Name: intracranial pressure monitoring in nontraumatic intraventricular hemorrhage rodent model
Uploaded: 2022-02-08T14:45:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Intracranial Pressure Monitoring In Nontraumatic Intraventricular Hemorrhage Rodent Model at JoVE.com

Diese Arbeit wurde durch den NINDS-Zuschuss finanziert: K08NS105914

Alle Forschungsmethoden und die Tierpflege/-pflege wurden in Übereinstimmung mit den institutionellen Richtlinien an der University of California, Davis, durchgeführt. Das Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) der University of California, Davis, genehmigte alle Tierverwendungsprotokolle und experimentellen Verfahren (IACUC-Protokoll #21874).
1. Tierhaltung
<ol><li>Erhalten Sie Sprague-Dawley-Ratten im Alter von 8-10 Monaten. Vor jedem experimentellen Verfahr...

<ol>
	<li>Gates, P. C., Barnett, H. J. M., Vinters, H. V., Simonsen, R. L., Siu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primary+intraventricular+hemorrhage+in+adults.">Primary intraventricular hemorrhage in adults.</a> Stroke. 17, 872-877 (1986).</li><li>Strajle, J., Garton, H. J. L., Maher, C. O., Muraszko, K., Keep, R. F., Xi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanisms+of+hydrocephalus+after+neonatal+and+adult+intraventricular+hemorrhage.">Mechanisms of hydrocephalus after neonatal and adult intraventricular hemorrhage.</a> Translational Stroke Research. 3, 25-38 (2012).</li><li>Murao, K., Rossi, C., Cordonnier, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracerebral+hemorrhage+and+cognitive+decline.">Intracerebral hemorrhage and cognitive decline.</a> Revue Neurologique. 169, 772-778 (2013).</li><li>Al-Khindi, T., Macdonald, R. L., Schweizer, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cognitive+and+functional+outcome+after+aneurysmal+subarachnoid+hemorrhage.">Cognitive and functional outcome after aneurysmal subarachnoid hemorrhage.</a> Stroke. 41, 519-536 (2010).</li><li>Kreiter, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Predictors+of+cognitive+dysfunction+after+subarachnoid+hemorrhage.">Predictors of cognitive dysfunction after subarachnoid hemorrhage.</a> Stroke. 33, 200-208 (2002).</li><li>Zanaty, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraventricular+extension+of+an+aneurysmal+subarachnoid+hemorrhage+is+an+independent+predictor+of+a+worse+functional+outcome.">Intraventricular extension of an aneurysmal subarachnoid hemorrhage is an independent predictor of a worse functional outcome.</a> Clinical Neurology and Neurosurgery. 170, 67-72 (2018).</li><li>Gabrielian, L., Willshire, L. W., Helps, S. C., vanden Heuvel, C., Mathias, J., Vink, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracranial+pressure+changes+following+traumatic+brain+injury+in+rats:+lack+of+significant+change+in+the+absence+of+mass+lesions+or+hypoxia.">Intracranial pressure changes following traumatic brain injury in rats: lack of significant change in the absence of mass lesions or hypoxia.</a> Journal of Neurotrauma. 28, 2103-2111 (2011).</li><li>Kolar, M., Nohejlova, K., Duska, F., Mares, J., Pachl, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+of+cortical+perfusion+in+the+early+phase+of+subarachnoid+bleeding+in+a+rat+model+and+the+role+of+intracranial+hypertension.">Changes of cortical perfusion in the early phase of subarachnoid bleeding in a rat model and the role of intracranial hypertension.</a> Physiological Research. 66, 545-551 (2017).</li><li>Ariesen, M. J., Claus, S. P., Rinkel, G. J. E., Algra, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Risk+factors+for+intracerebral+hemorrhage+in+the+general+population.+A+systematic+review.">Risk factors for intracerebral hemorrhage in the general population. A systematic review.</a> Stroke. 34, 2060-2066 (2003).</li><li>MacLellan, C. L., Paquette, R., Colbourne, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+critical+appraisal+of+experimental+intracerebral+hemorrhage+research.">A critical appraisal of experimental intracerebral hemorrhage research.</a> Journal of Cerebral Blood Flow &amp; Metabolism. 32, 612-627 (2012).</li><li>Hartman, R., Lekic, T., Rojas, H., Tang, J., Zhang, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+functional+outcomes+following+intracerebral+hemorrhage+in+rats.">Assessing functional outcomes following intracerebral hemorrhage in rats.</a> Brain Research. 1280, 148-157 (2009).</li></ol>

Diese Studie untersuchte Mechanismen zur Messung von ICPs, MAPs und CPPs in einem nichttraumatischen IVH-Rattentiermodell. Die Ergebnisse wurden von den folgenden Gruppen aufgezeichnet: Scheintiere, VH 200 μL und Vehikelkontrolltiere (künstliche intraventrikuläre Injektion von Zerebrospinalflüssigkeit). Dieses experimentelle Design wurde gewählt, um zu untersuchen, wie ICPs während der IVH-Injektion überwacht werden können, da wir die Hypothese aufstellten, dass der Anstieg der ICPs zu der signifikanteren sekund?...

Intraventrikuläre Blutung (IVH), eine Art intrakranielle Blutung (ICH), ist eine verheerende Krankheit, die signifikante Mortalität und Morbidität mit sich bringt. IVH ist gekennzeichnet als die Ansammlung von Blutprodukten in den intrakraniellen Ventrikeln. Isolierte IVH ist gelegentlich und tritt typischerweise bei Erwachsenenauf 1. Es kann mit hypertensiven Blutungen, rupturiertem intrakraniellen Aneurysma oder einer anderen vaskulären Fehlbildung, Tumoren oder Trauma1 assoziiert sein. IVH führt zu sekundären Hirnverletzungen sowie zur Entwicklung von Hydrocephalus2. Überlebende von IVH haben nach ihrer Verletzung oft erhebliche funktionelle, Gedächtnis- und kognitive Beeinträchtigungen. Diese langfristigen kognitiven und Gedächtnisdefizite werden bei bis zu 44% der Überlebenden von ICH3 berichtet. Bei Subarachnoidalblutungen (SAH), einer anderen Art von ICH, ist bekannt, dass etwa die Hälfte der Überlebenden Gedächtnisdefizite hat, und für diejenigen, die IVH zusätzlich zu SAH haben, sind die Ergebnisse tendenziell signifikant schlechter 4,5,6.
Die zugrunde liegenden Mechanismen der Gedächtnisstörung nach IVH müssen noch aufgeklärt werden. In-vivo-Forschung mit nicht-traumatischen IVH-Tiermodellen mit Funktions- und Gedächtnisstörungen ist unerlässlich, um potenzielle therapeutische Ziele für solche Patienten zu entdecken. Tiermodelle mit schwererem Gedächtnis und funktioneller Dysfunktion nach IVH wären die besten, um diese Veränderungen zu untersuchen. Das Labor des leitenden Autors hat auch speziell die Rolle von hohem intrakraniellen Druck (ICP) bei der Entwicklung von Gedächtnisdefiziten in IVH-Rattenmodellen untersucht. Daher waren Methoden zur präzisen Messung von ICPs während der IVH wichtig zu untersuchen. Hier berichten wir über Methoden zur präzisen Messung von ICPs in einem IVH-Rattenmodell. Obwohl die ICP-Überwachung zuvor sowohl in traumatischen ICH- als auch in Subarachnoidalblutungsmodellen eingesetzt wurde, wird die ICP-Überwachung in spontanen IVH-Nagetiermodellen in der Literatur nicht so häufig berichtet 7,8. Daher umfasste das hier vorgestellte experimentelle Design drei Gruppen von Sprague-Dawley-Ratten: Schein, Standard-200-μl-intraventrikuläre Blutung und Vehikelkontrolle. Für die IVH-Gruppe wurde ein autologes intraventrikuläres Blutinjektionsmodell verwendet. Für Fahrzeugkontrolltiere wurde eine intraventrikuläre Injektion von steriler Lactated Ringer-Lösung verwendet. ICPs, mittlere arterielle Drücke (MAPs) und zerebrale Perfusionsdrücke (CPPs) wurden intraoperativ aufgezeichnet, und die Ergebnisse werden hierin berichtet.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>0.25% bupivacaine</td>
			<td>Hospira, Inc.</td>
			<td>409115901</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1 mL syringe</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>60734</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% providine iodine solution</td>
			<td>Aplicare</td>
			<td>MSD093947</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 mL syringe</td>
			<td>Covidien</td>
			<td>8881520657</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22 G needles</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305155</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>28 G intraventricular needles</td>
			<td>P technologies</td>
			<td>8IC313ISPCXC</td>
			<td>C313I/SPC 28-Gneedles to fit 22-G guide cannula with 6 mm projection</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-0 silk suture</td>
			<td>Henry Schein, Inc.</td>
			<td>SP116</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3-way-stopcock</td>
			<td>Merti Medical Systems</td>
			<td>M3SNC</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4% paraformaldehyde</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>30525-89-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>AnyMaze software</td>
			<td>Any-Maze behavioral tracking software</td>
			<td></td>
			<td>Stoelting CO, USA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Artificial ointment</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>48272</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Blood collection vials with EDTA</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>367856</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bone wax</td>
			<td>CP Medical, Inc.</td>
			<td>CPB31A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carprofen</td>
			<td>Zoetis, Inc.</td>
			<td>54771-8507-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>Beckman</td>
			<td>BE-GS6R</td>
			<td>Model GS-6R</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton tip applicators</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>71214</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drill</td>
			<td>Dremel</td>
			<td>1600A011JA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fiberoptic pressure sensors with readout units</td>
			<td>Opsens Medical</td>
			<td>OPP-M200-X-80SC- 2.0PTFE-XN-100PIT-P1 and LIS-P1-N-62SC</td>
			<td>Opp-M200 packaged pressure sensors with LifeSens system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Forceps</td>
			<td></td>
			<td>11923-13, 11064-07</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>71043</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Guillotine</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>51330</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating pad with rectal thermometer</td>
			<td>CWE, Inc.</td>
			<td>08-13000 ,08-13014</td>
			<td>TC1000 Temperature controller</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hemostats</td>
			<td></td>
			<td>&#160;13013-14,&#160; 13008-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Covetrus</td>
			<td>29405</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lactated ringers</td>
			<td>Baxter Healthcare Corp.</td>
			<td>Y345583</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laryngoscope</td>
			<td>American Diagnostic Corporation</td>
			<td>4080</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Metal clip</td>
			<td>Fine Scientic Tools</td>
			<td>18056-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro scissors</td>
			<td>Fine Scientic Tools</td>
			<td>15007-08</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microscope</td>
			<td>Leica</td>
			<td>model L2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Needle driver</td>
			<td></td>
			<td>12003-15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene tubing</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>14-170-12B</td>
			<td>PE-50 tubing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rats</td>
			<td>Envigo</td>
			<td></td>
			<td>Sprague Dawley rats 8&#8211;10 months old</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td></td>
			<td>&#160;10010-00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scissors</td>
			<td></td>
			<td>14090-11</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic instrument</td>
			<td>Kopf instruments</td>
			<td></td>
			<td>Model 940 with ear bars</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Syringe pump</td>
			<td>KD Scientific</td>
			<td>780100</td>
			<td>Model 100 series</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Touhy Borst</td>
			<td>Abbott</td>
			<td>23242</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ventilator</td>
			<td>Harvard rodent ventilator</td>
			<td>55-0000</td>
			<td>Model 683</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

intracranial pressure monitoring in nontraumatic intraventricular hemorrhage rodent model

Überlebende von intraventrikulären Blutungen haben oft eine signifikante Beeinträchtigung des Langzeitgedächtnisses; Daher ist die Forschung mit intraventrikulären Blutungstiermodellen unerlässlich. In dieser Studie suchten wir nach Möglichkeiten, den intrakraniellen Druck, den mittleren arteriellen Druck und den zerebralen Perfusionsdruck während einer nichttraumatischen intraventrikulären Blutung bei Ratten zu messen. Das experimentelle Design umfasste drei Sprague-Dawley-Gruppen: Schein-, Standard-200-μl-intraventrikuläre Blutung und Vehikel-Kontrollgruppen. Durch die Einführung eines intraparenchymalen faseroptischen Drucksensors wurden präzise intrakranielle Druckmessungen in allen Gruppen erzielt. Der zerebrale Perfusionsdruck wurde mit der Kenntnis des intrakraniellen Drucks und der mittleren arteriellen Druckwerte berechnet. Wie erwartet, erlebten sowohl die intraventrikuläre Blutungs- als auch die Vehikelkontrollgruppe einen Anstieg des intrakraniellen Drucks und einen anschließenden Abfall des zerebralen Perfusionsdrucks während der intraventrikulären Injektion von autologem Blut bzw. künstlicher Zerebrospinalflüssigkeit. Die Zugabe eines intraparenchymalen faseroptischen Drucksensors ist vorteilhaft bei der Überwachung präziser intrakranieller Druckänderungen.

Intrakranieller, mittlerer arterieller und zerebraler Perfusionsdruck Sowohl ICPs als auch MAPs wurden bei allen Tieren intraoperativ überwacht (Abbildung 1). Ratten waren 8-10 Monate alt und hatten ein Durchschnittsgewicht von 495 ± 17 g. Es wurden auch Echtzeit-ICP-Diagramme gesammelt (Abbildung 2). Ohne die Scheingruppe stiegen die ICPs während der intraventrikulären Injektion sowohl bei IVH als auch bei Vehikelkontrollgruppen...

Watch this Scientific Journal Video about Intracranial Pressure Monitoring In Nontraumatic Intraventricular Hemorrhage Rodent Model at JoVE.com

Intracranial Pressure Monitoring In Nontraumatic Intraventricular Hemorrhage Rodent Model

Die Überwachung des intrakraniellen Drucks in Nagetiermodellen nichttraumatischer intraventrikulärer Blutungen ist in der aktuellen Literatur nicht üblich. Hier demonstrieren wir eine Technik zur Messung des intrakraniellen Drucks, des mittleren arteriellen Drucks und des zerebralen Perfusionsdrucks während intraventrikulärer Blutungen in einem Rattentiermodell.

Intrakranielle Drucküberwachung im nichttraumatischen intraventrikulären Blutungsmodell

Survivors of intraventricular hemorrhage are often left with significant long-term memory impairment; thus, research utilizing intraventricular hemorrhage ...

Dieses Protokoll beschreibt eine Methode zur Messung des intrakraniellen Drucks, des mittleren arteriellen Drucks und des zerebralen Perfusionsdrucks nach nicht-traumatischen intraventrikulären Blutungen bei Nagetieren. Intrakranielle und mittlere arterielle Drücke können genau und zuverlässig mit einem faseroptischen Sensor gemessen werden, der in den Kortex bzw. die Oberschenkelarterie der Ratte eingeführt wird. Die hier beschriebenen Techniken werden in das klinische Umfeld übertragen, wenn Patienten mit intraventrikulären Blutungen eine invasive intrakranielle Drucküberwachung benötigen.Ziel dieser Studie war es, ein IVH-Tiermodell mit objektiver Überwachung von ICPs, MAPs und CCPs nach intraventrikulärer IVH zu etablieren, damit die Autoren dies in zukünftigen Experimenten weiter anwenden können, die sich auf die Auswirkungen von ICPs konzentrieren, die durch IVH induziert werden, auf nachfolgende Gedächtnisstörungen. Große Kämpfe können Präzision beinhalten, da faseroptische Sensoren klein sind. Die Sektion der Oberschenkelarterie könnte auch für einige eine Herausforderung darstellen, insbesondere für diejenigen, die nicht in mikrochirurgischen Fähigkeiten verwendet werden.Führen Sie nach der Betäubung der Ratte ein Rektalthermometer ein, um die Temperatur kontinuierlich zu überwachen. Schneiden Sie die Haare auf dem Kopf und der Oberschenkelregion ab und bereiten Sie die Haut vor der Operation mit drei abwechselnden Peelings Betadine und 70% Alkohol vor. Saugen Sie alle angesammelten Atemwegssekrete ab, indem Sie die Ratte vorübergehend vom Beatmungsgerät entfernen und die Sekrete mit PE-50-Schläuchen absaugen, die an eine 10-Milliliter-Spritze angeschlossen sind.Schützen Sie die Augen mit sterilen künstlichen Tränen Augensalbe. Vor dem Kopfhautschnitt lokales Bupivacain in die Haut und das Unterhautgewebe injizieren. Stellen Sie die Ratte in Bauchlage auf einen stereotaktischen Rahmen und halten Sie sie fest.Machen Sie einen 1,5 Zentimeter großen Kopfhautschnitt entlang der Mittellinie mit einem 15-Klingen-Skalpell. Wenden Sie leichten Druck mit Gaze zur Hämostase an. Trennen Sie das Periost mit einem sterilen Baumwollspitzenapplikator vom Schädel, bis das Bregma-Wahrzeichen sichtbar ist.Lokalisieren und markieren Sie Bregma mit Stereotaxis und markieren Sie die Position von zwei bilateralen Gratlöchern 1,4 Millimeter seitlich und negativ 0,9 Millimeter hinter dem Bregma. Mit einem Handbohrer erzeugen Sie diese beiden kleinen Schädelbohrlöcher in der rechten und linken Hemisphäre. Bewässern Sie überschüssige Knochenchips mit steriler laktierter Ringer-Lösung.Positionieren Sie in der rechten Hemisphäre eine 22-Gauge-Führungskanüle auf Höhe des Gratlochs, um die 28-Gauge-Nadel durch die Kanüle in die Tiefe des rechten Seitenventrikels einzuführen, um intraventrikuläre Blutungen zu erzeugen. Schließen Sie den faseroptischen Drucksensor an die Ausleseeinheit an. Schalten Sie die Anzeigeeinheit ein, und stellen Sie sicher, dass die ausgewählten Geräte in Millimeter Quecksilbersäule angegeben sind.Bereiten Sie dann den Sensor vor, indem Sie seine Spitze in ein kleines Becherglas mit laktierter Ringerlösung tauchen, bis die Ausleseeinheit Null auszeigt und einsatzbereit ist. In der linken Hemisphäre führen Sie den Drucksensor vorsichtig bis zwei bis drei Millimeter Tiefe in den Kortex ein, um ICP in Echtzeit zu überwachen. Drehen Sie nach dem Einführen des ICP-Monitors den unteren Rumpf der Ratte, um den linken Oberschenkel und die Leistengegend leicht zu erreichen.Nach steriler Zubereitung und lokaler Bupivacain-Verabreichung mit einem 15-Klingen-Skalpell einen 1,5 Zentimeter großen Hautschnitt über den Hinterbeinen machen. Sezieren Sie die linke Oberschenkelarterie oberflächlich mit einem Hämostat und dann tiefere Schichten mit einer Pinzette mit feinen Spitzen unter einem Mikroskop. Identifizieren Sie die tiefblaue Oberschenkelvene, um die angrenzende Arterie zu lokalisieren.Binden Sie die Arteria femoraldistal mit einer 3-0-Seidennaht ab und legen Sie einen temporären Metallclip auf den proximalen Teil der Oberschenkelarterie. Lassen Sie einen zweiten faseroptischen Drucksensor an die bereits grundierte Ausleseeinheit anschließen. Stecken Sie den Drucksensor in den PE-50-Schlauch, der in einen Tuohy Borst eingeführt wird, der dann geschlossen wird.Verbinden Sie den Tuohy Borst mit einem Drei-Wege-Absperrhahn, der an einem Ende mit einer Ein-Millimeter-Spritze und am anderen Ende mit einer 22-Gauge-Nadel mit PE-50-Schläuchen verbunden ist. Machen Sie unter dem Mikroskop eine zwei Millimeter große Oberschenkelarteriotomie mit einer Mikroschere und kanülieren Sie sie mit PE-50-Schläuchen, die mit dem Rest des Setups verbunden sind. Saugen Sie 500 Mikroliter Blut mit einer Ein-Millimeter-Spritze ab und drehen Sie den Drei-Wege-Absperrhahn, damit der Drucksensor MAP liest.Prime die 28-Gauge intraventrikuläre Nadel, die mit PE-50-Schläuchen verbunden ist, mit dem abgesaugten Blut für IVH-Tiere und laktierten Ringern für die Fahrzeugkontrolltiere. Führen Sie dann diese Nadel in die Führungskanüle bis zur Tiefe des rechten Seitenventrikels ein. Injizieren Sie mit einer Rate von 100 Mikrolitern pro Minute das Blut oder 200 Mikroliter sterile laktierte Ringer-Lösung in den rechten lateralen Ventrikel, indem Sie die Ein-Millimeter-Spritze mit dem Daumen pumpen.Überwachen und zeichnen Sie ICP, arteriellen Blutdruck und rektale Temperatur auf. Überwachen und notieren Sie die ICP- und MAP-Werte nach der Injektion. Ziehen Sie nach Abschluss der intraventrikulären Injektion den PE-50-Schlauch mit dem in die Oberschenkelarterie eingeführten Drucksensor heraus und bringen Sie den temporären Clip auf die Oberschenkelarterie an, um Blutungen zu verhindern.Binden Sie den proximalen Teil der Oberschenkelarterie mit der 3-0-Seidennaht ab und schließen Sie den Oberschenkelschnitt unterbrochen mit 3-0-Seide. Entfernen Sie die Führungskanüle mit der intraventrikulären Nadel im ICP-Monitor. Verschließen Sie die Gratlöcher mit Knochenwachs.Und schließen Sie den Schädelschnitt mit 3-0 Seidennaht unterbrochen. Tragen Sie topisches Bupivacain auf den Schnitt auf und injizieren Sie 0,5 Milligramm pro Kilogramm Carprofen. Lassen Sie die Tiere nicht unbeaufsichtigt, bis sie wieder ein ausreichendes Bewusstsein erlangt haben, um die sternale Liege aufrechtzuerhalten.Lassen Sie Ratten nach der Operation unter Aufsicht vollständig genesen und bringen Sie sie nach der Genesung mit freiem Zugang zu Nahrung und Wasser in ihre heimischen Käfige zurück. Mit Ausnahme der Scheingruppe stiegen die ICPs während der intraventrikulären Injektion in IVH- und Vehikelkontrollgruppen signifikant an. ICPs waren in der IVH-Gruppe höher als in der Fahrzeugkontrolle.Die ICPs nahmen dann schnell ab und normalisierten sich innerhalb von fünf Minuten nach der intraventrikulären Injektion in diesen Tiergruppen. Es wurde beobachtet, dass MAPs während des gesamten Verfahrens ähnlich blieben, während die CPPs während der intraventrikulären Injektion von Blut oder laktierter Ringer-Lösung abnahmen. Wichtige Schritte der Operation umfassen die korrekte Lokalisierung und das Bohren von Gratlöchern und die Oberschenkelarteriotomie.Die oben genannten Schritte sollten genau befolgt werden, um sicherzustellen, dass Sensoren ihre Aufgabe beim genauen Ablesen der Druckänderungen erfüllen.

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Autologous Blood Injection to Model Spontaneous Intracerebral Hemorrhage in Mice

Eigenblut Injection zu Spontane intrazerebrale Blutungen in Mäuse-Modell

Investigation of the pathophysiology of injury after intracerebral
hemorrhage (ICH) requires a reproducible animal model.  While ICH
accounts for 10-15% ...

Forschung

Neurowissenschaften

Direct Intraventricular Delivery of Drugs to the Rodent Central Nervous System

Direkt Intraventrikuläre Abgabe von Arzneimitteln an die Nager Central Nervous System

Due to an inability to cross the blood brain barrier, certain drugs need to be directly delivered into the central nervous system (CNS). Our lab focuses ...

Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System

Langfristige kontinuierliche EEG-Monitoring in Kleintier Models of Human Disease Mit dem Epoch Wireless Transmitter-System

Many progressive neurologic diseases in humans, such as epilepsy, require pre-clinical animal models that slowly develop the disease in order to test ...

A Volumetric Method for Quantification of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

Eine Volumetrische Methode zur Quantifizierung der zerebralen Vasospasmus in einem Mausmodell der Subarachnoidalblutung

Subarachnoid hemorrhage (SAH) is a subtype of hemorrhagic stroke. Cerebral vasospasm that occurs in the aftermath of the bleeding is an important factor ...

Minimally Invasive Endoscopic Intracerebral Hemorrhage Evacuation

Minimalinvasive endoskopische intrazerebrale Blutungsevakuierung

Intracerebral hemorrhage (ICH) is a subtype of stroke with high mortality and poor functional outcomes, largely because there are no evidence-based ...

Intracranial Pharmacotherapy and Pain Assays in Rodents

Intrakranielle Pharmakotherapie und Schmerz-Assays bei Nagern

Pain is a salient sensory experience with affective and cognitive dimensions. However, central mechanisms for pain remain poorly understood, hindering the ...

Brain Death Induction in Mice Using Intra-Arterial Blood Pressure Monitoring and Ventilation via Tracheostomy

Hirntodinduktion bei Mäusen mit intraarterieller Blutdrucküberwachung und -beatmung mittels Tracheostomie

While both living donation and donation after circulatory death provide alternative opportunities for organ transplantation, donation after donor brain ...

Translaminar Autonomous System Model for the Modulation of Intraocular and Intracranial Pressure in Human Donor Posterior Segments

Translaminares autonomes Systemmodell zur Modulation des intraokularen und intrakraniellen Drucks in menschlichen spenderseitigen Segmenten

There is a current unmet need for a new preclinical human model that can target disease etiology ex vivo using intracranial pressure (ICP) and intraocular ...

Double Direct Injection of Blood into the Cisterna Magna as a Model of Subarachnoid Hemorrhage

Doppelte Direkteinspritzung von Blut in die Cisterna Magna als Modell der subarachnoiden Blutung

Among strokes, subarachnoid hemorrhage (SAH) consecutive to the rupture of a cerebral arterial aneurysm represents 5-9% but is responsible for about 30% ...

Analysis of Cerebral Vasospasm in a Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage with High Frequency Transcranial Duplex Ultrasound

Analyse des zerebralen Vasospasmus in einem murinen Modell der Subarachnoidalblutung mit hochfrequenten transkraniellen Duplex-Ultraschall

Cerebral vasospasm that occurs in the weeks after subarachnoid hemorrhage, a type of hemorrhagic stroke, contributes to delayed cerebral ischemia. A ...