Name: repetitive blood sampling from the subclavian vein of conscious rat
Uploaded: 2022-02-09T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat at JoVE.com

Bu araştırma, Guangdong İl İlaç Klinik Olmayan Değerlendirme ve Araştırma Anahtar Laboratuvarı (No.2018B030323024) ve Guangdong Anahtar Araştırma ve Geliştirme Planı Anahtar Programı "Yeni İlaç Oluşturma" (No.2019B020202001), Guangzhou Temel ve Uygulama Vakfı Araştırma Projesi (No.202002030249 ve No.202002030156) tarafından finanse edilmiştir.

Açıklanan tüm hayvan deneyleri, Guangdong Lewwin Farmasötik Araştırma Enstitüsü Co., Ltd.'nin Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmıştır. erkek ve dişi Sprague Dawley (SD) sıçanları, deneyler için ~ 6-11 hafta kullanıldı. Sıçanlar, laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımı için kılavuzlara uyularak yetiştirildi13.
1. Hayvan hazırlığı
NOT: Bu çalışmada...

<ol>
	<li>Shravya, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=International+conference+on+harmonization+of+technical+requirements+for+registration+of+pharmaceuticals+for+human+use.+ICH+M2+EWG.">International conference on harmonization of technical requirements for registration of pharmaceuticals for human use. ICH M2 EWG.</a> Electronic common technical document. , (2014).</li><li>Tan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The China Food and Drug Administration (CFDA). , (2015).</li><li>McGuill, M. W., Andrew, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biological+effects+of+blood+loss:+Implications+for+sampling+volumes+and+techniques.">Biological effects of blood loss: Implications for sampling volumes and techniques.</a> ILAR Journal. 31 (4), 5-20 (1989).</li><li>Aguilar-Mariscal, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oral+pharmacokinetics+of+meloxicam+in+the+rat+using+a+high-performance+liquid+chromatography+method+in+micro-whole-blood+samples.">Oral pharmacokinetics of meloxicam in the rat using a high-performance liquid chromatography method in micro-whole-blood samples.</a> Methods and Findings in Experimental and Clinical Pharmacology. 29 (9), 587-592 (2007).</li><li>Korfmacher, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Utility+of+capillary+microsampling+for+rat+pharmacokinetic+studies:+Comparison+of+tail-vein+bleed+to+jugular+vein+cannula+sampling.">Utility of capillary microsampling for rat pharmacokinetic studies: Comparison of tail-vein bleed to jugular vein cannula sampling.</a> Journal of Pharmacological and Toxicological Methods. 76, 7-14 (2015).</li><li>JoVE. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=JoVE+Science+Education+Database.+Blood+Withdrawal+I.">JoVE Science Education Database. Blood Withdrawal I.</a> JoVE. , (2021).</li><li>Yang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subclavian+vein+puncture+as+an+alternative+method+of+blood+sample+collection+in+rats.">Subclavian vein puncture as an alternative method of blood sample collection in rats.</a> Journal of Visualized Experiments. (141), e58499 (2018).</li><li>Zou, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Repeated+blood+collection+from+tail+vein+of+non-anesthetized+rats+with+a+vacuum+blood+collection+system.">Repeated blood collection from tail vein of non-anesthetized rats with a vacuum blood collection system.</a> Journal of Visualized Experiments. (130), e55852 (2017).</li><li>Parasuraman, S., Raveendran, R., Kesavan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blood+sample+collection+in+small+laboratory+animals.">Blood sample collection in small laboratory animals.</a> Journal of Pharmacology &amp; Pharmacotherapeutics. 1 (2), 87-93 (2010).</li><li>Itziar, F., Arantza, P., Nahia, D., Virginia, P., Juan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+biochemistry+parameters+in+C57BL/6J+mice+after+blood+collection+from+the+submandibular+vein+and+retroorbital+plexus.">Clinical biochemistry parameters in C57BL/6J mice after blood collection from the submandibular vein and retroorbital plexus.</a> Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 49 (2), 202-206 (2010).</li><li>Heimann, M., Roth, D. R., Ledieu, D., Pfister, R., Classen, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sublingual+and+submandibular+blood+collection+in+mice:+A+comparison+of+effects+on+body+weight,+food+consumption+and+tissue+damage.">Sublingual and submandibular blood collection in mice: A comparison of effects on body weight, food consumption and tissue damage.</a> Laboratory Animals. 44 (4), 352-358 (2010).</li><li>Wren-Dail, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+isoflurane+anesthesia+on+circadian+metabolism+and+physiology+in+rats.">Effect of isoflurane anesthesia on circadian metabolism and physiology in rats.</a> Comparative Medicine. 67 (2), 138-146 (2017).</li><li>National Institute of Health. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th edition. , (2011).</li><li>Lee, G., Goosens, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sampling+blood+from+the+lateral+tail+vein+of+the+rat.">Sampling blood from the lateral tail vein of the rat.</a> Journal of Visualized Experiments. (99), e52766 (2015).</li><li>Diehl, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood,+including+routes+and+volumes.">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> Journal of Applied Toxicology. 21 (1), 15-23 (2001).</li><li>Casal, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+and+physiological+methods+of+evaluating+median+nerve+regeneration+in+the+rat.">Functional and physiological methods of evaluating median nerve regeneration in the rat.</a> Journal of Visualized Experiments. (158), e59767 (2020).</li></ol>

Subklaviyen damarlardan kan toplamanın bazı faydaları vardır. (1) Kan toplama bölgesi kolayca ayrıştığından ve sıçanların farklı duruşları nedeniyle venöz pleksus düzenli olmadığından, tarif edilen yöntem, sıçanların stabil ve rahat duruşlarını korurken venöz pleksusun pozisyonunu kolayca lokalize edebilir. (2) Operasyon, teknisyenlerin becerilerinin hızlı gelişimi ve hayvanlara daha az acı vermesi için kolay ve elverişlidir. (3) Hayvanı rahat ettirmek için bir çalışma modu, huzurs...

İnsan Kullanımı İçin İlaçların Tescili için Teknik Gereksinimlerin Uyumlaştırılması Uluslararası Konferansı (ICH) kılavuzları1 ve Ulusal Tıbbi Ürünler İdaresi (NMPA) kılavuzları2'ye göre, toksikokinetik (TK) çalışmadaki sıçanların kan toplama zaman noktalarının sayısının, dinamik ilaca maruz kalma değerlendirmesinin gereksinimlerini karşılaması gerekir. Bir sıçanın yaklaşık toplam kan hacmi 55-70 mL / kg vücut ağırlığı3'tür. Toplama zaman noktaları genellikle dozlamadan sonraki 30 dakika içinde yoğundur ve bundan sonra azalır ve rutin testlerde 48 saat içinde ondan fazla kan örneğinin toplanması gerekir4. Örneğin, kan örnekleri, oral yoldan verilen ilaçların TK çalışmasında 12 zaman noktasında (0 dakika, 5 dakika, 10 dakika, 15 dakika, 30 dakika, 45 dakika, 1 saat, 2 saat, 3 saat, 4 saat, 8 saat ve 12 saat) toplanır. Araştırmacılar, TK testi 5 için yüksek kaliteli plazma elde etmek için sıçanlarda tekrar tekrar 200-250 μL kan toplamalıdır.
Sıçanlardaki kan toplama bölgeleri kuyruk kan damarları, retro-orbital pleksus veni, submandibuler ven, kalp, abdominal aort6 vb. İçerir. Bunlar arasında, sıçanların kaudal damarından kan toplanması, deneyimli ve yetenekli operatörler gerektiren sık kullanılan bir yöntemdir 7,8. Retro-orbital pleksus veninden kan toplamak daha az karmaşıktır; Bununla birlikte, bu yöntem sıçanların görme duyusuna zarar verebileceği için önerilmez9 ve kalpten ve abdominal aorttan gelen kan sadece son kan örneklemesi10 için uygundur. Bilinçli bir sıçanda submandibuler damardan kan toplamanın bir başka yönteminin daha fazla komplikasyona neden olduğu ve yetersiz kan örneği kalitesi11 ortaya koyduğu gösterilmiştir. Bu nedenle, araştırmacılar örnekleme zorluğunu azaltmak için hayvanı uyuşturabilirler. Yine de, anestezi aynı zamanda deneyin maliyetini de arttırır ve daha ciddi olarak, sıçanların metabolik durumunu etkileyecektir12. Mevcut protokol, anestezi olmadan sıçanların subklaviyen damarlarında kan toplamak için hızlı ve basit bir yöntem kullanır, bu da zamanında ve tekrarlanan bir şekilde yüksek kaliteli örnekler elde etmek için doğru konumlandırma ve bilateral alternatif kan alımına izin verir.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>1.0 mL syringe (with needle, 26 G, 0.45 mm x 15.5 mm)</td>
			<td>Jiangxi Hongda Medical Equipment Group LTD.(Nanchang, Jiangxi Province, China)</td>
			<td>20210629</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>75% alcohol</td>
			<td>Shandong Lierkang Medical Technology Co., Ltd. (Dezhou, Shandong Province, China)</td>
			<td>210717</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Animal source</td>
			<td>Hunan SJA Laboratory Animal Co., Ltd.</td>
			<td>grade: SPF</td>
			<td>laboratory animal production license number: SCXK (Hunan) 2019-0004, laboratory animal quality certificate number: 4307272101972847</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton swab</td>
			<td>Caoxian Hualu Sanitary Materials Co., Ltd.(Heze, Shandong Province, China)</td>
			<td>20210301</td>
			<td>Need to be sterilized.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electric shaver</td>
			<td>Shenzhen Codos Electric Appliance Co. , Ltd.(Shenzhen, Guangdong Province, China)</td>
			<td>CP-6800</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EP tube, 1.5 mL</td>
			<td>Genetimes ExCell Technology,Inc.(Shanghai, China)</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin sodium (2 mL:12500 IU)</td>
			<td>Tianjin biochem pharmaceutical Co.,Ltd(Tianjing, China)</td>
			<td>51200702</td>
			<td>Prepare 1250 IU/mL heparin sodium solution. Add heparin sodium solution into the EP tube in advance and make it evenly distributed on the wall of the EP tube, and dry it at 60&#176;C for use.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Labtip (volume range 5-200 &#956;L)</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific Oy</td>
			<td>94300120</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Low speed refrigerated centrifuge</td>
			<td>Hunan Xiangyi Laboratory Instrument Development Co., Ltd.(Changsha, Hunan Province, China)</td>
			<td>L535R</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pipette gun (20-200 &#956;L)</td>
			<td>BRAND</td>
			<td>12N92305</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rats (SD)</td>
			<td>Hunan SJA Laboratory Animal Co., Ltd. (Changsha, Hunan Province, China)</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sharp tool container</td>
			<td>Taizhou Huangyan Yikang Plastic Factory (Taizhou, Zhejiang Province, China)</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Eye drop</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>This reagent is not a commodity and the manufacturer requires it to be tested. In the principle of confidentiality, the manufacturer and model cannot be provided.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

repetitive blood sampling from the subclavian vein of conscious rat

Sıçanlar, ilaca maruz kalmayı tespit etmek için belirli zaman noktalarında belirli miktarda kan toplaması gereken farmakokinetiği (PK) ve toksikokinetik (TK) çalışmalarında yaygın olarak kullanılmaktadır. Sıçan kan örnekleme yöntemi, plazmanın kalitesini belirler ve test sonuçlarının hassasiyetini daha da etkiler. Bu protokolde açıklanan subklaviyen ven kan toplama yöntemi, PK ve TK testlerinin ihtiyaçlarını karşılamak için hayvanların bilinçli durumlarında tekrar tekrar kan örnekleri toplar. Kısıtlama işleme becerileri ve uygun iğne kesisi prosedürü kan alımının başarı oranını sağlar. Plazma kalitesini sağlarken ve aynı zamanda hayvan refahını karşılarken kullanımı kolaydır. Bununla birlikte, bu yöntem yetenekli bir operasyon gerektirir ve uygun olmayan bir yöntem hayvan zayıflığına, ağrıya, topallığa ve hatta ölümlere neden olabilir. Mevcut yöntem, TK'lı Sprague Dawley (SD) sıçanlarında 4 haftalık bir oral toksisite çalışması için test tesisinde kullanılmıştır. 24 saat içinde toplanan maksimum kan miktarı, hayvanın toplam kanının% 20'sini geçmedi. Hayvanların vücut ağırlığı erkekler ve dişiler için 200 g'dan fazlaydı. Veriler, hayvanların vücut ağırlığının her hafta istikrarlı bir şekilde arttığını ve tekrarlayan numune toplamadan sonra klinik gözlemin normal olduğunu gösterdi.

Subklaviyen venden alınan iyi plazma örnekleri yarı saydam soluk sarı renkteydi (Şekil 4, sol tüp). Yanlış kan alımı veya manipülasyonu hemoliz ile sonuçlandı (Şekil 4, sağ tüp).
Test tesisinin verileri, TK'li SD sıçanlarda bir göz damlasının 4 haftalık bir oral toksisite çalışmasında, kan örneklerinin ilk (Gün 1) ile son dozlama günü (Gün 28) arasında 9 zaman noktasında (0 saat, 0.167 saat, 0.5 saat, ...

Watch this Scientific Journal Video about Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat at JoVE.com

Repetitive Blood Sampling from the Subclavian Vein of Conscious Rat

Mevcut protokol, sıçanlarda subklaviyen damardan kan toplamak için basit ve etkili bir yöntemi açıklamaktadır. Anestezi olmadan hızlı, zamanında ve kolayca tanımlanabilir örnekleme sağlar ve tekrarlayan numune toplama yoluyla yüksek kaliteli kan elde eder.

Bilinçli Sıçan Subklaviyen Veninden Tekrarlayan Kan Örneklemesi

Rats are widely used in pharmacokinetics (PK) and toxicokinetic (TK) studies that need to collect a certain amount of blood at specific time points to ...

Farmakokinetik ve toksikokinetik çalışmalarda, ilaca maruz kalmayı tespit etmek için sıçanlarda belirli zaman noktalarında belirli miktarda kan toplamamız gerekir. Bu çalışmada, bu protokoldeki sıçanlarda subklaviyen damardan kan toplamak için basit ve etkili bir yöntem açıklanmaktadır. Bu teknik, anestezi olmadan tekrarlı, zamanında ve kolayca tanımlanabilir örnekleme sağlar ve tekrarlayan numune toplama yoluyla yüksek kaliteli kan elde eder.Subklaviyen venin anatomisini, yetenekli sıçan kısıtlamasını ve iğne noktasını bilmelisiniz. Yöntem risklidir ve nitelikli bir profesyonel gerektirir. Başlamak için, subklaviyen üçgen fossa'nın boyun ve ön ayak arasındaki en düşük noktasını bir sıçanda bulun.Başa doğru yaklaşık iki ila üç milimetre hareket ettirin ve kan alma bölgesindeki iğne noktasına ulaşın. Elektrikli tıraş makinesi kullanarak saçları çıkarın. Sıçanın başını, boynunu ve göğsünü dik tutmak için, boynun arkasındaki cildi bir elinizle kavrayın ve enjeksiyon bölgesini açığa çıkarın.Seviyesini korumak için enjeksiyon bölgesinin yan tarafındaki ön ayağı düzeltin. Şırıngayı diğer elinizle sıçanın kafasına paralel tutun ve şırıngayı beş ila 10 derece dışa doğru eğin, böylece uç ventral yöne doğru eğilir. İğneyi tamamen ön boşluğa yerleştirin.Tüp ile negatif basıncı korumak için şırıngayı geri çekin. İğneyi yavaşça derinlerden sığlığa doğru hareket ettirin ve aynı yolu yedekleyin. Şırınga iğnesine kan girdiğinde, iğnenin pozisyonunu sabitleyin.Sıçanların ağırlığına ve sağlığına bağlı olarak, kurumun hayvan bakım ve kullanım komitesi tarafından belirlenen standartlara uygun olarak çekilecek maksimum kan miktarını izleyin. Diğer gereksinimlerin yokluğunda, hayvanın toplam kan hacminin% 20'sinden fazlasını 24 saat içinde çıkarmayın. Yeterli kan örneği toplandığında, derhal şırıngayı geri çekin ve kan tedavisine hazırlanın.Kanamayı durdurmak için sıçanın enjeksiyon bölgesini bir ila iki dakika boyunca basınçlandırın. Toplama bölgesi boynun alt kısmında olduğundan, üzerine bastırarak kanamayı durdurmak için subklaviyen venin derisini sıkıştırın. İğneyi şırıngadan çıkarın ve keskin alet kabına atın.Kanı yavaşça şırıngadan 1,5 mililitrelik bir tüpe aktarın. Kabarcık oluşumlarını önlemek için şırıngayı duvara bastırın. Mikrosantrifüj tüpünün kapağını kapatın ve hafifçe hafifçe kaydırın.Kanı antikoagülanla en az beş kez baş aşağı çevirerek iyice karıştırın. Plazmayı topladıktan sonra 120 dakika içinde, tüm kan örneğini oda sıcaklığında 10 ila 15 dakika boyunca 2.000 RCF'de santrifüj yapın. Üst plazmayı taze bir mikrosantrifüj tüpüne aktarmak için bir pipet tabancası kullanın.Pipet kafasına alt tam kan ile dokunmayın. Kırmızı kan hücreleri ile kontamine olmuş plazmayı atın veya yeniden santrifüj edin. Subklaviyen venden doğru olarak toplanan plazma örnekleri yarı saydam soluk sarıydı.Yanlış kan toplanması veya manipülasyon hemoliz ile sonuçlandı. İlk örnekleme sırasında, erkek hayvanın vücut ağırlığı 268 ila 297 gram arasında ve dişiler için yaklaşık 214 ila 239 gram idi. Son örnekleme sırasında, erkek hayvanın vücut ağırlığı 376 ila 462 gram arasında ve dişiler için yaklaşık 254 ila 300 gram idi.Toksikokinetik kan alımı arasında 28 günlük bir boşluk vardı. Hayvanın vücut ağırlığı her hafta istikrarlı bir şekilde arttı ve klinik gözlem normaldi. Hassas iğne yerleştirme yöntemi ve açısı, düzgün kan alımını sağlayabilir ve riskleri önleyebilir.Bu işlem tekrarlanan uygulama gerektirir.

Research

JoVE Journal

Medicine

Hyperinsulinemic-Euglycemic Clamp in the Conscious Rat

Bilinçli Rat hiperinsülinemik öglisemik Kelepçe

Type 2 diabetes (T2D) is rapidly rising in prevalence. Characterized by either inadequate insulin production or the inability to utilize insulin produced, ...

Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements

Kan Örnekleme, İlaç İdaresi ve Bilinçli Kan Basıncı ve Nabız ölçümleri Femoral Arter ve Venöz Kateterizasyon

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically ...

Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

Karotis Arter ve Ven Juguler kateterizasyon bir Bilinçli Rat Modelinde, İnfüzyonları ve Kan Örnekleme hemodinamik Tedbirleri Gerçekleştirme

The success of a small animal model to study critical illness is, in part, dependent on the ability of the model to simulate the human condition. ...

Repeated Blood Collection from Tail Vein of Non-Anesthetized Rats with a Vacuum Blood Collection System

Kuyruk damar anestezi sıçan bir vakum kan toplama sistemi ile kan koleksiyonundan tekrarlanan

Blood can be collected from rats in a number of sampling locations. For instance, the tail vein is a superior location for blood sampling. However, the ...

Subclavian Vein Puncture As an Alternative Method of Blood Sample Collection in Rats

Subklaviyan ven ponksiyon kan örnek fareleri koleksiyonunda alternatif bir yöntem olarak

Blood collection with enough blood volume is essential in animal experiments. Blood collection from the tail vein of rats is popular and less stressful ...

Blood Collection Through Subclavian Vein Puncture in Mice

Farelerde subclavian ven delinme yoluyla kan toplama

The mouse is the foremost mammalian model for studying human disease and human health. However, blood sample collection from mice is challenging in ...

Microsurgical Skills of Establishing Permanent Jugular Vein Cannulation in Rats for Serial Blood Sampling of Orally Administered Drug

Oral Yoldan Verilen İlacın Seri Kan Örneklemesi için Sıçanlarda Kalıcı Juguler Ven Kanülasyonu Oluşturma Mikrocerrahi Becerileri

Blood sampling in small laboratory animals is necessary for pharmaceutical lead optimization but can cause great harm and stress to experimental animals, ...

Long-Term Continuous Measurement of Renal Blood Flow in Conscious Rats

Bilinçli Sıçanlarda Renal Kan Akışının Uzun Süreli Sürekli Ölçümü

The kidneys play a crucial role in maintaining the homeostasis of body fluids. The regulation of renal blood flow (RBF) is essential to the vital ...

Dynamic Continuous Blood Extraction from Rat Heart via Noninvasive Microdialysis Technique

Dynamic Continuous Blood Extraction from Rat Heart via Noninvasive Microdialysis Technique

Noninvaziv Mikrodiyaliz Tekniği ile Sıçan Kalbinden Dinamik Sürekli Kan Ekstraksiyonu

Dynamic analysis of blood components is of great importance in understanding cardiovascular diseases and their related diseases, such as myocardial ...

Comparative Study of Blood Collection Techniques in Rats

Modified Tail Vein and Penile Vein Puncture for Blood Sampling in the Rat Model

Context Dependent Blood Collection Methods in Rats (Video) | JoVE

Sıçan Modelinde Kan Örneklemesi için Modifiye Kuyruk Veni ve Penil Ven Delinmesi

Blood samples are required in most experimental animal designs to assess various hematological parameters. This paper presents two procedures for blood ...