Name: application of rna interference in the pinewood nematode, bursaphelenchus xylophilus
Uploaded: 2022-03-09T15:00:00
Description: Watch this Scientific Journal Video about Application of RNA Interference in the Pinewood Nematode, Bursaphelenchus xylophilus at JoVE.com

Diese Forschung wurde von der National Natural Science Foundation of China (31870637, 31200487) finanziert und gemeinsam durch den Zhejiang Key Research Plan (2019C02024, LGN22C160004) finanziert.

Die Studie wurde vom Rat für Tierversuche der Zhejiang Agricultural & Forestry University genehmigt. Das B. xylophilus-Isolat NXY61 wurde ursprünglich aus einem erkrankten Pinus massoniana in der Region Ningbo in der Provinz Zhejiang, Chinaextrahiert 11.
1. Klonen von Genen
HINWEIS: Weitere Informationen zu den in diesem Protokoll verwendeten Grundierungen finden Sie in der Materialtabelle ....

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	<li>Nicol, J. M., Jones, J., Gheysen, G., Fenoll, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+nematode+threats+to+world+agriculture.">Current nematode threats to world agriculture.</a> Genomics and Molecular Genetics of Plant-Nematode Interactions. , 21-43 (2011).</li><li>Jones, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Top+10+plant-parasitic+nematodes+in+molecular+plant+pathology.">Top 10 plant-parasitic nematodes in molecular plant pathology.</a> Molecular Plant Pathology. 14 (9), 946-961 (2013).</li><li>Kikuchi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genomic+insights+into+the+origin+of+parasitism+in+the+emerging+plant+pathogen+Bursaphelenchus+xylophilus.">Genomic insights into the origin of parasitism in the emerging plant pathogen Bursaphelenchus xylophilus.</a> PLoS Pathogens. 7 (9), 1002219 (2011).</li><li>Megen, H. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+phylogenetic+tree+of+nematodes+based+on+about+1200+full-length+small+subunit+ribosomal+DNA+sequences.">A phylogenetic tree of nematodes based on about 1200 full-length small subunit ribosomal DNA sequences.</a> Nematology. 11 (6), 927-950 (2009).</li><li>Niu, J. H., Jian, H., Xu, J. M., Guo, Y. D., Liu, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNAi+technology+extends+its+reach:+Engineering+plant+resistance+against+harmful+eukaryotes.">RNAi technology extends its reach: Engineering plant resistance against harmful eukaryotes.</a> African Journal of Biotechnology. 9 (45), 7573-7582 (2010).</li><li>Fire, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Potent+and+specific+genetic+interference+by+double-stranded+RNA+in+Caenorhabditis+elegans.">Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans.</a> Nature. 91 (6669), 806-811 (1998).</li><li>Shahid, M., Imran, A., Mazhar, H., Yusuf, Z., Rob, W. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+novel+traits+in+plants+through+RNA+interference.">Engineering novel traits in plants through RNA interference.</a> Trends in Plant Science. 11 (11), 559-565 (2006).</li><li>Marmonier, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+acquisition+of+specific+small+interfering+RNAs+inhibits+the+expression+of+some+target+genes+in+the+plant+ectoparasite+Xiphinema+index.">In vitro acquisition of specific small interfering RNAs inhibits the expression of some target genes in the plant ectoparasite Xiphinema index.</a> International Journal of Molecular Sciences. 20 (13), 3266 (2019).</li><li>Iqbal, S., Fosu-Nyarko, J., Jones, M. G. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Attempt+to+silence+genes+of+the+RNAi+pathways+of+the+root-knot+nematode,+Meloidogyne+incognita+results+in+diverse+responses+including+increase+and+no+change+in+expression+of+some+genes.">Attempt to silence genes of the RNAi pathways of the root-knot nematode, Meloidogyne incognita results in diverse responses including increase and no change in expression of some genes.</a> Frontiers in Plant Science. 11, 328 (2020).</li><li>Zhou, L. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+characterization+and+functional+analysis+of+akt-1+in+pinewood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus.">Molecular characterization and functional analysis of akt-1 in pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus.</a> Forest Pathology. 51 (1), 12647 (2021).</li><li>Zhou, L. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+mab-3+in+spermatogenesis+and+ontogenesis+of+pinewood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus.">The role of mab-3 in spermatogenesis and ontogenesis of pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus.</a> Pest Management Science. 77 (1), 138-147 (2021).</li><li>Tang, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bxy-fuca+encoding+&#945;-L-fucosidase+plays+crucial+roles+in+development+and+reproduction+of+the+pathogenic+pinewood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus.">Bxy-fuca encoding &#945;-L-fucosidase plays crucial roles in development and reproduction of the pathogenic pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus.</a> Pest Management Science. 76 (1), 205-214 (2020).</li><li>Wang, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+characterization+and+functional+analysis+of+daf-8+in+the+pinewood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus.">Molecular characterization and functional analysis of daf-8 in the pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus.</a> Journal of Forestry Research. , (2021).</li><li>Viglierchio, D. R., Schmitt, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+methodology+of+nematode+extraction+from+field+samples:+Baermann+funnel+modifications.">On the methodology of nematode extraction from field samples: Baermann funnel modifications.</a> Journal of Nematology. 15 (3), 438-444 (1983).</li><li>Zhu, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Observation+and+quantification+of+mating+behavior+in+the+pinewood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus.">Observation and quantification of mating behavior in the pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (118), e54842 (2016).</li><li>Zhou, L. F., Chen, F. M., Ye, J. R., Pan, H. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selection+of+reliable+reference+genes+for+RT-qPCR+analysis+of+Bursaphelenchus+mucronatus+gene+expression+from+different+habitats+and+developmental+stages.">Selection of reliable reference genes for RT-qPCR analysis of Bursaphelenchus mucronatus gene expression from different habitats and developmental stages.</a> Frontiers in Genetics. 9, 269-279 (2018).</li><li>Wang, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Double-stranded+RNA-mediated+interference+of+dumpy+genes+in+Bursaphelenchus+xylophilus+by+feeding+on+filamentous+fungal+transformants.">Double-stranded RNA-mediated interference of dumpy genes in Bursaphelenchus xylophilus by feeding on filamentous fungal transformants.</a> International Journal for Parasitology. 46 (5-6), 351-360 (2016).</li><li>Ma, H. B., Lu, Q., Liang, J., Zhang, X. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+analysis+of+the+cellulose+gene+of+the+pine+wood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus,+using+RNA+interference.">Functional analysis of the cellulose gene of the pine wood nematode, Bursaphelenchus xylophilus, using RNA interference.</a> Genetics and Molecular Research: GMR. 10 (3), 1931-1941 (2011).</li><li>Cheng, X. Y., Dai, S. M., Xiao, L., Xie, B. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+cellulase+gene+knock+down+by+dsRNA+interference+on+the+development+and+reproduction+of+the+pine+wood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus.">Influence of cellulase gene knock down by dsRNA interference on the development and reproduction of the pine wood nematode, Bursaphelenchus xylophilus.</a> Nematology. 12 (12), 225-233 (2010).</li><li>Xue, Q., Wu, X. Q., Zhang, W. J., Deng, L. N., Wu, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cathepsin+L-like+cysteine+proteinase+genes+are+associated+with+the+development+and+pathogenicity+of+pine+wood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus.">Cathepsin L-like cysteine proteinase genes are associated with the development and pathogenicity of pine wood nematode, Bursaphelenchus xylophilus.</a> International Journal of Molecular Sciences. 20 (1), 215 (2019).</li><li>Tabara, H., Grishok, A., Mello, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNAi+in+C.+elegans:+Soaking+in+the+genome+sequence.">RNAi in C. elegans: Soaking in the genome sequence.</a> Science. 282 (5388), 430-431 (1998).</li><li>Urwin, P. E., Lilley, C. J., Atkinson, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ingestion+of+double-stranded+RNA+by+pre+parasitic+juvenile+cyst+nematodes+leads+to+RNA+interference.">Ingestion of double-stranded RNA by pre parasitic juvenile cyst nematodes leads to RNA interference.</a> Molecular Plant-Microbe Interactions: MPMI. 15 (8), 747-752 (2002).</li><li>Bakhetia, M., Charlton, W., Atkinson, H. J., McPherson, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNA+interference+of+dual+oxidase+in+the+plant+nematode+Meloidogyne+incognita.">RNA interference of dual oxidase in the plant nematode Meloidogyne incognita.</a> Molecular Plant-Microbe Interactions: MPMI. 18 (10), 1099-1106 (2005).</li><li>Rosso, M. N., Dubrana, M. P., Cimbolini, N., Jaubert, S., Abad, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Application+of+RNA+interference+to+root-knot+nematode+genes+encoding+esophageal+gland+proteins.">Application of RNA interference to root-knot nematode genes encoding esophageal gland proteins.</a> Molecular Plant-Microbe Interactions: MPMI. 18 (7), 615-620 (2005).</li><li>Chen, Q., Rehman, S., Smant, G., Jones, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+analysis+of+pathogenicity+proteins+of+the+potato+cyst+nematode+Globodera+rostochiensis+using+RNAi.">Functional analysis of pathogenicity proteins of the potato cyst nematode Globodera rostochiensis using RNAi.</a> Molecular Plant-Microbe Interactions: MPMI. 18 (7), 621-625 (2005).</li><li>Wang, D. D., Li, Y., Li, J., Xie, B. Y., Chen, G. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+clone+and+its+RNAi+interference+effect+analysis+of+mapk+gene+in+Bursaphelenchus+xylophilus+(+in+Chinese).">Molecular clone and its RNAi interference effect analysis of mapk gene in Bursaphelenchus xylophilus ( in Chinese).</a> Acta Phytopathologica Sinica. 46 (5), 662-669 (2016).</li><li>Qiu, X., Wu, X., Huang, L., Ye, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+Bxpel1+gene+silencing+by+dsRNA+interference+on+the+development+and+pathogenicity+of+the+pine+wood+nematode,+Bursaphelenchus+xylophilus.">Influence of Bxpel1 gene silencing by dsRNA interference on the development and pathogenicity of the pine wood nematode, Bursaphelenchus xylophilus.</a> International Journal of Molecular Sciences. 17 (1), 125 (2016).</li><li>Dulovic, A., Streit, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=RNAi-mediated+knockdown+of+daf-12+in+the+model+parasitic+nematode+Strongyloides+ratti.">RNAi-mediated knockdown of daf-12 in the model parasitic nematode Strongyloides ratti.</a> PLoS Pathogens. 15 (3), 1007705 (2019).</li><li>Li, L., Zhao, H., Cui, Y., Wei, H., Li, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Research+progress+of+gene+editing+technology.">Research progress of gene editing technology.</a> Life Science Research. 21 (3), 268-274 (2017).</li><li>Bindhya, C. Y., Karuppannan, V., Kuppuswamy, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Host-generated+double+stranded+RNA+induces+RNAi+in+plant-parasitic+nematodes+and+protects+the+host+from+infection.">Host-generated double stranded RNA induces RNAi in plant-parasitic nematodes and protects the host from infection.</a> Molecular and Biochemical Parasitology. 148 (2), 219-222 (2006).</li><li>Jiang, Z., Sher, A. K., David, G. H., Ralph, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Next-generation+insect-resistant+plants:+RNAi-mediated+crop+protection.">Next-generation insect-resistant plants: RNAi-mediated crop protection.</a> Trends in Biotechnology. 35 (9), 871-882 (2017).</li></ol>

Obwohl sich die Lebensgeschichte und die parasitäre Umgebung von B. xylophilus von denen anderer Nematoden unterscheiden, gibt es nur begrenzte Forschung über die molekulare Pathogenese dieses Pflanzenpathogens. Trotz großer Fortschritte bei der Anwendung der CRISPR/Cas9-Genom-Editing-Technologie bei C. elegans und anderen Nematoden wurde bisher nur die RNAi-Technologie veröffentlicht, die auf B. xylophilus angewendet wurde17. RNAi ist eines der leistungsfähigsten v...

Pflanzenparasitäre Nematoden (PPNs) sind eine anhaltende Bedrohung für die Ernährungssicherheit und die Waldökosysteme. Sie verursachen jedes Jahr schätzungsweise 100 Milliarden USD an wirtschaftlichen Verlusten1, von denen die problematischsten vor allem Wurzelknotennematoden, Zystennematoden und Kiefernnematoden sind. Der Kiefernfadenwurm, Bursaphelenchus xylophilus, ist ein wandernder, endoparasitischer Fadenwurm, der der ursächliche Erreger der Kiefernwelkeist 2. Es hat den Kiefernwäldern weltweit großen Schaden zugefügt3. Nach der Terminologie von Van Megen et al.4 ist B. xylophilus ein Mitglied der Parasitaphelenchidae und gehört zur Klade 10, während die meisten anderen wichtigen Pflanzenparasiten zur Klade 12 gehören.
Als eigenständiger und neu entwickelter Pflanzenparasit ist B. xylophilus ein attraktives Modell für vergleichende Studien. Bis heute gibt es umfangreiche Forschungen über Wurzelknotennematoden und Zystennematoden der Klade 12, die obligate, sitzende Endoparasiten sind und zu den am intensivsten untersuchten Nematoden gehören. Die weitere Forschung auf diesem wichtigen Gebiet ist jedoch mit einer großen Herausforderung verbunden: Die Funktion von Parasitengenen ist ein Forschungsengpass. Funktionelle Studien umfassen im Allgemeinen ektopische Expressions- und Knockdown- / Out-Experimente, stützen sich jedoch auf effektive genetische Transformationsprotokolle für den Nematoden. Infolgedessen beruht die umgekehrte Genetik in PPNs fast ausschließlich auf Gen-Silencing durch RNAi.
RNAi, ein Mechanismus, der in eukaryotischen Zellen weit verbreitet ist, bringt die Genexpression zum Schweigen, indem er doppelsträngige RNA (dsRNA) einführt5. Bis heute wurde der durch dsRNA induzierte posttranskriptionelle Gen-Silencing-Mechanismus in allen untersuchten Eukaryoten gefunden, und die RNAi-Technologie als Werkzeug der funktionellen Genomforschung und anderer Anwendungen hat sich in vielen Organismen schnell entwickelt. Seit der Entdeckung der RNAi-Maschinerie in Caenorhabditis elegans im Jahr 19986 haben sich RNAi-Techniken zu wirksamen Methoden zur Identifizierung der Genfunktion von Nematoden entwickelt und werden als neuer Weg zur wirksamen Kontrolle pathogener Nematoden vorgeschlagen7.
RNAi ist technisch das Einweichen der Jungtiere in dsRNA kann ausreichen; Die Wirksamkeit und Reproduzierbarkeit dieses Ansatzes variiert jedoch stark mit der Nematodenspezies und dem Zielgen8. Die Stummschaltung von 20 Genen, die an den RNAi-Signalwegen des Wurzelknotennematoden, Meloidogyne incognita, beteiligt sind, wurde unter Verwendung langer dsRNAs als Auslöser untersucht, was zu verschiedenen Reaktionen führte, einschließlich einer Zunahme und keiner Veränderung der Expression einiger Gene9. Diese Ergebnisse zeigen, dass Zielgene unterschiedlich auf RNAi-Knockdown reagieren können, was eine umfassende Bewertung ihrer Eignung als Ziele für die Nematodenkontrolle über RNAi erfordert. Derzeit gibt es jedoch einen Mangel an Forschung zur Entwicklungs- und Fortpflanzungsbiologie von B. xylophilus.
Als Fortsetzung der früheren Arbeit10,11,12,13 beschreiben wir hier ein Protokoll zur Anwendung von RNAi zur Untersuchung der Funktion des ppm-1-Gens von B. xylophilus, einschließlich der Synthese von dsRNA, des Einweichens synthetischer Neurostimulanzien und des quantitativen Polymerase-Kettenreaktionsnachweises (qPCR). Die Erkenntnisse aus diesem experimentellen Ansatz werden wahrscheinlich deutlich zum Verständnis grundlegender biologischer Systeme und zur Vorbeugung von Kiefernwelke beitragen.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Baermann funnel</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>to isolate nematodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Beacon Designer 7.9</td>
			<td>Shanghai kangyusheng information technology co.</td>
			<td>n/a</td>
			<td>to design qPCR primers</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Botrytis cinerea</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>as food for nematodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bursaphelenchus xylophilus</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>its number was NXY61 and was it was originally extracted from diseased 
			Pinus massoniana in Ningbo, Zhejiang province, China.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>constant temperature incubator</td>
			<td>Shanghai Jing Hong Laboratory Instrument Co.</td>
			<td>H1703544</td>
			<td>to cultur nematodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrophoresis apparatus</td>
			<td>Bio-Rad Laboratories</td>
			<td>1704466</td>
			<td>to achieve electrophoretic analysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol, 75%</td>
			<td>Sinopharm Chemical Reagent Co.</td>
			<td>80176961</td>
			<td>to extract RNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ex Taq Polymerase Premix</td>
			<td>Takara Bio Inc.</td>
			<td>RR030A</td>
			<td>for PCR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ex Taq Polymerase Premix</td>
			<td>Takara Bio Inc.</td>
			<td>RR390A</td>
			<td>for PCR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gel imager</td>
			<td>LongGene Scientific Instruments Co.</td>
			<td>LG2020</td>
			<td>to make nucleic acid bands visible</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GraphPad Prism 8</td>
			<td>GraphPad Prism</td>
			<td>n/a</td>
			<td>to analyze the data and make figurs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High Speed Centrifuge</td>
			<td>Hangzhou Allsheng Instruments Co.</td>
			<td>AS0813000</td>
			<td>centrifug</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-flux tissue grinder</td>
			<td>Bertin</td>
			<td></td>
			<td>to extract RNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ImageJ software</td>
			<td>National Institutes of Health</td>
			<td>n/a</td>
			<td>to measure the body lengths</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isopropyl alcohol</td>
			<td>Shanghai Aladdin Biochemical Technology Co.</td>
			<td>L1909022</td>
			<td>to extract RNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leica DM4B microscope</td>
			<td>Leica Microsystems Inc.</td>
			<td></td>
			<td>to observe nematodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>magnetic beads</td>
			<td>Aoran science technology co.</td>
			<td>150010C</td>
			<td>to extract RNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MEGAscript T7 High Yield Transcription Kit</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td>
			<td>AM1333</td>
			<td>to synthesize dsRNA in vitro</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NanoDrop ND-2000 spectrophotometer</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td>
			<td>NanoDrop 2000/2000C</td>
			<td>to analyze the quality of the dsRNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PCR Amplifier</td>
			<td>Bio-Rad Life Medical Products Co.</td>
			<td>1851148</td>
			<td>to amplify nucleic acid sequence</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri dishes</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>to cultur nematodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pGEM-T Easy vector</td>
			<td>Promega Corporation</td>
			<td>A1360</td>
			<td>for cloning</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potato Dextrose Agar (Medium)</td>
			<td>n/a</td>
			<td>n/a</td>
			<td>to cultur Botrytis cinerea</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Prime Script RT reagent Kit with gDNA Eraser</td>
			<td>Takara Bio Inc.</td>
			<td>RR047B</td>
			<td>to synthetic cDNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Primer Premier 5.0</td>
			<td>PREMIER Biosoft</td>
			<td>n/a</td>
			<td>to design PCR primers</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>primers:ppm-1-F/R</td>
			<td>Tsingke Biotechnology Co.</td>
			<td>n/a</td>
			<td>F: 5&#39;-GATGCGAAGTTGCCAATCATTCT -3&#39;; R: 5&#39;- CCAGATCCAGTCCACCATACACC -3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>q-ppm-1-F/R</td>
			<td>Tsingke Biotechnology Co.</td>
			<td>n/a</td>
			<td>F: 5&#39;-CATCCGAATGGCAATACAG-3&#39;; R: 5&#39;-ACTATCCTCAGCGTTAGC-3&#39;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Real-time thermal cycler&#160;qTOWER 2.2</td>
			<td>Analytique Jena Instruments (Beijing) Co.</td>
			<td></td>
			<td>for qPCR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>shaking table</td>
			<td>Shanghai Zhicheng analytical instrument manufacturing co.</td>
			<td></td>
			<td>to soak nematodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stereoscopic microscope</td>
			<td>Chongqing Optec Instrument Co.</td>
			<td>1814120</td>
			<td>to observe nematodes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>T7-GFP-F/R</td>
			<td>Tsingke Biotechnology Co.</td>
			<td>n/a</td>
			<td>F: 5&#39;-TAATACGACTCACTATAGGGAAA 
			GGAGAAGAACTTTTCAC-3&#39;; R: 5&#39;-TAATACGACTCACTATAGGGCTG 
			TTACAAACTCAAGAAGG-3&#39;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;T7 promoter</td>
			<td>Tsingke Biotechnology Co.</td>
			<td>n/a</td>
			<td>TAATACGACTCACTATAGGG</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Takara MiniBEST Agarose Gel DNA Extraction Kit</td>
			<td>Takara Bio Inc.</td>
			<td>9762</td>
			<td>to recover DNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TaKaRa TB Green Premix Ex Taq (Tli RNaseH Plus)</td>
			<td>Takara Bio Inc.</td>
			<td>RR820A</td>
			<td>for qPCR</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>trichloroethane</td>
			<td>Shanghai LingFeng Chemical Reagent Co.</td>
			<td></td>
			<td>to extract RNA</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRIzol Reagent</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific Inc.</td>
			<td>15596026</td>
			<td>total RNA extraction reagent,to extract RNA</td>
		</tr>
	</tbody>
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application of rna interference in the pinewood nematode, bursaphelenchus xylophilus

Der Kiefernfadenwurm, Bursaphelenchus xylophilus, ist eine der zerstörerischsten invasiven Arten weltweit, die das Welken und schließlich das Absterben von Kiefern verursacht. Trotz der Anerkennung ihrer ökonomischen und ökologischen Bedeutung war es bisher unmöglich, die detaillierten Genfunktionen von pflanzenparasitischen Nematoden (PPNs) mit konventioneller Vorwärtsgenetik und transgenen Methoden zu untersuchen. Als umgekehrte genetische Technologie erleichtert die RNA-Interferenz (RNAi) jedoch die Untersuchung der funktionellen Gene von Nematoden, einschließlich B. xylophilus. 
Dieser Artikel skizziert ein neues Protokoll für RNAi des ppm-1-Gens in B. xylophilus, von dem berichtet wurde, dass es eine entscheidende Rolle bei der Entwicklung und Reproduktion anderer pathogener Nematoden spielt. Für RNAi wurde der T7-Promotor durch Polymerase-Kettenreaktion (PCR) mit dem 5′-Terminal des Zielfragments verknüpft, und doppelsträngige RNA (dsRNA) wurde durch In-vitro-Transkription synthetisiert. Anschließend wurde die dsRNA-Abgabe erreicht, indem die Nematoden in einer dsRNA-Lösung mit synthetischen Neurostimulanzien eingeweicht wurden. Synchronisierte Jungtiere von B. xylophilus (ca. 20.000 Individuen) wurden gewaschen und im Einweichpuffer für 24 h im Dunkeln bei 25 °C in dsRNA (0,8 μg/ml) eingeweicht.
Die gleiche Menge an Nematoden wurde in einen Einweichpuffer ohne dsRNA als Kontrolle gegeben. In der Zwischenzeit wurde eine weitere identische Menge von Nematoden in einen Einweichpuffer mit dem grün fluoreszierenden Protein (gfp) -Gen dsRNA als Kontrolle gegeben. Nach dem Einweichen wurde das Expressionsniveau der Zieltranskripte mittels quantitativer real-time PCR bestimmt. Die Wirkung von RNAi wurde dann durch mikroskopische Beobachtung der Phänotypen und einen Vergleich der Körpergröße der Erwachsenen unter den Gruppen bestätigt. Das aktuelle Protokoll kann dazu beitragen, die Forschung voranzutreiben, um die Funktionen der Gene von B. xylophilus und anderen parasitären Nematoden besser zu verstehen, um Kontrollstrategien durch Gentechnik zu entwickeln.

Analyse der ppm-1-Expression von B. xylophilus nach RNAi Das relative Expressionsniveau des ppm-1-Gens von B. xylophilus, das mit GFP dsRNA getränkt und mit Zielgen dsRNA getränkt war, betrug 0,92 bzw. 0,52 (das ppm-1-Genexpressionsniveau der ddH2 O-behandelten Kontrollgruppe wurde auf 1 festgelegt) (Abbildung 1). Daher hat exogene dsRNA keinen Ein...

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Application of RNA Interference in the Pinewood Nematode, Bursaphelenchus xylophilus

Hier stellen wir eine detaillierte Einweichmethode der RNA-Interferenz in Bursaphelenchus xylophilus vor, um die Untersuchung von Genfunktionen zu erleichtern.

Anwendung von RNA-Interferenz im Kiefernnematoden, Bursaphelenchus xylophilus

The pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus, is one of the most destructive invasive species worldwide, causing the wilting and eventual death of ...

RNAi hat sich zu einer effektiven Methode zur Identifizierung der Funktion von Genen in Nematoden entwickelt und wird als neuer Weg zur effektiven Kontrolle pathogener Nematoden vorgeschlagen. RNAi ist das Einweichen von Nematoden in dsRNA kann für das Verfahren ausreichen. Sammeln Sie zunächst die Nematoden mit der Baermann-Trichtermethode.Legen Sie dazu einen klemmten Gummischlauch unter einen Trichter und legen Sie zwei Schichten Filterpapier in den Mund des Trichters. Die Botrytis cinerea-Pilzkulturen in den Trichter geben und Wasser hinzufügen, um die Pilzmatte einzutauchen. Wenn Nematoden gesammelt werden, fügen Sie 500 Mikroliter Extraktionsreagenz und 100 Mikroliter Magnetperlen zu einem Zentrifugenröhrchen mit zwei Millilitern hinzu.20 Mikroliter der Nematoden absaugen und die Proben bei 9.000 x g 30 Sekunden lang mahlen. Fünf Minuten inkubieren und bei 12.000 x g 10 Minuten bei vier Grad Celsius zentrifugieren. Den Überstand in ein frisches Zentrifugenröhrchen überführen.Fügen Sie 100 Mikroliter Chloroform hinzu und mischen Sie, indem Sie das Röhrchen mehrmals umdrehen. Drei Minuten inkubieren und dann bei 12.000 x g 10 Minuten bei vier Grad Celsius zentrifugieren. Übertragen Sie den Überstand erneut in ein frisches Zentrifugenröhrchen.Fügen Sie 250 Mikroliter Isopropylalkohol hinzu und wirbeln Sie kräftig. Zentrifugieren bei 12.000 x g für 10 Minuten und Wirbel. Verwerfen Sie den Überstand und fügen Sie 500 Mikroliter 75% Ethanol hinzu, um die RNA zu waschen.Wirbeln Sie die Probe an, gefolgt von einer Zentrifugation bei 12.000 x g für fünf Minuten bei vier Grad Celsius. Trocknen Sie das RNA-Pellet fünf Minuten an der Luft und resuspendieren Sie es in 30 Mikrolitern RNase-freiem Wasser. Berechnen Sie die RNA-Konzentration mit dieser Formel und berechnen Sie das Verhältnis von A260 zu A280.Als nächstes verwenden Sie ein Paar Primer, um die teilweise kodierende Sequenz des BX ppm-1-Gens aus dem B.xylophilus zu amplifizieren. Dann klonen Sie die ppm-1 one-Gensequenzen in einen pGEM-T Easy-Vektor, der den T7-Promotor enthält. Wiederherstellung des 894 Basenpaares langes ppm-1-Genfragment, indem das klonierte Plasmid als Vorlage für pcr verwendet wird.Verwenden Sie dann ein In-vitro-Transkriptionskit, um die dsRNA zu synthetisieren. Analysieren Sie die Qualität der dsRNA mit einem Spektralphotometer und visualisieren Sie die Produkte auf einem 1%Agarose-Gel. Fügen Sie vier Mikroliter 5X Einweichpuffer hinzu und füllen Sie das Volumen auf 20 Mikroliter mit doppelt destilliertem Wasser, um eine endgültige RNA-Konzentration von 0,8 Mikrogramm pro Milliliter zu erhalten.Dann legen Sie die Nematoden für 30 Minuten in die Schale und warten Sie, bis die Eier am Boden haften. Entfernen Sie vorsichtig das Wasser und die Nematoden, ohne die Eier zu stören, bis nur noch die Eier in der Schale verbleiben. Die gesammelten Eier im Dunkeln bei 25 Grad Celsius für 24 Stunden ausbrüten, um J2-Larven zu erhalten.Sammeln Sie die Larven in einem Röhrchen und waschen Sie sie dreimal mit doppelt destilliertem Wasser. Dann werden die Larven in das Röhrchen mit der dsRNA-Lösung überführt. Fügen Sie dazu Resorcin hinzu, um eine 1% ige Lösung zu erhalten.Legen Sie die Larven auf einen Schütteltisch, um eine ausreichende Aufnahme von dsRNA in die Larven zu gewährleisten. Für Kontrollen ist die gleiche Menge Nematoden ohne die dsRNA-Sonde oder mit einer GFP-dsRNA-Sonde in den Einweichpuffer eingeweicht. Führen Sie eine qPCR mit den actB- und tbb-2-Genen als interne Referenzen durch, um die Veränderungen des Genexpressionsniveaus zu bewerten.Verwenden Sie die delta-delta-Ct-Methode, um das relative Genexpressionsniveau aus der Auflösungskurve und dem Ct-Wert zu schätzen. Nach RNAi kultivieren Sie die J2-Larven bis ins Erwachsenenalter auf Botrytis cinerea-Rasenflächen auf PDA-Platten. Sammeln Sie die Erwachsenen mit der Baermann Trichtermethode, wie in Abschnitt eins gezeigt.Nehmen Sie Bilder der erwachsenen Nematoden unter einem Mikroskop auf und verwenden Sie die ImageJ-Software, um die Körperlänge von 50 männlichen und 50 weiblichen Nematoden zu messen. Analysieren Sie die Daten, indem Sie den Mittelwert und die Standardabweichung für jede Stichprobe berechnen. Wenden Sie den Student's t-Test an, um die Mittelwerte der Stichproben aus den verschiedenen Gruppen zu vergleichen.Die Analyse der relativen Genexpression nach RNAi zeigte, dass die ppm-1 dsRNA die Expression des ppm-1 one-Gens von B.Xylophilus wirksam hemmen kann. Während exogene GFP dsRNA keinen Einfluss auf die ppm-1-Expression hatte. Nach RNAi nahm die Größe der Erwachsenen trotz Erreichen der Geschlechtsreife deutlich ab, was zu dem kleinen mutierten Phänotyp der Körpergröße führte.Die mittlere Körperlänge der mutierten Weibchen und Männchen betrug 544 und 526 Mikrometer im Vergleich zu 971 und 912 Mikrometer für die Kontrollgruppe. Das Wichtigste ist, die Nematoden in die Doppelstrang-RNA-Lösung zu übertragen und ein weiteres Reagenz hinzuzufügen, um die Nematoden zum Fressen anzuregen. Diese Methode eignet sich für großflächige Genscreens und wird häufig in der Zellforschung eingesetzt. Die Untersuchung der Genfunktion von B.Xylophilus mit dieser Methode hat Leitwert für die biologische Kontrolle von B.Xylophilus.

Research

JoVE Journal

Biology

Application of RNA Interference in the Pinewood Nematode, Bursaphelenchus xylophilus

In vitro Transcription and Capping of Gaussia Luciferase mRNA Followed by HeLa Cell Transfection

In vitro Transcription and Capping of Gaussia Luciferase mRNA Followed by HeLa Cell Transfection

In vitro Transkription und Capping von Gaussia-Luciferase mRNA von HeLa-Zelle Transfektion Gefolgt

In vitro transcription is the synthesis of RNA transcripts by RNA polymerase from a linear DNA template containing the corresponding promoter sequence ...

Forschung

Biologie

Chromatin Isolation by RNA Purification (ChIRP)

Chromatin Isolation by RNA Purification ChIRP

Chromatin Isolierung von RNA-Reinigung (Chirp)

Long noncoding RNAs are key regulators of chromatin states for important biological processes such as dosage compensation, imprinting, and developmental ...

Using RNA-mediated Interference Feeding Strategy to Screen for Genes Involved in Body Size Regulation in the Nematode C. elegans

Using RNA-mediated Interference Feeding Strategy to Screen for Genes Involved in Body Size Regulation in the Nematode C. elegans

Mit RNA-Interferenz Feeding Strategy to Screen for Genes in Body Größe der Rechtsetzung in der Nematode Beteiligte<em&gt; C. elegans</em

Double-strand RNA-mediated interference (RNAi) is an effective strategy to knock down target gene expression1-3. It has been applied to many model systems ...

Larval RNA Interference in the Red Flour Beetle, Tribolium castaneum

Larval RNA Interference in the Red Flour Beetle, Tribolium castaneum

Larven RNA-Interferenz in das rote Mehlkäfer,<em&gt; Tribolium castaneum</em

The red flour beetle, Tribolium&#160;castaneum, offers a repertoire of experimental tools for genetic and developmental studies, including a fully ...

Observation and Quantification of Mating Behavior in the Pinewood Nematode, Bursaphelenchus xylophilus

Observation and Quantification of Mating Behavior in the Pinewood Nematode, Bursaphelenchus xylophilus

Beobachtung und Quantifizierung der Paarungsverhalten in der Pinewood Nematode,<em&gt; Bursaphelenchus xylophilus</em

A method for observing and quantifying the mating behavior of the pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus, was established under a stereomicroscope. ...

Practical Use of RNA Interference: Oral Delivery of Double-stranded RNA in Liposome Carriers for Cockroaches

Praktische Anwendung der RNA-Interferenz: mündliche Lieferung von Double-Stranded RNA in Liposomen Träger für Schaben

RNA interference (RNAi) has been widely applied for uncovering the biological functions of numerous genes, and has been envisaged as a pest control tool ...

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Epigenetic regulation plays central roles in gene expression. Since histone modification was discovered in the 1960s, its physiological and pathological ...

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As well as the typical analysis of RNA-Seq to measure differential gene expression (DGE) across experimental/biological conditions, RNA-seq data can also ...