Name: a modified cuff technique for mouse cervical heterotopic heart transplantation model
Uploaded: 2022-02-07T15:00:00
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Diese Arbeit wurde von der National Natural Science Foundation of China (81870304) an Jun Li unterstützt.

Alle Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit dem Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren, Eight Edition, National Research Council (US) 2011 durchgeführt. Verfahren, an denen Tiere beteiligt sind, wurden vom Animal Care and Use Committee des Chongqing University Cancer Hospital, Chongqing, China, genehmigt. Männliche BALB/c- und C57BL/6-Mäuse mit einem Gewicht von 20-30 g, die aus kommerziellen Quellen stammen (siehe Materialtabelle), wurden für die allogene Herztransplantations...

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	<li>Khush, K. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+International+thoracic+organ+transplant+registry+of+the+international+society+for+heart+and+lung+transplantation:+Thirty-sixth+adult+heart+transplantation+report+-+2019;+focus+theme:+Donor+and+recipient+size+match.">The International thoracic organ transplant registry of the international society for heart and lung transplantation: Thirty-sixth adult heart transplantation report - 2019; focus theme: Donor and recipient size match.</a> The Journal of Heart and Lung Transplantation. 38 (10), 1056-1066 (2019).</li><li>Stehlik, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+registry+of+the+international+society+for+heart+and+lung+transplantation:+29th+official+adult+heart+transplant+report--2012.">The registry of the international society for heart and lung transplantation: 29th official adult heart transplant report--2012.</a> The Journal of Heart and Lung Transplantation. 31 (10), 1052-1064 (2012).</li><li>Huang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+intrathymic+and+intravenous+injection+of+mesenchymal+stem+cells+can+prolong+the+survival+of+rat+cardiac+allograft+associated+with+decrease+in+miR-155+expression.">Combined intrathymic and intravenous injection of mesenchymal stem cells can prolong the survival of rat cardiac allograft associated with decrease in miR-155 expression.</a> Journal of Surgical Research. 185 (2), 896-903 (2013).</li><li>Eggenhofer, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Features+of+synergism+between+mesenchymal+stem+cells+and+immunosuppressive+drugs+in+a+murine+heart+transplantation+model.">Features of synergism between mesenchymal stem cells and immunosuppressive drugs in a murine heart transplantation model.</a> Transplant Immunology. 25 (2-3), 141-147 (2011).</li><li>Sula Karreci, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Brief+treatment+with+a+highly+selective+immunoproteasome+inhibitor+promotes+long-term+cardiac+allograft+acceptance+in+mice.">Brief treatment with a highly selective immunoproteasome inhibitor promotes long-term cardiac allograft acceptance in mice.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (52), 8425-8432 (2016).</li><li>Liu, F., Kang, S. 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J., Esato, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bidirectional+blockade+of+CD4+and+major+histocompatibility+complex+class+II+molecules:+An+effective+immunosuppressive+treatment+in+the+mouse+heart+transplantation+model.">Bidirectional blockade of CD4 and major histocompatibility complex class II molecules: An effective immunosuppressive treatment in the mouse heart transplantation model.</a> The Journal of Heart and Lung Transplantation. 17 (5), 460-469 (1998).</li><li>Zhou, Y. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+rejection+correlates+with+expression+of+major+histocompatibility+complex+class+I+antigens+on+peripheral+blood+CD3(+)CD8(+)+T-lymphocytes+following+skin+transplantation+in+mice.">Acute rejection correlates with expression of major histocompatibility complex class I antigens on peripheral blood CD3(+)CD8(+) T-lymphocytes following skin transplantation in mice.</a> Journal of International Medical Research. 39 (2), 480-487 (2011).</li><li>Oberhuber, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Murine+cervical+heart+transplantation+model+using+a+modified+cuff+technique.">Murine cervical heart transplantation model using a modified cuff technique.</a> Journal of Visualized Experiments. (92), e50753 (2014).</li><li>Cui, D., Tan, C., Liu, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+alternative+technique+of+arterial+anastomosis+in+mouse+heart+transplantation.">An alternative technique of arterial anastomosis in mouse heart transplantation.</a> Clinical Transplantation. 32 (6), 13264 (2018).</li><li>Plenter, R. J., Zamora, M. R., Grazia, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Four+decades+of+vascularized+heterotopic+cardiac+transplantation+in+the+mouse.">Four decades of vascularized heterotopic cardiac transplantation in the mouse.</a> Journal of Investigative Surgery. 26 (4), 223-228 (2013).</li><li>Fang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simplified+two-stitch+sleeve+technique+for+arterial+anastomosis+of+cervical+heterotopic+cardiac+transplantation+in+mice.">A simplified two-stitch sleeve technique for arterial anastomosis of cervical heterotopic cardiac transplantation in mice.</a> American Journal of Translational Research. 5 (5), 521-529 (2013).</li><li>Matsuura, A., Abe, T., Yasuura, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simplified+mouse+cervical+heart+transplantation+using+a+cuff+technique.">Simplified mouse cervical heart transplantation using a cuff technique.</a> Transplantation. 51 (4), 896-898 (1991).</li><li>Corry, R. J., Winn, H. J., Russell, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primarily+vascularized+allografts+of+hearts+in+mice.+The+role+of+H-2D,+H-2K,+and+non-H-2+antigens+in+rejection.">Primarily vascularized allografts of hearts in mice. The role of H-2D, H-2K, and non-H-2 antigens in rejection.</a> Transplantation. 16 (4), 343-350 (1973).</li><li>Fensterer, T. F., Miller, C. J., Perez-Abadia, G., Maldonado, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+cuff+design+to+facilitate+anastomosis+of+small+vessels+during+cervical+heterotopic+heart+transplantation+in+rats.">Novel cuff design to facilitate anastomosis of small vessels during cervical heterotopic heart transplantation in rats.</a> Comparative Medicine. 64 (4), 293-299 (2014).</li></ol>

Das Maus-Herztransplantationsmodell trägt zur Untersuchung von Abstoßungsmechanismen nach einer Herztransplantation bei und trägt zur Entwicklung einzigartiger Ansätze zur Verbesserung des Langzeitüberlebens von kardialen Allotransplantatempfängern bei. Die Herztransplantation bei Mäusen ist jedoch eine komplexe und herausfordernde Aufgabe, die ein hohes Maß an mikrochirurgischen Techniken erfordert, insbesondere bei vaskulärer Anastomose11,12,13</s...

Die Herztransplantation ist zur Standardbehandlung für Herzinsuffizienz im Endstadium geworden. Mehr als 5.500 Herztransplantationen pro Jahr werden in den Organisationen durchgeführt, die bei der Internationalen Gesellschaft für Herz- und Lungentransplantation registriert sind. Bei den Empfängern allogener Herztransplantate liegt die 1-Jahres-Abstoßungsrate immer noch bei >10 %, während die 3-Jahres-Abstoßungsrate auf 36 % gestiegen ist1,2. Es fehlen jedoch wirksame prophylaktische Behandlungen für Patienten mit kardialer Allotransplantatabstoßung. Daher sind Tiermodellstudien gerechtfertigt, die die physiologischen Mechanismen aufklären, die der immunologischen und pathologischen Abstoßung von kardialen Allotransplantaten zugrunde liegen. Solche Studien würden zur Untersuchung neuer Ziele beitragen, die für die Entwicklung wirksamer Medikamente erforderlich sind, die dazu beitragen würden, die Abstoßung von Herzallotransplantaten zu verhindern und die Überlebensraten in diesen Patientenpopulationen zu verbessern.
Einige mögliche immunologische und pathophysiologische Mechanismen der kardialen Allotransplantatabstoßung wurden kürzlich in Mausmodellstudien zur heterotopen Herztransplantation vorgeschlagen 3,4,5. Folglich wurde die heterotope Herztransplantation von Mäusen zu einem idealen präklinischen Modell, um die Mechanismen der Immunabstoßung und der pathologischen Schädigung von Herztransplantaten nach einer Herztransplantation zu untersuchen, da sie eine hohe Homologie mit menschlichen Genen aufweisen. Das vorherrschende Konzept besteht darin, eine heterotope Transplantation in einem Mausmodell durch eine abdominale Ende-zu-Ende-Anastomose in der Empfängeraorta und der unteren Hohlvene unter Verwendung von Stichen durchzuführen, die der normalen menschlichen Anatomie ähneln. Dieses Verfahren kann jedoch die Blutversorgung des Empfängers und den venösen Rückfluss des Unterkörpers beeinträchtigen6. Daher wird hier ein modifiziertes heterotopes Herztransplantationsverfahren in einem Mausmodell vorgeschlagen.
Das Herz des Spenders wird durch eine End-to-End-Zervixanastomose mit einer modifizierten Cuff-Technik in die Halsschlagader und die Halsvene des Empfängers implantiert. Dieses modifizierte Verfahren erleichterte die operative Durchführbarkeit und sicherte das Überleben des Herztransplantats, ohne die Blutversorgung und den venösen Rückfluss des Unterkörpers zu beeinträchtigen.

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	<tbody>
		<tr>
			<td>&#160;5-0 Polyamide Monofilament suture</td>
			<td>B.Braun Medical Inc.</td>
			<td>C3090954</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;8-0 Polyamide Monofilament suture</td>
			<td>B.Braun Medical Inc.</td>
			<td>C2090880</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10-0 Polyamide Monofilament suture</td>
			<td>B.Braun Medical Inc.</td>
			<td>G0090781</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>22 G polyurethane cuff</td>
			<td>B.Braun Medical Inc.</td>
			<td>4251628-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>26 G polyurethane cuff</td>
			<td>Suzhou Linhua Medical Instrument Co., LTD</td>
			<td>REF383713</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anesthesia induction chamber</td>
			<td>RWD Life Science Co., LTD</td>
			<td>V100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Atraumatic microvascular clamp</td>
			<td>Beyotime</td>
			<td>FS500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BALB/c and C57BL/6 mice (20&#8211;30 g)</td>
			<td>Centre of Experimental Animals (Army Medical University, Chongqing, China)</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Buprenorphine</td>
			<td>US Biological life Sciences</td>
			<td>352004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrocoagulator</td>
			<td>Guangzhou Runman Medical Instrument Co., LTD</td>
			<td>ZJ1099</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td>Henan piaoan group Co., LTD</td>
			<td>10210402</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating pad</td>
			<td>Guangzhou Dewei Biological Technology Co., LTD</td>
			<td>DK0032</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heparin</td>
			<td>North China Pharmaceutical Co., LTD</td>
			<td>2101131-2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HTK solution</td>
			<td>Shenzhen Changyi Pharmaceutical Co., LTD</td>
			<td>YZB/Min8263-2013</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Injection syringe (10 mL)</td>
			<td>Shandong weigao group medical polymer Co., LTD</td>
			<td>20211001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>RWD Life Science Co., LTD</td>
			<td>21070201</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Physiological saline</td>
			<td>Southwest pharmaceutical Co., LTD</td>
			<td>H50021610</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scalp needle</td>
			<td>Hongyu Medical Group</td>
			<td>20183150210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shaver</td>
			<td>Beyotime</td>
			<td>FS600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small animal anesthesia machine</td>
			<td>RWD Life Science Co., LTD</td>
			<td>R500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Surgical operation microscope</td>
			<td>Tiannuoxiang Scientific Instrument Co. , Ltd, Beijing, China</td>
			<td>SZX-6745</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Swab</td>
			<td>Yubei Medical Materials Co., LTD</td>
			<td>21080274</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a modified cuff technique for mouse cervical heterotopic heart transplantation model

Die Abstoßung von kardialen Allotransplantaten schränkt das Langzeitüberleben von Patienten nach einer Herztransplantation ein. Ein Maus-Herztransplantationsmodell ist aufgrund seiner hohen Homologie mit menschlichen Genen ideal für die Untersuchung des Mechanismus der kardialen Allotransplantatabstoßung in präklinischen Studien. Dieses Verständnis würde dazu beitragen, einzigartige Ansätze zur Verbesserung des Langzeitüberlebens von Patienten zu entwickeln, die mit kardialen Allotransplantaten behandelt werden. In einem Mausmodell wird die Implantation eines abdominalen Spenderherzens üblicherweise mit einer Ende-zu-Ende-Anastomose an der Aorta und der unteren Hohlvene des Empfängers unter Verwendung von Stichen durchgeführt. In diesem Modell wird das Herz des Spenders durch End-to-End-Anastomose in die Halsschlagader und die Halsvene des Empfängers durch die modifizierte Manschettentechnik implantiert. Die Transplantation wird ohne Nähen durchgeführt und kann somit das Überleben des Empfängers erhöhen, da die Blutversorgung und der venöse Rückfluss des Unterkörpers nicht beeinträchtigt werden. Dieses Mausmodell würde helfen, die Mechanismen zu untersuchen, die der immunologischen und pathologischen (akuten/chronischen) Abstoßung von kardialen Allotransplantaten zugrunde liegen.

In diesem zervikalen heterotopen Herztransplantationsmodell der Maus betrug die Überlebensrate der Empfängermäuse etwa 95,2% (20 von 21 Mäusen überlebten). Die Haupttodesursache waren postoperative Blutungen. Der schnelle Herzschlag mit regelmäßigem Rhythmus dient als Indikator für das Überleben des implantierten Spenderherzens.
C57BL/6- und BALB/c-Mäuse waren in diesem Modell MHC (H-2b) bzw. MHC (H-2d) Typen, 7,8. Diese beid...

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A Modified Cuff Technique for Mouse Cervical Heterotopic Heart Transplantation Model

Im vorliegenden Protokoll wird ein Maus-Herztransplantationsmodell verwendet, um den Mechanismus der kardialen Allotransplantatabstoßung zu untersuchen. In diesem heterotopen Herztransplantationsmodell wird die Operationseffizienz verbessert und das Überleben von Herztransplantaten durch eine zervikale End-to-End-Anastomose der Herzimplantation unter Verwendung einer modifizierten Manschettentechnik sichergestellt.

Eine modifizierte Manschettentechnik für das zervikale heterotope Herztransplantationsmodell der Maus

Cardiac allograft rejection limits the long-term survival of patients after heart transplantation. A mouse heart transplantation model is ideal for ...

Ein Maus-Herztransplantationsmodell hilft bei der Untersuchung von kardialen Allotransplantaten, immunologischen und parasagittalen Abstoßungsmechanismen. Dieses Verständnis würde dazu beitragen, einen einzigartigen Ansatz zur Verbesserung des langfristigen Überlebens der Patienten zu entwickeln. Diese zervikale Transplantation wird ohne Nähen mit einer Manschettenmethode durchgeführt.Daher verringert es die Komplexität der Gefäßanastomose und vermeidet die Störung der Blutversorgung und den venösen Rückfluss des Unterkörpers. Das Verfahren wird von Dr. Xin Mao, einem Chirurgen aus unserem Labor, demonstriert. Legen Sie zunächst die Empfängermaus auf ein Heizkissen am Operationstisch und rasieren Sie die Haare über dem Operationsbereich.Machen Sie nach der Desinfektion des Operationsbereichs einen 1,5 bis 2 Zentimeter langen Schnitt parallel zur zervikalen Mittellinie vom rechten Unterkieferwinkel bis zum Schwanzende. Präzieren Sie etwa einen Zentimeter der rechten Vena jugularis externa mit einem Elektrokoagulator und einer Mikrozange. Schneiden Sie die Vene am proximalen Ende mit einer atruamatischen mikrovaskulären Klemme ab und ligieren Sie sie am distalen Ende.Führen Sie das distale Ende der Vene durch eine 22-Gauge-Polyurethan-Stachelmanschette mit einem abgeschrägten Ende und oberflächlichen Rillen. Fixieren Sie die Vene mit dem Griff der Manschette mit einer mikrovaskulären Klemme. Entfernen Sie das 8-0 Ligaturnaht am distalen Ende, drehen Sie das Lumen über die Manschette, die mit dem oberflächlichen Widerhaken versehen ist, auf links und fixieren Sie es mit einer 10-0-chirurgischen Naht in den Rillen der Oberfläche.Sezieren Sie die rechte sublinguale Drüse, um eine Fossa für die Implantation des Herztransplantats zu bilden, und reservieren Sie den rechten Lappen der Unterkieferdrüse und den rechten Sternocleidomastoideus. Präzieren Sie die rechte Arteria carotis communis etwa einen Zentimeter lang mit einer Mikrozange und schneiden Sie die Arterie mit einer atraumatischen mikrovaskulären Klemme am proximalen Ende ab. Ligate und schneiden Sie die Arterie ab.Führen Sie das distale Ende der Arterie durch eine 26-Gauge-Polyurethan-Stachelmanschette mit einem abgeschrägten Ende und Rillen auf der Oberfläche. Fixieren Sie die Arterie mit dem Griff der Manschette mit einer mikrovaskulären Klemme. Entfernen Sie die Ligaturnaht am distalen Ende, drehen Sie das Lumen über die Manschette und fixieren Sie es mit einem oberflächlichen Widerhaken und Rillen mit einer 10-0-Operationsnaht.Nachdem Sie die Gefäße des Empfängers vorbereitet haben, lassen Sie 100 internationale Einheiten pro Milliliter Heparinkochsalzlösung auf die Gefäße fallen, um eine Thrombose zu verhindern. Decken Sie den Gebärmutterhalsschnitt für die anschließende Implantation mit feuchter Kochsalzlösung ab. Rasieren Sie die Bauchhaare mit einem Elektrorasierer.Schneiden Sie nach der Desinfektion des Operationsbereichs den Bauch entlang der Mittellinie von der Symphyse pubis bis zum Subxiphoid ein und erweitern Sie den eingeschnittenen Bereich mit einem Retraktor. Sezieren Sie einen Zentimeter der Bauchaorta und der unteren Hohlvene mit einem Elektrokoagulator und einer Mikrozange und führen Sie eine Heparinisierung durch, indem Sie einen Milliliter physiologische Kochsalzlösung, ergänzt mit 250 internationalen Einheiten pro Milliliter Heparin, durch die untere Hohlvene injizieren. Entfernen Sie die Bauchaorta und die untere Hohlvene.Entfernen Sie den Thorax entlang der vorderen Achsellinie auf beiden Seiten mit einer chirurgischen Schere, um die Brustwand zu trennen, und ligieren Sie dann die obere Hohlvene mit einem 8-0 chirurgische Naht. Führen Sie eine Kopfhautnadel in die suprahepatische Vena cava inferior ein. Dann injizieren Sie eiskalte physiologische Kochsalzlösung, die mit 100 Einheiten pro Milliliter Heparin ergänzt wird, durch die Kopfhautnadel aus der suprahepatischen unteren Hohlvene, um das Spenderherz zu bewässern, bis die Blutfarbe verblasst.Reperfundieren Sie das Spenderherz mit zwei bis drei Millilitern eiskalter Histidin-Tryptophan-Ketoglutarat-Lösung aus dem Aortenbogen, um das Spendermyokard zu schützen. Ligate der oberen und unteren Venae cavae und der Lungenvene mit einer 5-0 chirurgischen Naht. Präzieren und schneiden Sie die Spenderaorta und die Lungenarterie ab, bevor Sie sich verzweigen.Teilen Sie dann die oberen und unteren Hohlvenen und die Lungenvene, um das Herz des Spenders zu entfernen. Implantieren Sie das Spenderherz in umgekehrter Position in die Halstasche der Empfängermaus. Ziehen Sie die Manschette mit einer umgestülpten Empfängervene in das Lumen der Spenderpulmonalarterie, um eine End-to-End-Anastomose durchzuführen.Ligate die Manschette mit den Rillen auf der Oberfläche durch eine 10-0 chirurgische Naht, um die Anastomose zu fixieren. Verwenden Sie ein ähnliches Verfahren für die End-to-End-Anastomose der Spenderaorta zur Empfänger-Halsschlagader. Lassen Sie die atraumatische mikrovaskuläre Klemme der Halsvene los, gefolgt von der Halsschlagader, um das Herz des Spenders zu reperfundieren.Fixieren Sie das Herztransplantat und nähen Sie es richtig, um ein Verdrehen des Transplantats zu verhindern. Schließen Sie den zervikalen Schnitt mit durchgehenden Nähten mit einer 5-0-Polyamid-Monofilamentnaht. Unter Verwendung dieses zervikalen heterotopen Herztransplantationsmodells der Maus betrug die Überlebensrate der Empfängermäuse etwa 95,2%. Alle kardialen Allotransplantate gingen innerhalb von acht Tagen nach der Transplantation verloren.Im Gegensatz dazu überlebten alle isogenen Herztransplantationen mehr als vier Wochen. Rillen und Manschette zur besseren Fixierung der umgestülpten Gefäße, wodurch eine wiederholte Betätigung der Gefäße vermieden wird. Die modifizierte Manschettenmethode für die Gefäßanastomose in dieser Operation ist auch für eine andere Anastomose in verschiedenen Organtransplantationstiermodellen anwendbar.

Research

JoVE Journal

Medicine

Murine Cervical Heart Transplantation Model Using a Modified Cuff Technique

Murine Cervical Herztransplantation Modell mithilfe eines modifizierten Cuff-Technik

Mouse models are of special interest in research since a wide variety of monoclonal antibodies and commercially defined inbred and knockout strains are ...

Forschung

Medizin

A Modified Method for Heterotopic Mouse Heart Transplantion

Eine modifizierte Methode zur Heterotope Maus Herz-Transplantation

Mice are often used as heart transplant donors and recipients in studies of transplant immunology due to the wide range of transgenic mice and reagents ...

Murine Heterotopic Heart Transplant Technique

Murine Heterotope Heart Transplant-Technik

It is now over forty years since this technique was first reported by Corry, Wynn and Russell. Although it took some years for other labs to become ...

Transplantation of Pulmonary Valve Using a Mouse Model of Heterotopic Heart Transplantation

Transplantation von Pulmonalklappe Mit einem Maus-Modell der heterotopen Herztransplantation

Tissue engineered heart valves, especially decellularized valves, are starting to gain momentum in clinical use of reconstructive surgery with mixed ...

Rat Heterotopic Abdominal Heart/Single-lung Transplantation in a Volume-loaded Configuration

Rat Heterotope Abdominal Herz / Einzel-Lungen-Transplantation in einer Volume-Konfiguration geladen

Herein, we describe a novel technique for heterotopic abdominal heart-lung transplantation (HAHLT) in rats. The configuration of the transplant graft ...

Heterotopic Cervical Heart Transplantation in Mice

Heterotope Cervical Herztransplantation bei Mäusen

The heterotopic cervical heart transplantation in mice is a valuable tool in transplant and cardiovascular research. The cuff technique greatly simplifies ...

A Novel Microsurgical Model for Heterotopic, En Bloc Chest Wall, Thymus, and Heart Transplantation in Mice

A Novel Mikromodell für Heterotope, En Bloc Brustwand, Thymus und Herz-Transplantation bei Mäusen

Exploration of novel strategies in organ transplantation to prolong allograft survival and minimizing the need for long-term maintenance immunosuppression ...

Mouse Model for Pancreas Transplantation Using a Modified Cuff Technique

Maus-Modell für die Bauchspeicheldrüse Transplantation mit einer modifizierten Manschette-Technik

Mouse models have several advantages in transplantation research, including easy handling, a variety of genetically well-defined strains, and the ...

Murine Cervical Aortic Transplantation Model using a Modified Non-Suture Cuff Technique

Murine Cervical Aortic Transplantation Modell mit einer modifizierten Non-Suture Manschettentechnik

With the introduction of powerful immunosuppressive protocols, distinct advances are possible in the prevention and therapy of acute rejection episodes. ...