). يولد هذا الشلال استجابة عضلية بسعة صغيرة ، تنعكس في ما يسمى بالموجة H. من خلال زيادة شدة التحفيز تدريجيا ، تزداد سعة الموجة H بسبب توظيف وحدات حركية إضافية. من شدة تحفيز معينة ، يتم استنباط إمكانات الفعل في المحاور الرقيقة ل αMNs مباشرة ، والتي يتم تسجيلها على أنها الموجة M. تظهر هذه الموجة M بزمن انتقال أقصر من الموجة H (الشكل 2). إذا زادت شدة التحفيز ، تصبح سعة الموجة M أكبر بسبب تجنيد المزيد من محاور αMN ، بينما تصبح الموجة H أصغر تدريجيا. يمكن قمع الموجة الهيدروجينية عند شدة تحفيز عالية بسبب الانتشار العكسي المضاد لجهود الفعل في محاور αMN. تتصادم جهود الفعالية المحفزة هذه مع تلك الناتجة عن تحفيز Ia وبالتالي يمكن أن تلغي بعضها البعض. عند شدة التحفيز فوق القصوى ، تحدث إمكانات العمل التقويمية (نحو العضلات) والمضادة للاضطراب (نحو الحبل الشوكي) في جميع محاور MN. الأول يؤدي إلى أقصى سعة للموجة M (Mmax) ، في حين أن الأخير يؤدي إلى الإلغاء الكامل ل H-reflex3.
لتقييم التشنج بعد السكتة الدماغية (PSS) أو إصابة الحبل الشوكي (SCI) ، تم استخدام منعكس H لتقييم الأساس العصبي للحركة والتشنج لدى البشر1. يتم تحقيق تقدير كمي محسن للتغير في منعكس H بين القياسات وبين الموضوعات باستخدام نسبة الموجة H و M (نسبة H / M). بدلا من ذلك ، يتم قياس الاكتئاب المعتمد على المعدل (RDD) ، باستخدام مجموعة من الترددات الصاعدة (على سبيل المثال ، 0.1 و 0.5 و 1.0 و 2.0 و 5.0 هرتز). يعكس RDD سلامة الدوائر المثبطة التي قد تزعجها السكتة الدماغية أو اصابات النخاع الشوكي. عندما تكون جميع الدوائر العصبية سليمة ، يكون هناك قمع موحد ومستقل عن التردد لمنعكس H. ومع ذلك ، إذا كان هناك انخفاض في تثبيط الأعصاب نتيجة للسكتة الدماغية أو اصابات النخاع الشوكي ، فإن قمع رد الفعل H يتناقص مع زيادة تردد التحفيز4.
يمكن أن يكون التسجيل الكهربي الصحيح باستخدام الأقطاب الكهربائية السطحية أمرا صعبا وقد يتأثر بالمهام الحركية والآليات المثبطة واستثارة αMN5. في التسجيل عبر الجلد في القوارض ، يتم وضع قطب تحفيز بالقرب من العصب الظنبوبي ، ويتم وضع قطب تسجيل بالقرب من العضلات ذات الصلة في المقدمة. وفقا لتجربتنا ، ومع ذلك ، فإن الموضع الصحيح للأقطاب الكهربائية عبر الجلد (الشكل 1A) هو أكثر تعقيدا ومتغيرا في القوارض من وضع القطب السطحي في البشر. يمكن أن يؤدي ذلك إلى اختلافات في الطول والتردد وشدة التحفيز اللازمة لاستنباط منعكس H. يمكن أن تفسر هذه التحديات المنهجية سبب وجود عدد محدود جدا من دراسات قياس H-reflex (على سبيل المثال ، في نماذج السكتة الدماغية التجريبية 3,4 ، ونماذج التشنج الأخرى6. يمكن تحقيق تحفيز دقيق (طويل الأجل) وتسجيل منعكس H على الأعصاب الفردية ، من حيث المبدأ ، باستخدام أقطاب كهربائية قابلة للزرع تحيط بالعصب المستهدف 7,8. بسبب الجراحة الصعبة مع الآثار الجانبية المحتملة للحيوان وعدم الاستقرار المحتمل للمسبار ، لم يصبح هذا النهج معيارا في هذا المجال. تتطلب الطريقة المعروضة هنا أيضا بعض الخبرة الجراحية. ومع ذلك ، فإنه يسمح بتحفيز وتسجيل جديد ودقيق للأعصاب المعزولة في الجسم الحي باستخدام شدة تحفيز منخفضة ، مما يتجنب التحفيز المتزامن للأعصاب المجاورة.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Absorbent underpad</td>
			<td>VWR</td>
			<td>115-0684</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AD converter</td>
			<td>Cambridge Electronic Design, UK</td>
			<td>CED 1401micro</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amplifier</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital stimulator</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>MS 501</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EMG electrodes</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td></td>
			<td>Two twisted, insulated copper wires (50 &#181;m outer diameter) were soldered to a male plug and connected to a differential amplifier.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye ointment</td>
			<td>Bayer</td>
			<td>Bepanthen</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass pipette</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>-</td>
			<td>Prepare a glass pipette bent into a simple glass hook in the flame of a Bunsen burner.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating box</td>
			<td>MediHeat</td>
			<td>MediHeat V1200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating pad</td>
			<td>WPI</td>
			<td>61840 Heating pad</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hook electrodes</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>-</td>
			<td>To produce the electrodes, bend stainless steel miniature pins into hooks at one end and insert into blunt cannulas to create direct mechanical contact. Solder the end of the cannula to copper wires (length approx. 50 cm), which are connected to either stimulation or recording device.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>Ketavet</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rectal probe</td>
			<td>WPI</td>
			<td>RET-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stimulator isolation unit</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>MI 401</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterilizer</td>
			<td>CellPoint Scientific</td>
			<td>Germinator 500</td>
			<td>Routine pre- and post-operative disinfection of the surgical equipment should be done by heat sterilization. Decontaminate instruments for 15 s in the heated glass bead bath (260&#176;C).</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Temperature controller</td>
			<td>WPI</td>
			<td>ATC200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vaseline</td>
			<td>Bayer</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine</td>
			<td>Bayer</td>
			<td>Rompun</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

terminal h-reflex measurements in mice

يسمح منعكس هوفمان (H-reflex) ، كنظير كهربائي لمنعكس التمدد ، بالتحقق من صحة الفيزيولوجيا الكهربية لسلامة الدوائر العصبية بعد الإصابات مثل تلف الحبل الشوكي أو السكتة الدماغية. زيادة استجابة H-reflex ، جنبا إلى جنب مع أعراض مثل تقلصات العضلات غير الطوعية ، ومنعكس التمدد المعزز بشكل مرضي ، وفرط التوتر في العضلات المقابلة ، هو مؤشر على التشنج بعد السكتة الدماغية (PSS).
على عكس القياسات عبر الجلد غير المحددة للأعصاب ، نقدم هنا بروتوكولا لتحديد منعكس H مباشرة في الأعصاب الزندية والمتوسطة للمقدمة الأمامية ، والتي تنطبق ، مع تعديلات طفيفة ، على العصب الظنبوبي والوركي للمخلب الخلفي. استنادا إلى التحفيز المباشر والتكيف مع الأعصاب المختلفة ، تمثل الطريقة أداة موثوقة ومتعددة الاستخدامات للتحقق من صحة التغيرات الفيزيولوجية الكهربية في نماذج الأمراض المرتبطة بالتشنج.

من n = 15 تجربة تحفيز لكل تردد تحفيز ومخلب ، حدد n = 10 تسجيلات ناجحة على الأقل للتحليل. يتم استبعاد التجارب التي تحتوي على أخطاء في القياس (على سبيل المثال ، الموجة M المفقودة) من التحليل. قم بتحليل كل تجربة على حدة وقم بإنشاء متوسط لمقارنات المجموعة / الوقت لاحقا. يتم تسجيل زمن الانتقال بين التحف...

Watch this Scientific Journal Video about Terminal H-reflex Measurements in Mice at JoVE.com

Terminal H-reflex Measurements in Mice

التقييم السريري للتشنج على أساس منعكس هوفمان (H-reflex) واستخدام التحفيز الكهربائي للأعصاب الطرفية هو طريقة راسخة. هنا ، نقدم بروتوكولا لتحفيز العصب الطرفي والمباشر للقياس الكمي المنعكس H في مقدمة الفأر.

قياسات منعكس H الطرفي في الفئران

The Hoffmann reflex (H-reflex), as an electrical analog to the stretch reflex, allows electrophysiological validation of the integrity of neural circuits ...

يسمح منعكس H بالتحقق من صحة الفيزيولوجيا الكهربية لسلامة الدوائر العصبية. نقدم بروتوكولا طرفيا لتحديد منعكس H مباشرة على أعصاب مقدمة القدم في الفئران. تختلف النتائج عن التسجيلات التقليدية عبر الجلد غير المحددة للأعصاب ، وتكون النتائج أقل تباينا بين الفئران وأيام القياس.على غرار تسجيلات H-reflex في المرضى ، حيث يسمح القياس الكمي الدقيق بالتوصيف الفيزيولوجي الكهربي في نماذج المرض ، مثل إصابة الحبل الشوكي والسكتة الدماغية. يتطلب البروتوكول مهارات تجريبية قوية في العمل مع معدات الجراحة في الفئران.إذا لم تكن متأكدا من كيفية فصل الأعصاب عن النسيج الضام والأوعية الدموية ، فتدرب أولا. سيتم توضيح الإجراء من قبل فريدريك ويترز ، طالب دكتوراه من مختبري. للبدء ، ضع ماوس C57 black / 6J المخدر البالغ من العمر 8 إلى 16 أسبوعا على وسادة التدفئة المغطاة وانتظر حتى يهدأ الماوس ، ويكون التنفس مستقرا ، وتغيب ردود الفعل.أدر الماوس على ظهره. ثم ، إصلاح forepaws مع الشريط. ضع الشريط بحيث يتم إدخال أقطاب القياس بسهولة في المقدمة.لقياس درجة حرارة الماوس ، أدخل مسبارا مستقيميا وثبته بشريط. ضع مرهم العين لمنع جفاف العينين. قم بإزالة الفراء بعناية باستخدام مقص ناعم مستدير أثناء رفع الجلد بالملاقط.بعد ذلك ، قم بعمل شق طوله سنتيمتر واحد في الجلد على طول المحور البطني الخلفي للمقدمة باستخدام مقص دقيق مستدير. قم بإزالة النسيج الضام بعناية وكشف الجزء السفلي من العضلات والأعصاب. ثم قم بإزالة العضلة الصدرية العميقة المكشوفة باستخدام ملقط لتقييم العصب المتوسط.قم بإزالة كميات صغيرة من الدم وسوائل الأنسجة باستخدام المناديل الورقية الرخوة. بعد ذلك ، قم بقطع الثدي أو العضلات الإبطية بعناية من أعلى إلى أسفل لفضح الحزمة العصبية. حرر الحزمة العصبية من النسيج الضام والعضلي على طول 1.5 سم تقريبا.افصل العصب الزندي والمتوسط للمقدمة بعناية باستخدام ماصة زجاجية منحنية. العصب العلوي هو العصب الزندي والسفلي هو العصب المتوسط. رتب أقطاب خطاف المحفز بالتوازي على مسافة 0.5 إلى ملليمتر واحد واستخدم مناولة دقيقة لوضع الخطاف المزدوج بالقرب من العصب.استخدم الخطاف الزجاجي لرفع العصب الزندي على أقطاب خطاف التحفيز. ثم اسحب القطب مع العصب وافصله عن الأعصاب الأخرى. ضع الأقطاب الكهربائية على طول المحور الطويل للمخلب لتقليل الحديث المتبادل بين العضلات.قم بتجفيف خطافات القطب الكهربائي المتصلة بالعصب بشكل سطحي وتطبيق الفازلين باستخدام حقنة لتوفير العزل الكهربائي من الأنسجة المجاورة. لقياس H-reflex ، ضع أقطاب تخطيط كهربية العضل في مقدمة المخلب. ثم ضع القطب المرجعي تحت الجلد في الطرف الخلفي ، ممسكا بمشبك تمساح مصغر.عند تشغيل المحفز ، لاحظ التحفيز الناجح كتشنجات صغيرة من المقدمة. الحد الأدنى من تيار التحفيز لاستنباط الموجة M والتشنجات المرئية الصغيرة في مقدمة المخلب تتراوح بين 10 إلى 50 ميكروأمبير. قم بإجراء تحفيز العصب 15 مرة بنبضات طولها 0.2 مللي ثانية لكل منها.مع توقف لمدة دقيقتين بين مجموعات المنبهات ، يزداد التردد من 0.1 ، 0.5 ، 1.0 ، 2.0 ، إلى 5 هرتز. يوضح هنا الرسم التوضيحي للتسجيل الذي تم إعداده في مسارات لقياس منعكس هوفمان واستجابة العضلات. تم تقييم النسبة بين سعة الموجة H و M.تم ضبط التحفيز وقطعة التحفيز الخاصة به عند صفر مللي ثانية ، تليها الموجة M المباشرة والقمة الأصغر اللاحقة التي تمثل الموجة H. تحدث الموجة M بعد حوالي ميلي ثانية من التحفيز ، والموجة H بعد ستة إلى ثمانية أجزاء من الثانية بسبب وقت العبور الأطول عبر الحبل الشوكي. بجانب فصل الأعصاب ، يعد تطبيق الفازلين على القطب وكذلك بين الخطافين أمرا بالغ الأهمية.هذه تجربة نهائية. في مختبرنا ، قدمت هذه التقنية مرجعا قياسيا ذهبيا جديدا لتسجيلات H-reflex عبر الجلد.

Research

JoVE Journal

Biology

A Reversible, Non-invasive Method for Airway Resistance Measurements and Bronchoalveolar Lavage Fluid Sampling in Mice

A عكسية ، غير الغازية طريقة لقياس مقاومة مجرى الهواء وأخذ عينات السوائل غسل القصبات في الفئران

Airway hyperreactivity (AHR) measurements and bronchoalveolar lavage (BAL) fluid sampling are essential to experimental asthma models, but repeated ...

Transverse Aortic Constriction in Mice

المستعرضة في انقباض الأورطي الفئران

Transverse aortic constriction (TAC) in the mouse is a commonly used experimental model for pressure overload-induced cardiac hypertrophy and heart ...

Ambulatory ECG Recording in Mice

الإسعافية ECG التسجيل في الفئران

Telemetric ECG recording in mice is essential to understanding the mechanisms behind arrhythmias, conduction disorders, and sudden cardiac death. Although ...

Examination of Drosophila Larval Tracheal Terminal Cells by Light Microscopy

Examination of Drosophila Larval Tracheal Terminal Cells by Light Microscopy

فحص<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; اليرقات الخلايا الطرفية الرغامي بواسطة المجهر الضوئي

Cell shape is critical for cell function. However, despite the importance of cell morphology, little is known about how individual cells generate specific ...

Cytosolic Calcium Measurements in Renal Epithelial Cells by Flow Cytometry

قياس الكالسيوم عصاري خلوي في الخلايا الظهارية الكلوية بواسطة التدفق الخلوي

A variety of cellular processes, both physiological and pathophysiological, require or are governed by calcium, including exocytosis, mitochondrial ...

Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs

غير الطرفية تقنيات أخذ العينات الدم في غينيا الخنازير

Guinea pigs possess several biological similarities to humans and are validated experimental animal models1-3. However, the use of guinea pigs currently ...

Functional Reconstitution and Channel Activity Measurements of Purified Wildtype and Mutant CFTR Protein

إعادة إعماره الوظيفية وآخر قناة قياسات تنقية Wildtype والمسخ CFTR البروتين

The Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator (CFTR) is a unique channel-forming member of the ATP Binding Cassette (ABC) superfamily of ...

Contractility Measurements on Isolated Papillary Muscles for the Investigation of Cardiac Inotropy in Mice

انقباض القياسات على العضلات الحليمية معزولة للتحقيق في القلب Inotropy في الفئران

Papillary muscle isolated from adult mouse hearts can be used to study cardiac contractility during different physiological/pathological conditions. The ...

Cystometric and External Urethral Sphincter Measurements in Awake Rats with Implanted Catheter and Electrodes Allowing for Repeated Measurements

قياسات العضلة العاصرة الاحليل سيستوميتريك والخارجية في الفئران مستيقظا مع القسطرة مزروع واقطاب السماح للقياسات المتكررة

Lower urinary tract function is mainly assessed by means of cystometric bladder function analysis in rodents. Conventional cystometries are usually ...

Measurements of Physiological Stress Responses in C. Elegans

Measurements of Physiological Stress Responses in C. Elegans

قياسات استجابات الإجهاد الفسيولوجي في C. Elegans

Organisms are often exposed to fluctuating environments and changes in intracellular homeostasis, which can have detrimental effects on their proteome and ...