Name: terminal h-reflex measurements in mice
Uploaded: 2022-06-16T12:30:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Terminal H-reflex Measurements in Mice at JoVE.com

저자는 MG가 그의 연구실을 방문하는 동안 Dalhousie University의 T. Akay의 지원에 감사드립니다. 이 작업은 Friebe Foundation(T0498/28960/16) 및 Deutsche Forschungsgemeinschaft(DFG, 독일 연구 재단) - Project-ID 431549029 - SFB 1451의 자금 지원으로 지원되었습니다.

모든 실험은 유럽 및 국가 동물 보호법과 제도적 지침에 따라 수행되었으며 Landesamt für Natur-, Umwelt-, und Verbraucherschutz North Rhine-Westphalia(Az: 81-02.04.2019.A309)의 승인을 받았습니다. 이 프로토콜은 성인 마우스(약 8-16주령 C57Bl/6J 마우스) 및 앞다리 기록에 최적화되어 있습니다. 뒷다리의 각 신경을 자극하고 뒷발 근육을 기록하여 쉽게 적응할 수 있습니다(그림 1B). 기록 및 자극 전?...

<ol>
	<li>Palmieri, R. M., Ingersoll, C. D., Hoffman, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Hoffmann+reflex:+methodologic+considerations+and+applications+for+use+in+sports+medicine+and+athletic+training+research.">The Hoffmann reflex: methodologic considerations and applications for use in sports medicine and athletic training research.</a> Journal of Athletic Training. 39 (3), 268-277 (2004).</li><li>Henneman, E., Somjen, G., Carpenter, D. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Excitability+and+inhibitibility+of+motoneurons+of+different+sizes.">Excitability and inhibitibility of motoneurons of different sizes.</a> Journal of Neurophysiology. 28 (3), 599-620 (1965).</li><li>Toda, T., Ishida, K., Kiyama, H., Yamashita, T., Lee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Down-regulation+of+KCC2+expression+and+phosphorylation+in+motoneurons,+and+increases+the+number+of+in+primary+afferent+projections+to+motoneurons+in+mice+with+post-stroke+spasticity.">Down-regulation of KCC2 expression and phosphorylation in motoneurons, and increases the number of in primary afferent projections to motoneurons in mice with post-stroke spasticity.</a> PLoS ONE. 9 (12), 114328 (2014).</li><li>Lee, S., Toda, T., Kiyama, H., Yamashita, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Weakened+rate-dependent+depression+of+Hoffmann&#8217;s+reflex+and+increased+motoneuron+hyperactivity+after+motor+cortical+infarction+in+mice.">Weakened rate-dependent depression of Hoffmann&#8217;s reflex and increased motoneuron hyperactivity after motor cortical infarction in mice.</a> Cell Death &amp; Disease. 5 (1), 1007 (2014).</li><li>Knikou, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+H-reflex+as+a+probe:+Pathways+and+pitfalls.">The H-reflex as a probe: Pathways and pitfalls.</a> Journal of Neuroscience Methods. 171 (1), 1-12 (2008).</li><li>Wieters, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Introduction+to+spasticity+and+related+mouse+models.">Introduction to spasticity and related mouse models.</a> Experimental Neurology. 335, 113491 (2020).</li><li>Pearson, K. G., Acharya, H., Fouad, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+electrode+configuration+for+recording+electromyographic+activity+in+behaving+mice.">A new electrode configuration for recording electromyographic activity in behaving mice.</a> Journal of Neuroscience Methods. 148 (1), 36-42 (2005).</li><li>Akay, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+measurement+of+muscle+denervation+and+locomotor+behavior+in+individual+wild-type+and+ALS+model+mice.">Long-term measurement of muscle denervation and locomotor behavior in individual wild-type and ALS model mice.</a> Journal of Neurophysiology. 111 (3), 694-703 (2014).</li><li>Haghighi, S. S., Green, D. K., Oro, J. J., Drake, R. K., Kracke, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Depressive+effect+of+isoflurane+anesthesia+on+motor+evoked+potentials.">Depressive effect of isoflurane anesthesia on motor evoked potentials.</a> Neurosurgery. 26 (6), 993 (1990).</li><li>Chang, H. -. Y., Havton, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+effects+of+urethane+and+isoflurane+on+external+urethral+sphincter+electromyography+and+cystometry+in+rats.">Differential effects of urethane and isoflurane on external urethral sphincter electromyography and cystometry in rats.</a> American Journal of Physiology-Renal Physiology. 295 (4), 1248-1253 (2008).</li><li>Nolan, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Section+4:+Nervous+system+(Br.+J.+Pharmacol).">Section 4: Nervous system (Br. J. Pharmacol).</a> Clinical pharmacology. , 295-310 (2012).</li><li>Struck, M. B., Andrutis, K. A., Ramirez, H. E., Battles, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+a+short-term+fast+on+ketamine-xylazine+anesthesia+in+rats.">Effect of a short-term fast on ketamine-xylazine anesthesia in rats.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science: JAALAS. 50 (3), 344-348 (2011).</li><li>Zandieh, S., Hopf, R., Redl, H., Schlag, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+ketamine/xylazine+anesthesia+on+sensory+and+motor+evoked+potentials+in+the+rat.">The effect of ketamine/xylazine anesthesia on sensory and motor evoked potentials in the rat.</a> Spinal Cord. 41 (1), 16-22 (2003).</li></ol>

마우스(6)에서 이전에 기술된 경피적 H-반사 측정과 대조적으로, 본 발명자들은 보다 직접적이고 신경-특이적인 측정을 제공한다. 이 새로운 접근법은 전지 및 뒷다리의 신경(예: 각각 정중, 척골 및 요골 신경, 경골 및 좌골 신경)에 적용할 수 있으며, 이 방법을 많은 질병 모델(예: 뇌졸중, 다발성 경화증, 근위축성 측삭 경화증, 외상성 뇌 손상 및 척수 손상)에 대한 진단 도구로 ?...

생리학자 Paul Hoffmann의 이름을 딴 Hoffmann 반사(H-반사)는 동일한 근육에서 발생하고 동일한 근육으로 이어지는 감각 및 운동 뉴런의 축삭을 운반하는 말초 신경의 전기 자극에 의해 유발될 수 있습니다. 이것은 단시냅스 스트레치 반사의 전기적으로 유도된 유사체이며 동일한 경로1을 공유합니다. 근육 스트레칭과 달리 H-반사는 전기 자극으로 인해 발생합니다. 말초 신경이 낮은 전류 강도에서 전기적으로 자극될 때, Ia 구심성 섬유는 일반적으로 큰 축삭 직경2로 인해 먼저 탈분극됩니다. 이들의 활동 전위는 척수의 알파 운동 뉴런(αMN)을 자극하고, 이는 차례로 αMN 축삭을 따라 근육으로 이동하는 활동 전위를 유도합니다(그림 1). 이 캐스케이드는 소위 H-파에 반영된 작은 진폭으로 근육 반응을 생성합니다. 자극 강도를 점진적으로 증가시킴으로써, H- 파의 진폭은 추가 운동 유닛의 모집으로 인해 증가한다. 특정 자극 강도에서 αMN의 더 얇은 축삭의 활동 전위가 직접 유도되며, 이는 M파로 기록됩니다. 이 M파는 H파보다 대기 시간이 짧습니다(그림 2). 자극 강도가 더 증가하면 더 많은 αMN 축삭의 모집으로 인해 M파의 진폭이 커지는 반면 H파는 점차 작아집니다. H-파는 αMN 축삭에서 활동 전위의 항드로믹 역전파로 인해 높은 자극 강도에서 억제될 수 있습니다. 이러한 유발 된 활동 전위는 Ia 자극의 활동 전위와 충돌하여 서로를 상쇄 할 수 있습니다. 극대 자극 강도에서 orthodromic(근육을 향한) 및 antidromic(척수를 향한) 활동 전위는 모든 MN 축삭에서 발생합니다. 전자는 최대 M-파 진폭(Mmax)을 발생시키는 반면, 후자는 H-반사3을 완전히 폐지합니다.
뇌졸중 후 경직(PSS) 또는 척수 손상(SCI)의 평가를 위해 H-반사를 사용하여 인간의 운동 및 경직의 신경 기초를 평가했습니다1. 측정 사이와 피험자 사이의 H-반사 변화에 대한 개선된 정량화는 H-파와 M-파의 비율(H/M 비율)을 사용하여 달성됩니다. 대안적으로, 속도 의존적 우울증(RDD)은 일련의 상승 주파수(예를 들어, 0.1, 0.5, 1.0, 2.0 및 5.0Hz)를 사용하여 측정된다. RDD는 뇌졸중 또는 SCI에 의해 방해받을 수 있는 억제 회로의 무결성을 반영합니다. 모든 신경 회로가 손상되지 않으면 H- 반사가 균일하고 주파수에 관계없이 억제됩니다. 그러나 뇌졸중이나 SCI의 결과로 신경 억제가 감소하면 자극 빈도가 증가함에 따라 H 반사의 억제가 감소한다4.
표면 전극을 이용한 정확한 전기생리학적 기록은 어려울 수 있으며, 운동 작업, 억제 메커니즘 및 αMN 흥분성의 영향을 받을 수 있다5. 설치류의 경피적 기록에서 자극 전극은 경골 신경 근처에 배치되고 기록 전극은 앞발의 관련 근육 근처에 배치됩니다. 그러나 우리의 경험에 따르면 경피적 전극의 올바른 배치(그림 1A)는 인간의 표면 전극 배치보다 설치류에서 훨씬 더 복잡하고 가변적입니다. 이것은 H-반사를 이끌어내는 데 필요한 길이, 빈도 및 자극 강도의 차이로 이어질 수 있습니다. 이러한 방법론적 도전은 왜 매우 제한된 수의 H-반사 측정 연구(예: 실험 뇌졸중 모델 3,4 및 기타 경직 모델6)만 있는지 설명할 수 있습니다. 개별 신경에 대한 H-반사의 정확한 (장기) 자극 및 기록은 원칙적으로 표적 신경을 둘러싸고 있는 이식 가능한 전극을 사용하여 달성될 수 있습니다(7,8). 동물에 대한 잠재적인 부작용과 프로브의 잠재적인 불안정성이 있는 까다로운 수술로 인해 이 접근 방식은 현장에서 표준이 되지 못했습니다. 여기에 제시된 방법에는 약간의 외과적 전문 지식도 필요합니다. 그러나 낮은 자극 강도를 사용하여 생체 내에서 고립된 신경을 새롭고 정확하게 자극하고 기록할 수 있어 인접 신경의 동시 자극을 피할 수 있습니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Absorbent underpad</td>
			<td>VWR</td>
			<td>115-0684</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AD converter</td>
			<td>Cambridge Electronic Design, UK</td>
			<td>CED 1401micro</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amplifier</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Digital stimulator</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>MS 501</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EMG electrodes</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td></td>
			<td>Two twisted, insulated copper wires (50 &#181;m outer diameter) were soldered to a male plug and connected to a differential amplifier.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye ointment</td>
			<td>Bayer</td>
			<td>Bepanthen</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glass pipette</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>-</td>
			<td>Prepare a glass pipette bent into a simple glass hook in the flame of a Bunsen burner.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating box</td>
			<td>MediHeat</td>
			<td>MediHeat V1200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating pad</td>
			<td>WPI</td>
			<td>61840 Heating pad</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hook electrodes</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>-</td>
			<td>To produce the electrodes, bend stainless steel miniature pins into hooks at one end and insert into blunt cannulas to create direct mechanical contact. Solder the end of the cannula to copper wires (length approx. 50 cm), which are connected to either stimulation or recording device.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ketamine</td>
			<td>Pfizer</td>
			<td>Ketavet</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rectal probe</td>
			<td>WPI</td>
			<td>RET-3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stimulator isolation unit</td>
			<td>Workshop Zoological Institute, UoC</td>
			<td>MI 401</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterilizer</td>
			<td>CellPoint Scientific</td>
			<td>Germinator 500</td>
			<td>Routine pre- and post-operative disinfection of the surgical equipment should be done by heat sterilization. Decontaminate instruments for 15 s in the heated glass bead bath (260&#176;C).</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Temperature controller</td>
			<td>WPI</td>
			<td>ATC200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vaseline</td>
			<td>Bayer</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xylazine</td>
			<td>Bayer</td>
			<td>Rompun</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

terminal h-reflex measurements in mice

스트레치 반사에 대한 전기적 유사체인 호프만 반사(H-반사)는 척수 손상이나 뇌졸중과 같은 부상 후 신경 회로의 무결성에 대한 전기생리학적 검증을 가능하게 합니다. 비자발적 근육 수축, 병리학적으로 증가된 스트레치 반사 및 해당 근육의 긴장항진과 같은 증상과 함께 H-반사 반응의 증가는 뇌졸중 후 경직(PSS)의 지표입니다.
다소 신경에 특이적이지 않은 경피적 측정과 달리, 여기에서는 앞발의 척골 및 정중 신경에서 직접 H-반사를 정량화하는 프로토콜을 제시하며, 이는 약간의 수정으로 뒷발의 경골 및 좌골 신경에 적용할 수 있습니다. 직접적인 자극과 다양한 신경에 대한 적응을 기반으로 하는 이 방법은 경직 관련 질병 모델에서 전기생리학적 변화를 검증하는 신뢰할 수 있고 다재다능한 도구를 나타냅니다.

자극 빈도 및 발당 n = 15개의 자극 시도에서 분석을 위해 최소 n = 10개의 성공적인 기록을 선택합니다. 측정 오류(예: M파 누락)가 있는 시험은 분석에서 제외됩니다. 각 시행을 개별적으로 분석하고 나중에 그룹/시간 비교를 위한 평균을 생성합니다. M파와 H파의 자극과 출현 사이의 잠복기는 각 시도에 대해 기록됩니다. 우리의 경험에 따르면 M파는 척수를 통과하는 더 긴 통과 시간으로 인해 자극 ?...

Watch this Scientific Journal Video about Terminal H-reflex Measurements in Mice at JoVE.com

Terminal H-reflex Measurements in Mice

호프만 반사(H-반사)에 기초한 경직의 임상 평가와 말초 신경의 전기 자극을 사용하는 것은 확립된 방법입니다. 여기에서 우리는 마우스 앞발에서 H-반사 정량화를 위한 말단 및 직접적인 신경 자극을 위한 프로토콜을 제공합니다.

마우스의 말단 H-반사 측정

The Hoffmann reflex (H-reflex), as an electrical analog to the stretch reflex, allows electrophysiological validation of the integrity of neural circuits ...

H-reflex는 신경 회로의 무결성에 대한 전기생리학적 검증을 가능하게 합니다. 우리는 생쥐의 앞발 신경에서 직접 H-반사를 정량화하는 말단 프로토콜을 제시합니다. 기존의 다소 신경-특이적이지 않은 경피적 기록과 달리 결과는 마우스와 측정일 간에 덜 가변적입니다.환자의 H-반사 기록과 유사하게 정확한 정량화를 통해 척수 손상 및 뇌졸중과 같은 질병 모델에서 전기생리학적 특성을 분석할 수 있습니다. 이 프로토콜은 생쥐의 수술 장비를 다루는 데 견고한 실험 기술이 필요합니다.결합 조직과 혈관에서 신경을 분리하는 방법을 잘 모르겠다면 먼저 연습하십시오. 이 절차를 시연하는 것은 제 연구실의 박사 과정 학생 인 Frederique Wieters가 담당합니다. 시작하려면 마취된 성인용 8-16주 된 C57 black/6J 마우스를 덮개가 있는 가열 패드에 놓고 마우스가 진정되고 호흡이 안정되며 반사 신경이 없을 때까지 기다립니다.마우스를 뒤로 돌립니다. 그런 다음 앞발을 테이프로 고정하십시오. 측정 전극이 앞발에 쉽게 삽입되도록 테이프를 배치합니다.마우스의 온도를 측정하려면 직장 프로브를 삽입하고 테이프로 고정하십시오. 눈이 건조해지는 것을 방지하기 위해 눈 연고를 바르십시오. 핀셋으로 피부를 들어 올리면서 가늘고 둥근 가위로 털을 조심스럽게 제거하십시오.그런 다음 앞발의 복후축을 따라 피부에 1cm 절개를하고 둥근 가위로 만듭니다. 결합 조직을 조심스럽게 제거하고 아래 근육과 신경을 노출시킵니다. 그런 다음 집게를 사용하여 노출된 흉근 천저근을 제거하여 정중 신경을 평가합니다.부드러운 티슈 페이퍼로 소량의 혈액과 조직액을 제거하십시오. 다음으로 유방이나 겨드랑이 근육을 위에서 아래로 조심스럽게 잘라 신경 다발을 노출시킵니다. 약 1.5 센티미터의 길이에 걸쳐 결합 및 근육 조직에서 신경 다발을 제거하십시오.구부러진 유리 피펫을 사용하여 앞발의 척골과 정중 신경을 조심스럽게 분리하십시오. 상부 신경은 척골 신경이고 하부 신경은 정중 신경입니다. 자극기 후크 전극을 0.5mm에서 1mm의 거리에서 평행하게 배열하고 미세 매니퓰레이터를 사용하여 이중 후크를 신경 가까이에 배치합니다.유리 후크를 사용하여 척골 신경을 자극 후크 전극으로 들어 올립니다. 그런 다음 신경이 있는 전극을 뒤로 당겨 다른 신경과 분리합니다. 근육 사이의 누화를 줄이기 위해 발의 장축을 따라 전극을 배치하십시오.신경에 부착 된 전극 후크를 표면적으로 건조시키고 주사기를 사용하여 바셀린을 적용하여 인접 조직으로부터 전기 절연을 제공합니다. H-반사를 측정하려면 근전도 전극을 앞발에 근육 주사로 배치합니다. 그런 다음 기준 전극을 뒷다리에 피하로 배치하고 미니어처 악어 클립으로 고정합니다.자극기가 켜지면 앞발의 작은 경련으로 성공적인 자극을 관찰하십시오. 앞발에서 M파와 눈에 보이는 작은 경련을 유도하기 위한 최소 자극 전류는 10에서 50마이크로암페어 사이입니다. 각각 0.2밀리초 길이의 펄스로 신경 자극을 15회 수행합니다.자극 세트 사이에 2 분 동안 일시 중지하면 주파수가 0.1, 0.5, 1.0, 2.0에서 5 헤르츠로 증가합니다. Hoffman 반사 및 근육 반응을 측정하기 위해 경로에 설정된 녹음의 그림이 여기에 나와 있습니다. H파와 M파 진폭 사이의 비율을 평가했습니다.자극 및 각각의 자극 아티팩트는 0밀리초로 설정되었고, 그 다음에는 직접 M파와 H파를 나타내는 더 작은 피크가 뒤따랐습니다. M파는 자극 후 약 2밀리초 후에 발생하고, H파는 척수를 통과하는 더 긴 통과 시간으로 인해 6-8밀리초 후에 발생합니다. 신경을 분리하는 것 다음으로 바셀린을 전극과 두 후크 사이에 적용하는 것이 중요합니다.이것은 최종 실험입니다. 우리 연구실에서 이 기술은 경피적 H-반사 기록에 대한 새로운 표준 참조를 제공했습니다.

Research

JoVE Journal

Biology

A Reversible, Non-invasive Method for Airway Resistance Measurements and Bronchoalveolar Lavage Fluid Sampling in Mice

에어웨이 저항 측정 및 마우스에 Bronchoalveolar 세척 유체 샘플링에 대한 가역, 비침습 방법

Airway hyperreactivity (AHR) measurements and bronchoalveolar lavage (BAL) fluid sampling are essential to experimental asthma models, but repeated ...

연구

생물학

Transverse Aortic Constriction in Mice

마우스의 가로 대동맥 수축

Transverse aortic constriction (TAC) in the mouse is a commonly used experimental model for pressure overload-induced cardiac hypertrophy and heart ...

Ambulatory ECG Recording in Mice

마우스의 외래 ECG 기록

Telemetric ECG recording in mice is essential to understanding the mechanisms behind arrhythmias, conduction disorders, and sudden cardiac death. Although ...

Examination of Drosophila Larval Tracheal Terminal Cells by Light Microscopy

Examination of Drosophila Larval Tracheal Terminal Cells by Light Microscopy

의 검사<em&gt; 초파리</em가벼운 현미경으로&gt; 애벌레 기관 내 터미널 셀

Cell shape is critical for cell function. However, despite the importance of cell morphology, little is known about how individual cells generate specific ...

Cytosolic Calcium Measurements in Renal Epithelial Cells by Flow Cytometry

유동 세포 계측법에 의한 신장 상피 세포에서 세포 내 칼슘 측정

A variety of cellular processes, both physiological and pathophysiological, require or are governed by calcium, including exocytosis, mitochondrial ...

Non-Terminal Blood Sampling Techniques in Guinea Pigs

기니 돼지의 비 터미널 혈액 샘플링 기법

Guinea pigs possess several biological similarities to humans and are validated experimental animal models1-3. However, the use of guinea pigs currently ...

Functional Reconstitution and Channel Activity Measurements of Purified Wildtype and Mutant CFTR Protein

정제 된 야생형과 돌연변이 체 CFTR 단백질의 기능의 재구성 및 채널 활동 측정

The Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator (CFTR) is a unique channel-forming member of the ATP Binding Cassette (ABC) superfamily of ...

Contractility Measurements on Isolated Papillary Muscles for the Investigation of Cardiac Inotropy in Mice

마우스의 심장 수축력의 조사에 대 한 격리 유두 근육의 수축력 측정

Papillary muscle isolated from adult mouse hearts can be used to study cardiac contractility during different physiological/pathological conditions. The ...

Cystometric and External Urethral Sphincter Measurements in Awake Rats with Implanted Catheter and Electrodes Allowing for Repeated Measurements

반복된 측정에 대 한 수 있도록 전극 이식된 카 테 터와 깨어 있는 쥐에 Cystometric 및 외부 요도 괄약근 측정

Lower urinary tract function is mainly assessed by means of cystometric bladder function analysis in rodents. Conventional cystometries are usually ...

Measurements of Physiological Stress Responses in C. Elegans

Measurements of Physiological Stress Responses in C. Elegans

C. Elegans의 생리적 스트레스 반응 측정

Organisms are often exposed to fluctuating environments and changes in intracellular homeostasis, which can have detrimental effects on their proteome and ...