Name: isolation, expansion, and differentiation of mesenchymal stem cells from the infrapatellar fat pad of the goat stifle joint
Uploaded: 2022-08-02T13:00:00
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SH感谢IIT Kanpur研究所博士后奖学金和DST（SEED部门）的SYST资助（SP / YO / 618 / 2018）的支持。AM承认印度理工学院坎普尔分校（IIT-Kanpur）的研究所奖学金。DSK感谢印度Gireesh Jankinath讲座教授和生物技术系的资助（BT / PR22445 / MED/32 / 571 / 2016）。AM，SH和DSK感谢IIT-Kanpur的Mehta家庭医学工程中心的慷慨支持。

该协议基于从山羊中分离IFP-MSC。山羊IFP和血液是从当地的屠宰场收集的。由于此类组织收集不属于机构动物伦理委员会的职权范围，因此不需要伦理批准。
1. IFP-MSCs与山羊膝关节股骨关节的分离
<ol><li>收集山羊股骨关节（样本），包括后肢的股骨和胫骨区域各~15厘米。立即将样品放入无菌样品收集盒中，并将其储存在4°C，以便运输到实验室进行进一步处理。在...

在本协议中，提供了一种简单、可靠且可重现的从山羊IFP中分离MSCs的方法。使用这种方法分离的细胞已成功用于我们以前的体外组织再生研究。观察到分离的细胞是增殖的，对各种生长因子有反应，并且在接种在静电纺丝纤维和支架上时保持其生物活性25，26。此外，观察到可以获得大量高质量的MSCs并与可注射水凝胶中的软骨细胞共培养，以在<e...

间充质干细胞（MSCs）是再生医学中基于细胞的疗法的有吸引力的候选者1，2。它们可以从各种组织来源中收获，例如骨髓、脐带、胎盘、牙髓和皮下脂肪组织3.然而，由于成人干细胞的可用性有限，并且它们的分离程序通常是侵入性的（导致供体部位的发病率），因此希望有一种替代的干细胞来源来规避这些挑战。
膝关节是各种细胞类型的储存库，如髌下脂肪垫衍生的MSC，滑膜来源的MSC，滑液来源的MSC，韧带成纤维细胞，关节软骨细胞等4，5，6。这些细胞有可能在基于肌肉骨骼组织工程的研究中得到广泛探索。因此，膝关节可能是多种类型间充质干细胞的可能和可靠来源。 位于膝关节的脂肪库，称为髌下脂肪垫（IFP）或霍法脂肪垫，是MSC储存库的有前途的替代选择。IFP是一种相对容易获得和临床上可获得的MSCs来源，因为它在膝关节镜检查或开放膝关节手术中被常规切除并作为手术废物丢弃。去除IFP与最低供体部位发病率相关，这也使其成为一种有吸引力的组织来源。虽然具有相似的表型特征，但与骨髓来源的间充质干细胞（BM-MSCs）6相比，IFP（IFP-MSCs）的MSCs具有增强的克隆生成潜力，与皮下脂肪来源干细胞（ADSC）相比，具有更好的增殖能力7。有趣的是，与滑液衍生的MSC（SF-MSCs）相比，IFP-MSCs在晚期传代时不会失去其增殖能力，在晚期传代时也不会增加倍增时间。这表明，在细胞扩增过程中，IFP-MSCs可以实现足够多的细胞用于体外组织工程应用，而不会影响其增殖速率8。最近的研究还表明，与骨髓来源的MSC（BMSC）和脂肪来源的MSC（ADSC）相比，IFP-MSCs具有优越的软骨分化潜力，这可能是因为它们在解剖学上接近关节软骨，表明它们适用于软骨组织工程6，7，9，10。此外，它们还具有与年龄无关的成骨分化潜力11。关节内注射IFP-MSC已被证明可以减轻骨关节炎（OA）患者的疼痛并改善膝关节功能12，13。此外，还报道了在病理条件下存在炎性细胞因子的情况下IFP-MSCs的强免疫抑制反应和改善的免疫调节特性6。
IFP-MSCs是MSCs的一个有前途的替代来源;然而，它们在组织工程和再生医学中的治疗益处相对较少被探索。现有的IFP-MSCs研究主要利用了来自人类供体的细胞。其中，最近的一些研究调查了来自健康人类供体（非关节炎患者，年龄在17-60岁）的IFP-MSCs6，14，而大多数研究使用了来自接受全膝关节置换手术的老年患者（患病患者，年龄70-80岁）的IFP-MSC。由于已知年龄和疾病都会改变干细胞的正常功能（数量减少和功能潜力丧失），这可能导致基于MSC的研究结果不一致7，15，16，17。除此之外，来自病理生理状况（例如关节炎和肥胖症）患者的IFP-MSC的使用也给体外理解健康细胞的基本特征带来了困难，从而成为基于MSCs的疗法开发的限制因素。为了克服这些问题，使用来自健康供体的IFP-MSC至关重要。由于获得健康的人类供体具有挑战性，动物模型可能是更好的选择。在这方面，有一些研究已经从小鼠中分离出IFP18。然而，由于正常小鼠脂肪垫的尺寸很小，来自多种动物的脂肪组织已经结合以获得足够的组织来执行复杂的实验程序19。因此，需要一个大型动物模型，它可以满足对更多细胞的要求，同时符合动物研究中的3R原则（精制，替换和减少）20。大型动物的使用在转化研究中具有重要意义。具体来说，在肌肉骨骼组织工程中，已经研究了一系列大型动物，如狗，猪，绵羊，山羊和马21。山羊（Capra aegagrus hircus）是大型动物的绝佳选择，因为它的窒息关节与人类膝关节的解剖结构最接近22，23，24。山羊的软骨下骨小梁结构和软骨下骨厚度与人类相似，据报道软骨与骨骼的比例也接近人类21。此外，山羊在世界各地被广泛驯化，使它们在骨骼成熟时很容易获得。此外，低维护成本和易于操作使它们成为有吸引力的研究动物模型22。
在本研究中，展示了一种简单的方案，用于从山 羊（山 羊）的扼杀关节中分离IFP-MSCs，以及用于其扩增和分化的 体外 培养条件。分离的细胞是贴壁的，具有MSC样形态，形成CFU-F（集落形成单位成纤维细胞）集落，并具有脂肪，软骨和成骨分化潜力。因此，IFP-MSCs显示出作为生物医学应用MSCs替代来源的潜力。

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	<tbody>
		<tr>
			<td>&#946;-glycerophosphate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>G9422-10G</td>
			<td>10 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.25% Trypsin- 0.02% EDTA</td>
			<td>Hi-Media</td>
			<td>TCL049</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>15-mL centrifuge tube</td>
			<td>Corning</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2-Phospho-L-ascorbic acid trisodium salt</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>49752-10G</td>
			<td>50 &#181;g/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2-Propanol</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I9516</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazineethanesulfonic acid (HEPES)</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>TCL021-50ml</td>
			<td>10 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50-mL centrifuge tube</td>
			<td>Corning</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alcian Blue</td>
			<td>Hi-Media</td>
			<td>RM471</td>
			<td>For sufated gycosaminoglycans staining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alizarin Red S</td>
			<td>S D Fine-Chem Limited</td>
			<td>26048-25G</td>
			<td>For calcium deposition</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Amphotericin B</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>A011</td>
			<td>2.5 &#181;g/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Basic fibroblast growth factor (bFGF)</td>
			<td>Sino Biologicals</td>
			<td>10014-HNAE</td>
			<td>5 ng/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BCIP/NBT ALP Substrate</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>B5655-5TAB</td>
			<td>For ALP staining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Biological safety cabinet</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BSA</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>MB-083</td>
			<td>Long name: Bovine Serum Albumin (1.25 mg/mL )</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cell strainer</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>TCP-182</td>
			<td>70 &#181;m</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge</td>
			<td>REMI</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ciprofloxacin</td>
			<td>RANBAXY LAB. Limited</td>
			<td>B17407T1</td>
			<td>2.5 &#181;g/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Crystal Violet</td>
			<td>S D Fine-Chem Limited</td>
			<td>42555</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D(+)-glucose</td>
			<td>Merck</td>
			<td>1.94925.0521</td>
			<td>25 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dexamethasone</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D2915</td>
			<td>1 &#181;M</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DMEM LG</td>
			<td>SIGMA</td>
			<td>D5523</td>
			<td>Long name: Dulbecco&#8217;s Modified Eagle&#8217;s Media Low Glucose</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>Merck</td>
			<td>100983</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>FBS</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>10270</td>
			<td>Long name: Fetal Bovine Serum</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formaldehyde solution 37%-41%</td>
			<td>Merck</td>
			<td>61780805001730</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Indomethacin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I7378</td>
			<td>100 &#181;M</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Insulin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I9278</td>
			<td>10 &#181;g/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Nikon Eclipse TS 100</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ITS + 1</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>I2521-5mL</td>
			<td>Long name: insulin, transferrin, sodium selenite + linoleic-BSA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>L-Proline</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>TO-109-25G</td>
			<td>1 mM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnesium chloride</td>
			<td>Merck</td>
			<td>61751605001730</td>
			<td>For lysis buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol</td>
			<td>Meck</td>
			<td>1.07018.2521</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micropipettes and sterile tips (20 &#181;L, 200 &#181;L, 1000 &#181;L)</td>
			<td>Thermoscientific</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MUSE Cell analyser</td>
			<td>Merck Millipore</td>
			<td></td>
			<td>For cell counting</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OCT compound</td>
			<td>Tissue-Tek</td>
			<td>4583</td>
			<td>Long name: Optimal Cutting Temperature</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Oil Red O dye</td>
			<td>S D Fine-Chem Limited</td>
			<td>54304</td>
			<td>For lipid vacuole staining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin</td>
			<td>HiMedia</td>
			<td>A007</td>
			<td>100 U/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes (150 mm and 90 mm)</td>
			<td>NEST</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Safranin O</td>
			<td>S D Fine-Chem Limited</td>
			<td>50240</td>
			<td>For sufated gycosaminoglycans staining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sodium citrate</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C3434</td>
			<td>3.4 % (w/v)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile scissors, forceps and scalpels</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>For isolation of IFP-MSC</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sucrose</td>
			<td>Merck</td>
			<td>1.94953.0521</td>
			<td>35 % (w/v)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TGF-&#946;1</td>
			<td>Sino Biologicals</td>
			<td></td>
			<td>Long name: Transforming growth factor- &#946;1 (10 ng/mL)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue culture incubator 37 &#176;C, 5% CO2</td>
			<td>Thermoscientific</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris buffer</td>
			<td>Merck</td>
			<td>61771405001730</td>
			<td>For lysis buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X100</td>
			<td>S D Fine-Chem Limited</td>
			<td>40632</td>
			<td>For lysis buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Type II collagenase</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>17101015</td>
			<td>1.5 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vitamin D3</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>C9756-1G</td>
			<td>10 nM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Well plates (6 -WP and 24-WP)</td>
			<td>NEST</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolation, expansion, and differentiation of mesenchymal stem cells from the infrapatellar fat pad of the goat stifle joint

存在于膝关节中的IFP是MSC的有希望的来源。IFP是一种易于接近的组织，因为它在关节镜手术和膝关节置换手术中被常规切除和丢弃。此外，其移除与最低供体部位发病率相关。最近的研究表明，IFP-MSCs在 体外 扩增过程中不会失去其增殖能力，并且具有与年龄无关的成骨分化潜力。与骨髓来源的MSC（BMSC）和脂肪来源的干细胞（ADSC）相比，IFP-MSCs具有优越的软骨分化潜力。虽然这些细胞很容易从老年和患病患者中获得，但它们的有效性是有限的。因此，使用来自健康供体的IFP-MSCs对于确定其在生物医学应用中的功效非常重要。由于获得健康的人类供体具有挑战性，动物模型可能是实现基本理解的更好选择。狗、马、绵羊和山羊等大型动物在转化研究中起着至关重要的作用。其中，山羊可能是首选模型，因为山羊的窒息关节与人类膝关节的解剖结构最接近。此外，山羊IFP可以满足组织再生应用所需的更高MSC数。此外，低成本、可用性和符合动物研究的 3R 原则使其成为一个有吸引力的模型。本研究展示了一种简单的方案，用于从山羊的扼杀关节和 体外 培养条件下分离IFP-MSCs，以实现其扩增和分化。从山羊中无菌分离的IFP被洗涤，切碎并酶消化。过滤和离心后，将收集的细胞培养。这些细胞是贴壁的，具有MSCs样形态，并显示出显着的克隆生成能力。此外，它们分化为成脂肪、软骨和成骨谱系，证明了它们的多能性。总之，该研究证明了间充质干细胞的分离和扩增，显示出在组织工程和再生医学应用中的潜力。

从山羊股骨关节中分离IFP-MSCs的 将IFP-MSCs与山羊的窒息关节分离所涉及的步骤如图 1所示。去除髌骨内非关节表面的脂肪垫，切碎并酶消化。成功分离IFP-MSCs并在 体外 培养（图2A）。
IFP-MSCs的扩增和克隆生成能力 分离的细胞在扩增培养基中体 外 培养。细胞在接种后12小时内开始粘附在组?...

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Isolation, Expansion, and Differentiation of Mesenchymal Stem Cells from the Infrapatellar Fat Pad of the Goat Stifle Joint

髌下脂肪垫间充质干细胞（IFP-MSCs）可以很容易地从膝关节的髌下脂肪垫中分离出来。它们 在体外增殖良好，形成CFU-F集落，并分化为成脂、软骨和成骨谱系。本文提供了从山羊扼杀关节分离、扩增和分化IFP-MSCs的方法。

山羊窒息关节髌下脂肪垫间充质干细胞的分离、扩增和分化

The IFP, present in the knee joint, serves as a promising source of MSCs. The IFP is an easily accessible tissue as it is routinely resected and discarded ...

髌下脂肪垫衍生的间充质干细胞，或简称IFP-MSCs，是一种研究相对较少的干细胞类型。该协议是一种简单，可靠且可重复的方法，证明了IFP-MSCs从山羊窒息关节中的分离。该技术的主要优点是可以获得大量高质量的IFP-MSC。分离的IFP-MSCs可以分化为多个谱系并具有广泛的再生潜力。由于其解剖位置，IFP-MSCs在修复软骨缺陷和缓解骨关节炎软骨退化方面引起了人们的兴趣。该方法对组织工程和再生医学领域中基于细胞的治疗具有意义。IFP-MSC的分离，扩增和分化程序将由Sugata Hazra博士和Aman Mahajan先生演示。要开始分离髌下脂肪垫间充质干细胞或IFP-MSCs，请在灭菌的收集样品盒中收集包含后肢股骨和胫骨区域约15厘米的山羊股骨关节。将样品储存在四摄氏度，以便运输到实验室进行进一步处理。将样品放在150毫米培养皿上，并确保在整个过程中无菌处理样品和生物安全柜。用补充有抗生素的高压灭菌PBS彻底冲洗。使用PBS保持样品水合。仔细检查样本的解剖区域。为了便于取用，用一只手握住股骨的端面，然后用锋利的剪刀将其纵向切向关节，从而完全去除两块长骨上多余的组织。然后，在不干扰关节囊周围组织的情况下，从骨骼中去除肌肉和脂肪组织。同样，在样本的胫骨端做另一个切口，并从胫骨中去除肌肉和脂肪组织。确保两块长骨完全暴露，并且关节囊可见。接下来，从滑膜的任一侧切开一个切口，切开关节。使用新鲜消毒的剪刀和镊子从滑膜和髌韧带上切开髌骨。立即将分离的髌骨放入含有PBS的培养皿中。从分离的髌骨中，用剪刀和镊子去除内表面上存在的整个脂肪垫。将其收集在另一个新鲜的培养皿中，然后用手术刀切碎。包括其他手术工具，以获得大约两到三毫米的小脂肪段。使用刮刀将切碎的组织转移到50毫升离心管中，并使用试管混合器在室温下用补充有抗生素的PBS洗涤三次15分钟。对于酶消化，在Dulbecco的改良鹰培养基（DMEM）中孵育约5克碎的组织，低葡萄糖培养基含有每毫升1.5毫克II型胶原酶和2%FBS，在37摄氏度下孵育12至16小时。小心地吸出消化的组织并通过70微米的细胞过滤器过滤，以去除任何未消化的部分。将滤液在15毫升离心管中以150倍克离心五分钟。在用DMEM低葡萄糖洗涤细胞沉淀两次之前，除去上清液。将沉淀重新悬浮在完整的DMEM（也称为膨胀培养基）中。将细胞接种在 150 毫米培养皿上，并在补充有每毫升 5 纳克碱性成纤维细胞生长因子 （BFGF） 和每毫升 50 微克 2-磷酸-L-抗坏血酸三钠盐的扩增培养基中培养。将细胞在 37 摄氏度下在 5% 二氧化碳培养箱中孵育，以使细胞粘附和增殖。每天监测细胞的附着和生长。为了正确维护和扩展 IFP-MSC，请每三天更换一次介质。更换培养基时，将新鲜的每毫升 5 纳克 BFGF 和每毫米 50 微克的 2-磷酸-L-抗坏血酸三钠盐直接添加到培养皿中。一旦细胞汇合80%至90%，通过从培养皿中取出扩增培养基并用1X PBS洗涤细胞来传代培养它们。然后在培养皿中加入四毫升0.25%胰蛋白酶-EDTA，并将细胞在37摄氏度下在5%二氧化碳培养箱中孵育。四分钟后，轻拍平板侧面以移开细胞。在显微镜下确认所有细胞完全脱离。一旦确认，加入等体积的扩增培养基以中和胰蛋白酶。使用移液管将这些解离的细胞收集在新鲜的15毫升聚丙烯管中，并在室温下以150倍g离心5分钟。弃去上清液并将沉淀重悬于所需体积的膨胀培养基中。使用标准细胞计数方法计数细胞，并在150毫升培养皿中以每平方厘米10， 000个细胞的接种密度传代培养它们以进一步扩增。对于所有测定，使用传代号为 P2 至 P5 的融合单层细胞。当扩增的细胞达到80%至90%汇合度时，使用胰蛋白酶-EDTA溶液解离细胞，然后将其沉淀在150倍克的15毫升离心管中五分钟。然后将沉淀重悬于山羊血浆中，密度为每50微升200万个细胞。将50微升含有细胞的血浆加入灭菌的90毫米培养皿中，然后加入终浓度为0.3%的氯化钙充分混合以制造交联血浆水凝胶。将制备的水凝胶在37摄氏度下孵育40分钟后，将水凝胶转移到含有成软骨培养基的24孔组织培养板中。每三天更换一次介质，持续 14 天。在没有TGF-β1的完整DMEM培养基中培养的水凝胶被认为是非诱导对照。在血浆水凝胶中细胞的软骨分化14天后，用PBS洗涤水凝胶三次，每次五分钟，并将样品固定在中性缓冲福尔马林中三小时。分离的IFP-MSCs具有均匀的贴壁性，并在体外培养后24小时内获得细长的形态。这些细胞在扩增后六天内有效增殖了80%至90%的汇合度，并显示出克隆生成能力，表明有效的增殖和自我更新能力。当处理分化为成脂肪谱系时，分离的细胞产生脂滴，在第14天和第21天通过油红O染色证实。这种油滴在没有脂肪诱导因子的细胞中是不可见的。包封在血浆水凝胶中的分离细胞在诱导组14天后显示出白色和有光泽的新组织的形成，显示出软骨生成潜力。未诱导组组织呈淡白色，光泽度降低。此外，诱导组中Alcian Blue和Safranin O的组织学染色阳性表明，细胞可以分泌硫酸化糖胺聚糖，这是软骨基质的主要成分之一。相比之下，来自未诱导组的水凝胶切片对Safranin O和Alcian Blue染色呈阴性，仅在存在软骨刺激的情况下证实了间充质干细胞的软骨分化潜力。用成骨培养基诱导的分离细胞显示出碱性磷酸酶的阳性染色，在14天结束时证实了矿化。成骨诱导28天后，用茜素红S染色观察钙化沉积。结果强调了诱导细胞分化为脂肪、软骨和成骨谱系的潜力。必须在无菌条件下处理样品以避免污染。确定髌骨的正确位置也很重要。该程序为从滑膜和滑液中分离各种细胞类型（例如关节软骨细胞，韧带成纤维细胞和干细胞）开辟了途径，在再生医学中具有广泛的应用。使用该技术分离IFP-MSCs后，特别研究了其使用支架和无支架方法再生肌肉骨骼组织（如软骨，骨骼和韧带）的有效性。

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Alginate Microcapsule as a 3D Platform for Propagation and Differentiation of Human Embryonic Stem Cells (hESC) to Different Lineages

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海藻酸钠微胶囊作为一个人类胚胎干细胞（胚胎干细胞）的繁殖和分化的3D平台，以不同的谱系

Human embryonic stem cells (hESC) are emerging as an attractive alternative source for cell replacement therapy since they can be expanded in culture ...

科研

生物工程

Development, Expansion, and In vivo Monitoring of Human NK Cells from Human Embryonic Stem Cells (hESCs) and Induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs)

Development, Expansion, and In vivo Monitoring of Human NK Cells from Human Embryonic Stem Cells hESCs and Induced Pluripotent Stem Cells iPSCs

开发，扩展，<em&gt;在体内</em&gt;从人类胚胎干细胞（hESCs）监测人类NK细胞和诱导多能干细胞（iPS细胞）

We present a method for deriving natural killer (NK) cells from undifferentiated hESCs and iPSCs using a feeder-free approach. This method gives rise to ...

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优化人骨髓间充质干细胞附着在聚（ε己内酯）静电纺纱线

Research into biomaterials and tissue engineering often includes cell-based in vitro investigations, which require initial knowledge of the starting cell ...

Scaffold-supported Transplantation of Islets in the Epididymal Fat Pad of Diabetic Mice

支架支持胰岛移植糖尿病小鼠附睾脂肪垫

Islet transplantation has been clinically proven to be effective at treating type 1 diabetes. However, the current intrahepatic transplantation strategy ...

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人肺泡骨膜间充质干细胞的分离及维生素 D 对骨膜衍生细胞成骨活性的影响

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骨髓间充质干细胞片对肝癌体外发育的潜能探讨

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Construction and Use of an Electrical Stimulation Chamber for Enhancing Osteogenic Differentiation in Mesenchymal Stem/Stromal Cells In Vitro

电刺激室的构建与应用, 促进间充质茎间质细胞体外成骨分化

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从多能干细胞生成人体血管类器官

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The high prevalence of debilitating joint diseases like osteoarthritis (OA) poses a high socioeconomic burden. Currently, the available drugs that target ...