Name: modified technique for the use of neonatal murine hearts in the langendorff preparation
Uploaded: 2022-03-04T13:00:00
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NIH/NINDS R01NS112706 (R.L.)

컬럼비아 대학 의료 센터의 기관 동물 관리 및 사용위원회의 승인은 설명 된 모든 방법에 대해 획득되었습니다. 야생형 C57Bl/6 수컷 출생 후 10일째 마우스를 연구에 사용하였다.
1. 랑겐도르프 장치의 제조
<ol><li>복잡성을 최소화하려면 일정한 흐름 또는 일정한 압력을 통해 Langendorff 장치 (재료 표 참조) 내에서 재순환되지 않는 산소화 방향제?...

<ol>
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본 연구는 고립 된 신생아 마우스 심장에서 성공적인 대동맥 통조림과 역행 관류를 설명합니다. 중요한 것은 연구자들이 젊은 뮤린 나이와 작은 심장 크기가 이전에 제시 한 장벽을 극복 할 수있게 해줍니다8. 설계가 복잡하지는 않지만 상당한 수준의 기술 기술이 필요합니다. 가장 기술적으로 능숙한 조사관조차도 필연적으로 도전 할 핵심 단계는 대동맥을 캐뉼레이션하고 캐?...

생체 외 심장 제제는 한 세기 이상 생리, 병리 생리학 및 약리학 연구의 필수품이었습니다. 1860년대 엘리아스 시온(Elias Cion)의 연구에서 비롯된 오스카 랑겐도르프(Oskar Langendorff)는 역행 관류를 위해 분리된 개구리 모델을 채택하여 대동맥 뿌리에 압력을 가하여 산소화된 향수1로 관상동맥 흐름을 제공했다. 그의 적응을 사용하여, Langendorff는 관상 동맥 순환과 기계적 기능 사이의 상관 관계를 입증 할 수있었습니다2. 나중에 Langendorff 기법이라고 불리는 생체 외 역행 관류 된 심장은 생리 학적 조사의 초석으로 남아 있으며, 잠재적 인 혼란이없는 상태에서 고립 된 심장을 강력하게 연구하기 위해 단순성을 활용했습니다. Langendorff 준비는 심장이 배출 될 수 있도록 (소위 "일하는 심장"이라고 함)을 허용하고 향수가 재순환 할 수 있도록 추가로 수정되었습니다3. 그러나 관심의 주요 생리 학적 종점은 변하지 않았습니다. 이러한 종점에는 수축 기능, 전기 전도, 심장 대사 및 관상 동맥 저항의 측정이 포함됩니다 4.
원래 개구리 심장 준비에서 심장 기능을 평가하기 위해 Langendorff는 심장의 정점과 힘 변환기 사이에 연결된 봉합사를 사용하여 종축에서 심실 수축에 의해 생성 된 긴장을 측정했습니다. 5 등각 수축은 심실 충전이 없을 때 심장에 가해지는 기저 긴장으로 이러한 방식으로 정량화되었습니다. 접근법의 개선은 등공 수축 동안 심근 성능을 평가하기 위해 좌심방을 통해 좌심실에 유체로 채워진 풍선을 배치하게했다6. 심장 리듬과 심박수를 평가하기 위해 표면 리드를 심장의 극에 배치하여 조사관이 심전도를 기록 할 수 있도록합니다. 그러나 의무적 인 거부를 감안할 때 상대적 서맥을 기대할 수 있습니다. 외인성 페이싱은 이를 극복하고 실험1 사이의 심박수 변동성을 제거하는 역할을 할 수 있다. 또 다른 결과 측정, 심근 대사는 관상 동맥 향수 및 유출물의 산소 및 대사 기질 함량을 측정하고 그 차이를 계산하여 평가할 수 있습니다7. 관상 동맥 유출물에서의 젖산 정량화는 저산소증, 저관류, 허혈 재관류 또는 대사 교란으로 보이는 바와 같이 혐기성 대사 기간을 특성화하는 데 도움이 될 수 있습니다7.
Langendorff의 독창적 인 연구는 고양이를 주요 주제로 사용하여 생체 외 포유류 심장에 대한 연구를 가능하게했습니다5. 고립 된 쥐 심장에 대한 평가는 1900 년대 중반에 하워드 모건 (Howard Morgan)과 함께 인기를 얻었으며, 하워드 모건 (Howard Morgan)은 1967년 5 년에 '일하는 마음'쥐 모델을 자세히 설명했습니다. 마우스의 사용은 기술적 복잡성, 조직 취약성 및 상대적으로 작은 뮤린 심장 크기 때문에 25 년 전에 시작되었습니다. 마우스 연구와 관련된 도전에도 불구하고, 유전자 조작의 더 낮은 비용 및 용이성은 이러한 뮤린 생체외 제제의 호소 및 수요를 증가시켰다. 불행히도이 기술의 적용은 성인 동물로 제한되었으며, 4 주령의 어린 마우스는 아주 최근까지 생체 외 연구에 활용 된 가장 어린 피험자였습니다 8,9. 청소년 생쥐는 성인에 비해 "상대적으로 미성숙"하지만, 발달 생물학 연구의 대상으로서의 유용성은 출생 댐에서 젖을 떼고 곧 사춘기10을 시작할 것이기 때문에 제한적입니다. 청소년기는 포도당과 젖산에서 지방산11로 심근 기질 이용에서 출생 후 전이를 훨씬 넘어서 발생합니다. 따라서, 신생아 심장의 대사 변화에 대한 대부분의 정보는 역사적으로 토끼 및 기니피그(11)와 같은 더 큰 종에서의 생체외 작용으로부터 기인한다.
실제로 Langendorff 준비에 대한 대안적인 접근법이 존재합니다. 여기에는 전체 장기 기능 데이터 및 문맥이 결여된 시험관내 실험 또는 생체내 연구가 포함된다. 이것은 필수 마취제의 심혈관 및 호흡 효과, 신경 체액성 입력의 영향, 핵심 온도의 결과, 동물의 영양 상태 및 기질 가용성12,13과 같은 혼란스러운 변수로 인해 기술적으로 도전적이고 복잡 할 수 있습니다. Langendorff 접근법은 그러한 혼란스러움이없는 경우보다 통제 된 방식으로 생체 외 방식으로 격리 된 관류 된 심장에 대한 연구를 허용하기 때문에 강력한 조사 도구로 간주되어 왔으며 앞으로도 계속되고 있습니다. 따라서 여기에 제시된 기술은 연구자들에게 신생아 뮤린 심장의 생체 외 연구를위한 실험적 접근법을 제공하고 재관류 시간을 제한합니다.
발달 기간 동안 심장을 조사하는 것은 심근 성숙 중에 발생하는 광범위한 생화학적, 생리적 및 해부학 적 전이를 고려할 때 중요한 고려 사항입니다. 혐기성 대사에서 산화적 인산화로의 이동, 기질 이용의 변화, 세포 증식에서 비대로의 진행은 미성숙 심장에서 유일하게 발생하는 역동적인 과정이다(11,14). 발달하는 심장의 또 다른 중요한 측면은 필요한 기간 동안 직면 한 스트레스 요인이 신생아 심장에서 더 높은 반응을 일으키고 성인기의 모욕에 대한 미래의 감수성을 변화시킬 수 있다는 것입니다15. 이전 연구는 Langendorff가 관류 된 신생아 심장을 연구하기 위해 신생아 쥐, 양 및 토끼를 활용했지만,이 종의 발달 생물학 연구16의 중요성을 감안할 때 생쥐 사용을 허용하는 진보가 필요합니다. 이러한 요구를 해결하기 위해, 10 일 된 동물을 사용하는 최초의 뮤린 Langendorff-perfused 신생아 심장 모델이 최근에 확립되었습니다6. 여기에 제시된 것은 성공적인 대동맥 절개술을 가능하게하고 고립 된 신생아 뮤린 심장의 역행 관류를 확립하는 방법입니다. 이러한 접근법은 약리학, 허혈-재관류, 또는 전체 기관 기능에 초점을 맞춘 대사 연구에 활용될 수 있거나, 심근세포의 단리를 위해 적응될 수 있다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Rodent Langendorff Apparatus</td>
			<td>Radnoti</td>
			<td>130102EZ</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24 G catheter</td>
			<td>BD</td>
			<td>381511</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26 G needle on 1 mL syringe combo</td>
			<td>BD</td>
			<td>309597</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26 G steel needle</td>
			<td>BD</td>
			<td>305111</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5-0 Silk Suture</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>S1173</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bio Amp</td>
			<td>ADInstruments</td>
			<td>FE135</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bio Cable</td>
			<td>ADInstruments</td>
			<td>MLA1515</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CaCl2</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C4901-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Circulating heating water Bath</td>
			<td>Haake</td>
			<td>DC10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>curved iris scissor</td>
			<td>Medline</td>
			<td>MDS10033Z</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>dissecting microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>SMZ-2B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>find spring scissors</td>
			<td>Kent</td>
			<td>INS600127</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Force Transducer</td>
			<td>ADInstruments</td>
			<td>MLT1030/D</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glucose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G8270-100G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>Sagent</td>
			<td>400-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High pressure tubing</td>
			<td>Edwards Lifesciences</td>
			<td>50P184</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>iris dressing forceps</td>
			<td>Kent</td>
			<td>INS650915-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Jeweler-style curved fine forceps</td>
			<td>Miltex</td>
			<td>17-307-MLTX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P3911-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>KH2PO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P0662-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MgSO4</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M7506-500G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S9888-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaHCO3</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>S6014-25G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Roller Pump</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>Minipuls 3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>straight dissecting scissors</td>
			<td>Kent</td>
			<td>INS600393-G</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Temporary cardiac pacing wire</td>
			<td>Ethicon</td>
			<td>TPW30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wide Range Force Transducer</td>
			<td>ADInstruments</td>
			<td>MLT1030/A</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

modified technique for the use of neonatal murine hearts in the langendorff preparation

생체외 역행 관류 심장의 사용은 한 세기 전에 오스카 랑겐도르프에 의해 개발 된 이래로 허혈 재관류 조사의 초석이었습니다. 이 기술은 지난 25 년 동안 마우스에 적용되었지만,이 종에서의 사용은 성인 동물로 제한되었습니다. 신생아 뮤린 대동맥을 지속적으로 캐뉼레이트하는 성공적인 방법의 개발은 유전자 변형 가능하고 저렴한 종에서 심장 발달의 중요 기간 동안 고립 된 역행 용혈 심장에 대한 체계적인 연구를 가능하게합니다. Langendorff 제제의 수정은 허혈성 시간을 최소화하면서 신생아 뮤린 심장에서 재관류의 정식 및 확립을 가능하게합니다. 최적화를 위해서는 해부 현미경 및 변형된 상업적으로 이용가능한 바늘을 사용하여 신생아 마우스 대동맥의 성공적인 캐뉼레이션을 허용하기 위해 두 사람 기술이 필요합니다. 이 접근법의 사용은 3 분 이내에 역행 관류를 안정적으로 확립 할 것입니다. 신생아 마우스 심장의 취약성과 심실 공동 크기는 풍선을 사용하여 발생하는 심실 내 압력의 직접적인 측정을 방해하기 때문에 봉합사에 의해 좌심실의 정점에 연결된 힘 변환기를 사용하여 종방향 수축 장력을 정량화해야합니다. 이 방법을 통해 조사관은 격리 된 정수 흐름 역행 - 관류 된 신생아 뮤린 심장 준비를 성공적으로 확립하여 생체 외 방식으로 발달 심장 생물학을 연구 할 수 있습니다. 중요하게도, 이 모델은 신생아 심장에서 허혈-재관류에 대한 생리학적 및 약리학적 반응을 조사하는 강력한 도구가 될 것이다.

P10 마우스는 인간 유아기26,27에서 시점을 모델링하기 위해 사용되었다. 15개의 분리된 C57Bl/6 신생아 마우스 하트를 수확하고 성공적으로 캐뉼레이션하였다. 심장은 가온된 산소화된 KHB의 2.5 mL min-1의 연속 흐름으로 관류되었다. 글루코스 추출, 산소 소비, 젖산 생산, 심박수, 관류 압력 및 관상 동맥 저항성과 같은 생리학적 파라미터를 포함하는 ...

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Modified Technique for the Use of Neonatal Murine Hearts in the Langendorff Preparation

본 프로토콜은 생체외 신생아 뮤린 심장의 대동맥 캐뉼레이션 및 역행 관류를 기술한다. 해부 현미경과 무딘 작은 게이지 바늘을 사용하는 두 사람 전략은 신뢰할 수있는 통조림을 허용합니다. 종방향 수축 장력의 정량화는 좌심실의 정점에 연결된 힘 변환기를 사용하여 달성된다.

Langendorff 준비에서 신생아 뮤린 하트의 사용을위한 수정 된 기술

The use of the ex-vivo retrograde perfused heart has long been a cornerstone of ischemia-reperfusion investigation since its development by Oskar ...

이러한 접근법은 신생아 생체외 마우스 심장의 역행 관류를 삼분 이내에 확실하게 확립한다. 따라서 연구의 가능한 가장 어린 나이를 몇 주에서 출생 후 10 일로 줄입니다. 이 고립 된 역행 관류 모델은 유 전적으로 수정 가능하고 저렴한 종에서 심장 발달의 중요한시기에 신생아 심장을 연구 할 수있게합니다.이 모델은 신생아 심장에서 허혈 - 재관류에 대한 생리 학적 및 약리학 적 반응의 연구에 도움이되지만. 또한 심근세포 분리에도 활용될 수 있다. 신생아 마우스 대동맥 캐뉼라를 제작하려면 날카로운 가위를 사용하여 팁을 자르고 26 게이지 스테인레스 스틸 바늘의 끝을 무릎 꿇고 바늘 루멘의 직경을 크림프하거나 제한하지 않도록주의하십시오.그런 다음 절단면을 부드럽게하여 실험실 벤치 상단의 무딘 끝을 부드럽게 긁어 내고 이리저리 움직여 버를 제거하십시오. 다음으로, 제작된 캐뉼러를 Langendorff 장치에 부착하고 유동 및 저항을 평가합니다. 캐뉼러를 통한 유속을 측정하여 일분 간격으로 버퍼 양을 수집하고 측정합니다.Krebs-Heneseleit 버퍼가 흐르는 동안 캐뉼라를 가로지르는 압력 차이를 정량화하려면 캐뉼라가 부착되거나 부착되지 않은 시스템의 압력을 측정하십시오. 그런 다음 다음 공식을 사용하여 캐뉼라 저항을 계산하십시오. 다음으로, Langendorff 장치로부터 26 게이지 캐뉼러를 제거하고 장치의 캐뉼레이션 부위에 고압 튜브를 부착하십시오.그런 다음 대동맥 캐뉼라를 튜브의 원위 단부에 부착하고 튜브와 캐뉼라를 산소화 버퍼로 공기내어 모든 기포가 제거되도록합니다. 관상 동맥 미세 혈전의 형성을 방지하려면 1 밀리리터 주사기에 26 게이지 바늘을 사용하여 10 일 된 마우스 강아지에게 헤파린을 복강 내 주사하십시오. 마취제 주사를 진행하기 전에 헤파린이 순환 할 때까지 몇 분 정도 기다리십시오.다음으로, 마취 된 마우스를 수핀 위치에 놓고 의식 상실시 즉시 팔다리를 고정하십시오. 동물이 발가락 꼬집음에 반응하지 않는 즉시 수확을 시작하십시오.동물은 초기 해부 중에 자발적으로 호흡합니다. 직선 해부 가위를 사용하여 복강을 노출시키는 동물 너비를 가로 질러 횡방향 아시 포이드 절개를 만듭니다.조수에게 포셉으로 xiphoid 과정을 파악하도록 요청한 다음 흉곽을 두개 방향으로 중간 겨드랑이 선을 따라 양측으로 자르고 흉골과 갈비뼈를 두개골로 반사하여 흉부 장기를 노출시킵니다. 횡격막을 우월하게 확인한 후 앞부분을 완전히 절개하십시오. 간 위의 방사선 실용성 열등한 정맥 카바를 확인하고 곡선 아이리스 가위로 횡단하면서 아이리스 포셉으로 근위 세그먼트의 두개 긴장으로 약간의 내부를 유지하십시오.그런 다음 구부러진 아이리스 가위를 사용하여 척추의 내부 표면을 따라 후방으로 자르고 열등한 정맥 카바를 흉강 밖으로 당깁니다. 심장이 동원되면 가위를 앞쪽으로 각도를 맞추고 큰 혈관을 우월하게 절단하여 심장과 폐를 완전히 제거하십시오. 즉시 얼음처럼 차가운 Krebs-Henseleit 완충액 또는 식염수에 시편을 잠급니다.심장은 몇 초 안에 박동을 멈춰야합니다. 얕은 페트리 접시의 바닥에 종이 타월 한 장을 놓아 마찰을 일으켜 통조림 중에 심장을 안정시킵니다. 종이 타월에 얼음처럼 차가운 크렙스-헨셀릿 버퍼를 적셔 심장이 그것에 달라붙지 않도록 하십시오.준비된 페트리 접시를 해부 현미경 아래에 놓고 초점을 조정하십시오. 이제 해부 현미경 아래에 고압 연장 튜브에 부착 된 대동맥 캐뉼라를 허브 주위에 느슨하게 묶은 5-0 실크 봉합사와 함께 놓습니다. 적출 된 흉부 장기를 페트리 접시에 넣은 후 흰 광택과 두 개의 엽으로 흉선을 확인하고 흉선이 앞쪽에 있고 우월하도록 표본의 방향을 정하십시오.다음으로, 포셉을 사용하여 큰 혈관을 노출시키는 흉선의 엽을 무뚝뚝하게 분리합니다. 그런 다음 대동맥 아치의 구별되는 분기 특징을 찾아 대동맥을 확인하고 미세한 날카로운 가위를 사용하여 쇄골 하부 동맥 이륙에 근접하여 대동맥을 횡단합니다. 이제 보석상 스타일의 미세한 곡선 포셉을 사용하여 횡단 된 대동맥을 부드럽게 잡고 26 게이지 무딘 바늘로 대동맥을 조심스럽게 캐뉼레이트하여 대동맥 밸브가 손상되지 않도록주의하십시오.미세한 곡선 포셉을 사용하여 캐뉼라 주변의 대동맥을 잡고 허혈성 시간을 제한하기 위해 역행 관류를 시작하십시오. 조수에게 느슨하게 묶인 봉합사의 끝을 잡고 캐뉼라 주위의 대동맥을 조심스럽게 감싸도록 요청하십시오. 미세한 곡선 포셉 위 또는 아래에 봉합사를 조인 다음 봉합사를 조이고 관상 동맥 흐름의 적절성을 확인하십시오.Langendorff 장치에서 고압 튜브를 분리하고 캐뉼라의 허브를 잡고 고압 연장 튜브에서 무딘 바늘을 분리하십시오. 그런 다음 캐뉼라의 허브를 장치에 빠르게 부착하십시오. 심장이 일반적인 위치에서 Langendorff 장치에 매달려 있으면 적절한 관류가 확인됩니다.폐, 흉선 및 과도한 조직을 조심스럽게 다듬으십시오. 그런 다음 관상 동맥 부비동 유출물이 자유롭게 물방울을 떨어 뜨릴 수 있도록 오른쪽 아트리움을 절개하십시오. 5-0 실크 봉합사 끝에 작은 매듭을 만든 다음 바늘로 파라핀 필름의 작은 조각을 관통하고 파라핀을 매듭 된 끝으로 밀어 넣습니다.조심스럽게 바늘을 심실의 정점을 통과시키고 파라핀 필름이 심실의 측벽에 맞을 때까지 심장을 통해 봉합사를 당깁니다. Langendorff 장치의 물이 채워진 온난 한 재킷의 개구부를 통해 바늘을 통과시켜 심장을 감싸고 따뜻하게 할 수 있도록하십시오. 그런 다음 관상 동맥 부비동 물방울을 피하면서 힘 변환기에 바늘을 부착하십시오.봉합사를 조정하여 이완기 긴장 또는 나디르 의도 추적에 의해 지시 된대로 하나 내지 두 그램의 기저 장력을 적용하십시오. 그런 다음 심전도를 기록하기 위해 심장의 우수하고 열등한 극에 표면 전극을 놓습니다. 마지막으로, 분석을 위해 관상동맥 부비동 유출물을 24 게이지 정맥내 카테터를 사용하여 샘플링한다.표면 전극은 연속 심전도를 기록하는 데 사용되었으며, 이는 고유 속도와 리듬을 결정할 수있었습니다. 적절하게 관류 된 모든 심장은 부비동 리듬으로 자발적으로 뛰고 있습니다. 이 관류 전략은 무시할 수있는 젖산 생산과 낮은 비율의 산소 추출 및 포도당 소비를 감안할 때 신생아 마우스 심장의 신진 대사 요구를 충족 시켰습니다.평균 탈핵된 고유 심박수 및 평균 관찰된 대동맥 관류 압력과 같은 생리학적 변수 수단도 또한 기록되고 계산되었다. 신생아 준비의 일관성을 보장하기 위해 재관류를 시작하는 데 필요한 시간, 부정맥 지속 시간 및 대동맥 관류 압력과 같은 일부 배제 기준을 고려해야합니다. 관류의 확립 후, 약물 전달, 허혈 - 재관류 손상의 유도, 대사 산물의 변화 또는 심근 세포 분리를위한 효소제의 전달과 같은 개입이 발생할 수 있습니다.

Research

JoVE Journal

Medicine

NADH Fluorescence Imaging of Isolated Biventricular Working Rabbit Hearts

절연 Biventricular의 NADH 형광 이미징은 토끼 하트 워킹

Since its inception by Langendorff1, the isolated perfused heart remains a prominent tool for studying cardiac physiology2. However, it is not well-suited ...

연구

의학

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

수정 커프 기술을 사용하여 쥐의 자궁 심장 이식 모델

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

Intramyocardial Cell Delivery: Observations in Murine Hearts

심근 내 휴대 납품 : 쥐과 마음의 관찰

Previous studies showed that cell delivery promotes cardiac function amelioration by release of cytokines and factors that increase cardiac tissue ...

Induction and Assessment of Ischemia-reperfusion Injury in Langendorff-perfused Rat Hearts

랑겐 돌프 - 관류 쥐 마음에 유도 및 허혈 - 재관류 손상의 평가

The biochemical events surrounding ischemia reperfusion injury in the acute setting are of great importance to furthering novel treatment options for ...

Neonatal Murine Cochlear Explant Technique as an In Vitro Screening Tool in Hearing Research

Neonatal Murine Cochlear Explant Technique as an In Vitro Screening Tool in Hearing Research

신생아 쥐의 달팽이관 Explant 기법으로<em&gt; 체외에서</em&gt; 청력 연구의 스크리닝 도구

While there have been remarkable advances in hearing research over the past few decades, there is still no cure for Sensorineural Hearing Loss (SNHL), a ...

Optocardiography and Electrophysiology Studies of Ex Vivo Langendorff-perfused Hearts

전 비보 랑엔도르프-퍼블릭 하트의 검문 및 전기생리학 연구

Small animal models are most commonly used in cardiovascular research due to the availability of genetically modified species and lower cost compared to ...

Advanced Cardiac Rhythm Management by Applying Optogenetic Multi-Site Photostimulation in Murine Hearts

쥐 심장에 광유전학적 다중 부위 광자극을 적용하여 고급 심장 리듬 관리

Ventricular tachyarrhythmias are a major cause of mortality and morbidity worldwide. Electrical defibrillation using high-energy electric shocks is ...

Creating Radio-cephalic Arteriovenous Fistula in the Forearm with a Modified No-Touch Technique

수정된 노터치 기술로 팔뚝에 무선 세팔릭 동맥 누공 만들기

Autologous arteriovenous fistula (AVF) is the primary and best option to obtain vascular access for hemodialysis treatment; other options are ...

A Modified Simple Method for Induction of Myocardial Infarction in Mice

생쥐의 심근경색 유도를 위한 수정된 간단한 방법

Myocardial infarction (MI) represents one of the leading causes of death. MI models are widely used for investigating the pathomechanisms of post-MI ...

Modified Posterior Vertebral Column Resection for Patients with Thoracolumbar Kyphotic Deformity

흉요추 후만 기형 환자를 위한 수정된 후방 척추 기둥 절제술

Old compression vertebrae fracture or congenital kyphoscoliosis with abnormal vertebral body development and other diseases that invade the spine may ...